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BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 1 Verificación de las Características Analíticas de Biosensores PEPTIR Para la Detección y Cuantificación de Escherichia Coli O157:H7 en Aguas Naturales Lozano Cadena Jhon Jairo Universidad de Santander Facultad de Ciencias Exactas, Naturales y Agropecuarias Microbiología Industrial Bucaramanga 2022 BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 2 Verificación de las Características Analíticas de Biosensores PEPTIR Para la Detección y Cuantificación de Escherichia Coli O157:H7 en Aguas Naturales Lozano Cadena Jhon Jairo Trabajo de Grado para Optar el título de Microbiólogo Industrial Director Ropero Vega José Luis Químico, Ph. D en Química Codirector Valdivieso Quintero Wilfredo M. sc Ciencias Básicas Biomédicas Universidad de Santander Facultad de Ciencias Exactas, Naturales y Agropecuarias Programa de Microbiología Industrial Bucaramanga 2022 BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 3 En cumplimiento de los requisitos exigidos según el acuerdo 010 de 2014 por medio del cual se reglamenta el Trabajo de Grado y expedido por el Consejo Académico, se llevó a cabo la evaluación del trabajo de grado titulado “Verificación de las características analíticas de biosensores PEPTIR para la detección y cuantificación de Escherichia coli O157:H7 en aguas naturales” desarrollado en la modalidad de Investigación por la estudiante: Código Primer apellido Segundo Apellido Nombre(s) 01170331006 Lozano Cadena Jhon Jairo Este trabajo estuvo dirigido por el Ph.D. Jose Luis Ropero Vega, y codirigido por el M.Sc Wilfredo Valdivieso Quintero Y cumpliendo lo dispuesto por el Acuerdo 031 de 2014, el cual se modifica el Reglamento Académico y Estudiantil, y en particular lo referente al capítulo 5, artículos 80 y 85, parágrafo 1 referente al proceso de evaluaciones, calificaciones y aprobación de los cursos; el jurado evaluador estuvo conformado por la M.Sc Gina Patricia Parra Aparicio y el M.Sc Alvaro Andrés Amaya Vesga, los cuales emitieron la respectiva calificación para el trabajo de grado en mención, el cual recibe el concepto de Aprobado con una calificación de cuatro coma siete (4,7). En constancia firman MICROBIOLOGÍA INDUSTRIAL COMITÉ DE TRABAJO DE GRADO ACTAS SUSTENTACIÓN TRABAJO DE GRADO MIIFT001BUC Versión: 00 No. de Acta: 0042022A Fecha: 21 de Julio de 2022 Lugar: Aula Virtual Teams Hora Inicio: 2:00 pm Hora Final: 3:00 pm BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 4 Dedicatoria Para mis papas que siempre me dieron su apoyo, me guiaron para tomar el mejor camino y me dieron su mejor educación. A mi hermano óscar que siempre estuvo conmigo en todo este proceso. A Laura mi novia por siempre creer en mí y aconsejarme. A mi compañera Laura que hizo parte de estos 5 años de carrera y siempre me brindo su ayuda. Al profesor José Luis Ropero y al profesor Wilfredo Valdivieso que me dieron su confianza desde el principio para ser parte de este proyecto. BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 5 Agradecimientos Quiero agradecer a DIOS por permitirme vivir esta experiencia durante estos 5 años, guiándome y mostrándome el mejor camino. Quiero agradecer a mi director de tesis José Luis Ropero Vega, Ph. D y co-director Wilfredo Valdivieso por orientarme en la realización del proyecto, además por brindarme de su conocimiento para poder hacer las cosas de la mejor manera. También quiero agradecer a mis compañeras leidy Albiares y Yuly Galvis, que son estudiantes de maestría de la universidad de Santander que fueron una parte importante de mi aprendizaje en el laboratorio. De igual forma quiero agradecer a mi compañero Santiago Morales por ser parte en esta experiencia del laboratorio. En gran medida agradecer a mis papas y mi hermano por ser ese gran apoyo día a día, quienes me aconsejaron y estuvieron siempre a mi lado, dándome su gran cariño y afecto. Por ultimo quiero agradecer a mi novia Laura Cárdenas por brindarme su amor por apoyarme en cada momento de mi vida y por estar en los buenos y malos momentos durante estos 5 años. BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 6 Tabla de Contenido Capítulo 1 ...................................................................................................................................... 15 Introducción .................................................................................................................................. 15 Capítulo 2 ...................................................................................................................................... 20 Objetivos ....................................................................................................................................... 20 Objetivo General ........................................................................................................................... 20 Objetivos Específicos.................................................................................................................... 20 Capítulo 3 ...................................................................................................................................... 21 Marco de Antecedentes ................................................................................................................. 21 Contaminación Microbiana ........................................................................................................... 21 Escherichia coli. ........................................................................................................................... 22 Métodos de Detección................................................................................................................... 22 Capítulo 4 ...................................................................................................................................... 30 Marco Teórico ............................................................................................................................... 30 Contaminación de Fuentes Hídricas ............................................................................................. 30 Escherichia coli O157:H7 ............................................................................................................ 31 Métodos de Detección. .................................................................................................................. 32 Biosensores ................................................................................................................................... 37 Capítulo 5 ...................................................................................................................................... 44 Marco Legal .................................................................................................................................. 44 Capítulo 6 ...................................................................................................................................... 47 Metodología .................................................................................................................................. 47 Materiales y Equipos Utilizados ................................................................................................... 47 Componente Microbiológico ........................................................................................................ 48 BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 7 Componente Biológico ................................................................................................................. 48 Método Electroquímico Técnicas ................................................................................................. 48 Síntesis de Nanoparticulas de oro (AuNps) .................................................................................. 49 Inmovilización del Péptido ........................................................................................................... 49 Detección Electroquímica de Escherichia coli en Agua Natural .................................................. 50 Filtración por Membrana .............................................................................................................. 52 Capítulo 7 ...................................................................................................................................... 54 Resultados y Discusión ................................................................................................................. 54 Detección de Escherichia coli O157:H7 con Biosensores PEPTIR a Diferentes Concentraciones ....................................................................................................................................................... 54 Repetibilidad ................................................................................................................................. 62 Pruebas de Selectividad ................................................................................................................ 63 Coeficiente de Correlación entre Biosensores y Técnica de Filtración por Membrana ............... 