T-2082

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UNIVERSIDAD MAYOR DE SAN ANDRÉS 
FACULTAD DE AGRONOMÍA 
CARRERA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
TESIS DE GRADO 
 
 
EVALUAR LA RESPUESTA DE LAS SEMILLAS DE CEDRO (Cedrela odorata L.) 
Y SU ETAPA INICIAL DE DESARROLLO EN CUATRO TIPOS DE SUSTRATOS 
EN EL VIVERO MUNICIPAL DE CORIPATA. 
 
 
Lizz Pamela Mollinedo Laura 
 
 
 
La Paz – Bolivia 
2015 
Universidad Mayor de San Andrés 
Facultad de Agronomía 
Carrera de Ingeniería Agronómica 
 
 
EVALUAR LA RESPUESTA DE LAS SEMILLAS DE CEDRO (Cedrela 
odorata L.) Y SU ETAPA INICIAL DE DESARROLLO A CUATRO 
TIPOS DE SUSTRATOS EN EL VIVERO MUNICIPAL DE CORIPATA. 
 
 
Tesis de Grado presentado como requisito 
parcial para optar el Título de 
Ingeniero en Agronomía 
 
 
Lizz Pamela Mollinedo Laura 
 
 
Asesores 
 
Ing. M. Sc. Luis Goitia Arze ……..........................
 
 
 
Revisores 
 
 Ing. Ph. D. Abul Kalam Kurban ……........................ 
 
 Ing. M. Sc. Félix Rojas Ponce ……......................... 
 
 Ing. Casto Maldonado Fuentes ............................... 
 
 
 
Aprobada 
 
 
Presidente Tribunal Examinador .…........................... 
 
 
 
- 2015 - 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
DEDICATORIA 
 
A mi familia: Mis padres Pablo Mollinedo y Ana 
Laura por darme la vida, y lo mejor de ellos. Mi 
hermana Lessly por su comprensión y enseñanza. 
A la memoria de mis abuelos que por años que me 
inculcaron sus valores. 
 
A mi esposo Raúl por todo el apoyo y amor 
incondicional que siempre me da, a mis hijas 
Maya y Dafne por que son la inspiración de mi 
vida. 
 
 
 
AGRADECIMIENTOS 
A Dios, por darme la vida, la fuerza para siempre ir hacia adelante y poner en mi 
camino a personas de gran corazón. 
A la Universidad Mayor de San Andrés a la Facultad de Agronomía a todo el 
plantel docente y administrativo por el importante papel que cumplió en mi 
formación académica. 
A mi Asesor el Ing. M. Sc. Luis Goitia Arce, quien me dedico su tiempo, sus 
consejos orientándome para el desarrollo de mi trabajo de investigación. 
Al Tribunal Revisor Ing. Ph. D. Abul Kalam, Ing. M. Sc. Felix Maldonado, Ing. 
Casto Maldonado, por toda la colaboración, apoyo, orientación e información 
valiosa que aportaron a mi trabajo de investigación. 
A mis amigos y compañeros, Delia Rojas, Ana Ticona, Isabel Uchani, Elizabeth 
Maydana, Cecilia Salazar, Freddy Villegas (+), Marco Mollericona, Ramiro 
Fernández, Katherine Valencia, Katherine Mollinedo, Carmiña Mérida, Gustavo 
Palma, Sandro Machicao, Marcial Rodríguez por el apoyo moral consecuente 
durante el todo el tiempo que nos conocemos. 
 
i 
 
C O N T E N I D O 
 
 Pág. 
CONTENIDO i 
INDICE DE CUADROS v 
INDICE DE FIGURAS vi 
INDICE DE ANEXOS vi 
RESUMEN vii 
 
 
1. INTRODUCCIÓN 1 
 
 
2. REVISIÓN BIBLIOGRAFICA 3 
 
2.1 Descripción botánica 3 
2.1.1 Clasificación taxonómica 4 
2.1.2 Sinonimia botánica 4 
2.1.3 Nombres vulgares 5 
2.1.4 Nombres Comerciales 6 
2.1.5 Características morfológicas 6 
2.2 Descripción fenológica 10 
2.3 Requerimientos para el desarrollo 11 
2.4 Plagas y enfermedades 11 
2.5 Ecología y distribución 13 
2.6 Usos y Aplicaciones 14 
2.7 Características generales de la madera 15 
2.7.1 Características Físico – Mecánicas de la madera 16 
2.7.2 Propiedades Mecánicas de la madera 17 
2.7.3 Características Microscópicas de la madera 18 
2.8 Sustrato 19 
2.8.1 Características del sustrato 20 
2.8.2 Componentes del sustrato 21 
2.8.3 Mezclas de sustrato 23 
2.9 Almácigo 24 
2.10 Siembra 25 
ii 
 
2.10.1 Profundidad de siembra 25 
2.10.2 Densidad de siembra 25 
2.10.3 Técnicas de siembra 26 
2.10.4 Cobertura y semisombra 26 
2.11 Germinación 27 
2.12 Problemas en almaciguera 28 
2.12.1 Mala formación de plántulas 28 
2.12.2 Plántulas débiles 29 
2.12.3 Presencia de enfermedades 29 
2.13 Embolsado del sustrato 30 
2.14 Repique 30 
2.15 Lechada 31 
2.16 Hoyado 31 
 
 
3. MATERIALES Y MÉTODOS 32 
 
3.1 Características generales 32 
3.1.1 Localización 32 
3.1.2 Clima 33 
3.1.3 Viveros forestales 33 
3.2 Materiales 34 
3.2.1 Material vegetal 34 
3.2.2 Insumos 34 
3.2.3 Instrumental de meteorología 35 
3.2.4 Herramientas de campo 35 
3.2.5 Equipo de laboratorio 36 
3.2.6 Material de gabinete 36 
3.3 Metodología 36 
3.3.1 Actividades desarrolladas en laboratorio 36 
3.3.1.1 Peso y conteo de semillas puras 36 
3.3.2 Actividades desarrolladas en vivero 37 
3.3.2.1 Semi-sombra para almaciguera 37 
iii 
 
3.3.2.2 Habilitación de almacigueras y delimitación para la prueba 37 
3.3.2.3 Preparación de sustrato 37 
3.3.2.4 Desinfección de los sustratos 38 
3.3.2.5 Almácigo de semillas 38 
3.3.2.6 Preparado y llenado de bolsas 39 
3.3.2.7 Platabandas y semi-sombra 39 
3.3.2.8 Repique 40 
3.3.2.9 Labores culturales 40 
3.3.3 Plantas al trasplante 41 
3.3.4 Toma de datos 41 
3.3.5 Evaluación 42 
3.3.6 Análisis Estadístico 42 
3.3.6.1 Diseño experimental 42 
3.3.6.2 Factor de estudio 42 
3.3.6.3 Modelo lineal aditivo 43 
3.3.6.4 Características del área experimental 43 
3.4 Variables de respuesta 44 
3.4.1 Variables fenológicas 44 
3.4.1.1 Días a la emergencia 44 
3.4.1.2 Días al trasplante 45 
3.4.2 Variables agronómicas 45 
3.4.2.1 Altura de planta 45 
3.4.2.2 Diámetro de tallo 45 
3.4.2.3 Número de hojas 45 
 
 
 
4. RESULTADOS Y DISCUSION 47 
 
4.1 Evaluación climática 47 
4.2 Riego aplicado 48 
4.3 Descripción de la respuesta fenológica 49 
4.4 Variables fenológicas 49 
4.4.1 Días a la emergencia 49 
iv 
 
4.4.2 Días al trasplante 52 
4.5 Respuesta de las variables agronómicas 54 
4.5.1 Altura de planta 54 
4.5.2 Diámetro de planta 56 
4.5.3 Número de hojas 59 
4.6 Análisis de correlación múltiple 61 
4.6.1 Análisis de correlación múltiple para la variedad Cedrela Odorata 61 
 
5. CONCLUSIONES 63 
 
6. RECOMENDACIONES 65 
 
7. BIBLIOGRAFIA 66 
 
8. ANEXOS………………………………………………………………………….... 70 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
v 
 
 
INDICE DE CUADROS 
 
Cuadro 1. Características Físico – Mecánicas de la madera 17 
Cuadro 2. Clasificación de las propiedades mecánicas de la madera 17 
Cuadro 3. Fatigas admisibles para el cálculo de esfuerzos estructurales 18 
Cuadro 4. Composición de la Arena 22 
Cuadro 5. Características Climáticas del sector de Coripata 33 
Cuadro 6. Dimensiones del vivero 34 
Cuadro 7. 
Tipos de Sustrato para el almacigo y repique de tres especies 
forestales. 
38 
Cuadro 8. Características del área experimental 43 
Cuadro 9. Lámina de riego (La) diario y total aplicado durante la investigación 48 
Cuadro 10. 
Análisis de varianza para días a la emergencia de las semillas de 
Cedrela Odorata bajo el efecto de los tipos de sustrato 
50 
Cuadro 11. 
Comparación de los promedios de los días a la emergencia de 
Cedrela Oderata bajo el efecto de los tipos de sustrato. 
50 
Cuadro 12. 
Análisis de varianza de días al trasplante de las plantas de Cedrela 
Odorata al efecto de los tipos de sustrato 
52 
Cuadro 13. 
Comparaciones de las medias de los días al trasplante de las plantas 
Cedrela Odorata bajo el efecto de los tipos de sustrato. 
52 
Cuadro 14. 
Análisis de varianza para altura de planta de Cedrela Odorata bajo el 
efecto de los tipos de sustrato 
54 
Cuadro 15. 
Comparaciones de medias de la altura de planta de Cedrela Odorata 
bajo el efecto de los tipos de sustrato. 
55 
Cuadro 16. 
Análisis de varianza para diámetro de planta de Cedrela Odorata bajo 
el efecto de los cuatro tipos de sustrato 
57 
Cuadro 17. 
Comparaciones de mediasdel diámetro del tallo de planta de 
Cedrela Oderata bajo el efecto de los tipos de sustrato. 
57 
Cuadro 18. 
Análisis de varianza para número de hojas por planta de Cedrela 
Odorata bajo el efecto de los tipos de sustrato 
59 
Cuadro 19. 
Comparación del número de hojas por planta de 
Cedrela Oderata bajo el efecto de los tipos de sustrato. 
60 
Cuadro 20. 
Análisis de correlación múltiple de Cedro Colorado para las variables: 
altura de planta, diámetro de tallo, número de hojas, días a la 
emergencia y días al 
62 
 
 
 
 
 
