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3 Clase Teórica Trasferencia Embrionaria 2015

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Med. Vet. Dr. JOSÉ LUIS KONRAD 
 
Departamento de Producción Animal. Cátedra de Teriogenología 
Facultad de Ciencias Veterinarias 
Universidad Nacional del Nordeste 
TRANSFERENCIA DE EMBRIONES 
Interés de su aplicación 
• Multiplicación de individuos de interés 
productivo y razas exóticas 
• Velocidad de cruzamientos 
• Intervalo generacional 
• Selección de las madres de toros 
PROGRAMA 
Organización y ejecución 
 
• Selección de donantes y receptoras 
• Elaboración del cronograma de trabajo 
• Sincronización de celos 
• Tratamiento superovulatorio 
• Detección de celos e IA 
• Colecta de embriones 
• Transferencia o congelación de embriones 
 
 
Selección de donantes 
 y receptoras 
Selección de Donantes 
 Anamnesis 
 
 Revisación clínica 
Selección de Donantes 
• Ciclos estrales regulares y que hayan comenzado 
a temprana edad. 
• Dos o menos servicios por concepción en años 
anteriores. 
• Comportamiento individual superior en 
características de importancia económica. 
• Crías superiores a la media del rodeo. 
Especialmente comparado con sus hermanos/as 
(hijos del mismo toro). 
• Ningún problema al parto o irregularidades 
reproductivas. 
• Ningún defecto genético o de conformación 
detectable. 
• Entre 15 meses y 10 años de edad. 
Revisación Clínica 
 Condición corporal 
 Estado de los órganos genitales en general 
 Estado de los ovarios en particular 
 Prueba de enhebrado 
 
 
Selección de Receptoras 
 Raza 
 
 Categoría 
 
 Condición corporal 
 
 Empleo reiterado 
 
CATEGORÍA DE RECEPTORAS 
• Vaquillas 
- Mayor preñez que las vacas 
- Posibles problemas al parto 
- Competencia nutricional madre/feto 
 
• Vacas 
- Preñez ligeramente inferior a la vaq 
- Enfermedades infecciosas 
- Mejor aptitud materna (leche) 
 
Efecto de la condición corporal de la 
receptora sobre el porcentaje de preñez 
Condición corporal Receptoras transferidas 
 n % de preñez 
 1 230 44a 
2 460 53b 
3 633 55b 
 4 175 47a 
a,b (p<0,05) Mapletoft y col., 1986 
Porcentajes de preñez obtenidos luego 
de efectuar transferencias sucesivas. 
 
Autores Transferencias 
 1º 2da. 3ra. 4ta. 
Donaldson, 
1985 
 58,8 52,6 56,4 50,2 
Hasler y 
col., 1987 
 73 72 67 50 
Liebrich, 
1991• 
 56 46 37 - 
• Embriones PIV 
Requisitos en selección de 
RECEPTORAS 
- Sanitaria y nutricionalmente aptas 
- El tamaño de la receptora debe estar en 
función del embrión que gestará 
- Condiciones generales para gestar, parir y 
criar al ternero sin problemas 
- Constituyen una parte costosa del programa 
ya que tienen alto valor, mantenimiento caro 
y su estado de salud es crítico para el 
programa. 
DONANTES 
¿Cuanto tiempo será mantenida en el 
programa de colecta? 
 
 Hasta que el propietario decida retirarla 
o hasta que su producción de 
embriones no justifique nuevos 
tratamientos. En promedio, 7 
tratamientos sin problemas 
 
RECEPTORAS 
- Deberán se manejadas junto a las donantes 
- No utilizar receptoras que no han quedado 
preñadas en dos oportunidades 
- Prever al menos 7 receptoras por donante 
- Manejo sanitario y nutricional similar al de 
las donantes 
- Evitar el estrés en particular el día de la 
transferencia 
 
PROGRAMA 
Organización y ejecución 
 
• Selección de donantes y receptoras 
• Elaboración del cronograma de trabajo 
• Sincronización de celos 
• Tratamiento superovulatorio 
• Detección de celos e IA 
• Colecta de embriones 
• Transferencia o congelación de embriones 
 