68 Conclusiones ................................................................................................................................. 71 Recomendaciones ......................................................................................................................... 73 Referencias Bibliograficas ............................................................................................................ 74 BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 8 Lista de Figuras Figura 1 Identificación y Cuantificación Mediante la Amplificación de Genes de Virulencia Asociados a las Categorías Diarreogénicas de E. coli Mediante la Técnica de Reacción en Cadena de la Polimerasa PCR 24 Figura 2 Análisis a Través de Electroforesis en gel de Agarosa 2% de los Productos Amplificados por PCR Para el gen eae de Escherichia coli (ECEP) 25 Figura 3 Identificación (UFC) de E. coli a Través de la Técnica Filtración por Membrana 26 Figura 4 Identificación (UFC) de E. coli a Través de la Técnica Filtración por Membrana (Mayo – agosto) 2013). 27 Figura 5 Sistema de Detección. Estrategia Basada en Aptámeros con Alta Afinidad de Lipopolisacáridos de Escherichia coli O111 28 Figura 6 Clasificación de Escherichia coli Según el Mecanismo de Infección 33 Figura 7 Presentación Esquematizada de los Ciclos de una PCR 36 Figura 8 Esquema de los Componentes de un Biosensor 37 Figura 9 Variables que Afectan la Reacción de un Electrodo 40 Figura 10 Gráficos de la Voltametría de Onda Cuadrada 42 Figura 11 Voltamograma de una Voltametría Cíclica 43 Figura 12 Características Microbiológicas 45 Figura 13 Esquema de Circuito Equivalente (EC) 49 Figura 14 Esquema Metodológico del Ajuste de Microorganismo Escherichia coli. 50 Figura 15 Caracterización Electroquímica de los Biosensores Para la Detección de Escherichia coli. 52 Figura 16 Diagrama de Nyquist Para la Detección de Escherichia coli 54 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104246 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104246 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104246 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104247 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104247 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104248 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104249 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104249 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104250 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104250 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104251 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104252 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104253 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104254 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104255 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104256 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104257 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104258 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104259 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104260 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104260 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104261 BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 9 Figura 17 Voltamogramas de la Técnica Voltametría de Onda Cuadrada 56 Figura 18 Curva de Calibración 58 Figura 19 Rango Lineal del Biosensor 61 Figura 20 Repetibilidad del Biosensor 62 Figura 21 Diagrama de Nyquist Para Evaluación de la Selectividad. Espectroscopia de impedancia Electroquímica (EIS) 64 Figura 22 Evaluación de la Selectividad 66 Figura 23 Interacción Intimina - TIR 67 Figura 24 Coeficiente de Correlación 68 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104262 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104263 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104264 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104265 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104266 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104266 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104267 file:///C:/Users/FALOCO/Downloads/LIBRO%20TRABAJO%20FINAL.docx%23_Toc112104268 BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 10 Lista de Apéndices Apéndice A. Filtración por Membrana de Escherichia coli 81 Apéndice B. Promedios del Conteo de Filtración por Membrana 82 Apéndice C. Siembra en Placa de Escherichia coli 83 Apéndice D. Promedios del Conteo en Placa 84 BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 11 Resumen Título Verificación de las Características Analíticas de Biosensores PEPTIR Para la Detección y Cuantificación de Escherichia coli O157:H7 en Aguas Naturales Autor Lozano Cadena Jhon Jairo Palabras Clave Biosensor, Contaminación, Escherichia coli, Péptidos, Verificación. Descripción Escherichia coli es un microorganismo patógeno de importancia a nivel de salud púbica. Actividades humanas como manejo indiscriminado de desechos, entre otros, ha conllevado a generar contaminación de afluentes hídricos. El consumo del agua sin tratamiento previo ha llevado a que se generen enfermedades al ser humano. Por esta razón es importante el uso de técnicas que permitan la detección de Escherichia coli O157:H7 como la técnica de filtración por membrana y técnicas moleculares muy sensibles. Sin embargo, estas técnicas presentan desventajas. Por esta razón surge la necesidad de optar por sistemas más rápidos, fácil manejo y bajo costo. Para el presente trabajo se utilizó un biosensor electroquímico basado en péptidos PEPTIR 2.0 diseñado por el grupo CIBAS de la universidad de Santander, con capacidad de reconocer a Escherichia coli O157:H7 y se realizó la verificación con evidencia significativa para comprobar que este sistema si cumple con el objetivo por el cual fue diseñado por medio de técnicas electroquímicas. BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 12 Para esta verificación se evaluaron características analíticas como Limites de detección y cuantificación, repetibilidad y selectividad, además esta respuesta electroquímica del biosensor fue comparada con una técnica validada como filtración por membrana. Se determinó que límites de detección y cuantificación fueron 20 y 66 UFC/mL, respectivamente, mostrando rango lineal entre las concentraciones 10, 30 y 50 UFC/mL. Además, se obtuvo buena repetibilidad. El comportamiento de este biosensor en términos de selectividad presento una inclinación marcada hacía Escherichia coli O157:H7 en presencia de microorganismos interferentes. La respuesta del biosensores fue comparada con la técnica de filtración por membrana, mostrando una buena correlación entre las dos, lo que resulta ser un método muy prometedor y permite concluir que es mucho más rápido, más fácil de manejar y su potencial uso lo convierten en una gran alternativa para ser integrados en la industria. BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 13 Abstract Title Verification of the analytical characteristics of PEPTIR biosensors for the detection and quantification of Escherichia coli O157:H7 in natural waters. Author Lozano Cadena Jhon Jairo Key Words Biosensor, Contamination, Escherichia coli O157:H7, Peptides, Verification Description Escherichia coli is a pathogenic microorganism of public health importance. Human activities such as indiscriminate waste management, among others, have led to contamination of water tributaries. The consumption of water without prior treatment has led to the generation of diseases in humans. For this reason, it is important to use techniques that allow the detection of Escherichia coli O157:H7, such as the membrane filtration technique and highly sensitive molecular techniques. However, these techniques have drawbacks. For this reason, the need arises to opt for faster systems, easy handling and low cost. For the present work, an electrochemical biosensor based on PEPTIR 2.0 peptides was produced, designed by the CIBAS group of the University of Santander, with the capacity to recognize Escherichia coli O157:H7, and the verification was carried out with significant evidence to verify that this system complies with with the objective for which it was designed by means of electrochemical techniques.For this verification, analytical characteristics such as detection and quantification limits, repeatability and selectivity were evaluated, in addition this electrochemical response of the biosensor was compared with a validated technique such as BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 14 membrane filtration. Limits of detection and quantification were 20 and 66 CFU/mL, respectively, showing a linear range between concentrations 10, 30 and 50 CFU/mL. In addition, good repeatability was obtained. The behavior of this biosensor in terms of selectivity shows a marked bias towards Escherichia coli O157:H7 in the presence of interfering microorganisms. The response of the biosensors was compared with the membrane filtration technique, showing a good connection between the two, which turns out to be a very promising method and allows us to conclude that it is much faster, easier to handle and its potential