 
 
vi 
 
INDICE DE FIGURAS 
 
Fig. 1. Copa del Cedro (Cedrela odorata) 6 
Fig. 2. Fuste del Cedro (Cedrela odorata) 7 
Fig. 3. Hojas compuesta de Cedro (Cedrela odorata) 8 
Fig. 4. Frutos del Cedro (Cedrela odorata) 9 
Fig. 5. Semillas del Cedro (Cedrela odorata) 9 
Fig. 6. Ubicación de registros e individuos de la especie Cedrela en Bolivia 14 
Fig. 7. Mapa de ubicación del área de estudio 32 
Fig. 8. Climadiagrama promedio de la estación climática de coripata 47 
Fig. 9. Periodo de desarrollo y manejo del plantin en el vivero 49 
Fig. 10. 
Días a la emergencia de la semilla de Cedrela Odorata bajo diferentes 
tipos de sustrato empleado 
51 
Fig. 11. 
Días al trasplante de la planta Cedrela Odorata bajo diferentes tipos de 
sustratos empleados. 
53 
Fig. 12. 
Altura de la planta de Cedrela Odorata a los diferentes sustratos 
empleados en la etapa de vivero. 
54 
Fig. 13. 
Diámetro del tallo de la planta Cedrela Odorata a los tipos de sustrato 
empleados 
58 
Fig. 14. 
Número de hojas por planta en vivero de Cedrela Odorata a los tipos 
de sustrato empleados. 
60 
 
 
 
 
INDICE DE ANEXOS 
 
 
Anexo 1. Base de datos 64 
Anexo 2. Programación en el programa SAS 65 
Anexo 3 Resultados del Programa SAS 66 
Anexo 4 Correlación y Regresión Lineal Múltiple 69 
Anexo 5 Fotos durante la etapa de investigación 72 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
vii 
 
 
 
R E S U M E N 
 
En Bolivia las actividades humanas han afectado los pisos ecológicos, a través de la deforestación, 
extracción de madera y la quema; utilizada de forma drástica para habilitar campos agrícolas; 
estimándose esta deforestaciones en 160000 ha/año, por parte de colonizadores, empresas agrícolas y 
madereros. Se presentan también problemas de establecimiento y/o forestación, si bien se cuenta con 
viveros para la multiplicación y disponibilidad de plantas, la misma presenta porcentajes altos de 
perdida en la etapa de almacigo y su desarrollo inicial en los viveros. 
 
Para revertir esta situación, el propósito es lograr un mayor número de plantas aptas para el trasplante 
definitivo en campo y así también proporcionar condiciones de crecimiento favorables con la prueba de 
nuevas sustratos. 
 
La investigación se realizó en el Cantón Arapata del Municipio de Coripata, Provincia Nor Yungas del 
Departamento de La Paz, ubicada a 116 km al noreste de la ciudad de La Paz, entre los paralelos 15º 
31’ Latitud Sur y 67º 10’ Longitud Oeste y a una altura aproximada de 1614 msnm. 
 
La investigación consistió en la obtención de plantas Cedrela Odorata en vivero para su trasplante 
definitivo en campo, usando para ello cuatro tipos de sustratos constituidos de diferentes proporciones 
de materiales. La evaluación considero cuatro variables, altura de planta, diámetro de tallo, numero de 
hojas, días a la emergencia y al trasplante. 
 
Las plantas con tratamiento de 50 % tierra, 30 % arena, 20 % ceniza y/o 20 % turba tuvieron las 
mayores alturas y diámetros de tallo debido a que el la ceniza presenta en su composición minerales 
(….), y la turba con una composición química de 1.67 % N, 0.12 % P2O5 y 0.03 % K2O, que favoreció 
el desarrollo de las plantas, por las buenas condiciones físicas generadas para el desarrollo radicular, 
absorción de nutrientes y agua, procesos químicos y biológicos, a diferencias de las desarrolladas 
dentro de sustratos de tierra y arena, que tuvieron menor desarrollo debido a que estas sustrato de estas 
mezclas no reúne las condiciones físicas y químicas favorables. 
 
Los sustratos constituidos de tres materiales (tierra, arena, turba y/o ceniza) produjeron mayores 
números de hoja por planta (fue mayor a 2 hojas), en razón a que este tipo de sustratos son favorables 
el desarrollo de las plantas; por su constituyente turba y ceniza que estimulan la mayor formación de 
hojas y al contenido de micro elementos y algunas aminas y amidas, en el caso de las cenizas se tiene 
mayor grado de minerales (K, Mg), a diferencia de los sustratos constituidos de uno o dos componentes 
que produjeron menor a 2 hojas. 
 
Así mismo la emergencia de las semillas en sustratos constituidos de tierra, arena, turba y/o ceniza, que 
retardaron la germinación y emergencia en un tiempo mayor lo cual hace que las plantitas sean 
vigorosas y de buenas características morfológicas. Por el contrario dentro de los sustratos de 100 % 
tierra y 50 % tierra + 50 % arena fueron “violentas emergencias”, atribuido a que se constituye en un 
medio suelto y “neutro” favorable para romper la dormancia de las semillas. Por el contrario, se tuvo 
mayor días con sustratos constituidos de tierra y/o arena superando los 50 días, a diferencia de los 
sustratos constituidos de tierra, arena, turba y/o ceniza que alcanzaron similar desarrollo pero en menor 
tiempo (menor a 50 días). Si bien en los sustratos de tierra y/o arena presentaron menor periodo a la 
emergencia (6 días), las mismas tardan en su desarrollo, debido a que el sustrato es de bajo contenido 
nutricional y propiedades físicas y químicas de grado medio e inferior para el desarrollo de las plantas. 
 
viii 
 
Las variables que muestran relación entre si son: días a la emergencia con altura de planta, días al 
trasplante con altura de planta y días al trasplante con días a la emergencia. 
 
Los variables días a la emergencia con altura de planta presentan una relación significativa, lo cual 
indica que las plantas que tardan en emerger y tendrán mayor altura al trasplante, debido al sustrato 
constituido de tres materiales. 
 
1 
 
1. INTRODUCCION 
 
El territorio boliviano tiene una diversidad de ecosistemas forestales tropicales y 
con diferentes zonas climáticas, que constituyen una riqueza forestal y fuente 
tradicional de múltiples recursos complementarios para la subsistencia diaria de los 
pueblos indígenas, y además cumplen servicios ambientales, función económica y 
social para las comunidades asentadas en ella. Por otro lado, estos bosques son 
mitigadores de cambios climáticos, así son la base de la biodiversidad, ecoturismo, 
reguladores de regímenes hídricos (Superintendencia forestal, 1999). 
 
De acuerdo con estimaciones, en Bolivia la deforestaciones aproximadamente es 
de 168.000 ha/año (MDSMA, 1995) debido a la ampliación de la frontera agrícola 
por parte de empresas agrícolas, colonizadores y por el aprovechamiento forestal. 
Estos bosques naturales en la zona andina, subtropical y tropical de Bolivia no 
tienen protección adecuada y en muchos casos están condenados a desaparecer y 
en algunas la pérdida irreversible de especies forestales preciosas, como 
consecuencia de la deforestación indiscriminada avanza a ritmo creciente, con la 
constante extracción de árboles que no permiten tener una regeneración natural. 
 
Entre las especies forestales, la que mayor expectativa despierta en el sector 
empresarial son las del género Cedrela, por sus características tecnológicas, como 
color, veteado, densidad y facilidad para trabajarla, en aserrío y carpintería. Esto 
ocasionó una intensa explotación, a tal punto, que su existencia por unidad de 
superficie va disminuyendo progresiva y aceleradamente (Del Castillo, 2002). 
 
Actualmente si bien existen programas de cooperaciones para una explotación 
sostenible de los recursos maderables y manejo del bosque, la misma no es 
suficiente. Esta explotaciónilegal de los bosques es de gran magnitud y en 
complicidad con las autoridades. Para revertir esta situación se requiere de 
programas y proyectos de forestación de parte de las instituciones locales y 
comunidades, para la producción masiva de plantas, lo cual requiere del 
2 
 
conocimiento de una serie de técnicas e investigación, considerando para ello el 
manejo de las especies forestales. 
 
La obtención de las plantas capaces de supervivir y desarrollarse con éxito en 
zonas expuestas a la acción de la sequía exige la aplicación cuidadosa de 
tratamientos especiales a estas plantas en vivero, y los futuros árboles, luego de 
ser plantados en terreno definitivo donde alcanzarán su máximo desarrollo. 
 
El suelo del vivero no siempre reúne las características adecuadas para la 
germinación y desarrollo inicial de las semillas de las especies forestales; es decir 
el sustrato debe permitir, en general, una buena germinación y en particular, un 
buen desarrollo de las plántulas en su etapa inicial que de ello dependerá el buen 
desarrollo del futuro árbol. 
 
En este sentido, el propósito del presente trabajo es la de obtención de plantines de 
especies forestales de calidad y de forma masiva en el vivero, a través del manejo 
de distintos sustratos en el proceso de producción. En tal sentido, el sustrato en el 
que la planta desarrollará sus primeros estadios de vida es un elemento tecnológico 
fundamental para la obtención de plantas de calidad. 
 
OBJETIVOS 
 
En este sentido, el presente trabajo ha planteado alcanzar los siguientes objetivos: 
 
Objetivo general: 
 
- Evaluar la respuesta de la semilla de Cedro (Cedrela odorata L.) y su etapa 
inicial de desarrollo en cuatro tipos de sustratos en el vivero Municipal de 
Coripata. 
 
 
3 
 
Objetivos Específicos: 
 
- Determinar el efecto de cuatro diferentes sustratos en la germinación del 
Cedro (Cedrela odorata L.) 
- Comparar el desarrollo inicial de las plantas de cedro (Cedrela odorata L.) en 
vivero con los diferentes sustratos en estudio. 
 
2. REVISIÓN BIBLIOGRAFICA 
 
2.1 Descripción Botánica 
 
El género Cedrela pertenece a la familia Meliaceae, la cual incluye alrededor de 50 
géneros y 550 especies distribuidos por todas las regiones tropicales del plantea 
(Pennington, 1981). 
 
El género Cedrela fue descrito por P. Browne en 1756 y en 1759 Linnaeus describió 
a Cedrela odorata. Styles revisó el género junto a Ma. T. German y solo 
reconocieron 7 especies (Pennington, 1981). 
 
Quevedo 1993, indica que actualmente se han incrementado dos especies más, 
haciendo un total de nueve las especies de Cedrela distribuidas en América 
tropical, abarcado desde México hasta Argentina: 
 
- Cedrela fissilis Vellozo 
- Cedrela lillui C. de Candolle 
- Cedrela montana Moritz ex Tuezaninov 
- Cedrela oaxacensis C. de Candolle y Rose 
- Cedrela odorata Linnaeus 
- Cedrela salvadorensis Standley 
- Cedrela tonduzii C. de Candolle 
- Cedrela balansae C. de Candolle 
4 
 
- Cedrela saltensis Castillo y Zapater 
 
En Bolivia existen 7 géneros aproximadamente 40 especies en la familia Meliaceae 
(Quevedo, 1993). 
 