 
PRIMERA VISITA 
 
1- SELECCIONAR DONANTES Y RECEPTORAS 
2- REVISAR INSTALACIONES Y LUGAR DE 
 TRABAJO 
3- DETERMINAR EXPERIENCIA DEL PERSONAL 
4- DEJAR CLARO TODO CON EL PROPIETARIO 
5- ESTABLECER UN CRONOGRAMA DE TRABAJO 
6- ELABORAR PLANILLA DE TRABAJO 
PROGRAMA 
Organización y ejecución 
 
• Selección de donantes y receptoras 
• Elaboración del cronograma de trabajo 
• Sincronización de celos 
• Tratamiento superovulatorio 
• Detección de celos e IA 
• Colecta de embriones 
• Transferencia o congelación de embriones 
 
 
Ciclo Estral de la Hembra 
Bovina Adulta 
Periodicidad del Ciclo (Poliéstrica Anual) 
Duración del Ciclo (17 - 23 días) 
Duración del Celo (6 - 18 hs) 
 Intensidad del Celo (3 - 50 montas) 
Momento de Ovulación (24 - 30 hs) 
Sincronización de los celos 
de receptoras 
PROTOCOLO DE TRATAMIENTO CON 
PROSTAGLANDINA 
2da. PGF 1ra. PGF 
Día 0 Días 11/14 Días 13/16 
CELO 
PROTOCOLO DE TRATAMIENTO CON 
PROSTAGLANDINA 
1ra. PGF 
Días 0 2 5 
CELO 
EN AMBOS CASOS, BAJA SINCRONÍA Y MUCHAS TRATADAS 
NO PODRÁN SER UTILIZADAS 
Días 0 7 9 10 17 
GnRH PGf2 GnRH CELO TE 
 COMBINACIÓN GnRH-
PGF 
SINCRONIZACIÓN CON PROSTAGLANDINAS 
1- Una aplicación a un número alto de receptoras. 
Aproximadamente el 50% de las tratadas serán aptas 
para la transferencia. Dispersión de celos entre 2 y 7 días. 
 
2- Doble aplicación a un número limitado. Entre el 70 y 
90% de las tratadas será apta para la transferencia. 
Dispersión de celos entre 3 y 5 días 
 
3- Combinación de GnRH y PGF con días de intervalo. 
Cerca del 90% de las tratadas serán aptas para la 
transferencia. Dispersión de celos entre 1 y 2 días 
SINCRONIZACIÓN CON PROGESTÁGENOS 
Hormonas utilizadas para corregirlo 
•Progesterona y progestágenos 
•Estradiol 
•Prostaglandina 
•ECG 
Gran sincronía de celo y ovulación 
CRONOGRAMA 
 P4 + E2 P4 celo y 
 ovul. 
APLICACIÓN EXTRACCIÓN 
 E2 + PGF 
APLICACIÓN 
Día 0 Día 7 Día 9-10 
Tratamiento Transferidas / 
Tratadas 
(%) 
Preñadas / 
Transferidas 
(%) 
Preñadas / 
Tratadas 
(%) 
PGF2 60,0 53,3 33,0 
2 PGF2 28,9 44,5 12,9 
Ovsynch 90,9 48,0 44,0 
P4 ó 
progestágenos 
85,0 57,6 48,7 
Bó y col., 2004 
RESULTADOS 
PROGRAMA 
Organización y ejecución 
 
• Selección de donantes y receptoras 
• Elaboración del cronograma de trabajo 
• Sincronización de celos 
• Tratamiento superovulatorio 
• Detección de celos e IA 
• Colecta de embriones 
• Transferencia o congelación de embriones 
 
 
 
Ondas Foliculares 
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 
16 
 
14 
 
12 
 
10 
 
8 
 
6 
 
4 
F
o
ll
ic
u
la
r 
D
ia
m
e
te
r(
m
m
) 
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 
Días después de la ovulación 
1- Iniciado después de un celo natural 
o sincronizado con prostaglandinas 
 