use is personalized in a great alternative to be integrated into the industry. BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 15 Capítulo 1 Introducción A medida que aumenta la población mundial, se agudiza la problemática de contaminación de los recursos hídricos a causa de algunas fuentes como son aguas residuales industriales y domésticas, también se evidencia contaminación por plantas de tratamiento, actividades agrícolas y ganadería no controladas y tanques de pozos sépticos, esto aumenta el número de componentes orgánicos que favorecen el crecimiento de microorganismos indeseables y contaminantes que hacen que el agua no sea potable y se transforme en peligroso vector de microorganismos causante de enfermedades (Gil, Soto, Usma, & Gutierrez, 2012). Un gran problema que se presenta al utilizar aguas residuales, es la presencia de coliformes fecales (Corrales Ramirez, Sanchez Leal, & Escucha Rodriguez, 2014), los coliformes fecales son un sub grupo de los coliformes totales, son fermentadores de lactosa a 37°C, aproximadamente el 95% del grupo de los coliformes presentes en heces fecales, están formados por Escherichia coli (Red Iberoamericana de Potabilización y Depuración del Agua). Teniendo en cuenta esta problemática, se hace necesario el control de este tipo de aguas por medio de técnicas autorizadas como lo es la filtración por membrana, según el Instituto de Hidrología, Meteorología y Estudios Ambientales (IDEAM), esta técnica se basa en un mecanismo el cual atrapa microorganismos cuyo tamaño es mayor a 0,45µm, sin embargo, presenta ciertas desventajas en su realización como el tiempo de respuesta que en promedios es de 24 horas (Chiluisa Utreras, Coba, & Echeverria, 2014), los altos niveles de turbiedad pueden intervenir en los resultados y microorganismos acompañantes intervienen en el conteo (Iriarte, 2014). Otro tipo de técnica más especializada es qPCR, ya que genera resultados cuantitativos en menor tiempo, y seguridad para el operario al evitar el uso de reactivos cancerígenos como el bromuro de etidio (Huerta Caro, Urbano Caceres, & Torres Caycedo, 2019). Actualmente en una BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 16 de las técnicas más sensibles para detectar y cuantificar ácidos nucleicos (Tamay De Dios, Ibarra, & Velasquillo, 2013), pero la utilización de equipos sofisticados la hacen una técnica más costosa y difícil de optimizar (Chirinos Arias, 2015). Por esta razón, surge la necesidad de desarrollar sistemas mucho más rápidos, económicos y confiables, como son los biosensores electroquímicos para la detección rápida de E. coli. Por lo anterior, el uso de biosensores electroquímicos ha despertado el interés para ser usados en la detección de microorganismos. Son instrumentos que se destacan por su capacidad para absorber moléculas como ADN y péptidos (aptámeros), gracias a su superficie de nanopartículas de oro las cuales tienen propiedades superficiales y catalíticas únicas de este material, además la presencia de partículas a nivel manométricas hace posible la transferencia de carga directa entre el grupo redox y la superficie del electrodo (Agüï Chicharro, Yañez Sedeño, Gonzalez Cortes, & Mena, 2005). se basan en detectar el producto de una reacción química (o bioquímica) sobre la superficie de un material conductor. En este caso, la señal detectada se traduce en una señal eléctrica para su investigación, por ser electroquímico, esta medida puede llevarse a cabo con volúmenes muy pequeños de muestra, los límites de detección que se pueden obtener son suficientes y adecuados para la detección del analíto de interés, su simplicidad de uso y bajo costo permiten una fácil disponibilidad de este instrumento (Reviejo & Pingarron, 2000). Al igual estos sistemas de biosensores tienen ciertas limitaciones en cuanto al uso a largo plazo de los polímeros, por otro lado, tiene limitaciones en la detección de analítos múltiples debido a la superposición de la emisión de señal. Investigadores del grupo CIBAS de la universidad de Santander, han desarrollado un biosensor electroquímico basado en aptámeros peptídicos con capacidad de detectar E. coli en matrices acuosas. Los aptámeros peptídicos están basados en secuencias de BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 17 péptidos análogas a la proteína TIR, la cual es específica a la proteína de membrana de E. coli llamada Intimida. Límites de detección y cuantificación (2 y 6 UFC/ mL respectivamente) fueron determinadas de una forma preliminar y se realizaron por duplicado y triplicado, pero surge la necesidad de aportar evidencia significativa del cumplimiento para el uso y aplicación por el cual fue construido mediante la Verificación del método en muestras de aguas naturales (Ropero, Redondo, Galvis, Rondon, & Florez, 2021). Sin embargo, existen algunas características analíticas que se desean conocer tales como linealidad, especificidad, límite de detección, límite de cuantificación y sensibilidad de este biosensor y se hace necesario la debida verificación de este método para comprobar que su funcionamiento es el ideal para el objetivo por el cual fue construido. Por esta razón se debe comparar este biosensor en cuanto a su sensibilidad y especificidad de detección de E. coli frente a una de las técnicas convencionales como lo es filtración por membrana, con el fin de evaluar el potencial uso de los biosensores en aplicaciones biotecnológicas. El comportamiento de un biosensor normalmente es una gran alternativa de detección y se caracteriza experimentalmente evaluando su LOD, sensibilidad, selectividad, rango lineal y dinámico, reproducibilidad, tiempo de respuesta, estabilidad, portabilidad y facilidad de uso, su funcionamiento se basa en el reconocimiento de un agente biológico que es enviado al transductor, estos elementos están conectados en forma directa de manera que al unirse la molécula especifica o analíto, se producirá una señal química o física que luego será procesada para dar información cuantitativa. En los últimos años, los biosensores han venido teniendo gran acogida, ya que ofrecen ventajas en cuanto a miniaturización, automatización, reducción de los costos de análisis y facilidad para integrarlos dentro de sistemas de aguas y en procesos de manipulación de alimentos, todo esto hace que los biosensores presenten un carácter más BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 18 sostenible que los métodos convencionales (Borraz Martinez, 2016). Según estudios realizados por (Wang, Zhao, & Bie, 2019), los biosensores electroquímicos demuestran una buena reproducibilidad y un amplio rango de respuesta lineal para detectar E. Coli. Estos biosensores permiten obtener resultados fiables en mucho menos tiempos que los métodos convencionales (Iglesias de la Arada, 2012). Este método de detección realmente muy novedoso por su desarrollo biotecnológico, características como el acoplamiento de la micro-nano-tecnología y su estrategia de inmovilización, resulta cada vez más potentes para resolver problemas analíticos (Campuzano, 2011). Por esta razón surge la necesidad de realizar la respectiva verificación de un biosensor, comparándolo en cuanto a la sensibilidad y especificidad con otras técnicas definidas previamente como estándares de validación (“Gold stándard”),según la Unión internacional de química pura aplicada (IUPAC, 2002), La verificación del método es, por tanto, un componente esencial de las medidas que un laboratorio debe implementar para permitirle producir datos analíticos fiables, el método está fundamentado básicamente en establecer y documentar ciertas características de acuerdo al rendimiento del método, y así demostrar si es adecuado para un proceso analítico en particular. Este proceso de verificación del método en este caso los biosensores, requieren de ciertos estudios para establecer su funcionalidad y de esta manera observar su desempeño y así saber si es adecuada o no, para integrarla en la industria. Dentro de la verificación hay algunas actividades a evaluar como las características analíticas de desempeño más habituales como límite de detección, repetibilidad y selectividad, que se hacen muy importantes por razones sustentables como por ejemplo el control de la calidad del agua. Los laboratorios que adopten los métodos deben o bien revalidarlos o bien verificarlos como BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 19 proceda para garantizar su funcionamiento adecuado en su entorno habitual (Morillas & et al, 2016). BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 20 Capítulo 2 Objetivos Objetivo General • Establecer las características analíticas de un biosensor electroquímico basado en péptidos PEPTIR para la detección de E. coli O157:H7 en agua natural. Objetivos Específicos • Realizar la calibración de biosensores PEPTIR utilizando muestras de agua natural para determinar límite de detección, límite de cuantificación y repetibilidad. • Evaluar la selectividad de biosensores PEPTIR hacia la detección de E. coli O157:H7 en presencia de microorganismos interferentes. • Identificar el coeficiente de correlación de las técnicas filtración por membrana y de biosensores PEPTIR para la detección de Escherichia coli