Manual de Bioseguridad de Laboratorio Clinico_3

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Código: DOC - LAB 1 
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APL 1.5 
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Fecha: Noviembre 2009 
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Unidad de 
Laboratorio Clínico 
 
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Manual de bioseguridad 
de Laboratorio Clínico 
Vigencia: Diciembre 2013 
 
 
 
 
 
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1. Objetivos y propósito: 
 
1.1 Propósito: 
 
El personal de salud que trabaja en el área de Laboratorio Clínico se encuentra 
expuesto a contraer enfermedades ocupacionales, por lo que es necesario contar con un 
programa que minimice estos riesgos, basado en actitudes y medidas efectivas de 
prevención y manejo. 
La actitud y el modo de proceder del personal de Laboratorio Clínico son 
determinantes de su propia seguridad y la seguridad de su entorno; el equipamiento y 
diseño del Laboratorio Clínico deben complementarse con el conocimiento y aplicación 
por parte del personal de las medidas de Bioseguridad. 
Este manual establece y describe los lineamientos del sistema de bioseguridad del 
Laboratorio Clínico del Hospital San Juan de Dios, basados en el Manual de Bioseguridad 
en el Laboratorios de la OMS, en lo requerido para el cumplimiento de la norma nacional 
NCh 2547 of.2003 Laboratorios clínicos - Requisitos particulares para la calidad y 
competencia, y las Pautas de Acreditación del MINSAL. 
 
 
1.2 Objetivos: 
 
• Conocer la importancia la Bioseguridad en el Laboratorio Clínico. 
• Lograr y mantener una actitud positiva de los funcionarios del Laboratorio Clínico 
frente a la bioseguridad. 
• Implementar medidas de bioseguridad en todas las secciones del Laboratorio Clínico. 
 
 
2. Alcance: 
 
El alcance de este manual involucra a todo el Laboratorio Clínico. 
 
 
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3. Responsabilidades: 
 
 
 
4. Definiciones: 
 
4.1 Accidente de trabajo: Ocurrencia durante las horas de trabajo que causa inhabilitación 
temporal o permanente del trabajador. 
 
4.2 Agente biológico: Cualquier organismo capaz de causar infección, enfermedad o 
muerte en el ser humano. 
 
4.3 Antisépticos: Cualquier compuesto químico con efecto antimicrobiano que pueda ser 
utilizado inocuamente en piel o tejidos. 
 
4.4 Área contaminada: Área donde se manipulan microorganismos de riesgo. 
 
4.5 Área de acceso restringido: Área donde el tránsito esta permitido sólo al personal 
adecuadamente protegido y autorizado, debido a la presencia de agentes de los grupos III 
a IV de la clasificación de agentes de riesgo o al uso de sustancias químicas de alto 
riesgo. 
 
4.6 Área de transito limitado: Área donde el tránsito esta permitido sólo a personas 
previamente autorizadas, debido a la presencia de agentes de los grupos I y II de la 
clasificación de agentes de riesgo o al uso de sustancias químicas de bajo riesgo. 
 
4.7 Área limpia: Área del Laboratorio donde no se manipulan microorganismos de riesgo. 
 
 RESPONSABLE 
 
ACTIVIDAD 
Jefe de 
Laboratorio 
Encargado 
Bioseguridad Profesionales 
TPM, OA, 
AS 
Normar y Supervisar 
Cumplimiento de Medidas de 
Bioseguridad 
E - C E I I 
Asegurar disponibilidad de 
implementación necesaria (EPP, 
contenedores, señalética, etc.) 
E C I I 
Conocer Manual de 
Bioseguridad E - C E - C E E 
Aplicar Medidas de Bioseguridad E - C E - C E E 
Evaluar el Cumplimiento de las 
Medidas de Bioseguridad 
C E - C E - I E - I 
E= Ejecuta C= Controla I= Estar informado 
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4.8 Bioseguridad: Conjunto de normas y actitudes que tienen como objetivo proteger la 
salud del personal frente a los riesgos biológicos, químicos y físicos a los que está 
expuesto en el desempeño de sus funciones. 
 
4.9 Campana de extracción de gases: Equipo que captura los humos y vapores 
procedentes de la manipulación de los productos químicos en el Laboratorio. Es un 
equipo útil en riesgo químico, pero no ofrece protección alguna frente a riesgos biológicos. 
 
4.10 Campana de seguridad biológica (Gabinete de Bioseguridad GBS): Equipo diseñado 
para la protección del trabajador, la atmósfera del laboratorio y los materiales de trabajo 
de la exposición a las salpicaduras y los aerosoles infecciosos. 
 