ALTERNATIVAS 
2- Iniciado en el curso de un tratamiento 
de inducción y/o sincronización del celo 
mediante control del desarrollo folicular 
PROGRAMA INICIADO DESPUÉS 
DE UN CELO NATURAL 
• Inicio del tratamiento: 8 a 12 días 
después de observado el celo natural o 
sincronizado 
• La detección del celo se lleva a cabo 3 
veces al día (mañana, mediodía y tarde) 
• Cuando se trata de más de una 
hembra, se sincronizan los celos para 
iniciar el tratamiento a todas juntas 
SINCRONIZACIÓN DE CELOS 
DE LAS DONANTES 
• Por tratarse por lo general de hembras 
con actividad sexual cíclica, se procede 
a la sincronización de los celos mediante 
una doble aplicación de prostaglandinas. 
PGF 
11-14 días 
PGF 
CELO 
Donantes 
Programa de superovulación 
después de un celo celo natural 
Días 21  1 
Receptoras 
Día 10  2 
 7h FSH-p 
Día 0 1a. Dosis PGF 
19h FSH-p 
2a. Dosis PGF 
(celo natural sincronizado) 
Día 11  2 
 7h FSH-p 
19h FSH-p 
Día 12  2 
 7h FSH-p 1 dosis PGF 2 
19h FSH-p 1 dosis PGF 2 
Día 13  2 
 7h FSH-p 
19h FSH-p y detección de celo 
Día 14  1 detección de celo e IA 
Día 15  1 IA 
Recolección de embriones 
detección 
de celo 
TE o C 
• Ablación Folicular• GnRH 
• Progesterona y 
estradiol 
Control del desarrollo folicular 
Transvaginal ultrasound-guided 
follicle ablation 
 Bergfelt et al., 1994 
 
Ablación 
~ 1,5 días 
Nueva onda 
Bergfelt et al., 1994 
T
a
m
a
ñ
o
 f
o
li
cu
la
r 
Días 
Ablación folicular 
Programa iniciado en el curso de un 
tratamiento de inducción y sincronización 
2- Evita tratamientos de sincronización de 
 celos previo con prostaglandinas 
3- El tratamiento puede ser iniciado 
 independientemente del momento del ciclo 
 en que se encuentra la hembra 
4- Programas más cortos 
1- Implica el uso de progestágenos 
Be 2 mg 
P4 50 mg 
Disp P4 
Día 0 
- Disp P4 
 GnRh 
Día 15 
lavaje IATF 
24 hs 
FSH en dosis decrecientes 
4 5 8 6 7 9 
PGF2a 
Control del desarrollo Folicular 
Dispositivos con Progesterona + Estradiol 
Progestágenos utilizados en 
Superovulación de Bovinos 
 
 
 Implantes subcutáneos SMB o Crestar 
 
 Dispositivos intravaginales 
 PRID CIDR-B DIB TRIU-B CUE-MATE 
17 estradiol 
Benzoato de estradiol 
Valerato de estradiol 
Cipionato de estradiol 
Dias pos tratamiento 
 1 2 3 4 5 6 7 8 9 
12 
 
10 
 
8 
 
6 
 
4 
L
H
 
Progestágenos y 
estradiol-17 
~ 4.días 
nueva onda 
folicular 
Bo et al., 1994 
D
iá
m
e
tr
o
 F
o
li
cu
la
r 
(m
m
) 
Días 
Sincronización del desarrollo folicular 
F
S
H
 
Programa de superovulación durante 
un tratamiento con progestágenos 
Colocación del dispositivo intravaginal o implante+ 
BE+P4 
Día 4 
 7h FSH-p 
19h FSH-p 
Día 5 
 7h FSH-p 
19h FSH-p 
Día 6 
 7h FSH-p 1 dosis PGF 2, retiro de dispositivo o implante 
19h FSH-p 1 dosis PGF 2 
Día 7 
 7h FSH-p 
19h FSH-p y detección de celo 
Día 8 detección de celo e IA 
Día 0 
Día 9 IA 
Día 16 recolección de embriones. TE o Cong. 
FSH-p vida media corta 
 
Dosis total: hasta 400 unidades 
8 dosis decrecientes cada 12 hs 
 
1º día 40% 
2º día 30% 
3º día 20% 
4º día 10% 
Vida media larga 
1500 a 3000 UI 
En una sola aplicación 
 