O157:H7 en aguas naturales. BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 21 Capítulo 3 Marco de Antecedentes En los últimos años, se ha evidenciado en gran manera las diferentes aplicaciones que generan los sistemas de biosensores portátiles, ya que presentan facilidad a la hora de su uso. Además de esto, sus buenos resultados permiten la integración de biosensores en diferentes campos diagnósticos como son áreas de bioprocesos, ambiental, clínico, entre otros. Una de las funciones principales en el área de bioprocesos es la detección y cuantificación de microorganismos patógenos, como por ejemplo el grupo de los coliformes fecales que están relacionados con enfermedades transmitidas por alimentos y por consumo de aguas. En este capítulo se recopilará información sobre sistemas de detección de Escherichia coli, diseñados con aptámeros peptídicos siendo este el principal elemento de reconocimiento. Por esta razón se recopilaron trabajos de investigación científica, dando énfasis en el elelemento principal de reconocimiento es un aptamero peptídico donde el objetivo principal es la detección de Escherichia coli. Por esta razón cada uno de los trabajos que se referenciaron se buscó mejorar algunas características analísticas como una buena sensibilidad, bajos límites de detección, y reducir tiempo de respuesta dando resultados confiables. Contaminación Microbiana En el año 2015, Ashbol destaca que pueden existir alrededor o más de 500 microorganismos que son patógenos que generan preocupación ya que son transmitidos por agua potable, que fueron identificados por la agencia de Protección Ambiental de los Estados Unidos (EPA), existe un grupo de bacterias que representan un riesgo para la salud humana como las bacterias entéricas, el cual son indicativos de presencia de materia fecal (Ashbolt, 2015). Actualmente la Organización Mundial de la Salud (OMS), ha generado parámetros en los cuales recomienda que cuando hay presencia de microorganismos tales como Escherichia coli en BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 22 aguas potables, este es un gran indicativo de presencia de materia fecal, cuando se hay presencia de dicho microorganismo y es consumido puede causar diferentes enfermedades asociadas con diarrea (Gruber, Ercumen, & Colford, 2014) Escherichia coli. Escherichia coli es un microorganismo de morfología Gram-negativo y pertenecen a los coliformes fecales que normalmente se encuentran en el intestino de seres humanos y también de animales. Estos microorganismos son tan pequeños que requieren del microscopio para poder ser observado, sin embargo, la forma en que crecen puede observarse como colonias en diferentes medios de cultivo (Agar). En la actualidad la mayoría de las bacterias E. coli no presentan riesgo para la salud humana, pero si dicho microorganismo ingresa a algún sitio equivocado puede causar diferentes enfermedades tales como diarrea, fiebre, náuseas y vomito (Rock & Rivera, 2014). Para este grupo de microorganismo existen diferentes tipos que reciben el nombre de cepas de Escherichia coli, que pueden causar múltiples enfermedades. Algunas cepas causales de enfermedades se pueden clasificar de la siguiente manera: Enterotoxigénico (ETEC), Enteropatógenos (EPEC), Enterohemorrágico (EHEC) y Enteroinvasivo (EIEC). Una de las cepas más importantes a nivel de salud pública es Escherichia coli O157:H7 es una de las cepas más conocidas ya que es la causante de generar diarreas acompañadas de sangre y en algunos casos está implicada en daños asociados a riñones y el síndrome urémico hemolítico potencialmente fatal (Rock & Rivera, 2014). Métodos de Detección Métodos Convencionales. BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 23 Medios de Cultivo. Actualmente existen diferentes técnicas que nos permiten la identificación de microorganismos como por ejemplo Escherichia coli. Unos de los métodos convencionales son los medios de cultivo los cuales constan de nutrientes que permiten el crecimiento, identificación y cuantificación de E. coli (Carrillo Zapata & Lozano Caicedo, 2008). Este método de identificación fenotípico (características de forma macroscópicas y microscópicas), se destaca principalmente por comparar este comportamiento de bacterias en diferentes medios de cultivo, esta identificación será confirmada de acuerdo a la cantidad de características similares del microorganismo a identificar (Fernadez Olmos, Garcia de la Fuente, Saez Nieto, & Valdezate Ramos, 2011). Pruebas Moleculares. Otro de los métodos convencionales que se destacan actualmente es la identificación molecular, dicho método ha surgido como una técnica más específica, lo cual se convierte en una alternativa de identificación más exacta. A medida que avanzan los años se da un gran avance de la tecnología y la biotecnología en cuanto a la utilización de técnicas de secuenciación genómica y la implementación de genes cuyo procedimiento de secuencia permiten la identificación más exacta de géneros y especies de bacterias (Fernadez Olmos, Garcia de la Fuente, Saez Nieto, & Valdezate Ramos, 2011). En la actualidad existe una técnica ampliamente descrita y una de las más utilizadas como lo es la Reacción en Cadena de la Polimerasa PCR. Estudios realizados con esta técnica han arrojado resultados relevantes en la identificación y cuantificación de Escherichia coli asociada a infecciones enteropatogénicas. Martínez y colaboradores en el 2015, realizaron estudios utilizando PCR para la identificación de Escherichia coli presente en aguas, dando como resultado un aislamiento de dicho microorganismo dando un indicativo de que las aguas analizadas están siendo contaminadas con materia fecal. BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 24 Nota. Patotipos diarrogénicos de E. coli, aislados e identificados en las muestras de aguas marinas de las playas peñón, culí, güirintal, quetepe y tocuchare, estado sucre, Venezuela. Tomado de Martínez, 2015. El patotipo que tuvo más frecuencia en la amplificación fue E. coli ECEP Enteropatógena), donde el proceso de electroforesis permitió evidenciar bandas aproximadas de 482 pares de bases dando a entender que esta cepa contenían el gen eae. (Figura 2) (Martinez, Villalobos, & Castillo, 2015). Figura 1 Identificación y Cuantificación Mediante la Amplificación de Genes de Virulencia Asociados a las Categorías Diarreogénicas de E. coli Mediante la Técnica de Reacción en Cadena de la Polimerasa PCR BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 25 . Nota. Pozos de electroforesis: (1) marcador de peso molecular; (2) control positivo (E. coli cdc edl 933); (3) control negativo (E. coli ATCC 25922); (4-16) cepas positivas. Tomado de Martínez 2015 La presencia de estos patógenos confirmados mediante la ampliación de genes asociados a la bacteria Escherichia coli mediante la técnica PCR dejan en evidencia que estos patógenos están siendo parte de la contaminación de aguas marinas lo cual genera un riesgo para los bañistas y turistas que por su contacto directo con el agua incluso cuando se ingiere por error representan un gran peligro de adquirir enfermedades entéricas (Martinez, Villalobos, & Castillo, 2015). Técnica de Filtración por Membrana. Uno de los métodos más utilizados para la identificación de Escherichia coli en aguas es la técnica de filtración por membrana, es una técnica altamente reproducible y genera resultados alrededor de las 24 hora. Por esta razón surge la necesidad de realizar un control sobre la calidad del agua para consumo humano y su potabilización reconociendo que por ciertas actividades industriales se está generando una contaminación gracias a coliformes fecales dentro de los cuales se encuentra Escherichia coli. Figura 2 Análisis a Través de Electroforesis en gel de Agarosa 2% de los Productos Amplificados por PCR Para el gen eae de Escherichia coli (ECEP) BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 26 Un estudio realizado en el 2016, destaco que en dos zonas como la Bahía de sechura las delicias y parachique encontraron presencia de Escherichia coli en aguas de dichas zonas. El estudio se basó en la toma de muestra (total de muestras 32) de dos puntos diferentes en cuanto a su profundidad en la zona de la toma, el cual ellos denominaron una toma superficie y la segunda toma la llamaron profundidad y la detección y cuantificación de dicho microorganismo se realizó a través de la técnica de filtración por membrana (Quijada Rojas, 2016). Se analizaron las 32 muestras del estudio y arrojaron que si hubo presencia de Escherichia coli, además de esto se evidencio que hubo una presencia alta de contaminación en las muestras tomadas en la profundidad como se observa en las figuras 3 y 4 (Quijada Rojas, 2016). Nota. *UFC = cada colonia visualizada por cada 100ml de muestra procesada. Valores absolutos según normas del ISO 8199:2005 de Water quality. Tomado de Quijano 2016. Figura 3 Identificación (UFC) de E. coli a Través de la Técnica Filtración por Membrana BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 27 Nota.