4.11 Desinfección: Destrucción de microorganismos patógenos por métodos químicos. 
Los compuestos químicos utilizados como desinfectantes se utilizan en superficies 
inanimadas no deben ser utilizados en piel o tejidos, por su potencial toxicidad. 
 
4.12 Esterilización: Proceso mediante el cual se logra la destrucción completa de 
microorganismos o biocontaminantes y sus formas resistentes, incluyendo las esporas, de 
los objetos o elementos, por métodos físicos o químicos. 
 
4.13 Limpieza: Proceso físico por el cual se elimina la materia orgánica y suciedad visible 
de los objetos, por arrastre mecánico, mediante el lavado con agua con o sin detergentes. 
 
4.14 Microorganismo (MO): Toda entidad microbiológica, celular o no, capaz de 
reproducirse o de transferir material genético. 
 
 
5. Desarrollo: 
 
5.1 Tipos de riesgo: 
 
Se conoce como factores de riesgo a todos los elementos, sustancias, 
procedimientos o acciones humanas presentes en el ambiente laboral que tienen la 
capacidad de producir lesiones al individuo o daños materiales en el trabajo. 
Existen distintos tipos de riesgo a los que pueden estar expuestos los trabajadores 
del laboratorio clínico: 
 
5.1.1. Riesgos físicos: 
 
Son los factores que actúan sobre tejidos y órganos no por composición química sino 
por efectos energéticos. Incluyen: 
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• Exposición a ruidos o vibraciones. 
• Exposición a temperaturas extremas. 
• Exposición a radiaciones: ionizantes o ionizantes. 
• Exposición a electricidad. 
• Accidentes corto punzantes con o sin riesgo biológico. 
 
5.1.2. Riesgos químicos: 
 
Los factores químicos son aquellos que por su composición química son capaces de 
dañar temporal o definitivamente al organismo expuesto. Los agentes químicos pueden 
tener propiedades nocivas tóxicas, corrosivas, irritativas o mutagénicas. 
Se pueden presentar como sólidos, polvos, humos, líquidos, vapores, neblinas, 
rocíos o gases. 
 
La exposición a riesgos químicos puede ocurrir por: 
• Ingestión. 
• Inhalación. 
• Contacto con piel o mucosas. 
 
5.1.3. Riesgos biológicos: 
 
Constituyen riesgo biológico: 
• Microorganismos (virus, bacterias, hongos), protozoos, helmintos, etc. 
• Animales de laboratorio 
 
La infección por microorganismos se puede adquirir por diversas vías: inhalación, 
ingestión, o contacto directo a través de piel erosionada o mucosas, o por accidentes 
cortopunzantes. 
 
5.2 Clasificación de riesgo biológico: 
 
La OMS clasifica los microorganismos infecciosos en cuatro grupos en función del 
riesgo intrínseco que suponen. Las siguientes definiciones han sido establecidas para su 
utilización en trabajo de laboratorio. 
 
• Grupo de riesgo 1: MO con escasas posibilidades de causar enfermedades (sin riesgo 
o riesgo muy bajo para el individuo y la comunidad) 
• Grupo de riesgo 2: MO que pueden causar enfermedad, pero es improbable que 
presenten un problema serio para los trabajadores, la comunidad, el ganado o el 
medioambiente (riesgo moderado para los individuos expuestos y bajo para la 
comunidad). Este grupo incluye la mayoría de las bacterias que se trabajan en el 
laboratorio clínico. 
• Grupo de riesgo 3: Patógenos que pueden causar enfermedades graves en humanos, 
pero normalmente no se transmiten de un individuo infectado a otro (riesgo alto para el 
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individuo, riesgo comunitario bajo). Este grupo incluye algunas bacterias que se 
trabajan en el laboratorio clínico, y el cultivo de la familia Mycobacteriaceae, donde se 
encuentra Mycobacterium tuberculosis. 
• Grupo de riesgo 4: Patógenos que habitualmente causan enfermedades graves en 
humanos y animales y que pueden ser rápidamente transmitidos, directa o 
indirectamente, de un individuo infectado a otro. Normalmente el tratamiento no está 
disponible (riesgo individual y comunitario alto). 
 
Las instalaciones de los laboratorios se clasifican, asimismo, en cuatro niveles de 
bioseguridad que están relacionados con los grupos de riesgo en los que se clasifican los 
microorganismos infecciosos. 
 