2.1.1 Clasificación taxonómica 
 
Rojas (2000) indica que pertenecen a la siguiente clasificación: 
 
Reino: Vegetal 
División: Magnoliophyta 
Orden: Magnoliophyta 
Clase: Magnoliopsida 
Sub clase: Rosidae 
Orden: Sapindales 
Familia: Meliaceae 
Género: Cedrela 
Nombre Científico: Cedrela odorata 
 
2.1.2 Sinonimia botánica 
 
Correa & Bernal (1995) indican que existen 30 sinónimos de la especie Cedrela 
odorata L, los cuales se mencionan en la siguiente lista: 
 
1. Cedrela guianensis Adr. Jussieu 
2. Cedrela paraguariensis martius 
3. Cedrela mexicana M.J.Roemer 
4. Cedrela velloziana M.J. Roemer 
5. Cedrela glaziovii C. De Candlo in Martius 
6. Cedrela paraguariensis var. Bracgystachya C. de Candolle 
7. Cedrela paraguariensis var. Multijura C. de Candolle 
5 
 
8. Cedrela dugesii Watson 
9. Cedrela adenophylla Martius 
10. Cedrela paraguariensis var. hassleri C. de Candolle in Chotat & Hassler 
11. Cedrela Mexicana var. puberula C. de Candolle 
12. Cedrela occidentalis C. de Candolle & Rose 
13. Cedrela hassleri (C de Candolle) C.de Candolle 
14. Cedrela mourae C. de Candolle 
15. Cedrela sintenisii C. de Candolle 
16. Cedrela brachstachya (C. de Candolle). C.de Candolle 
17. Cedrela rotunda S.F. Blake 
18. Cedrela yucatana S.F. Blake 
19. Cedrela whitfordii S.F. Blake 
20. Cedrela ciliolate S.F. Blake 
21. Cedrela longipes S.F. Blake 
22. Cedrela longipetioluta Harms 
23. Cedrela palustris Handro 
24. Cedrela odorata var. xerogeiton Rissini & Heringer 
25. Cedrela cubensis Bisse 
26. Surenus brownii (Loefling ex O. Kuntze) Kuntze 
27. Surenus glaziovii (C. de Candolle) Kuntze 
28. Surenus guianensis (Adr. Jussieu) Kuntze 
29. Surenus mexicana (M.J.Roemer) Kuntze 
30. Surenus glaziovii (C. Candolle) Kuntze 
 
2.1.3 Nombres vulgares 
 
Correa & Bernal (1995), indica que el Cedro tiene los siguientes nombres: 
“Asna cedro”, “Asnak simi”, “Cedro”, “Cedro oloroso”, “Iguanane”, “Iguarane”, 
“Thujsaj witaka”, “Witaka” (en Bolivia); “Bastardo”, “Caoba de interior”, “Cedro”, 
“Cedro blanco”, “Cedro caoba”, “Cedro clavel”, “Cedro colorado”, “Cedro oloroso”, 
(COLOMBIA), “Cedro castilla”, “Cedro colorado”, (en Ecuador), “Cedro cebolla”, 
6 
 
(PANAMA), “Cedro colorado”, (Peru),, “Cedro amargo”, “Cedro amarillo”, “Cedro 
colorado”, “Cedro negro”, “Cedro rojo” (en Venezuela). 
 
2.1.4 Nombres Comerciales 
 
Para Toledo, et al. (2008), los nombres comerciales son: cedrela, cedro colorado, 
cedro real, cedro salteño, (Argentina), cedro (Bolivia, Brasil), Spanish cedar, 
(Central American), cedar, (Honduras) cedar, (Nicaragua), cedar (Tabasco), cedar 
(Estados Unidos, Gran Betaña), cedar (Jamaica), aluk (Costa Rica), calicedro 
(Mexico), yalam (Nicaragua), cedro amargo (Venezuela), cedrat (Guyana 
Francesa), cèdre rouge (Francia). 
 
2.1.5 Características morfológicas 
 
Árbol: Alcanza 40 m de altura o más y hasta 2.5 m de diámetro, tronco recto, más 
o menos cilíndrico estrechándose al extremo; aletones 3-5 hasta 3 m de altura, 10 a 
20 cm de grosor y hasta 1.58 m de ancho en la base (Rodríguez, 1996). 
 
Copa: Ancha y redonda. Ramificaciones gruesas con lenticelas redondas en ramas 
jóvenes (Salas, 1993). 
 
Fig. 1 Copa del Cedro (Cedrela odorata) 
 
7 
 
Fuste: Recto, bien formado, cilíndrico, con contra fuertes en la base (Aguilar, 
1993). 
 
Fig. 2 Fuste del Cedro (Cedrela odorata) 
 
Corteza: Superficie del tronco fisurada con canales rojizos; corteza muerta 
endurecida, quebradiza. Corteza viva fragante, laminas sobrepuestas, varia de 
rosado a rojo oscuro en la capa externa, cambiando a rosado claro y crema 
amarillenta al interior. Total puede tener hasta 3 cm de grosor (Rodríguez, 1996). 
 
Hojas: Compuestas paripinadas, alternas, dispuestas en espiral, a veces 
imparipinnadas, con el folíolo terminal poco desarrollado; mide 20 a 100 cm de 
longitud, 10 a 22 folíolos opuestos o alternos (Rodríguez, 1996). Las hojas poseen 
olor a ajo y sabor amargo (Salas, 1993) 
 
Raquis acanalado, lenticelado; ápice agudo atenuado o acuminado; el acumen de 
unos 2cm de long. , incursado y notorio; base asimétrica, nervación pinnada con 
20-24 pares de nervios secundarios, éstos y el nervio principal impresos en la haz y 
en relieve en el envés. Láminas cartáceas, glabras; pecíolos gráciles, de 1 cm 
longitud y 1 mm diámetro, acanalados (Reynel, 1990). 
 
Verde oscuro en la cara superior y verde pálido a verde amarillento en la cara 
inferior; despide fuerte olor a ajo al estrujarse. Ramitas jóvenes pardas, con 
8 
 
lenticelas alargadas o circulares blanquecinas menores de 1mm longitud, con 
cicatrices agrupadas de escamas caídas (Rodríguez, 1996). 
 
 
Fig. 3 Hojas compuestas del Cedro(Cedrala odorata) 
 
Inflorescencia: En panícula (tirsos) axilares o terminales de unos 25-35 cm de 
longitud o más (Reynel, 1990). 
 
Flores: Pequeñas a medianas de 9 a 11 mm de longitud, color crema, olorosas. 
Dispuestas en manojos ampliamente ramificados, de 20 a 50 cm de longitud, 
ramificaciones laterales hasta 25 cm de longitud (Rodríguez, 1996). 
 
El pecíolo de 2 mm longitud; cáliz penta sépalo, aprox. 4 mm longitud, los sépalos 
libres desde la base; corola con 5 pétalos libres, alargados; androceo con los 
filamentos parcialmente libres, de aprox. 2 mm longitud; pistilo con ovarios súpero, 
estilo columnar y estigma discoide exserto (Reynel, 1990). 
 
Fruto: Seco, leñoso, colgante en manojos hasta 30 cm longitud; miden 3 a 5 cm de 
longitud, se abren por 4 ó 5 valvas o laminitas leñosas (tipo capsula) (Rodríguez, 
1996). 
 
9 
 
Color café oscuro, de superficie externa lenticelada y lisa, se desprende una vez 
liberadas la semillas en estado inmaduro, poseen un color verde al madurar se 
toman café Oscuro (Salas, 1993). 
 
 
Fig. 4 Frutos del Cedro (Cedrela odortata) 
 
Semillas: Aladas, color pardo, eliptica, miden 1.2 a 4.0 cm de largo y entre 5 a 8 
mm ancho, con la parte seminal hacia el ápice del fruto; la testa es de color castaño 
rojizo; el embrión es recto, comprimido, color blanco o crema y ocupa gran parte de 
la cavidad de la semilla; tiene dos cotiledones grandes, firme, carnoso, amargo, 
blanco y opaco (PRESFOR, 1997). 
 
 
Fig. 5 Semilla del Cedro (Cedrela odorata) 
 
10 
 
2.2 Descripción fenológica 
 
Foliación: Especie perenne, decidua, la cual durante los meses de junio a 
septiembre permanece con escasas hojas (solo 25 % de follaje), coincidiendo con 
una baja pluviosidad. A partir de octubre se inicia la brotación de las hojas, la cual 
incrementa paulatinamente hasta diciembre, época de mayor temperatura y 
precipitación (16º C y 50 mm respectivamente). 
 
A partir de Diciembre y continuando hasta mayo alcanza su plenitud de foliación, 
donde la especie permanece con su foliaje completo (100%), coincidiendo con 
temperaturas 16º C y precipitaciones mayores a 80 mm (Prado & Valdebenito, 
2000). 
 
Floración: La formación de botones florales se inicia en noviembre (25%), 
permaneciendo este proceso hasta enero, mes cuando se forman las flores hasta 
febrero (50%). La temperatura durante este período es de 18 ºC. A partir de Marzo 
comienza el descenso de la floración y se inicia la formación de los frutos (Prado & 
Valdebenito, 2000). 
 
Fructificación: El período de fructificación de esta especie comprende de Enero a 
Septiembre, coincidiendo con una escasa precipitación. La formación de los frutos 
comienza en Enero (25 %) y durante Febrero y Marzo los árboles presentan frutos 
verdes (50 %). 
 
Entre Mayo y Junio se alcanza la plenitud (75 %) de frutos coincidiendo con su 
madurez. Por lo general, en Junio los frutos están maduros y abiertos, período en el 
cual las temperaturas alcanzaran 11 ºC y la precipitación es inferior a 5 mm, la 
ausencia total de frutos comienza a partir de Septiembre (Prado & Valdebenito, 
2000). 
 
11 
 
Polinización: Las flores muestran caracteres asociados con entomofilia. Se cree 
que abejas y mariposas nocturnas son sus principales polinizadores (Styles & 
Khosla, 1976). En Brasil se encontró solamente individuos del genero Thrips 
(Thysanoptera) visitando las flores de C. fissilis. Los géneros Cedrela y Swietenia 
tendrían posiblemente este polinizador en común (Patiño, 1997). 
 
2.2 Requerimientos para el desarrollo 
 
Suelo: Las especies de Cedrela crecen en suelos y topografía variables pero en 
general requieren un buen drenaje (Mostacedo et al. 2003). No se desarrolla bien 
en suelos superficiales y con capa freática superficial (Barrichelo y Müller, 2005). 
 
Pennington 2006, menciona que en la cuenca Amazonica C. odorata es más o 
menos confiada a bosques con suelos fértiles con buen drenaje, aunque tolera 
prolongados períodos de sequia (Salas, 1993) y puede desarrollarse en suelos de 
origen volcánico (Pennington y Sarukhán, 1968). 
 
Clima: Las diferentes especies de Cedrela son adaptadas a varios tipos climáticos: 
templado húmedo, subtropical de altitud y tropical. En Brasil, Cedrela. odorata 
acepta el régimen de precipitación variable desde 750 mm (Morro do Chapéu) 
hasta 3.700 mm (Serra de Paranapiacaba), con un déficit hídrico desde nulo (región 
del sud de Brasil) que puede durar hasta 6 meses (norte de Minas Gerais). En 
Bolivia puede llegar a desarrollarse en zonas con hasta 5000 mm (zona del 
Chapare, parcelas permanentes del Valle de Sacta) (Barrichelo & Müller, 2005). 
 