*UFC = colonia visualizada por cada 100ml de muestra procesada. Valores absolutos según ISO número 8199:2005 de Water quality. Tomado de Quijano 2016. Estos resultados permitieron destacar que estas aguas tienen presencia del microorganismo Escherichia coli lo cual es un indicativo de contaminación fecal, además de esto la técnica de filtración por membrana permite realizar el monitoreo y control de calidad del agua con resultados fiables. Biosensores Electroquímicos. Un nuevo método en la actualidad son los biosensores, estos han desarrollado un gran interés debido a las diferentes problemáticas con respecto a las técnicas convencionales ya que estas tienen tiempos de respuesta prolongados y su utilización es más costosa. Un biosensor electroquímico se compone estrictamente de dos partes: el receptor o sistema de reconocimiento y un transductor. La primera parte es el receptor y está encargado de interaccionar con el analíto para generar un posterior cambio, el transductor reconoce ese cambio y genera una señal, esta señal es enviada a un transductor electroquímico, Esta señal se convertirá en una señal eléctrica para su posterior análisis de los datos en tiempo real (Royano Martinez, 2020). Figura 4 Identificación (UFC) de E. coli a Través de la Técnica Filtración por Membrana (Mayo – agosto) 2013). BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 28 En la actualidad los biosensores electroquímicos han mostrado un buen comportamiento y funcionamiento rápido frente a la detección de patógenos que pueden afectar al ser humano por la ingesta de alimento y consumo de agua contaminada. Estos sistemas se han centrado en mejorar las diferentes técnicas enfocándose en el sistema biológico de reconocimiento, de igual forma mejorando las nanopartículas y el electrodo para generar un mejor paso de electrones siendo estos sistemas más eficaces (Xu, Wang, & Li, 2017). Según Luo y colaboradores en el 2012 trabajaron en el desarrollo de un biosensor electroquímico, con una buena especificidad y sensibilidad que se basan en la inmovilización de un aptamero que reconoce a la célula diana, para la detección de Escherichia coli O111. El aptamero o elemento biológico de reconocimiento se inmovilizo en una superficie de oro anclada al electrodo por medio de la unión de oro y el grupo tiol. la cual puede ser detectada electroquímicamente como se puede observar en la Figura 5. Esta investigación puedo determinar que el límite de detección fue de 111 UFC/mL, en solución salina y de 305 UFC/mL, en leche en un rango de horas entre 3 y 5 (Luo, 2012). Nota. En la figura se observa la detección de Escherichia coli O111 mediada por aptámeros con alta afinidad de lipopolisacáridos. Tomado de Luo. 2012. Figura 5 Sistema de Detección. Estrategia Basada en Aptámeros con Alta Afinidad de Lipopolisacáridos de Escherichia coli O111 BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 29 En la actualidad son varios los experimentos que utilizan estos sistemas como alternativas por su facilidad de uso, buena miniaturización, bajo costo, y son sistemas muy sensibles. De acuerdo a esto existen múltiples investigaciones, pero en la actualidad no hay ninguna que se base en elementos de reconocimientos muy específicos a proteínas de membrana como lo destacan Ropero y colaboradores 2021. Este trabajo es uno de los pioneros en realizar reportes basados en diseños bioinformáticas los cuales se han inspirado en una proteína extra celular llamada Tir que a su vez es un receptor de proteínas de membrana de Escherichia coli llamada Intimina. Este biosensor se basó en la modificación del electrodo con nanoparticulas de oro. Los resultados encontrados en este estudio arrojan que límites de detección y cuantificación son de 2 y 6 UFC/mL respectivamente, además este biosensor presenta gran selectividad hacia Escherichia coli en presencia de otros microorganismos como Staphylococcus aureus y Pseudomonas aeruginosa. Esto lo convierte en un nuevo método sensible, de gran selectividad y de un tiempo de detección rápida de aproximadamente 30 minutos (Ropero, Redondo, Galvis, Rondon, & Florez, 2021). BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 30 Capítulo 4 Marco Teórico Contaminación de Fuentes Hídricas El agua es el líquido vital para los procesos biológicos de la naturaleza, por sus innumerables propiedades que la componen, el agua natural se puede encontrar en cualquier parte del planeta teniendo en cuenta que toda agua natural es aquella que el ser humano no le ha realizado ningún tipo de tratamiento o ha sido modificada, además de esto, el agua es utilizada para hacer parte de procesos en la agricultura entre un 70 % y 80%, la actividad industrial que se compone de un 20% y la actividad doméstica en un 6 %. Esto la convierte en el recurso más importante de todo el mundo, De allí viene la importancia de cuidar y preservar estas fuentes hídricas, para asegurar la calidad del agua y de esta manera generar aprovechamiento durante muchos años (Arcos pulido & et al, 2005). Gracias a las malas prácticas generadas por el hombre mediante actividades que están acelerando y contribuyendo a la contaminación del agua por proceso tales como la eutrofización, que genera alteración de la calidad del agua se han venido evidenciando que estos afluentes hídricos están siendo contaminados y además estructuras biológicas también se están viendo afectados por el aumento de componentes orgánicos e inorgánicos. Este proceso de eutrofización afecta las características normales del agua y conduce a la muerte de diferentes especies de animales. Esto ayuda al aumento y proliferación de microorganismos indeseables tales como bacterias que en ultimas representan un riesgo para la salud humana (Arcos pulido & et al, 2005). Una de las mayores preocupaciones que se está presentando en la actualidad es la contaminación fecal de aguas superficiales ya que estas sirven como una gran fuente de abastecimiento en países que están en procesos de desarrollo. Esta contaminación en gran parte se da por el mal manejo de vertimientos de desagües que no tienen un tratamiento previo de BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 31 descontaminación, y generalmente esto ocurre con frecuencia en las grandes ciudades de todo el planeta (Arcos pulido & et al, 2005). Un gran indicador de contaminación fecal en aguas es la presencia de Escherichia coli, este microorganismo normalmente se encuentra en el tracto digestivo tanto de animales como del ser humano. Por esta razón este microorganismo es catalogado como un indicador universal de presencia fecal en aguas, la sola presencia de E. coli en agua es motivo de preocupación ya que si estas fuentes hídricas son consumidas pueden generar en el ser humano gastroenteritis incluso llegar a causar la muerte como es el caso de E. coli O157:H7 (IDEAM, 2007). Escherichia coli O157:H7 Historia y Origen. Escherichia coli O157:H7 recibe ese nombre ya que posee 157 antígenos somáticos (O), y el 7 es un antígeno flagelar (H). Este microorganismo en el año de 1982 fue conocido como una bacteria patógena en humanos por estar relacionada en diferentes casos clínicos tales como colitis hemorrágica y síndrome hemolítico urémico posdiarreico. Esta bacteria representa gran importancia a nivel de salud pública y se hace necesario su control ya que es una de las primeras cepas reconocidas como enterohemorrágica y que en la actualidad ha estado involucrada en aproximadamente el 90% de casos asociados a diarreas (Mead & Griffin, 1998). Generalidades y Taxonomía. Escherichia coli de acuerdo con su morfología es un bacilo GRAM negativo, perteneciente a la familia Enterobacteriaceae, genero Escherichia, este microorganismo mide aproximadamente 2 µm de largo y 0,5 µm de diámetro reconociendo además que es un microorganismo anaerobio facultativo. Este presenta características de motilidad por sus flagelos perítricos. En su gran mayoría estas cepas pueden fermentar la lactosa catalasa positivo y oxidasa negativa. BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 32 Patogenicidad. Los patógenos que provocan diarrea, tales como los enteropatógenos, emplean una serie de estrategias avanzadas que le permiten adentrarse en el ser humano para adherirse en el epitelio intestinal del huésped y así causar múltiples enfermedades que afectan su salud. Cuando el microorganismo llega a las células del colon altera el cito esqueleto de las mismas que se regula por la proteína de membrana intimina implicada en procesos de adherencia, situada allí empieza una producción de verotoxina lo cual empiezan a generan grandes daños inhibiendo la síntesis proteica y finalmente generando una necrosis hemorrágica en las vellosidades del intestino. Las toxinas generadas por este microorganismo se transportan hacia el torrente sanguíneo provocando coagulaciones intravasculares afectando el sistema nervioso central. Diferentes cepas de E. coli, poseen diferentes mecanismos de infección y se pueden clasificar diferente como se observa en la figura 6. Cada ser humano adopta naturalmente mecanismos de acción frente a este tipo de microorganismo con el fin de mitigar la acción de Escherichia coli en el organismo. Como se conoce actualmente, una de las barreras contra estos patógenos es la acides estomacal, este proceso biológico juega un papel importante que hace más difícil el trabajo de infección de dicho microorganismo. Otra