• Laboratorio Básico - Nivel 1 de Bioseguridad. 
• Laboratorio Básico - Nivel 2 de Bioseguridad. 
• Laboratorio de Contención - Nivel 3 de Bioseguridad. 
• Laboratorio de Contención máxima - Nivel 4 de Bioseguridad. 
 
Esta clasificación está basada en un conjunto de aspectos tales como: las 
características de diseño y construcción del laboratorio, elementos de contención, equipos 
y procedimientos de trabajo que se requieren para el trabajo con agentes biológicos de los 
diferentes grupos de riesgo. 
 
En la tabla Nº 1 se muestran algunos ejemplos de la relación entre los grupos de 
riesgo, los niveles de bioseguridad requeridos, la práctica de trabajo y el equipamiento de 
seguridad. 
 
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Tabla Nº 1 . Relación entre grupos de riesgo y niveles de bioseguridad, prácticas y 
equipos de trabajo. 
Grupo de 
riesgo 
Nivel de 
bioseguridad 
Tipo de 
laboratorio Prácticas de laboratorio 
Equipos de 
seguridad 
1 1 
Básico: 
enseñanza, 
investigación 
Buenas técnicas de 
laboratorio (BTL) 
Ninguno en 
especial, trabajo en 
banco abierto 
2 2* 
Básico: 
diagnóstico, 
investigación 
BTL más: acceso 
limitado, EPP, 
señalización, manejo de 
residuos 
Trabajo en banco 
abierto más uso de 
GBS I ó II para 
control de aerosoles 
3 3* 
Contención: 
diagnóstico 
especializado, 
investigación 
Nivel 2 más: 
acceso controlado, ropa 
especial, 
descontaminación de 
desechos 
Uso de GBS II para 
toda manipulación 
de material 
contaminado 
4 4 
Contención 
máxima: 
Patógenos 
peligrosos 
Nivel 3 más: 
entrada por pre-recinto, 
ducha, descontaminación 
de aire 
GBS clase III u otro 
más uso de traje con 
presión positiva, 
autoclaves de doble 
puerta, sistema de 
ventilación 
* El Laboratorio Clínico del Hospital San Juan de Dios se encuentra en el Nivel de Bioseguridad 2, 
y para algunos microorganismos, requiere prácticas del Nivel de Bioseguridad 3. 
 
5.3 Precauciones estándar: 
 
Las precauciones estándar son aquellas medidas que se toman con el objetivo de 
disminuir el riesgo de transmisión de microorganismos de fuentes conocidas o 
desconocidas, entre pacientes y personal de salud. 
Son un conjunto de medidas que deben aplicarse frente a la atención de todos los 
pacientes. En el laboratorio clínico se aplica para la manipulación de toda muestra clínica, 
independiente de su clasificación de riesgo. Las precauciones estándar incluyen: 
 
• Lavado o higiene de manos 
• Uso de guantes 
• Uso de equipo de protección personal cuando es necesario 
 
Los fluidos corporales son toda secreción o líquido biológico (normal o patológico) 
que produce el organismo. Se clasifican en fluidos de alto y bajo riesgo, según el riesgo 
de transmisión de agentes de transmisión parenteral (principalmente virus de 
inmunodeficiencia humana (VIH), virus hepatitis B (VHB) y virus hepatitis C (VHC). 
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Todo fluido corporal se considera como potencialmente contaminado desde el punto de 
vista de su manipulación. 
 
Tabla Nº 2: Clasificación de los fluidos corporales. 
 
Fluidos corporales de alto riesgo Fluidos corporales de bajo riesgo 
• Sangre 
• Semen 
• Secreción vaginal 
• Líquidos de cavidades estériles 
• Órganos o tejidos 
• Cualquier fluido de alto obajo riesgo 
contaminado con sangre visible 
• Sudor 
• Lágrimas 
• Deposiciones 
• Orina 
• Saliva 
• Secreción nasal y ótica 
 
PARA EL MANEJO EN EL LABORATORIO TODA MUESTRA SE DEBE 
CONSIDERAR POTENCIALMENTE CONTAMINADA 
 
5.3.1. Lavado o higiene de manos: 
 
Es la medida más eficaz para prevenir infecciones. El concepto de higiene de manos, 
se refiere a la obtención de “manos seguras”. Esto puede lograrse mediante el lavado de 
manos con agua y jabón, o mediante el uso de soluciones antisépticas, basadas en 
alcohol (alcohol gel). 
 
Uso de alcohol gel : Su objetivo es reducir la carga bacteriana en las manos. Está 
indicado para la higiene de manos cuando no hay disponibilidad de lavamanos, o para 
disminuir rápidamente la contaminación, siempre que no haya suciedad visible, ya que 
requiere que las manos estés limpias de materia orgánica y secas para ser efectivo. 
 