2.4 Plagas y enfermedades 
 
Hypsipyla grandella Zeller es un insecto perteneciente a la familia Pyralidae, orden 
Lepidóptera. El ataque de este insecto al Cedro y Caoba ocurre tanto en la etapa 
de vivero, como durante su adaptación y crecimiento en el campo. La mayor 
12 
 
incidencia de ataques sobre Cedrela, puede atribuirse a sustancias secundarias, 
que actuaron como atrayentes sexuales del insecto (Arreola & Patiño, 1987). 
 
Hay dos especies de Hypsipyla en los Neotropicos: la Hypsipyla grandella Zeller y 
la Hypsipyla ferrealis Hampson, y una especie de importancia en el viejo mundo: la 
Hypsipyla robusta Moore (Entwistle, 1968; newton et al., 1993), siendo la H. 
grandella y la H. Robusta las especies principales que ocasionan daños a las 
Meliáceas (Patiño, 1997). 
 
La broca de cedro o mariposa de los brotes provocada por la especie Hypsipyla 
grandella es el patógeno más importante para esta especie, ya que constituye un 
factor limitante para su cultivo. La broca del cedro daña la yema terminal de las 
plántulas desde los 2 años, pero también a veces en árboles hasta 10-20 años, 
provocando un desarrollo arbustivo o la muerte de la planta. El lepidóptero pone 
sus huevos en la base del peciolo y abre un túnel de más o menos 60 cm, las 
larvas penetran directamente en los tejidos, dejando poco tiempo para realizar 
tratamientos químicos (Durigan et al., 2002, Carvalho, 1994). 
 
El ciclo cultural de ataques dura entre 4 a10 semanas y empieza con el período de 
lluvia. De forma general, los ataques sucesivos paralizan el desarrollo del cedro. No 
se conoce una solución eficiente para controlar este riesgo, ya que los ataques 
pasan generalmente en los viveros, en las plantaciones o en la regeneración 
natural. Las plantaciones especificas, únicamente formadas por cedros, están 
generalmente invadidas por el patógeno, al no contar con los controladores 
biológicos naturales volviendo el incremento medio anual muy bajo (inferior a 
4m2/ha/año), lo que inviabiliza el objeto comercial (Durigan et al., 2002, Carvalho, 
1994). 
 
Carvalho 1994, indica que el control del cedro es muy difícil, pero se puede intentar 
combinar los siguientes métodos: 
 
13 
 
Físico: trampa luminosa al principio de las estaciones de lluvia. 
 
Cultural: eliminando las ramas atacadas, evitar las plantaciones puras en pleno sol 
(la luz es favorable para el desarrollo del patógeno) y con alta densidad, elegir 
lugares propicios para el buen crecimiento de las plántulas para que estas salgan 
rápidamente de su fase sensible. No obstante, la dosificación de la luz es delicada 
porque el exceso de sombra puede provocar un fracaso en las plantaciones. 
 
Biologico: utilizar algunos parasitoides de los huevos de las orugas: Trichogramma 
sp y Hypomicrogaster hypsipylae. También se puede utilizar productos a base de 
Metarhizium anisopliae, Beauveria bassiana y Bacillus thuringiensis, que sean 
aplicados antes que las orugas penetren las ramas (Gallo et al., 2002). Para 
recuperar arboles atacados por la broca del cedro, se necesita practicar podas 
correctivas anuales durante los tres primeros años (Carvalho, 1994). 
 
2.5 Ecología y distribución 
 
Originaria de América, se encuentra desdeMéxico hasta las tierras bajas de Centro 
y Sur América, en el Ecuador desde el nivel del mar hasta 2000 m, en bosques 
secundarios, tardíos, pastizales y huertas (Rodríguez, 1996). 
 
En Perú, Bolivia, y el Norte Argentino, en bosques semideciduo montano. Su 
distribución más adecuada son cañadas húmedas o en laderas protegidas de los 
vientos secos y de la excesiva insolación, en áreas de acumulación de nieblas de 
noche (BASFOR, 2000). 
 
En Bolivia se encuentra en bosques húmedos tropicales, subtropicales y templados 
de los departamentos de Santa Cruz, Cochabamba, Beni, La Paz, Pando, Tarija y 
Chuquisaca (Nina, 1999). 
14 
 
 
Fig. 6 Ubicación de registros de individuos la especie Cedrela en Bolivia. Datos provenientes de los diferentes 
herbarios de Bolivia. 
 
2.6 Usos y Aplicaciones 
 
La madera es muy apreciada por su alta calidad, muy trabajable y durable, con 
secado fácil, tanto en estufa como en aire libre; siendo una madera generalmente 
con pocos defectos y fácil de procesar mecánicamente. Características físico-
mecánicas muy buenas y excelente estabilidad dimensional. 
15 
 
Se usa en carpintería, mueblería fina, puertas, ventanas, ebanistería, instrumentos 
musicales, escultura, tallados, molduras, chapas decorativas, revestimientos, 
contrachapados, entre otros (Toledo et al., 2008). 
 
También es considerado un árbol melífero rico en néctar y polen, utilizado en la 
crianza de abejas como proveedora de néctar, polen y propóleos. De la madera se 
extraen aceites volátiles y perfumados, como la del cedro del Líbano, también de la 
madera y la corteza se produce una serie de taninos (BOLFOR, 1996). 
 
El árbol es empleado como ornamental en muchos lugares del Neotrópico. Las 
hojas son empleadas como forraje en algunas localidades (Anónimo, 1996). 
Además, tienen aplicación médica en la que los aceites volátiles extraídos pueden 
inhibir el desarrollo del Staphylococcus aureas y de Escherichia coli (Lago et al., 
2004). 
 
Asimismo, es utilizado en medicina popular como reconstituye, tónica, astringente, 
vermicida, febrífuga, en la lucha contra el asma y artritis (BOLFOR, 1996). 
 
Los árboles se pueden utilizar como cortina rompe vientos, cercas vivas, protección 
de cultivos y en el control de erosión y conservación de suelos (CONIF, 1996). 
 
2.7 Características generales de la madera 
 
Color: El tronco recién cortado presenta las capas externas de madera (albura) de 
color gris marrón claro y las capas internas (duramen) de color rosado cremoso y 
rojo pálido con matiz naranja, observándose entre ambas capas un leve y gradual 
contraste en el color(Rodríguez, 1996). 
 
En la madera seca al aire la albura se torna color blanco rosado HUE 8/4 7,5YR y el 
duramen de color amarillo rojizo HUE 7/67,5YR, con matiz anaranjado (Rodríguez, 
1996). 
16 
 
Olor: Distintivo a fragante (Rodríguez, 1996). 
 
Sabor: Levemente amargo (Rodríguez, 1996). 
 
Lustre o Brillo: Alto (Rodríguez, 1996). 
 
Grano: Generalmente recto (Rodríguez, 1996). 
 
Textura: Media a gruesa (Rodríguez, 1996). 
 
Veteado o Figura: Bien definido por arcos superpuestos, producidos por la 
porosidad semicircular y líneas de parénquima marginal de los anillos de 
crecimiento. Franjas angostas paralelas (Rodríguez, 1996). 
 
Dureza y Peso: La madera es blanda y liviana; peso específico básico medio, entre 
400 y 750 kg/m3. 
 
Figura: Compuesta por arcos superpuestos con reflejos dorados y satinados 
(Carpio, 1992). 
 
Brillo: Superficie brillante y lisa al tacto, cuando esta cepillada (González). 
 
Anillos de Crecimiento: (Corte X) Visibles a simple vista; definidos por porosidad 
semicircular y la presencia de líneas de parénquima marginal. 
 
2.7.1 Características Físico – Mecánicas de la madera 
 
Madera moderadamente liviana a moderadamente pesada, peso especifico 0.36-
0.65 gr/cm3, su peso verde promedio es de 620 kg/m3 con 74 % de humedad 
blanda pero firme, elástica (Aguilar, 1992). 
 
17 
 
Cuadro 1. Características Físico – Mecánicas de la madera 
Propiedades Físicas Valor Clasificación 
Peso especifico verde (gr/cm3) 
Peso especifico seco al aire (gr/cm3) 
Peso especifico anhidro (gr/cm3) 
Peso especifico básico (%) 
Contracción Volumétrica total 
 
0.64 
0.39 
0.36 
0.33 
8.10 
1.50 
Baja 
Liviana 
Bajo 
Normal 
Fuente: IRENA (1992). 
 
2.7.2 Propiedades Mecánicas de la madera 
 
Las propiedades mecánicas se clasifican de muy bajas a bajas, clasificándose 
como madera estructural del grupo C (Herrera, 1996). 
 
Cuadro 2. Clasificación de las propiedades mecánicas de la madera 
Propiedades mecánicas (contenido de humedad 12 %) Valor Clasificación 
Flexión estática 
 
Compresión 
 
 
Cizalla dura 
Dureza Janka 
 
Extracción de clavos 
Impacto 
Módulo de rotura (kg/cm2) 
Módulo de elasticidad (kg/cm2) 
Paralela a la fibra Resistencia máxima 
(kg/cm2) 
Perpendicular a la fibra limite proporcional 
(kg/cm2) 
Resistencia máxima Plano radial (kg/cm2) 
Resistencia lateral (kg/cm2) 
Resistencia en los extremos (kg/cm2) 
Resistencia lateral (kg) 
Resistencia en los extremos (kg) 
Trabajo de corte (KJ/m2) 
511 
74,000 
404 
 
37 
 
57 
220 
364 
57 
42 
37 
Baja 
Baja 
Muy baja 
 
Muy baja 
 
Muy alta 
Baja 
Baja 
Baja 
Muy baja 
Fuente: IRENA (1992) 
 
Fatigas admisibles para el cálculo de esfuerzos en elementos estructurales 
 
18 
 
Cuadro 3. Fatigas admisibles para el cálculo de esfuerzos estructurales 
Propiedad mecánica Descripción Kg/cm2 
Flexión extática 
 
Compresión 
 
Cizalla dura 
Módulo de Rotura 
Módulo de Elasticidad 
Paralela 
Perpendicular 
Resistencia máxima 
122 
56,000 
105 
14 
18 
Fuente: IRENA (1992) 
 
2.7.3 Características Microscópicas de la madera 
 
Anillos de Crecimiento: (Corte X) Visibles a simple vista; definidos por porosidad 
semicircular y la presencia de líneas de parénquima marginal. Número de anillos 
unos 5 a 6 en 2.5 cm (Rodríguez, 1996). 
 
Poros: (Corte X) Visibles a simple vista; grandes; muy pocos: menos de 5 poros 
por mm2; solitarios y múltiples radiales o tangenciales de 2 a 4 poros, toponeados 
por goma rojiza. (Corte R y T) Líneas vasculares claramente visibles a simple vista 
oscura, recta y regular. (Corte X) Porosidad: semicircular (Rodríguez, 1996). 
 