barrera muy importante es la aportada por el sistema inmune el cual se encarga de producir anticuerpos gracias al estímulo de antígenos específicos (Hidalgo & Ulcuango, 2019). Métodos de Detección. De manera diaria en los laboratorios se aplican técnicas y métodos convencionales para la identificación de Escherichia coli en aguas. Estos métodos ya se encuentran establecidos en los laboratorios, en especial en los de microbiología, tales métodos como fenotípicos que se basan en BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 33 la observación y forma de crecimiento en medios de cultivo. Otros como la filtración por membrana que se basa en filtran cierto volumen de agua con equipos compuesto de una bomba de vacío y técnica molecular como la PCR y qPCR que se enfocan en la amplificación de genes específicos para cada microorganismo (Radeland, Krüger, & Luchessi, 2017). Sin embargo, estos métodos convencionales presentan ciertas limitaciones como altos costos y tiempos de respuesta prolongados. Por esta razón, surge la necesidad de optar por sistemas mucho más rápidos, sencillos de utilizar y su costo sea más bajo. Nota. En la figura se presenta cada microorganismo con su abreviatura, mecanismo de acción y síntoma que causa al ser humano. Tomado de Ulcuango, 2019. Figura 6 Clasificación de Escherichia coli Según el Mecanismo de Infección BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 34 Filtración por Membrana. Esta técnica de filtración por membrana, consta de un mecanismo por el cual se atrapan en la parte superficial de una membrana bacterias como Escherichia coli, para su posterior análisis. El poro de este filtro de membrana consta de un diámetro de 0.45 µm. Consta de una bomba de vacío que genera una fuerza de presión ejercida sobre la muestra haciendo que se filtre. Ciertos microorganismos como virus que presentan un tamaño menor que el del poro pasaran sin ningún problema, pero microorganismos como Escherichia coli quedaran atrapadas en la superficie de esta membrana que serán llevadas a diferentes medios de características selectivas y diferenciales en el cual se dará su posterior crecimiento en Unidades Formadoras de Colonias (Carrillo Zapata & Lozano Caicedo, 2008). Este equipo contiene un soporte que contiene el filtro, este soporte está compuesto por un embudo que a su vez este contiene una pieza que funciona a presión para mantener el sistema estable. Este equipo de filtración por membrana debe asegurar que cuando pase el agua a través del filtro se mantenga rígido y así evitar cualquier daño mecánico (Carrillo Zapata & Lozano Caicedo, 2008). Para la identificación de coliformes totales y coliformes fecales dentro de los cuales se encuentra Escherichia coli, se utiliza medio de cultivo llamado Chromocult, que se compone de Salmon GAL – 6 cloro – 3 indol y βD galactopiranosido, es un componente cromogénico, y finalmente cuando hay la presencia de coliformes totales se tornara de color rojo salmón por la reacción del microorganismo con dichos componentes. Para la identificación de Escherichia coli y diferenciación de los coliformes totales se da por medio de X-Glucorósido, que también hace parte del medio cromogénico, este presentara una reacción con una enzima llamada glucoronidasa que a su vez reaccionaran con el sustrato llamado salmón-GAL que también hace BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 35 parte del medio cromogénico, para generar en las colonias de Escherichia coli un color azul- violeta y así poder ser diferenciado de coliformes totales (rojo salmón) (IDEAM, 2007). Métodos Moleculares. Estas técnicas moleculares se han desarrollado puntualmente para el estudio de todo tipo de ácido nucleico. La aplicación de estas técnicas se centra en identificar ADN de microorganismos que estén relacionado con la contaminación de productos alimenticios y de aguas, entre otros, por medio de técnicas ampliamente descritas como la PCR (Reacción en Cadena de la polimerasa) y qPCR (Reacción en Cadena de la Polimerasa en tiempo real). Dichas técnicas son altamente sensibles y ayudan en la identificación de patógenos como por ejemplo Escherichia coli O157:H7 (Radeland, Krüger, & Luchessi, 2017). Métodos moleculares (PCR). La técnica de PCR (Reacción en Cadena de la Polimerasa), se fundamenta en la generación de múltiples segmentos de ADN. Para dar un inicio favorable de esta técnica es de vital importancia realizar una mezcla de componentes para que se lleven a cabo ciertas reacciones, esta mezcla lleva el nombre de master mix los cuales se componen de dos Primers (oligonucleótidos), que se comportan en la reacción como iniciadores, también debe ir presente el ADN polimerasa termoestable o Taq, nucleótidos (dNTPs), Mg+2, buffer de PCR y agua tridestilada. Posteriormente cuando se da esta mezcla se procede a realizar los ciclos de termociclados como se observa en la Figura 4, cada ciclo que ocurre dentro de la reacción sucede en tres pasos. El primer paso inicia cuando se da la desnaturalización de la hebra de ADN y esto genera que las dos cadenas se separen, a una temperatura de 90 °C. El segundo paso inicia la fase de hibridación o annealing, y está a diferencia del primer paso utiliza una temperatura entre los 40 °C y los 60 °C. Esto permite que el par de Primers encuentre una región especifica dentro de una de las cadenas de ADN. El tercer y último paso ocurre lo que llamamos BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 36 la extensión, donde el ADN polimerasa añade nucleótidos que se complementan entre si iniciando por el extremo 3’ de la hebra molde anteriormente desnaturalizada. Nota. En la imagen se puede observar como de una hebra se generan el doble a medida que los ciclos de la técnica aumentan. Tomado de Radeland 2017. Este último paso se lleva a cabo a temperaturas de 72 °C ya que la ADN polimerasa presenta gran actividad enzimática, repitiéndose cada ciclo en forma exponencial (Radeland, Krüger, & Luchessi, 2017). Métodos Moleculares (qPCR). para la técnica de PCR en tiempo real tanto la amplificación como la detección se llevan a cabo en un proceso simultaneo, lo cual evita la implementación de geles y esto permite que a medida que se dé la amplificación de los genes pueda ser cuantificado. Para el desarrollo de esta técnica se necesitan termocicladores que tengan incorporado lectores fluorescentes. Finalmente, dependiendo de la fluorescencia emitida este será proporcional a la cantidad de ADN formado. Figura 7 Presentación Esquematizada de los Ciclos de una PCR BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 37 Biosensores Estos dispositivos llamados biosensores se encuentran integrados por diferentes elementos biológicos como agentes de reconocimiento (enzimas, péptido, aptámeros, etc). Estos biosensores se basan en analizar reacciones que van a generar señales cuantificables para análisis posteriores. Estos sistemas de biosensores se componen de dos elementos básicos, un sistema de reconocimiento molecular llamado receptor y un transductor. Este acoplamiento biológico traduce una información que es convertida a una señal y esta será directamente proporcional a la concentración de muestra que se analiza. Este sistema como se observa en la Figura 5, esquematiza cada parte desde la muestra hasta el procesador (Gutierrez, Venegas, & Bollo, 2021). Nota En la figura se muestra el esquema representativo del funcionamiento de un biosensor. La muestra analizar está representada por figuras geométricas de color violeta simulando el microorganismo Escherichia coli en una matriz acuosa, seguidamente del elemento de reconocimiento tales como aptámeros peptídicos, los cuales estarán en contacto directo e interactuaran con el analíto, el transductor, será el encargado de transmitir la señal y pasar esta información a la parte electrónica donde se analizarán los resultados tomado de Gutiérrez 2021. Figura 8 Esquema de los Componentes de un Biosensor BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 38 Biosensores Electroquímicos. Estos tipos de biosensores, inicialmente consta de un transductor electroquímico. Estos biosensores en principio están integrados por un transductor y un receptor, y este es capaz de generar una información cuantitativa mediante el elemento biológico de reconocimiento. Los biosensores pueden clasificarse de acuerdo con el mecanismo de transducción de las señales, como por ejemplo potenciométricos, efecto de campo o de conductividad (Thevenot, Toth, Durst, & Wilson, 2001). Para la presente investigación nos enfocaremos sobre los biosensores electroquímicos de carácter potensiométricos ya que son el objeto de estudio. Potensiométricos. Se fundamentan en las diferencias de potenciales, entre un indicador y un electrodo de transferencia, en este caso el transductor que lo compone puede ser un electrodo selectivo de iones basados en películas delgadas. Para el funcionamiento de estos biosensores se debe tener en cuenta aspectos fundamentales como por ejemplo cuando se coloca una capa biocatalizadora junto al detector. • Transporte de sustrato en la superficie del electrodo • Difusión del analíto • Reacción del analíto en presencia del biocatalizador • Difusión de producto de reacción hacia el detector (Thevenot, Toth, Durst, & Wilson, 2001). Estos biosensores electroquímicos básicamente constan de dos partes: El transductor y el elemento de reconocimiento. Elemento de Reconocimiento. El elemento de reconocimiento biológico es el encargado de reconocer el analíto y de esta manera traducir la información biológica a información cuantificable, lo que se conoce como una señal electroquímica. Realmente este elemento de BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 39 reconocimiento se encarga de proveer al biosensor un alto grado de afinidad hacia lo que queremos detectar. De acuerdo con esto debemos entender que los biosensores son selectivos para analíto en particular, como por ejemplo los que utilizan, biosensores para compuestos fenólicos, para células completas, entre otros. Transductor. El transductor en este tipo de biosensores tiene como objetivo proporcionar la señal que viene desde el sistema de reconocimiento hacia el dominio electico. Este transductor genera una señal bidireccional hacia el transductor (Detector), y de esta manera poder cuantificar esta información y generar señales a través de ciertas técnicas electroquímicas (Thevenot, Toth, Durst, & Wilson, Electrochemical Biosensors: Recommended Definitions and Classification, 1999). Técnicas Electroquímicas. La técnica electroquímica facilita el estudio de la termodinámica cuando se trata de reacciones. Se enfoca en estudiar las diferentes propiedades de la espectroscopia que tienen que ver con diferentes intermediarios como radicales iónicos, estos métodos a su vez se emplean como herramientas analíticas. La implementación de las diferentes técnicas electroquímicas obliga a entender más sobre los principios involucrados entre la reacción en el electrodo y las propiedades eléctricas del electrodo y la solución. Existen algunas variables que pueden afectar las reacciones en un electrodo como se observa en la figura 6. Para describir térmicamente la reacción en el electrodo, se hace a través de la ecuación de Nernst: Siendo CO especie oxidada y CR la especie reducida. El potencial de reducción que contiene la cupla respecto a un electrodo de hidrogeno se denotará como EO (Bonetto, 2013). BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 40 Nota. En el esquema se presenta cada una de las variables que pueden afectar las reacciones en el electrodo. Tales variables son: variables del electrodo, variables de transferencia de masa, variables de la solución, variables externas y variables eléctricas. Tomado de Bonetto 2013. Figura 9 Variables que Afectan la Reacción de un Electrodo BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 41 Para estudiar este tipo de procesos de óxido reducción que normalmente se dan en el electrodo debemos hablar y abordar ciertas técnicas electroquímicas como los son la Espectroscopia de Impedancia Electroquímica (EIS), Voltametría de Onda Cuadrada (SWV), y Voltametría Cíclica (CV). Espectroscopia de Impedancia Electroquímica (EIS). Esta técnica se caracteriza por analizar diferentes campos como la electrocatálisis y la energía, esta técnica se caracteriza por dos aspectos fundamentales, el primero es que se pueden presentar propiedades físicas como por ejemplo velocidad de las reacciones químicas, coeficiente de difusión, características microestructurales del sistema electroquímico. Como segundo aspecto fundamental es que esta técnica en cuanto a su implementación es muy fácil, y es la única técnica que puede medir la corriente y la diferencia de potencial que se aplica en función de la frecuencia. Esta técnica en especial mide la transferencia que hay entre la corriente y el potencial, este sistema se sometido a un voltaje sinusoidal para un grupo de frecuencias dando como respuesta corriente o voltaje resultante (Ciucci, 2019). Voltametría de Onda Cuadrada. La técnica Voltametría de Onda Cuadrada (SWV) se fundamenta en medir una corriente mediante rangos de tiempo cortos. Se denota como una onda de carácter positivo que se dirige hacia adelante en tiempo ti1 y otra onda de carácter negativo que se dirige hacia atrás al tiempo ti2 como se observa en la figura 10. Finalmente se encontrará una variación o diferencia entre la intensidad de corriente que es i1-i2 la cual se denota en función del potencial, de esta manera se obtiene un voltamograma que generara un pico simétrico. Esta técnica da como resultado mejor sensibilidad comparada con otras técnicas electroquímicas como por ejemplo voltametría de pulso diferencia (DPV) puesto que la intensidad de corriente global, el resultado es la suma de corrientes, una anódica la BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 42 cual comprende la fase positiva y se da un proceso de oxidación, y una corriente catódica que comprende la fase negativa y se da un proceso de reducción, llegando a una sensibilidad de al menos de 3 veces mayor a la de la DPV que se encuentra en rangos de 10-7 hasta 10-8 mol L-1 (Huertas, 2018). Nota. En la presente figura se esquematiza las diferentes intensidades de corriente parte izquierda, y en la parte derecha se observa un voltamograma con un pico simétrico tomado de Huertas, 2018. Voltametría Cíclica (CV). La técnica de voltametría cíclica se encarga de mostrar reacciones de óxido reducción y que además de esto son reversibles, dándose la transferencia de electrones, presentando al final 2 picos, un pico que corresponde a la oxidación del compuesto que se reduce (pico anódico), y el otro pico que muestra la reducción del compuesto oxidado (el pico catódico) así como se observa en la figura 8. En este punto se puede conocer el potencial que corresponde a cada uno de los picos, denotándose como (Epa) el pico de oxidación anódico, y denotándose como (Epc) el pico de reducción catódico Esta técnica facilita la obtención de información de procesos termodinámicos de la cupla redox que se esté utilizando (Bonetto, 2013). Figura 10 Gráficos de la Voltametría de Onda Cuadrada BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 43 Nota. En el esquema se muestra el voltamograma de un proceso redox reversible donde se da la transferencia de electrones, un pico Epc catódico de reducción y un pico Epa anódico de oxidación tomado de Bonetto, 2013. Figura 11 Voltamograma de una Voltametría Cíclica BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 44 Capítulo 5 Marco Legal En Colombia se han establecido decretos como el 1575 de 2007 establecido por el ministerio de la protección social, el cual tiene como objetivo generar un control en cuanto a la calidad del agua, realizando un monitoreo de prevención para el control de riesgos acerca de la salud humana que causan el consumo del agua. Este decreto dicta los parámetros microbiológicos que debe tener el agua ya sea cruda o tratada. Otra norma encargada para el control del agua es la resolución 2115 de 2007 la cual da a conocer características como el control y calidad del agua para consumo humano. Para llevar a cabo este proceso de calidad del agua, este decreto menciona los procedimientos y técnicas que se deben realizar para determinar la calidad del agua teniendo en cuenta los parámetros microbiológicos. Para el análisis de Escherichia coli, y coliformes totales las técnicas a utilizar son: Filtración por membrana, sustrato definido, enzima sustrato y presencia o ausencia. En el decreto 2115 de 2007 en el artículo 11 expone las características microbiológicas que debe tener el agua para el consumo humano, el cual estos análisis deben estar dentro de los valores máximos partiendo del criterio microbiológico, donde se establecen límite de confianza de un 95% y las técnicas utilizadas deben tener la habilidad de detectar desde una Unidad formadora de colonia (UFC) o un microorganismo en 100 cm3 de muestra. Así como se observa en la figura 12, se dan las características microbiológicas y los rangos aceptables que emite esta resolución. BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 45 Nota. en la figura se muestra cada técnica autorizada para el análisis de Escherichia coli y coliformes totales y sus rangos aceptables para la calidad del agua tomado resolución 2115 de 2007 emitido por el ministerio de la protección social, de ambiente vivienda y desarrollo territorial. Es necesario destacar que, para este proyecto, la parte experimental se realizó únicamente a nivel de laboratorio, con el fin de realizar investigaciones y los diferentes materiales y sustancias generadas a raíz de este trabajo se descartaron y fueron destruidas siguiendo los lineamientos de bioseguridad establecidos por el laboratorio de biotecnología de la universidad de Santander UDES, por esta razón todas las actividades que se realizaron para cumplir con las actividades del proyecto no generaron impacto ambiental. Para poder garantizar el seguimiento de los resultados se tuvo en cuenta las buenas prácticas del laboratorio teniendo en cuenta los lineamientos internos que maneja el laboratorio de biotecnología. Cabe resaltar que la presente investigación no se realizó en seres humanos. Para este proyecto se tuvieron en cuentas cepas de referencia como Escherichia coli (ATCC 43888), Escherichia coli (ATCC 25922), Pseudomonas aeruginosa y Staphylococcus aureus De acuerdo