 Inconvenientes 
• Debido a la vida media larga es conveniente 
utilizar anti-PMSG al cuarto día 
• Como es de otra especie se crean anticuerpos y 
en los siguientes tratamientos decae la 
respuesta 
400 mg de FSH-P1 diluidos en 
20 ml de solución fisiológica 
Tratamiento con Folltropin-V® 
Día 1 08,00 hs: 2,5 ml 
18,00 hs: 2,5 ml 
Día 2 08,00 hs: 2,5 ml 
18,00 hs: 2,5 ml 
Día 3 08,00 hs: 2,5 ml 
18,00 hs: 2,5 ml 
Día 4 08,00 hs: 2,5 ml 
18,00 hs: 2,5 ml 
500 UI de FSH y LH diluidas en 
20 ml de solución fisiológica 
Tratamiento con Pluset® 
Día 1 08,00 hs: 3 ml 
18,00 hs: 3 ml 
Día 2 08,00 hs: 2,5 ml 
18,00 hs: 2,5 ml 
Día 3 08,00 hs: 2 ml 
18,00 hs: 2 ml 
Día 4 08,00 hs: 1,5 ml 
18,00 hs: 1,5 ml 
Día 5 08,00 hs: 1 ml 
18,00 hs: 1 ml 
En síntesis, las dosis 
promedio son 
Dosis respuesta superovulatoria 
Dosis obtención de ovocitos y embriones 
• Retención de ovocitos en folículos luteinizados 
• Retención de ovocitos y embriones en oviducto 
• Disminución de captación de las fimbrias 
• Aumento de lavajes sin éxito en animales 
 problema 
Relación FSH/LH 
Una cantidad excesiva de LH provoca: 
 
 - tasa de ovulación 
 - tasa de fertilización 
 - número y porcentaje de 
 embriones transferibles 
Tratamiento de Superovulación 
Día 0 CIDR-B + 5 mg E-17 + 100 mg P4 
Día 4 am 4 ml Folltropin 
 pm 4 ml Folltropin 
Día 5 am 3 ml Folltropin 
 pm 3 ml Folltropin 
Día 6 am 2 ml Folltropin + PGF 
 pm 2 ml Folltropin + Sacar CIDR-B + PGF 
Día 7 am 1 ml Folltropin 
 pm 1 ml Folltropin (observar Celo) 
Día 8 am Celo + IA 
 pm IA 
Día 9 am IA 
Día 16 Colección de embriones 
 
 
Tratamiento de Superovulación 
en Vacas de Carne Británicas 
Día 0 CIDR-B + 5 mg E-17 + 100 mg P4 
Día 4 am 3,5 ml Folltropin 
 pm 3,5 ml Folltropin 
Día 5 am 2,5 ml Folltropin 
 pm 2,5 ml Folltropin 
Día 6 am 1,5 ml Folltropin + PGF 
 pm 1,5 ml Folltropin + Sacar CIDR-B + PGF 
Día 7 am 0,5 ml Folltropin 
 pm 0,5 ml Folltropin (ver Celo) 
Día 8 am Celo + IA 
 pm IA 
Día 9 am IA 
Día 16 Colección de embriones 
 
 
Tratamiento de Superovulación en 
Brangus y Braford 
Día 0 CIDR-B + 
Día 4 am 2,0 ml Folltropin 
 pm 2,0 ml Folltropin 
Día 5 am 1,5 ml Folltropin 
 pm 1,5 ml Folltropin 
Día 6 am 1,0 ml Folltropin + PGF 
 pm 1,0 ml Folltropin + Sacar CIDR-B + PGF 
Día 7 am 0,5 ml Folltropin 
 pm 0,5 ml Folltropin +Celo 
Día 8 am Celo + IA 
 pm IA 
Día 9 am IA 
Día 16 Colección de embriones 
 
 
2,5 mg E-17 + 50 mg P4 
PGF2 
2 
6 
10 
14 
Dia 8 Dia 7 
mm 
Dia 0 Dia 4 
BE + P4 
LH o 
GnRH 
P4 
FSH 
Tratamiento de Superovulación 
Día 0 DISP P4 + 
Día 4 am 3,5 ml Folltropin 
 pm 3,5 ml Folltropin 
Día 5 am 2,5 ml Folltropin 
 pm 2,5 ml Folltropin 
Día 6 am 1,5 ml Folltropin + PGF 
 pm 1,5 ml Folltropin + PGF 
Día 7 am 0,5 ml Folltropin + sacar disp. P4 
 pm 0,5 ml Folltropin 
Día 8 am GnRH 
 pm IA 
Día 9 am IA 
Día 16 Colección de embriones 
 
 
2,5 mg EB + 50 mg P4 
Distribución de las ovulaciones evaluando 
 la aplicación de GnRH (%). 
0
10
20
30
40
50
60
70
56 64 72 80 88 96 104
hs. después de la 1er Pgf
Control
Gnrh
IA 
GnRH: 95,5 % 
Control: 81,3 % 
P < 0,0001 
12 y 24 hs de detectado el celo o de 
colocada la GnRh 
1º I.A.: dos dosis de semen de buena 
calidad y fertilidad probada (una dosis 
en cada cuerno si es posible) 
2º I.A.: una dosis I.A. normal (algunos 
recomiendan 2 dosis incluso una tercera 
I.A.) 
 