Parénquima axial o tejido claro: (Corte X) Visible a simple vista, típicamente en 
bandas marginales; con lupa de 10x se observa también escaso parénquima 
alrededor de los poros (para traqueal vasicéntrico escaso) (Rodríguez, 1996). 
 
Radio o líneas horizontales: (Corte X) Visibles con lupa 10x; finos: de 1 a 3 
células de ancho; moderadamente numerosas: de 4 a 12 radios por mm lineal. 
(Cortes R y T) Radios contrastados, bajos: menores de 1 mm de altura; no 
estratificados (Rodríguez, 1996). 
 
Fibra: de tamaño mediano, ventriformes y algunas septadas con 2 a 3 septos por 
fibra (Carpio, 1992). 
19 
 
Punteaduras: Intervasculares simples alternas, abertura incluida, de medianas a 
grandes (7 - 14 u), punteaduras radio vasculares de circulares a oblongas (MAGA, 
1973). 
 
Traqueidas: Vasculares presentes (MAGA, 1973). 
 
Inclusiones inorgánicas y orgánicas: gomas son comunes (MAGA, 1973). 
 
Durabilidad Natural: Duramen moderadamente durable a durable, posee cierta 
resistencia al ataque de hongos e insectos como polilla (CATIE, 1997). 
 
Preservación: Fácil de tratar con productos persevantes en albura y difícil de tratar 
en duramen (CATIE, 1997). 
 
Trabajabilidad: Es fácil de trabajar, cepillar, tallar, tornear, pulir y lijar. Se obtiene 
buenos acabados y colapso (CATIE, 1997). 
Es una madera fácil de aserrar y cortar, de características excelentes respecto así 
cepillado (Gonzales). 
 
Secado: Seca al aire con velocidad moderada, desarrollando defectos moderados, 
tales como arqueaduras y torceduras (CATIE, 1997). 
 
2.8 Sustrato 
 
El sustratodebe contener una buena relación en la composición de arena, tierra 
vegetal y tierra del lugar, variando de acuerdo a las especies y al lugar. Debe 
tomarse en cuenta la disponibilidad de los materiales pudiendo sustituirse algún 
componente con varias opciones, como por ejemplo, lama (limo), cascarilla de 
arroz, cortezas de árboles, turba, tierra negra, etc. (Delgado et.al., 2005). El 
sustrato debe ser homogéneo presentar un buen drenaje y una buena retención de 
humedad. Tiene como función proporcionar a las plantas sostén mecánico, a la vez 
20 
 
permite que las raíces se desarrollen de forma adecuada proporcionándoles aire, 
agua y principalmente nutrientes, condiciones que requiere la planta para su 
crecimiento (Fachinello y Mattei, 2003). 
 
El sustrato debe ser suelto recomendando la siguiente relación, 50 % arena y 50 % 
tierra negra (Ferreira, 1985 y ETSFOR, 1985). 
 
Zalles (1988) indica que el sustrato puede ser de distinta composición, por ejemplo: 
tierra negra 60 %, arena 40 %; arena 50 % - aserrín 50 %; tierra negra 25 % – 
arena 25 % – compost 25 %. 
 
2.8.1 Características del sustrato 
 
Padilla (1983) indica que el suelo del vivero no siempre reúne las características 
que exigen las semillas para germinar y superar la fase de crecimiento primario. 
Dicho de otra manera, el sustrato debe permitir, en general, una buena germinación 
y en particular, un buen desarrollo de las plántulas pequeñas y tiernas. 
Un buen sustrato debe reunir las siguientes características: 
 
- Buena aireación: A fin de permitir la circulación del oxigeno del aire, 
indispensable para la germinación y respiración radicular. 
 
- Contacto entre la semilla y el sustrato: Si quedan espacios libres entre la 
semilla y el sustrato; aquella no se humedece totalmente y, por lo tanto, no 
germina; por lo que hay que evitar los espacios entre las partículas del 
sustrato sean muy grandes. 
- 
- Poca resistencia mecánica: De tal manera que permite la emergencia de la 
plántula y el desarrollo y profundización de las aéreas de las raíces dentro 
del sustrato. Un sustrato compacto impide el buen desarrollo radicular. 
 
21 
 
- Capacidad de infiltración: Permite un buen suministro de agua para las 
semillas y luego para las plántulas. Si el sustrato no es de fácil infiltración, 
las semillas o las plántulas perecen por exceso de humedad. 
 
- Poca o nula cantidad de estructuras reproductivas de agentes 
patógenos: hongos, bacterias, nemátodos, etc., que puedan causar 
enfermedades. 
 
2.8.2 Componentes del sustrato 
 
a) Tierra agrícola 
 
Es un componente que es de formación natural es la capa superior de acumulación 
de la materia orgánica y lenta descomposición con diferente valor nutricional 
(Zalles, 1988). 
 
b) Tierra negra 
 
Es un componente que es de formación natural, es la capa superior de acumulación 
de la materia orgánica y lenta descomposición con diferente valor nutricional, 
proveniente de regiones de altura, con composición generalmente de arcilla y 
materia orgánica, cuyo color es café oscuro o negro con valores de pH ácidos. La 
tierra negra presenta una textura arcillosa, con bajo porcentaje de materia orgánica, 
con un porcentaje de humedad de 32.37 % (Zalles ,1988). 
 
c) Turba 
 
Zalles (1988) menciona que la formación de la turba obedece a un proceso natural 
y es mayormente bajo agua, es decir en condiciones anaerobias y de baja 
temperatura donde la vegetación acuática, musgo, pastos y otros plantas van 
acumulándose y descomponiéndose lentamente. 
22 
 
d) Arena 
 
Zalles (1988) señala que la arena está caracterizada por la granulometría que va 
desde 20 a 200 micrones; es generalmente suelta, porosa y estéril. En contenido de 
nutrientes es bajo y sus valores de pH tienden a ser alcalino. 
 
Ferreira (1985), indica que se prefieren sustratos arenosos que tenga un buen 
drenaje para la germinación de la semilla. Otros sustratos inertes como la 
vermiculita, que es un material musáceo, desintegrado, también es recomendable. 
 
Chilón (1986) indica que la arena está compuesta de granos sueltos de sílice 
angulosos, cuarzos, feldespato, mica y montmorillonita; la arena no presenta 
cohesión, las tierras arenosas son sueltas no se adhieren permiten acumulación de 
aire y por lo tanto tiene una rápida nitrificación y absorción. 
 
Cuadro 4. Composición de la Arena 
Parámetro Valor Unidad 
Densidad aparente 1.7 gr/cc 
Densidad real 0.37 
Porosidad 36 % 
PH Alcalino 
Capacidad de campo 8 – 10 % 
Punto de marchitez permanente 3 – 4.5 % 
Materia orgánica Bajo < 2 % 
Porcentaje de sólidos 38 % 
 Fuente: Chilon (1997) 
 
e) Cenizas 
 
Las cenizas de madera presentan contenidos importantes de diferentes nutrientes 
como K, P, Mg y Ca, los cuales se encuentran en formas relativamente solubles 
(Someshwar, 1996; Vance, 1996). Algunos de estos elementos se encuentran 
23 
 
como óxidos, hidróxidos y carbonatos, por lo que el material presenta un fuerte 
carácter alcalino (Etiégni y Campbell, 1991). De este modo, el potencial 
neutralizante expresado en términos de equivalentes de CaCO3, varía entre el 25 y 
el 100 %, por lo que es posible su uso para corregirla acidez de suelos ácidos 
(Ohno y Erich, 1990). Estas cenizas presentan, en general, concentraciones muy 
bajas de metales pesados, si bien las extraídas con electrofiltros pueden presentar 
concentraciones más elevadas de metales tóxicos (Someshwar, 1996). 
 
Todas estas características hacen que en algunas zonas de EEUU y en Suecia (en 
este caso las cenizas proceden de plantas de bioenergía municipales) la mayor 
parte de las cenizas que se generan se apliquen a suelos agrícolas o forestales 
para mejorar sus propiedades (Vance, 1996). 
 
2.8.3 Mezclas de sustrato 
 
Tarima (1996) indica que la mezcla utilizada para el Sustrato de vivero debe ser de 
textura liviana, suelta de color negro o bastante oscuro estar limpia y libre de 
impurezas. Además que pueda desmenuzarse a mano o pulverizarse en una 
zaranda; y más que todo debe ser rico en elementos nutritivos. 
 
Al respecto Galloway (1985), indica que las mezclas a realizarse para el repicado 
de plántulas mucho dependerán del material disponible localmente; sin embargo se 
debe tomar en cuenta el porcentaje del estiércol y otros; porque la variación en uno 
de estos provocará muchas desventajas (enfermedades y crecimiento lento). Las 
cuales tampoco se desarrolla en los lugares de plantación definitiva y por 
consiguiente en los estudios que mejor resultado dio es: 
 
- 5 Partes de tierra del lugar, 
- 3 Partes de tierra negra (turba), 
- 1 Parte de arena y 
- 1 parte de estiércol. 
24 
 
 
Mariategui (1991) menciona que el Sustrato debe ser suficientemente suelto, 
liviano para favorecer la buena formación del sistema radicular de las plántulas. 
Para conseguir dicha calidad y aconsejable que el Sustrato sea una mezcla con 
ciertos porcentajes de diferentes componentes de tierra del lugar, tierra negra, 
estiércol y arena; estas mezclas. 
 
- 3 Partes de tierra del lugar, 
- 2 Partes de tierra negra, 
- 3 Partes de arena y 
- 2 Partes de estiércol. 
 
Mientras que Prieto (1993), indica que los suelos de las áreas de forestación son 
pobres en materia orgánica y por la tanto es importante añadir a la maceta en 
abono animal. Entonces la mezcla es de la siguiente: 
 
- 4 partes de tierra del lugar, 
- 3 partes de tierra negra, 
- 2 partes de estiércol y 
- 1 parte de aserrín. 
 
2.9 Almácigo 
 
Es un sitio que favorece la germinación de la semilla de forma masiva (Figura 3); 
brinda todas las condiciones necesarias para ello, como ser humedad, temperatura, 
aireación, nutrientes y luz. 
 
En almácigo se debe tener cuidado con la limpieza para no contaminar con 
enfermedades a las plantas nuevas. Los almácigos pueden tener diferentes formas 
dependiendodel tipo de semilla que se trabaje (Delgado et al., 2005). 
 
25 
 
2.10 Siembra 
 
Generalmente se realiza en épocas donde la temperatura es la más adecuada para 
la germinación de la semilla (Delgado et al., 2005) 
 
2.10.1 Profundidad de siembra 
 
La profundidad de siembra está en función al tamaño de la semilla; por lo general 
se entierra de una a tres veces el tamaño de la semilla para algunas especies 
resultan excesivas estas recomendaciones (Delgado et a., 2005). 
 
La semilla debe ser sembrada a una profundidad tal que se encuentre lo 
suficientemente profunda como para el agua de riego no lo destape, y que para 
emerger hacia la superficie, no gaste demasiada energía (Tarima, 1996). 
 