con la Resolución Nº 008430 DE 1993 del Ministerio de Salud de la República de Colombia del 4 de octubre de 1993, por la cual se establecen las normas científicas, técnicas y administrativas para la investigación en salud, esta investigación tuvo en cuenta el Título IV de la bioseguridad de las investigaciones, Capítulo I de la investigación con microorganismos patógenos o material biológico que pueda contenerlos. Principalmente, en sus artículos 63-66, 68 y 71 en donde se dispone la normatividad Figura 12 Características Microbiológicas BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 46 para el manejo de estos microorganismos. Las bacterias que se usaron en este estudio hacen parte del grupo de riesgo II (riesgo moderado individual y riesgo comunitario limitado). En cuanto a la manipulación de estas bacterias, el artículo 68 dispone que deben procesarse en laboratorios básicos de microbiología empleando gabinetes de seguridad cuando se considere necesario. BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 47 Capítulo 6 Metodología Materiales y Equipos Utilizados Instrumentos Para realizar un control de las diferentes medidas electroquímicas, y así poder llevar a cabo los posteriores análisis de electroquímica se empleó un potenciostato/galvanostato con módulo de impedancia EmStat Pico Development Kit (PalmSens). De igual forma se utilizó un equipo de filtración por membrana perteneciente al laboratorio de biotecnología, con el fin de confirmar las diferentes concentraciones de Escherichia coli empleadas en este estudio. Electrodos. Para dar cumplimiento al proyecto se utilizaron electrodos serigrafiados de marca ItalSens (IS). Estos electrodos serigrafiados tienen la característica de que están compuestos de un sistema que abarca tres partes fundamentales (electrodo de trabajo, electrodo de referencia y contra electrodo). Este sistema de biosensores se compone de un área de trabajo de 7,07 mm2. Los potenciales registrados en este trabajo se trabajaron de acuerdo al electrodo de referencia de plata/cloruro de plata (Ag/AgCl). Reactivos del Sistema. En el trabajo realizado se utilizaron los siguientes reactivos para llevar a cabo los procesos electroquímicos. Una solución Ácido tetracloroáurico (HAuCl4.3H2O) al 1,0 mM en 0,5 M de ácido sulfúrico (H2SO4). De igual forma se utilizó una solución de Hexacianoferrato (II) y (III) y 0,1 M de KCl a dos concentraciones, la primera concentración fue de 10,0 mM y la segunda concentración de 5,0 mM. También se utilizó una solución de cloruro de potasio (KCl) al 0,1 M y una solución de Ácido sulfúrico (H2SO4) al 0,5 M. BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 48 Componente Microbiológico Las cepas utilizadas en el presente trabajo de investigación fueron: Escherichia coli O157:H7 ATCC 43888, Escherichia coli ATCC 25922, Pseudomonas aeruginosa y Staphylococcus aureus. Estas cepas se encontraban en el laboratorio de biotecnología de la universidad de Santander, conservadas y preservadas a temperatura de -20°C. Para ajustar el inóculo y estimar una concentración se llevó a cabo mediante densidad óptica, (0,08 de absorbancia que es igual a 1x108 UFC/mL en solución salina). esto se realizó a una longitud de onda de 600 nm. Componente Biológico Se realizó un proceso de inmovilización utilizando un péptido PEPTIR como agente biológico de reconocimiento. Este péptido fue diseñado por el grupo CIBAS de la universidad de Santander (Redondo, F). Método Electroquímico Técnicas Siguiendo los parámetros establecidos por Galvis, 2020 las técnicas electroquímicas, se basaron en relación entre la aplicación del voltaje en la celda y la intensidad de corriente. Los electrodos ItalSens (IS), se caracterizaron mediante las técnicas electroquímicas espectroscopia de impedancia electroquímica (EIS), voltametría de onda cuadrada (SWV) y voltametría cíclica (CV). Cabe resaltar que este proceso se realizó antes y después de la síntesis de nanoparticulas de oro (AuNps). Para la técnica de espectroscopia de impedancia electroquímica se basó en el circuito equivalente (EC), este se fundamenta en circuito Randles doble paralelo. Así como se observa en la figura 13, el circuito Randles está constituido por la resistencia de la solución (RS), también está constituido por la capacitancia de la doble capa (Cdl), Resistencia de la trasferencia de electrones (Ret) y por último la impedancia de Warburg (Zw). BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 49 Nota. En la figura se puede observar los componentes de los cuales está compuesto el circuito, Resistencia de la solución, capacitancia de la doble capa, resistencia de la transferencia de electrones, impedancia de warburg tomado de Galvis, 2020. Síntesis de Nanoparticulas de oro (AuNps) Para realizar la síntesis de nanopartículas de oro (AuNps), se empleó una solución precursora (HAuCl4.3H2O 1,0 mM en 0,5 M H2SO4), se depositaron 100 µL sobre el electrodo y se aplicó un potencial de reducción de -0,05 V vs Ag/AgCl durante un periodo de 100 segundos. Todas estas condiciones fueron establecidas por el grupo CIBAS de la universidad de Santander. Inmovilización del Péptido El péptido que se utilizó en este estudio es el PEPTIR 2.0 (CQKVNIAELGNAIPSGVLKDD) este péptido fue diseñado en el grupo de investigación CIBAS, perteneciente a la universidad de Santander (Redondo, F). Este péptido contiene una cisteína en el amino terminal, y de esta manera el grupo tiol puede inmovilizarse sobre las nanopartículas de oro (AuNps). Continuando con el proceso de inmovilización del péptido se añadieron 10 µL del péptido, contenidos en solución acuosa y depositados únicamente en el Figura 13 Esquema de Circuito Equivalente (EC) BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 50 electrodo de trabajo previamente modificado con nanoparticulas de oro. Para el proceso de inmovilización se llevó a cabo un proceso de incubación de 16 horas. Detección Electroquímica de Escherichia coli en Agua Natural Para iniciar con la detección de la bacteria Escherichia coli se realizó un montaje utilizando un vaso precipitado estéril de vidrio de un volumen de 10 mL, y se depositó en él 7 mL de agua natural. Para ajustar las concentraciones de microorganismo se plantearon 2 métodos fundamentales validados por el Instituto de Estándares Clínicos y de Laboratorio (CLSI). Un método es la comparación visual guiándose por la escala 0,5 de Macfarland y la otra utilizando un espectrofotómetro. La preparación del inóculo inició con el crecimiento de la bacteria en caldo Luria Bertani (LB), tomando una asada de un vial criopreservado a -80°C. Este inóculo se dejó en crecimiento alrededor de 24 horas. Pasadas las 24 horas se tomó un tubo con 5 mL de solución salina y se agregaron pequeñas alícuotas del inoculo en crecimiento. Esto se ajustó a una escala turbidimétrica de 0,5 de Mcfarland, utilizando un espectrofotómetro indicando una absorbancia del inóculo microbiano entre 0,08 y 0,10 medido a una longitud de onda de 600nm. Esto es equivalente a tener una concentración aproximada de 1*108UFC/mL (Ulloa & Paguay, 2015). El proceso se realizó de la siguiente forma como se observa en la figura 14. Nota. Todas las diluciones se realizaron en NaCl al 0.9 % Figura 14 Esquema Metodológico del Ajuste de Microorganismo Escherichia coli. BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 51 El proceso de detección se realizó a partir del tubo final que se encontraba a una concentración aproximada de 5000 UFC/mL, como se especifica en la figura 14. Los cálculos para las concentraciones utilizadas en la detección de los microrganismos se detallan a continuación: 10 UFC/mL se tomaron 14 µL del tubo final (5000 UFC/mL). 30 UFC/mL se tomaron 42 µL del tubo final (5000 UFC/mL). 50 UFC/mL se tomaron 70 µL del tubo final (5000 UFC/mL). 100 UFC/mL se tomaron 140 µL del tubo final (5000 UFC/mL). 150 UFC/mL se tomaron 210 µL del tubo final (5000 UFC/mL). 200 UFC/mL se tomaron 280 µL del tubo final (5000 UFC/mL). Este proceso se realizó a una temperatura de 25°C durante un tiempo de incubación de 30 minutos, este montaje se hizo en una placa de agitación (150 rpm). Al terminar el tiempo de incubación, este biosensor se lavó con agua tipo 1 y posteriormente se realizaron las diferentes pruebas electroquímicas (Figura 15). Todo el proceso de detección de la bacteria se hizo mediante la aplicación de las técnicas electroquímicas antes y después de colocar el biosensor en contacto con el microorganismo. Para la investigación se utilizó un blanco que es agua natural, posteriormente se realizó la caracterización del biosensor lo cual abarca la síntesis de nanopartículas de oro, inmovilización del péptido, y finalmente la detección de Escherichia coli. en la figura 15 se detalla el proceso anteriormente mencionado. BIOSENSORES PEPTIR PARA Escherichia coli O157:H7 52 Nota. Las técnicas electroquímicas CV y SWV se hicieron con 10 mM de Fe (CN)6-3/Fe (CN)6-4 en 0,1 M de KCl (excepto los lavados que se realizaron con KCl 0,1M o H2SO4 0,5 M según lo estipulado). Para la técnica de EIS se utilizó la solución de 5 mM de Fe (CN)6-3/Fe (CN)6-4 en 0,1 M de KCl. Tomado de Galvis 2020. Filtración por Membrana
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