 
 
Característica general en la respuesta a 
un tratamiento superovulatorio 
(Donaldson, 1994) 
 
* 70% son colectadas y producen embriones 
transferibles 
 
* 30% no producen embriones transferibles: 
• 7% sin respuesta 
• 7% falta ovocitos y embriones 
• 17% sin embriones transferibles 
• 1% no se realizó el lavaje 
Performance de vacas Angus tratadas 
cada 40 días, durante 18 meses 
n 24 
 
Tratamientos, (X), [rango] 
 
332 (13,8) [11-16] 
 
Embriones totales, (X), [rango] 
 
1812 (76) [26-162] 
 
Embriones / Tratamiento 
[rango] 
 
 (5,5) [0-35] 
Hasler, 2000 
Producción estimada 
(en base a 5,8 embriones transferibles por vaca) 
 
365 días / 40 días = 9 colecciones por año 
 
9 col. x 5,8 emb. transf. = 52,2 emb. por vaca por 
año 
 
52 emb. x 60 % preñez = 31 preñeces por vaca 
por año 
Programación de Donantes 
PROGRAMA 
Organización y ejecución 
 
• Selección de donantes y receptoras 
• Elaboración del cronograma de trabajo 
• Sincronización de celos 
• Tratamiento superovulatorio 
• Detección de celos e IA 
• Colecta de embriones 
• Transferencia o congelación de embriones 
 
 
Colecta de embriones 
 
METODOS NO QUIRÚRGICOS 
Introducción del catéter a través del 
cuello del útero 
 
 - Rígido (Modelo francés) 
 
 - Semirrígido (Modelo de Rasbech) 
 
 - Flexible (Sistema actual) 
 
CATÉTER RÍGIDO DE ORIGEN FRANCÉS 
(3 vías) 
DETALLE DEL CATÉTER RÍGIDO DE 
ORIGEN FRANCÉS 
DETALLE DEL CATÉTER RÍGIDO DE 
ORIGEN FRANCÉS 
CATÉTER FLEXIBLE TIPO FOLEY CON PUNTA METÁLICA 
DETALLE DE PUNTA METÁLICA DE LA SONDA 
TIPO FOLEY 
CATÉTER FLEXIBLE TIPO FOLEY 
Frascos de vidrio 
CATETERES SEGÚN EL TIPO DE 
CIRCUITO UTILIZADO 
1- Cerrado con flujo continuo (francés, frasco 
colgante) 
2- Cerrado con flujo discontinuo 
3- Abierto con flujo discontinuo (jeringa) 
SISTEMA ABIERTO SISTEMA CERRADO 
 Jeringa 60 ml 
 
 Mejor control de la 
cantidad de liquido que se 
coloca y se extrae 
 Posible contaminación 
 El ayudante es el que 
ingresa el liquido 
 
 Tubo en Y 
 
 No hay contaminación ?? 
 Menor control del liquido 
recuperado 
 Mas practico un solo 
operador 
 Es el mas usado. 
PREPARACIÓN DE LA DONANTE Y 
COLECTA 
AYUNODETERMINACIÓN DE LA RESPUESTA OVÁRICA 
 