Siembra muy profunda de la semilla se ahoga o consume todas las sustancias de 
reserva antes de emerger fuera del sustrato, siembra muy superficial la semilla 
corre el riesgo de secarse. Se recomienda una capa de 4 mm de espesor del 
sustrato (Ferreira, 1985). 
 
2.10.2 Densidad de siembra 
 
La densidad está relacionada con el tamaño de las semillas, en forma inversamente 
proporcional, lo cual significa que a mayor cantidad de semillas por unidad de peso 
será mayor la densidad de siembra y viceversa. Una siembra de alta densidad 
favorece el desarrollo de hongos y también existe mayor competencia entre 
plántulas por agua, nutrientes y espacio para el desarrollo de raíces (Tarima, 1996). 
 
La densidad de siembra está en función con el tamaño de la semilla y su cantidad 
está en función del número de plantines que se pretende obtener (Delgado et al., 
2005). 
26 
 
2.10.3 Técnicas de siembra 
 
a) Al voleo 
 
Distribución de la semilla en toda la superficie de la almaciguera, procurando que la 
densidad de las mismas en el sustrato sea uniforme, evitando densidades no 
deseadas, técnica adecuada para semillas pequeñas cubriéndose con fina capa de 
sustrato cernido. 
 
Una forma de facilitar la distribución uniforme, sino existe práctica en empleo de la 
técnica es utilizando un recipiente de vidrio que tenga una tapa metálica donde 
puede realizarse pequeños orificios de tal manera que permite salir las semillas. 
Una parte de las semillas se mezcla con dos partes de arena fina (seca) en el 
inferior del envase y se usa en forma de salero (Tarima, 1996). 
 
b) En surcos 
 
Se coloca la semilla en surcos de profundidad no mayor a su diámetro; estos 
surcos podrán ser perpendiculares o paralelos el eje mayor de almaciguera 
cubriéndose con una fina capa de sustrato cernido (Tarima, 1996). 
 
Si las semillas quedan a mayor profundidad, la germinación no tiene energía 
suficiente para emerger a la superficie, muriendo en el intento. 
 
2.10.4 Cobertura y semisombra 
 
Es recomendable cubrir el almácigo con materiales que eviten la pérdida de 
humedad del sustrato, como por ejemplo, pajas, ramas, malla zaran, etc. Una vez 
que emergen las plantas se procede a proveer de simisombra, elevándola conforme 
van creciendo los plantines. Se retira pocos días antes del repique (Delgado et al., 
2005) 
27 
 
Tarima (1996) menciona que la semilla requiere temperatura de 20 – 25 ºC y una 
humedad de 70 a 80 %. Para lograr estas condiciones, se cubre el almácigo con 
una cobertura de paja ó plástico. Esta cobertura puede crear condiciones para el 
ataque de la chupadera fungosa y/o deformar los plantines que van emergiendo 
durante la germinación. Por lo que debe retirarse una vez iniciada la germinación 
de la semilla. 
 
Las plántulas requieren corrientes suaves de aire y luz solar, considerando que la 
exposición de los plantines a los rayos solares debe ser gradual, conveniente 
entonces retirar la semisombra progresivamente hasta dejarla totalmente expuesta 
al sol. 
 
Estos se consiguen disminuyendo poco a poco la densidad de la capa de paja de la 
semisombra. El riego será con lluvia fina, usando una regadera con una aplicación 
frecuente pero con pocas o escasa agua de manera que el sustrato se mantenga 
húmedo, evitando que exista acumulación de agua que pueda facilitar la 
propagación de hongos y bacterias. 
 
2.11 Germinación 
 
La germinación de la semilla es el desarrollo del embrión hasta la formación de la 
planta. Durante la germinación ocurre una serie de cambios bioquímicos, 
consistentes principalmente en la solubilización de los azúcares, proteínas y grasas 
de reserva, que sufren variaciones para poder ser asimilados (Tarima, 1996). 
 
La germinación de la semilla es el desarrollo del embrión hasta la formación de la 
planta. Durante la germinación ocurren una serie de cambios bioquímicos 
constantes principalmente en la solubilización de los azucares, proteínas y grasas 
de reserva; que sufren variaciones para ser asimiladas. El agua es un elemento 
determinante para el inicio y desarrollo normal de la germinación. Está se 
suministra por medio de riego, la acción combinada de otros factores como los 
28 
 
rayos solares; el oxígeno y la temperatura ambiente del lugar; permite iniciar el 
proceso de la germinación. 
 
Las etapas de germinación son parecidas a todas las especies; la semilla se 
hincha, luego la radícula se desarrolla y forma la raíz primaria que generalmente 
tiene un crecimiento precoz para permitir la fijación de la plántula en el sustrato, 
luego la germinación continua hasta desarrollar la parte área como el tallo, las 
ramas y las hojas (Trilla, 1984). 
 
La germinación del cedro es de tipo hipógea y se inicia a los 10 ó 12 días y se 
completa a los 25 ó 30 días. Las semillas germinan dentro de un rango de 
temperaturas de 26 a 31 ºC. (BASFOR, 2000) 
 
Los tratamientos pregerminativos, dadas las características morfológicas y 
anatómicas, así como la alta capacidad germinativa natural, la especie no requiere 
tratamientos pregerminativos. Sin embargo, si se desea una germinación mas 
uniforme, se sumerge la semilla en agua a temperatura ambiente pro 24 horas 
antes de la siembra (BASFOR, 2000). 
 
Las semillas almacenadas en bolsas de polietileno a 5ºC de temperatura y 7% de 
contenido de humedad, mantienen un porcentaje de germinación de 50 a 60 a los 
dos años. Por su resistencia al almacenamiento se considera una especie ortodoxa 
(BASFOR, 2000). 
 
2.12 Problemas en almaciguera 
 
2.12.1 Mala formación de plántulas 
 
La deformación del tallo se debe a que no se retiró oportunamente la cobertura 
durante el proceso de germinación. Las plántulas al emerger del sustrato chocan 
con este material y se deforman (VIMADI, 1998). 
29 
 
2.12.2 Plántulas débiles 
 
La debilidad de las plántulas en la almaciguera se debe a veces al exceso de 
sombra, estos se manifiestan con formas alargadas y débiles (VIMADI, 1998). 
 
2.12.3 Presencia de enfermedades 
 
Durante el proceso de desarrollo de plantines, debe darse seguimiento continuo a 
la presencia de plagas y enfermedades para su control oportuno, usando 
insecticidas y funguicidas (Delgado et al, 2005) 
 
VIMADI (1998) menciona que la presencia de enfermedades más frecuentes y las 
más devastadoras es el dampig-off (chupadera), es una enfermedad producida por 
el ataque de una o varias de estos hongos: Rhizoctonia sp.,Phytium sp. y 
Phytophthhora sp. Estos hongos se encuentran en la tierra donde se instala el 
vivero; puede ser transportada con el agua de riego y es posible también que se 
encuentre en el aire. Los mismos se desarrollan en condiciones favorables: 
Excesiva sombra, alta humedad en el sustrato, alta humedad del aire sobre el 
almácigo, presencia de hierbas y uso de sustrato orgánico. 
 
Shroff (1998) indica la incidencia del damping-off es mayor en lugares cálidos, que 
en lugares fríos y menor incidencia en épocas frías. El buen manejo de la especie 
las pérdidas en plántulas no deben ser de 5 % a 10 %. Por lo general el damping-
off ataca las plántulas en la fase inicial de germinación. Las esporasse 
encuentran dispersas en el suelo o muchas veces ya vienen en la misma semilla. 
Este tipo de enfermedad puede aparecer en cualquier época del año, dependiendo 
del tipo de suelos y del clima. Los suelos compactos, la alta humedad y pH 
alcalinos, contribuyen a la expansión de la enfermedad (Tarima, 1996). 
 
 
 
30 
 
2.13 Embolsado del sustrato 
 
La preparación de los recipientes donde se trasplantarán las plántulas (bolsas de 
plástico), recomienda que tengan 8 a 10 cm de diámetro y 15 – 20 cm de altura, 
además en lo posible las bolsitas tendrán que ser de color negro para su mejor 
protección de las raíces de los rayos del sol. El sustrato en las bolsas deben ser 
llenadas hasta conseguir una forma cilíndrica, con una buena compactación al raz 
de la bolsa y los plásticos cuyas bases se perforan dos hileras de cavidades para 
facilitar el drenaje (Mariategui, 1993) 
 
Una vez preparada la mezcla adecuada de sustrato y definido el tamaño de las 
bolsas se procede el llenado de bolsas. En las bolsas se debe dejar por lo menos 
un centímetro de espacio libre. Si la bolsa está completamente rellenada de 
sustrato, el agua no penetra hacia el fondo de la misma, perdiéndose por 
escurrimiento y por lo tanto el riego es ineficiente. El llenado de bolsas de ser 
realizado de manera cuidadosa, evitando dejar bolsones de aire o espacios libres 
en el interior de las bolsas. Los bolsones de aire tiene efectos negativos en el 
desarrollo de las raíces y por lo tanto en la plantines (Tarima, 1996) 
 
2.14 Repique 
 
Es el traspaso de los plantines almacigados a bolsas donde se quedarán hasta 
tener un tamaño adecuado para su plantación definitiva (Delgado et.al., 2005). 
 
El repique consiste en extraer las plantas del almácigo y seleccionadas. Durante la 
selección se desecho aquellas raíces tallo deformes, se poda las raíces e 
inmediatamente se colocan en lechado para protegerla del aire y la luz solar antes 
de plantarlas en las bolsas (Tarima, 1996). 
 
Repicar plántulas menores de 3 cm de altura no se recomienda por el hecho que 
estas plántulas son demasiado débiles provocando una mayor mortand después del 
31 
 
repique. Además no se puede efectuar una buena selección de las plántulas a 
repicar. Repicar plántulas con mayor tamaño de 9 cm no es aconsejable por las 
siguientes razones: Las plantas ya tienen muchas raíces que se lastiman y se 
doblan durante el repique, las plántulas grandes tiene mayor cantidad de hojas 
provocando mayor transpiración y debilitamiento luego del repique (Schroff, 1998). 
 
Es uno de los trabajos más delicados en todo el proceso de propagación de plantas 
en vivero, el repique correctamente ejecutado garantiza no solo la sobrevivencia de 
plantas en vivero, sino su prendimiento y desarrollo óptimo en terreno definitivo. 
(Bognetteau, 1997). 
 
Dentro la producción de plantines en vivero la fase más crítica es el repique tanto 
por la época de su realización como el cuidado que debe tener al realizar dicha 
actividad, el crecimiento y desarrollo del futuro árbol en la plantación dependerá 
mucho de cómo se encuentre la raíz (Ocaña, 1997). 
 