Técnica de uso de alcohol gel: 
 
• Las manos deben estar secas y no debe haber suciedad visible. 
• Aplicar una cantidad de +/- 3 ml (una aplicación) en la palma de la mano. 
• Friccionar las manos cuidando de esparcir el alcohol gel en todas las superficies 
(palma, dorso, dedos, espacios interdigitales). 
• Frotar hasta que las manos estén secas. 
• El proceso de higiene de manos tiene una duración de alrededor de 15 segundos. 
 
Para permitir una correcta higiene de manos el pers onal de laboratorio no debe 
utilizar anillos, pulseras, relojes o uñas artifici ales durante el horario de trabajo. 
 
La higiene (con agua y jabón o con alcohol gel) de manos debe realizarse: 
 
• Antes y después del contacto con cada paciente. 
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• Después del contacto con fluidos corporales, mucosas, piel no intacta o cualquier tipo 
de secreción. 
• Siempre que exista contaminación visible con sangre o fluidos biológicos. 
• Después del contacto con material o equipos contaminados. 
• Después de retirarse los guantes o cualquier elemento de protección personal. 
• Antes de preparar reactivos, diluciones, medios de cultivo, etc. 
• Al inicio de la jornada de trabajo, antes de abandonar el laboratorio transitoriamente o 
al finalizar la jornada de trabajo. 
 
El lavado de manos debe realizarse con agua y jabón SIEMPRE en las siguientes 
situaciones: 
 
• Cuando haya materia orgánica o suciedad visible. 
• Contaminación importante con sangre o fluidos corporales. 
• Exposición o contacto con microorganismos formadores de esporas (Clostridium 
difficile). 
• Después de utilizar el baño. 
 
Técnica de lavado de manos clínico: 
 
• Abrir la llave de agua, mojar bien manos y muñecas. 
• Aplicar jabón y frotar primero manos, dedos, espacios interdigitales, uñas. 
Posteriormente frotar muñecas. 
• Enjuagar bajo el chorro de agua desde la punta de los dedos hacia las muñecas. 
• Secarse con toalla de papel. 
• Cerrar la llave con la toalla de papel. 
• El lavado de manos correcto requiere una duración de 15 a 30 segundos para ser 
efectiva. 
• Para permitir un correcto lavado de manos el personal de laboratorio no debe utilizar 
anillos, pulseras, relojes o uñas artificiales durante el horario de trabajo. 
 
Para permitir la oportunidad del lavado de manos, es necesario que cada área del 
laboratorio donde se manipulan muestras clínicas (incluyendo los contenedores primarios) 
cuente con un lavamanos con jabón y toalla de papel disponibles (puede estar asignado 
en otra sección del laboratorio). En los sectores donde no se cuenta con lavamanos, debe 
existir al menos un dispositivo de alcohol-gel. 
 
5.3.2. Uso de guantes: 
 
El uso de guantes está indicado en las siguientes situaciones: 
 
• Manipulación de cualquier muestra clínica. 
• Riesgo de exposición a sangre o fluidos corporales. 
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• Manipulación de equipos u objetos contaminados. 
• Manipulación de sustancias tóxicas, irritantes o corrosivas. 
• Lavado de material (guantes de goma hasta antebrazo). 
 
Consideraciones del uso de guantes: 
 
• Tener presente que el uso de guantes no reemplaza el lavado de manos, y que éste 
último debe realizarse siempre al retirarse los guantes. 
• Los guantes deben examinarse antes de iniciar el trabajo, para evaluar posibles 
defectos. En caso de cualquier alteración visible, los guantes deben eliminarse. 
• Mantener los guantes durante todo el tiempo que haya riesgo de exposición a 
muestras o fluidos. 
• No tocar los ojos, nariz o piel con las manos enguantadas. 
• Cambiar los guantes cuando halla contaminación visible. 
• No reutilizar los guantes. 
 
5.3.3. Uso de equipos de protección personal: 
 
Los elementos de protección personal (EPP) deben utilizarse siempre en las siguientes 
situaciones: 
 
• En procedimientos donde existe riesgo de salpicadura de sangre o fluidos orgánicos. 
• Siempre que haya riesgo de producción de aerosoles (durante la centrifugación, 
agitación, uso del vórtex y al destapar tubos). 
• Para proteger las mucosas de contacto con sustancias irritantes (trabajo con 
desinfectantes, reactivos, tinciones y medios de cultivo). 
• Los EPP deben mantenerse durante todo el tiempo que haya riesgo. 
• Deben cambiarse en caso de suciedad o sangre visible. 
• Deben retirarse al abandonar el lugar de trabajo. 
• El retiro de los EPP debe ser siempre seguido del lavado de manos. 
 