APLICACIÓN DE TRANQUILIZANTE 
 
APLICACIÓN DE ANESTESIA EPIDURAL 
 
HIGIENE PERINEAL 
DILATADOR CERVICAL 
COLOCACIÓN DEL CATÉTER Y LAVADO DEL ÚTERO 
Medio de lavaje 
500 ml por cuerno aprox. 
 Medios comerciales 
• Dulbeco`s 
• Ringer lactato 
PBSS 
PBS Dulbecco 
Suero fetal bovino 
MANIPULACIÓN DEL MEDIO OBTENIDO Y 
BÚSQUEDA DE EMBRIONES 
Tipo Em-con 
Tipo 
Minitub 
Evaluar las receptoras 
• Separar las que tienen CL 
• Anotar en que ovario se encuentra el CL 
• Mejor si se marca el anca del lado del CL 
Embretar la donante 
• Tranquilizante 
• Sacar bosta y evaluar respuesta superovulatoria 
(CL en cada ovario) 
• Epidural baja sin sacar el brazo para que no se 
abalone el recto 
Lavar la zona peri-anal (cepillar bien) 
 Introducir la sonda Foley con estilete 
Atravesar el cérvix 
 Ingresar en uno de los cuernos lo mas 
craneal posible 
Retirar 5 cm aprox el estilete 
Empujar nuevamente 
 Inflar el balón (con jeringa sin 
intermediario de goma) 
Comprobar que quedo bien sujeto 
Retirar el estilete 
Conectar tubo en Y 
Dejar pasar liquido al interior del útero 
hasta sentir la distención del mismo 
Masajear 
Abrir el clamp hacia el filtro o tubo 
colector 
Controlar volumen recolectado 
Una vez que pasaron unos 500 ml 
cambiar de cuerno 
Desinflar el balón 
Sacar la sonda y armar de nuevo 
Colocar ídem anterior pero en el otro 
cuerno y repetir el lavado. 
 
IMPORTANTE: el ayudante debe controlar 
que el filtro tenga siempre liquido 
Lupa con platina térmica 
Platina térmica de mesa 
BÚSQUEDA Y MANIPULACIÓN DE EMBRIONES 
Tubuladura 
Plástica y capilar 
Jeringa de insulina 
y unopette 
Capilares de vidrio 
Transferpetor 
Día 0 Celo 
 
Día 1 Ovulación 
 
Día 2 2 células 
 
Día 3 4 células 
 
Día 4 
 
Día 5 
 
Día 6 
 
Día 7 
 
Día 8 
 
Día 9 
 
8
 
8 células 
4 células 
16 células 
Mórula 
Mc 
Bt 
 
 
B 
Be 
Bp 
Mc= Mórula compacta 
Bt= Blastocisto temprano 
B= Blastocisto 
Be= Blastocisto expandido 
Bp= Blastocisto protruido 
DESCENSO DE LOS 
EMBRIONES 
OVULO Y EMBRIONES 
Óvulos sin fertilizar 
Embriones de 8 células 
Mórula Compacta 
Bt 
Mc 
Ovulo sin 
fertilizar 
Mc 
Bt 
O sf 
Be 
IETS (SOCIEDAD 
INTERNACIONAL DE 
TRANSFERENCIA DE 
EMBRIONES 
CRITERIO 
 Grado I, II, III, IV 
 
 EXCELENTE 
 BUENO 
 REGULAR 
 MALO (no transferible) 
 
 Forma 
 Simetría 
 Apariencia 
 Tonalidad 
 Uniformidad 
 Proporcionalidad 
 Zona pelucida 
 
Usar pajuelas de 0,25 ml irradiadas 
Cargar PBSS 4cm 
Burbuja 
Embrión 1cm 
Burbuja 
PBSS 4cm 
Comprobar la presencia del embrión bajo 
la lupa 
Las burbujas son para que no se desplace el 
embrión hacia los extremos 
La primer columna cargada para que lo 
empuje fuera de la vaina. 
Colocar la pajuela unida al intermediario 
de la vaina 
 Introducir la pajuela en el pistolete 
Desplazar la vaina hacia caudal 
Ajustarla con el anillo plástico 
Colocar dentro de la camisa sanitaria 
Dejar siempre en posición horizontal. 
Punta roma con 
los orificios 
laterales 
pajuela 
Pistolete 
Estilete 
Embretar la receptora 
Vaciar el recto 
Con el brazo adentro epidural baja 
 Introducir pistolete con camisa sanitaria 
Al llegar a la entrada del cérvix el 
ayudante retira la camisa sanitaria 
Enhebrar 
 Introducir en el cuerno ipsilateral al CL 
DEPOSITAR LO MAS CRANEAL POSIBLE 
LENTAMENTE. 
ESTADIO 
EMBRIONES 
TRANSFERIDOS 
Preñez 
Mt 586 359 61% 
Mc 1178 792 67% 
B 600 402 67% 
Be 139 99 71% 
total 2503 1652 66% 
Schneider y col. 1980

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