2.15 Lechada 
 
Es una mezcla preparada con agua y arcilla en la que se introduce las raíces de los 
plantines cuando se los saca del almácigo para su trasplante a las bolsas. El 
lechado permite que las raíces entren rectas cuando se las introduce en los hoyos, 
evitando que queden dobladas hacia arriba (Delgado et al., 2005). 
 
2.16 Hoyado 
 
Una vez embolsado el sustrato y previo un riego ligero, se procede a realizar u 
pequeño hoyo en el sustrato al centro de la bolsa se colocará el plantin (Delgado 
et al., 2005). 
32 
 
3. MATERIALES Y METODOS 
 
3.1 Características generales 
 
3.1.1 Localización 
 
El presente trabajo de investigación se realizó en el Cantón Arapata del 
Municipio de Coripata, Provincia Nor Yungas del Departamento de La Paz. 
 
El Cantón Arapata se encuentra ubicada a 116 km al nor-este de la ciudad de 
La Paz (Fig.7), entre los paralelos 15º 30’ 40” Latitud Sur y 67º 09’ 36” Longitud 
Oeste del meridiano de Greenwich y a una altura aproximada de 1614 msnm 
(PDM, 2001). 
 
Fig. 7. Mapa de ubicación del área de estudio 
 
 
 
 
Fuente: Atlas Estadístico de Municipios de Bolivia (2001) 
 
ÁREA DE ESTUDIO 
33 
 
3.1.2 Clima 
 
Esta zona de los yungas presenta un clima cálido que corresponde la región de 
bosques de Yungas y bosques de pie de monte, esto significa que los cambios de 
un tipo de vegetación a otro son graduales como gradual es el cambio en el clima. 
Este sector presenta una temperatura promedio de 18.13 ºC. 
 
Respecto a las precipitaciones este sector tiene un valor promedio de 2165 
mm/año de precipitaciones, así mismo presenta 268 días de lluvia anuales, de los 
cuales 159 días tienen precipitaciones mayores a 4 mm, es decir el 42.7% del año, 
la humedad relativa es del 85% (cuadro 5). 
 
Cuadro 5. Características Climáticas del sector de Coripata 
Características Valores 
Temperatura máxima anual 30.0 ºC 
Temperatura mínima anual 6.60 ºC 
Temperatura promedio anual 18.3 ºC 
Humedad Relativa 88 % 
Meses de lluvia De Noviembre a Marzo 
Meses con heladas De Abril a Agosto 
 Elaboración en base a los datos de SENAMHI (2009) 
 
3.1.3 Viveros forestales 
 
El experimento se realizó en el vivero agroforestal de Coripata, consta de un 
ambiente acondicionado para fines de producción de plantines, cuya estructura 
está formado por hormigón, armazón de fierro galvanizado tipo túnel empotrado 
en hormigón de cemento, malla rash con 75 % semisombra, platabandas 
construidos de cemento, piletas para riego; los detalles se muestra (cuadro 6). 
 
 
 
 
34 
 
Cuadro 6. Características y dimensiones del vivero 
Infraestructura Características Área (m2) 
Almaciguera Área Neta: L: 10 m; A: 1,2 m 
N° Almacigueras 
Área almaciguera 12*4 
12 m2 
4 Almacig. 
48 m2 
Cama de repique (platabandas) Área Neta: A: 1,20 m: L: 14 m 
N° Platabandas: 
Área de platabanda 14,4 x 26 
16,8 m2 
26 
436,8 m2 
TOTAL AREA NETA VIVERO Cubierta con malla rash 598 m2 
 
3.2 Materiales 
 
3.2.1 Material vegetal 
 
De acuerdo al planteamiento de investigación se utilizó como material genético 
semillas certificadas cedro colorado (Cedrela odorata) procedentes de BASFOR. 
 
 La semilla de Cedro es de color café claro, aladas, se puede encontrar 
entre 50.000 a 80.000 semillas por kilogramo con un porcentaje de 
germinación entre 60 a 75 %. 
 
3.2.2 Insumos 
 
a) Tierra agrícola (del lugar): es un componente que es de formación natural, 
es la capa superior de acumulación de la materia orgánica y lenta 
descomposición con diferente valor nutricional (Zalles, 1988). 
 
b) Abono orgánico (estiércol ovino): se utilizó estiércol de ovino por su 
carácter orgánico - ecológico que favorece las propiedades físicas, 
química y biológicas del suelo, con la siguiente composición química: 
Humedad 10.0 %, Nitrógeno total 1.012 %, P2O5 1.04 %, K2O5 1.10 %, 
Materia Orgánica 18.19 % y pH acido (Chilon, 1997). 
 
35 
 
c) Arena (arena fina): está caracterizada por la granulometría que va desde 
20 a 200 micrones; es generalmente suelta, porosa y estéril. En contenido 
de nutrientes es bajo y sus valores de pH tienen a ser alcalino (Zalles, 
1988). 
 
d) Carbón vegetal: Estas cenizas presentan, en general, concentraciones 
muy bajas de metales pesados, si bien las extraídas con electrofiltros 
pueden presentar concentraciones más elevadas de metales tóxicos 
(Someshwar, 1996). 
 
3.2.3 Instrumental de meteorología 
 
Para el registro del clima de la zona se utilizó termómetro de máxima y 
mínima, e higrómetros para medición de humedad. 
 
3.2.4 Herramientas de campo 
 
Para la preparación de las almacigueras y platabandas se utilizaron las siguientes 
herramientas: carretilla,zaranda, pala, rastrillos, bolsas polietilenos, machete, 
baldes, regadera, flexómetro, letreros, calibrador, tijera de podar, manguera, 
estacas de madera, alambres, mosquitero de dormir, lienzos, guantes de goma, 
picota, pala, rastrillo, azadón, regla graduada, cintas de colores de nylon, GPS, 
cámara fotográfica, calculadora, cuaderno de campo, hojas de formulario. 
 
El repicado se realizo con la ayuda de tres estacones de madera de diferentes 
tamaños, llamado también repicadores, estas se usaron según la longitud de la 
raíz principal de cada especie: repicador grande de 30 cm de longitud, mediano de 
23 cm de longitud y pequeño de 17.5 cm de longitud. 
 
 
 
36 
 
3.2.5 Equipo de laboratorio 
 
Termómetro, balanza analítica de precisión de 200 gr (0.001 E), calibrador 
metálico (Vernier), bandejas de plástico para germinación, cajas petri, bolsas de 
polietileno, cocina eléctrica (tratamiento de semillas para secar muestras), 
estiletes, recipientes de plástico con dimensiones de 22 * 34 * 6 cm, algodón y 
estufa. 
 
3.2.6 Material de gabinete 
 
Todo lo referente al material de escritorio, computadora, impresora y escáner. 
 
3.3 Metodología 
 
3.3.1 Actividades desarrolladas en laboratorio 
 
Los parámetros tomados en cuenta para su mesura en laboratorio y puedan 
indicar los aspectos como ser la calidad de la madera, valor económico actual, su 
importancia en los sistemas agroforestales, demanda de las semillas y otros. 
 
3.3.1.1 Peso y conteo de semillas puras 
 
El conteo y pesaje de semillas se utilizó una balanza eléctrica de precisión, 
recipientes de plásticos y bolsitas de nylon, una vez realizado la limpieza se peso 
las semillas grandes de 0.5 kg y fueron divididas en recipientes a 0.08 kg, para 
después contar el numero de semillas por recipiente y ponderadas al kilogramo y 
finalmente se promedió para sacar el número de semillas por kilogramo. 
 
 
 
 
37 
 
3.3.2 Actividades desarrolladas en vivero 
 
3.3.2.1 Semi-sombra para almaciguera 
 
La semi-sombra en la almaciguera se consiguió con la adición de hojas en la parte 
superior de las platabandas y a medida que se requería más luz se fue quitando 
las hojas paulatinamente. 
 
3.3.2.2 Habilitación de almacigueras y delimitación para la prueba 
 
Para este propósito se incorporo nuevo sustrato mezclado, posteriormente se 
distribuyo en las platabandas de forma uniforma, seguidamente se construyo una 
protección alrededor de las platabandas con alambre tejido para evitar el acceso 
de animales. 
 
La superficie de la almaciguera fue dividida en cuatro partes (bloques), de acuerdo 
al tamaño de la semilla y esta a su vez se subdividido en cuatro repeticiones. 
 
3.3.2.3 Preparación de sustrato 
 
Se preparó el sustrato para la siembra en las proporciones indicadas (cuadro 7), 
las cuales se usaron en el almacigado y en el repique de plantas. Utilizando tierra 
del lugar (tierra agrícola), arena, abono y ceniza. Cada uno de los componentes 
del sustrato fue debidamente tamizado libre de agentes extraños para garantizar 
una buena condición para germinación de la semilla. Posteriormente estas 
proporciones fueron mezcladas adecuadamente. 
 
 
 
 
38 
 
Cuadro 7. Tipos de Sustrato para el almacigo y repique de tres especies forestales. 
 
Tipo Sustrato Proporciones 
S1 100 % tierra lugar 10:0:0 
S2 50 % tierra lugar + 50 % arena fina 5:5:0 
S3 50 % tierra lugar + 30 % arena fina + 20 % turba 5:3:2t 
S4 50 % tierra lugar + 30 % arena fina + 20 % ceniza 5:3:2c 
 
Posteriormente se mezclo y disponible para el repique de las almacigueras. 
 
3.3.2.4 Desinfección de los sustratos 
 
La desinfección de los sustratos se realizó con el fin de evitar la presencia de 
insectos y hongos que pueden dañar a las semillas y plántulas; para este fin se 
utilizó formol comercial a una concentración de 40 %, para la preparación de la 
solución desinfectante en una relación de 100 ml en 10 litros de agua. Se aplico 10 
litros de la solución a 1 m3 de sustrato, en forma de riego superficial, 
posteriormente se mezclo con el sustrato y luego fue cubierto con nylon para evitar 
la volatilización del formol; transcurrido 72 horas, se retiro el nylon para su aireado 
durante tres días y posteriormente se realizó el almacigado. 
 
3.3.2.5 Almácigo de semillas 
 
Para este propósito se nivelo la superficie, seguidamente se aplico un riego ligero 
para humedecer el sustrato y realizar la siembra. 
 
Las semillas de cedro colorado fueron almacigadas en con la “ala” inclinada. 
 
Para el control de la germinación se utilizó planillas donde se registrarán los datos 
para su respectiva evaluación. 
 
39 
 
Primeramente se niveló la almaciguera, después de un riego ligero se deposito las 
semillas en hileras a 2 cm entre semillas y la profundidad de siembra fue 0.5 cm (1 
a 2 veces el diámetro de la semilla). 
 
3.3.2.6 Preparado y llenado de bolsas 
 
En el mercado existen diferentes dimensiones de bolsas polietilenos, pero por 
recomendaciones de PIAF – El Ceibo se utilizó las bolsas polietilenos con 
dimensiones de 12 cm de diámetro y 22 cm de longitud, con orificios para el 
drenaje de agua. 
 
Posteriormente, se procedió al llenado de las mismas con la ayuda de un pequeño 
estacón de madera, el cual se utilizó para no dejar espacios vacíos en la bolsa. 
 