Los elementos de protección personal incluyen: 
 
Pechera plástica: Debe utilizarse siempre durante el trabajo con sangre, fluidos o material 
contaminado. La pechera sólo debe utilizarse en el área de trabajo y debe retirarse para 
circular por las áreas comunes del laboratorio (pasillos, oficinas, secretaría, etc.). Si no 
hay sangre o suciedad visible, puede colgarse en un lugar habilitado para ello durante el 
día, pero debe eliminarse al terminar la jornada de trabajo o si presenta suciedad visible. 
 
Lentes de protección ocular: Deben utilizarse en todo procedimiento en que exista riesgo 
o posibilidad de salpicadura. Esto incluye: apertura de tubos o frascos, centrifugación, 
agitación, pipeteo con pipeta pasteur o automática, uso del vórtex, cualquier manipulación 
o transporte de elementos líquidos, etc. 
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Mascarilla quirúrgica: Debeutilizarse en todo procedimiento en que exista riesgo o 
posibilidad de salpicadura. Esto incluye los mismos que para el uso de protección ocular. 
 
Protector facial: Es una alternativa al uso de lentes de protección ocular y mascarilla. Se 
recomienda especialmente para personas que usan lentes ópticos, y para el personal que 
está expuesto a alta carga de salpicaduras, por ejemplo, el personal que realiza lavado de 
material contaminado. Puede utilizarse asociado o no cualquier tipo de mascarilla. 
 
Respirador particulado: Debe utilizarse siempre cuando se trabaja con microorganismos 
de nivel de bioseguridad tres (Mycobacterium tuberculosis), o ante el riesgo de exposición 
a estos microorganismos. 
 
Gabinetes de bioseguridad: Se consideran equipos de protección. Están recomendados 
en los laboratorios que manejan MO de nivel de bioseguridad II y son obligatorios para el 
manejo de MO de nivel de bioseguridad III. 
 
5.4. Desinfección y esterilización: 
 
El Laboratorio Clínico debe utilizar la desinfección o esterilización en el material con 
que trabajan según corresponda. 
 
5.4.1. Desinfección: Para llevar a cabo una desinfección adecuada, se debe tener en 
cuenta: 
 
• Tipo de desinfectantes disponibles. 
• Forma de empleo del desinfectante (concentración, tiempo de acción, ventajas y 
desventajas, etc.) Ver tabla Nº 3. 
• Compatibilidad con el material. 
• Uso y mantención de los compuestos según indicaciones del fabricante. 
• Mantención de los desinfectantes en frascos tapados y rotulados. 
• Espectro y efectividad en las condiciones prácticas de uso del laboratorio. 
• La presencia de materia orgánica en el material protege a los MO de la acción del 
desinfectante, impidiendo una desinfección adecuada. 
• Para el manejo de desinfectantes, revisar la Norma de Antisépticos y Desinfectantes y 
la Norma de Desinfección de superficies con Hipoclorito de Sodio, elaboradas por el 
Comité de IIH del Hospital (disponible en la intranet). 
 
5.4.2. Esterilización: Existen diferentes tipos de esterilización: 
 
• Esterilización por calor húmedo bajo presión (autoclave): Es el método de elección, 
por ser el más fiable, eficaz y de fácil empleo. Se introduce el material a esterilizar al 
autoclave en contenedores adecuados y cerrados durante 20 minutos a 121º C, 
teniendo la precaución de que la atmósfera del a autoclave esté a saturación y 
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desprovista de aire. El Laboratorio Clínico utiliza el sistema de autoclaves para sus 
procesos de esterilización. 
• Esterilización por calor seco: El material debe mantenerse en estufa por un lapso 
mínimo de una hora a partir del momento en que se ha llegado a los 170º C. 
• Radiaciones ionizantes: Basan sus efectos en la capacidad de destrucción celular, 
debido a su poder de penetración. 
• Esterilización por vapores químicos: Los agentes gaseosos, tales como el óxido de 
etileno, tienen una actividad bactericida y esporicida en el intervalo de 30 a 80º C. 
Este tipo de esterilización sólo debe aplicarse a aquel material que no pueda ser 
esterilizado al vapor. Estos tres últimos sistemas no son utilizados por el Laboratorio 
Clínico. 
 
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Tabla Nº 3 . Soluciones desinfectantes utilizadas en el laboratorio. 
 
 Hipoclorito de sodio Alcohol etílico 
Espectro 
Amplio: bacterias vegetativas, 
micobacterias, virus con y sin 
envoltura, hongos y parásitos. 
Esporicida. 
Amplio: bacterias vegetativas, 
virus con envoltura, hongos y 
parásitos. No esporicida. 
Tiempo de acción Requiere contacto por ± 10 minutos Rápido (< 2 minutos) 
Toxicidad 
Por ingestión, inhalación y por 
contacto directo en concentraciones 
altas. 
Manejo con guantes y pechera 
Evitar su uso en espacios cerrados 
Sólo por ingestión. 
Indicado también como antiséptico 
(70%) 
Corrosión 
SI 
No debe usarse de rutina en 
superficies de acero, hierro u otros 
metales. En caso de uso, no 
prolongar el contacto por > 30 
minutos y enjuagar el material en 
forma cuidadosa 
NO 
Puede utilizarse en cualquier 
superficie, excepto que se indique 
contraindicado por el fabricante 
Inactivación con 
materia orgánica 
SI SI 
Presentación 
habitual 
� Presentación de uso doméstico, 
con 5,25% de cloro disponible 
� Presentación granulada de uso 
hospitalario (sobre 4 gramos) 
70% a 99% 
Dilución Según uso. Ver norma IIH. Se recomienda la dilución al 70% 
Almacenamiento 
Cerrado y protegido de la luz 
El cloro ya diluido no debe 
almacenarse más de 24 horas 
Envase cerrado 
Rotular fecha de abertura 
Costo Bajo Medio 
Uso 
� Lavado de instrumentos 
� Limpieza de superficies 
� Limpieza del suelo de las áreas 
de trabajo 
� Desinfección de derrames 
� Limpieza de equipos 
� Desinfección de gabinetes de 
bioseguridad 
� Limpieza de superficies 
� Antiséptico 
 
 
 
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5.5 Precauciones específicas para laboratorios de nivel de bioseguridad 2: 
 
5.5.1 Prácticas generales: 
 
• El manual de bioseguridad debe estar disponible en cada sección del laboratorio, y 
todos los funcionarios deben conocerlo. El encargado de bioseguridad debe tener el 
registro de funcionarios capacitados. 
• Las indicaciones de bioseguridad se aplican a toda persona que ingrese al laboratorio 
(personal profesional y no profesional, alumnos, visitas, etc.) 
• Está prohibido fumar, comer, beber, guardar alimentos, maquillarse y manipular lentes 
de contacto en el laboratorio. 
• Jamás debe pipetearse con la boca. Está ampliamente demostrada la transmisión de 
patógenos por este mecanismo. 
• El personal debe estar calificado para las funciones que realiza. 
• Todas las superficies de trabajo deben limpiarse y desinfectarse diariamente y 
siempre que se produzca un derrame. 
• El personal de laboratorio debe utilizar uniforme de trabajo durante toda la jornada. 
• El área de trabajo debe mantenerse siempre limpia y ordenada. 
• El personal de laboratorio debe evitar acercarse las manos con o sin guantes a la 
cara, y en caso de utilizar el pelo largo, este debe mantenerse tomado durante toda la 
jornada. 
• El uso de elementos cortopunzantes como jeringas o debe limitarse a lo estrictamente 
necesario. Siempre debenutilizarse con precaución. Reemplazar el material de vidrio 
por plástico o material irrompible siempre que sea posible. 
• Se recomienda el uso de dispositivos mecánicos de pipeteo (pipetas automáticas) 
siempre que sea posible. 
• El material necesario para el trabajo seguro (guantes, EPP, cajas de bioseguridad, 
jabón, etc.) debe estar siempre disponible. 
• No está permitida la mantención de animales o plantas en el área del Laboratorio 
Clínico. 
 
5.5.2 Acceso limitado: 
 
• Los ingresos al laboratorio deben estar limitados con un letrero de riesgo biológico y 
“Acceso restringido”. 
• El ingreso al laboratorio debe estar limitado al personal de salud. 
• No deben ingresar niños. 
• Toda persona externa que ingrese al laboratorio debe justificar su entrada en 
recepción. 
• Las puertas y ventanas deben permanecer cerradas para mantener la adecuada 
contención biológica. 
 
 
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Figura 1: Símbolo de riesgo biológico. 
 