3.3.2.7 Platabandas y semi-sombra 
 
Ubicada el área para las platabandas y niveladas para uniformizar la superficie, de 
dimensiones de 1.20 m de ancho y 15 m de largo, se dividió en 4 tratamientos de 
estudio más los pasillos de 1m con el fin de facilitar las diferentes tareas. 
 
Posteriormente, esta área se procedió a dividir en 4 bloques (repeticiones), dentro 
de ellos y seguidamente se procedió a dividir en unidades experimentales, que en 
este caso fueron 16 UE por tratamiento. 
 
 Posteriormente, se procedió al enfilado de las macetas en forma ordenada, cada 
especie fue repicada en una platabanda, es decir sumados 144 macetas 
tratamiento y por el número de repeticiones se tuvo un total de 576 plantas. 
 
A estas platabandas contaban con semisombra de malla milimétrica. 
 
 
40 
 
3.3.2.8 Repique 
 
Para realizar el repique se considero las siguientes consideraciones: altura de 
plántula de 10 cm, número de hojas. Previo la extracción de las plantulas de la 
platabanda esta se humedeció a capacidad de campo, esto con el fin de extraer 
con facilidad las plantas, seguidamente se realizo la selección de las plantas con 
buenas características morfológicas y desechando aquellas plántulas con raíces y 
tallos deformes. 
 
Cedro colorado, repicado con una altura de 4.5 a 6 cm, longitud de raíz de 3 a 4 
cm, con un par de cotiledones y las 2 primeras hojas verdaderas en forma de 
trébol semi formadas de color verde claro. 
 
3.3.2.9 Labores culturales 
 
Las labores culturales fueron realizadas de acuerdo a la necesidad de la especie y 
de acuerdo al desarrollo de la misma. Entre las principales actividades podemos 
mencionar. 
 
a) Riego 
 
Esta actividad fue realizada con regaderas caseras durante todo el periodo de 
experimentación, con frecuencia de 3 a 5 días, con una lamina de riego de 3.5 
mm/riego, y se suspendió cuando las precipitaciones eran significativas. 
 
b) Deshierbe 
 
Se realizo a los 21días después del trasplante, una vez cada dos semanas; de 
forma manual y teniendo el cuidado de no maltratar las plántulas. 
 
 
41 
 
c) Refalle 
 
Se hizo a los 7 a 10 días después del trasplante para reemplazar plantas 
perdidas (no prendidas) y/o dañadas; esta práctica se efectuó con el propósito 
de uniformizar la población de plantas. 
 
d) Plagas y enfermedades 
 
Las plagas y enfermedades fueron controladas manualmente, todos los días de 
8:00 a 10:00 de la mañana, en diferentes platabandas. 
 
Plagas: en la etapa de germinación las plantas de cedrocolorado fueron atacados 
por las larvas lepidópteras (Hypsipyla grandella) dañando el brote del ápice. 
 
Enfermedades: durante la permanencia del cedro colorado en el vivero, este fue 
afectado por las lluvias continúas (exceso de humedad); sobre las plantas y en 
consecuencia hubo amarillamiento de las hojas, con una mortandad de 12.5 %. 
 
3.3.3 Plantas al trasplante 
 
Al cabo de 90 días las plantas alcanzaron un desarrollo en porte lista para el 
trasplante, para ello se evaluó las características morfológica. 
 
3.3.4 Toma de datos 
 
Se tomaron muestras de 5 plantas al azar de cada Unidad Experimental para 
evaluar las variables consideradas para el presente estudio. 
 
 
 
 
42 
 
3.3.5 Evaluación 
 
Para evaluar la influencia del ambiente y tratamientos (tipos de sustratos) se 
tomaron datos a la germinación, días al repique, y de las variables 
consideradas para la evaluación y contrastando con otros investigaciones. 
 
3.3.6 Análisis Estadístico 
 
Para determinar las diferencias estadísticas entre los tratamientos en estudio 
se utilizó el análisis de varianza (ANVA), y la prueba de significancia 
mediante la prueba de Duncan. 
 
3.3.6.1 Diseño experimental 
 
El presente trabajo de investigación se realizó bajo un diseño de bloques al 
azar con cuatro tratamientos (tipos de sustratos). Se utilizó bloques para 
controlar las variaciones del microclima dentro del vivero forestal. 
 
3.3.6.2 Factor de estudio 
 
El factor de estudio son los tipos de sustratos; ensayadas con la especie forestal 
Cedro colorado. 
 
Factores de estudio: tipos de sustrato: 
 
a1 = 100 % tierra lugar 
a2 = 50 % tierra lugar + 50 % arena fina 
a3 = 50 % tierra lugar + 30 % arena fina + 20 % turba 
a4 = 50 % tierra lugar + 30 % arena fina + 20 % ceniza 
 
 
43 
 
3.3.6.3 Modelo lineal aditivo 
 
El modelo lineal aditivo corresponde a un diseño de bloques al azar donde el 
factor de estudio son los tipos de sustrato (Reyes, 1999). 
 
 Yijk =  + k + i + ijk 
Donde: 
 Yijk = Una observación cualquiera 
  = Media poblacional 
 k = Efecto del k-ésimo bloque 
 i = Efecto del i-ésimo tipo de sustrato 
 ijk = Error experimental 
 
3.3.6.4 Características del área experimental 
 
La parcela de estudio tuvo las siguientes características de acuerdo al diseño 
experimental planteado para la investigación, como se observa en el cuadro 8. 
 
Cuadro 8: Características del área experimental 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Detalle Valor Unidad 
Superficie total del experimento 336 m2 
Superficie de la platabanda 16.8 m2 
Superficie del bloque 2.4 m2 
Pasillo entre bloques 1 m 
Nº de bloques/experimento 4 
Área de la unidad experimental 16.8 m2 
Nº de tratamientos 4 
Nº de unidades experimentales 16 
Nº de plantas por unidad experimental 150 
44 
 
El estudio se estableció en un vivero forestal en dos platabandas. Con las 
siguientes características: 
 
3.3.6.5 Área Experimental 
 
 
 
 
 
 
 a1 a2 
1 
 a3 a4 
 
 a2 a3 
2 
a4 a1 
 
 a3 a4 
3 
 a1 a2 
 
 a4 a1 
4 
 a2 a3 
 
 
3.4 Variables de respuesta 
 
Las variables de respuestas consideradas en el experimento fueron las 
siguientes: 
 
3.4.1 Variables fenológicas 
 
3.4.1.1 Días a la emergencia 
 
Se cuantifico los días desde la siembra hasta la emergencia considerando para 
1 m 14 m 
2 m 
1.2 m 
N 
45 
 
esto el 50 % emergido en el almacigo. 
 
3.4.1.2 Días al trasplante 
 
Se tomo en cuenta desde el 50 % de las plantas emergidas hasta el desarrollo 
necesario de las plantas para el trasplante. 
 
3.4.2 Variables Agronómicas 
 
3.4.2.1 Altura de planta 
 
Esta variable se evaluó después del repique en centímetros, con mediciones 
periódicas de 21 días, considerando para ello desde la base del tallo hasta el 
ápice o guía principal. Se tomó cinco plantines al azar los cuales fueron 
marbeteados en los cuatro bloques, considerando los efectos de bordura; y en 
cuatro oportunidades durante todo el proceso de la investigación. 
 
3.4.2.2 Diámetro de tallo 
 
Se registró esta variables a 1 cm del nivel del sustrato, de las mismas cinco 
plantines seleccionadas en la variable altura de la planta; se utilizó un vernier con 
controles cada 21 días y en cuatro oportunidades en la investigación. 
 
3.4.2.3 Número de hojas 
 
Esta variable se evaluó después del repique, con mediciones periódicas de 21 
días, considerando para ello desde la primera hoja verdadera. Se tomó cinco 
plantines al azar los cuales fueron marbeteados en los cuatro bloques, 
considerando los efectos de bordura; y en cuatro oportunidades durante todo el 
proceso de la investigación. 
 
 
 47 
4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 
 
4.1 Evaluación climática 
 
La Fig. 8 resume los datos climáticos promedios por meses del periodo de 
investigación gestión 2009. 
 
Fig. 8. Clima diagrama promedio de la Estación Climática de Coripata 
 
El clima diagrama (Fig.8) de la estación de Coripata muestra que la época con las 
precipitaciones más altas se registran en los meses de noviembre a marzo, con 
láminas superiores los 100 mm y los restantes meses con precipitaciones por 
debajo de esta lámina de agua. 
 
La curva de temperatura muestra una curva paralela a la de precipitación, cabe 
indicar si bien las condiciones climáticas son favorables durante casi todo el año, 
se registran temperaturas bajas por un periodo de 3 a 4 meses (de mayo a 
agosto), y el resto de los meses con clima favorable, pero las precipitaciones son 
bajas que no permiten un buen desarrollo de las plantas aún. 
 
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De acuerdo al comportamiento climático de la época para la implementación y 
producción de plantines, desde el mes de septiembre, y tener disponibles estas 
para su trasplante en los meses de noviembre y diciembre. 
 
4.2 Riego aplicado 
 
Para el normal crecimiento de los plantines en el vivero se realizaron riegos con 
intervalos de 3 a 5 días dependiendo de la demanda de agua del cultivo y las 
condiciones climáticas; El cuadro 9 muestra la cantidad de agua aplicado por día y 
por etapas de desarrollo del cultivo, expresados en lámina de agua y el método de 
riego empleado fue superficial por gravedad. 
 
Cuadro 9. Lámina de riego (La) diario y total aplicado durante la investigación 
Actividad Fecha Nº días La [mm/día] La [mm] 
Etapa de almacigo 09 Agosto 21 - - 
Trasplante 01Septiembre 30 - - 
Mes 1 01 Septiembre 30 3.5 105.0 
Mes 2 01 Octubre 31 3.5 108.5 
Mes 3 01 Noviembre 30 3.5 105.0 
Total 130 
 
318.5 
 
El riego en las unidades experimentales comenzó con la siembra en los almacigo, 
repique y su permanencia en el vivero, si bien en una etapa inicial de crecimiento 
de los plantines su consumo de agua fue menor, la misma mostro una mayor área 
sin cobertura vegetal del cual la evaporación fue directa, y a medida que el 
desarrollo fue mayor el consumo de agua también incremento, pero con un menor 
área del suelo para la evaporación; que al final el consumo de agua de la etapa 
inicial y final del desarrollo fue similar. 
 
La lámina de riego aplicado a las plantas en vivero estuvo alrededor de los 3.5 
mm/día (cuadro 9); llegando alcanzar un consumo total de 318.5 mm para el total 
del periodo de investigación. El riego aplicado en las diferentes etapas consideró 
solamente los niveles de agua del suelo fácilmente aprovechable, es decir niveles 
hidro-físicos entre Capacidad de Campo y Fracción de Agotamiento de agua 
disponible del Suelo (límite aprovechable de agua sin restricción) es de 0.50 para 
especies forestales