 
 
5.5.3 Delimitación de áreas: en cada sección se deben definir las áreas de trabajo, 
separadas por una marca visible, divididas en: 
 
Área limpia: No tiene contacto con material de riesgo, como muestras clínicas, tubos de 
centrifugación, placas de cultivo, etc. 
- El área de lavado de manos es un área limpia. 
- El área de escritorio es un área limpia. 
- El teléfono debe estar ubicado en un área limpia, y manejarse como tal (contestar 
sin guantes, luego de higiene de manos). 
 
Área contaminada: Tiene contacto con material de riesgo, y por tanto se debe utilizar 
guantes y elementos de protección personal según corresponda. Todas las áreas que 
tienen contacto con muestras clínicas, o que están expuestas a aerosoles infecciosos 
(centrífugas, áreas de agitación, etc.) son consideradas áreas contaminadas. 
 
5.5.4 Aplicar las precauciones estándar y el uso de elementos de protección personal: 
todo el personal de Laboratorio debe aplicar las precauciones estándar en todo momento, 
y utilizar los EPP cuando corresponda. 
 
5.5.5 Evitar la generación de aerosoles en el manejo de muestras biológicas, 
especialmente durante: 
 
• Centrifugación: Utilizar solamente tubos tapados, y colocar siempre tapa de seguridad 
de la centrífuga. 
• Uso del vórtex: siempre realizar el procedimiento con tubos tapados herméticos 
• Manejo de tubos: se recomienda esperar 30 segundos después de centrifugar o agitar 
(manualmente o en vórtex) un tubo antes de abrirlo, para reducir la cantidad de 
aerosoles. 
• Los procedimientos que involucran la manipulación de materiales infecciosos que 
pueden generar aerosoles deben llevarse a cabo dentro de un GBS (Laboratorio de 
Microbiología, Laboratorio de Koch, y Laboratorio de Biología Molecular). 
 
 
 
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5.5.6 Manejo correcto del material corto punzante: 
 
• Debe evitarse dentro de lo posible el uso de material de vidrio y reemplazarlo por 
material de plástico para evitar accidentes. 
• El material corto punzante incluye elementos como agujas, bisturíes, pipetas, material 
de vidrio y cualquier elemento cortante o con filo. 
• El operador es el responsable de la manipulación y eliminación del material. 
• Las agujas no deben doblarse, cortarse, romperse, ni recapsularse. Manipular lo 
menos posible antes de su eliminación. 
• No manipular directamente con las manos agujas o bisturí, usar pinza de remoción o 
dispositivos adecuados. 
• Eliminar sólo en reservorios destinados para este fin (caja de eliminación de 
cortopunzantes). Mantener las cajas en lugares accesibles y localizados en áreas 
inmediatas al uso. 
• Reemplazar los reservorios cuando estén hasta ¾ de su capacidad. 
• Al retirar caja, sellarla y dejarla en área sucia. 
• Mantener los reservorios separados del resto de los residuos. 
 
5.5.7 Todos los materiales potencialmente infecciosos deben ser colocados en recipientes 
resistentes, a prueba de fugas, durante la recolección, manipulación, almacenamiento y 
transporte dentro de la instalación. 
 
5.5.8 Descontaminación de rutina de los equipos del Laboratorio, así como después de 
derrames, salpicaduras o contaminación visible o potencial. 
La periodicidad y modo de descontaminación rutinaria debe ser establecida para 
cada equipo, y registrada en planilla de mantención local. 
Los derrames que involucren materiales infecciosos deben ser contenidos, 
descontaminados y limpiados por personal capacitado y equipado para trabajar con 
material infeccioso. 
Los equipos deben ser descontaminados antes de la reparación o mantenimiento, y 
antes de sacarlos del Laboratorio por traslado o eliminación. 
 
5.5.9 Los incidentes que pueden provocar la exposición a materiales infecciosos deben 
ser evaluados en forma inmediata y tratados de acuerdo al procedimiento descrito en el 
manual de bioseguridad. 
Todos estos incidentes deben ser reportados a la jefatura directa, para evaluación de 
acciones necesarias. 
Para la evaluación de cualquier exposición accidental a fluidos o material 
potencialmente infeccioso, revisar la Norma de Manejo de Exposición a Fluidos 
Corporales de Alto Riesgo Biológico, elaboradas por el Comité de IIH del Hospital. 
 
 
 
 
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5.5.10 El Gabinete de Bioseguridad (GBS) clase II debe ser utilizado siempre que: 
 
• Se realicen procedimientos con potencial creación de aerosoles infecciosos o 
salpicaduras sin elementos de protección personal adecuados. Estos pueden incluir 
pipeteado, centrifugación, molienda, mezcla, agitación, sonicado, abrir cajas o tubos 
de material infeccioso. 
• Se manipulen altas concentraciones o grandes volúmenes de agentes infecciosos 
(pueden centrifugarse en el laboratorio abierto utilizando cabezas de rotor selladas o 
vasos de centrífuga de seguridad). 
 
5.5.11 Instalaciones de Laboratorio (Barreras secundarias). 
 
• Cada laboratorio debe tener un lavamanos asignado. 
• El laboratorio debe estar diseñado de manera que pueda ser de fácil limpieza y 
descontaminación. No está permitido el uso de alfombras o cualquier elemento que 
dificulte el aseo. 
• El mobiliario del laboratorio debe ser capaz de soportar las cargas previstas según su 
uso. Los espacios entre las sillas, armarios, y el equipodeben ser accesibles para 
limpieza. 
- Las superficies deben ser impermeables al agua y resistentes al calor, solventes 
orgánicos, ácidos, álcalis y otras sustancias químicas. 
- Las sillas utilizadas en el trabajo de laboratorio deben estar cubiertas con material 
no poroso, fácil de limpiar y descontaminar. 
• Las ventanas al exterior deben permanecer cerradas. 
• La estación de lavaojos debe estar fácilmente disponible. 
 
5.6 Normas de bioseguridad en la utilización de equipos: 
 
5.6.1 Normas generales: 
 
• Los equipos y aparatos nunca deben colocarse en zonas de paso o pasillos. 
• Los aparatos con toma eléctrica deben ubicarse en zonas aisladas y no expuestas a 
humedad. 
• Las fuentes de calor (calentadores, termobloques, etc.), deben estar señalizadas para 
evitar quemaduras accidentales. 
• En la zona de trabajo no debe colocarse directamente material de escritorio ni libros, 
ya que el papel contaminado es de difícil esterilización o desinfección. 
 
5.6.2 Refrigeradores: 
 
• El mantenimiento programado, y la limpieza y orden sistemático de los aparatos 
reduce considerablemente los riesgos asociados a su utilización. 
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• No deben almacenarse cultivos de microorganismos patógenos por inhalación en 
recipientes que no estén convenientemente cerrados, especialmente si la cámara 
tiene un sistema de circulación de aire. 
• No deben almacenarse reactivos que contengan compuestos volátiles inflamables 
(éter etílico, por ejemplo) en neveras que no posean un sistema de protección 
antideflagración. En los aparatos de tipo doméstico que se utilizan en el laboratorio 
debe anularse la lámpara de la luz. 
• No deben almacenarse en un mismo equipo, reactivos o insumos junto con muestras 
clínicas o sus derivados. En caso necesario utilizar un contenedor específico 
EXCLUSIVO para muestras o elementos contaminados, rotulado para esto, con 
nombre visible y responsable. 
 
5.6.3 Congeladores: 
 
• Ubicar en lugar con poco tránsito, libre de riesgo de humedad o contaminación. 
• Identificar en ficheros o listas el contenido de lo almacenado. 
• El material potencialmente infeccioso debe colocarse en tubos o recipientes bien 
cerrados. No llenar completamente los contenedores, para evitar derrames por efecto 
del aumento de volumen tras la congelación. 
• Mantener limpio, ordenado, y libre de hielo. 
• Utilizar guantes para manipular el contenido. 
 
5.6.4 Estufas e incubadores: Realizar limpieza y desinfección periódica, para reducir los 
riesgos derivados de la contaminación accidental del personal del laboratorio. El traslado 
de placas o tubos hacia y desde las estufas debe realizarse utilizando EPP: guantes y 
pechera plástica. 
 
5.6.5 Autoclaves: 
 
• Los autoclaves deben poseer manómetro, termostato, válvula de seguridad, y sistema 
de desconexión rápido. La purga del vapor ha de realizarse a un recipiente estanco 
con agua, jamás directamente al exterior. 
• No deben usarse si no se conocen perfectamente todos los mandos y su fundamento. 
• Cada equipo debe contar con un programa de mantenimiento preventivo. 
• Usar EPP para su carga y descarga: guantes térmicos, pechera manga larga y 
antiparras o protección facial. 
• No abrir jamás si el manómetro no está en “0” y la purga no ha sido abierta. 
• El agua debe ser cambiada regularmente. 
 
5.6.6 Centrífugas: Los mayores riesgos derivan de la contaminación por los aerosoles 
generados durante la centrifugación de materiales biológicos y, en menor medida, de los 
traumatismos accidentales. Se recomienda: 
 
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• Cuando se centrifugue material biológico potencialmente infeccioso (todas las 
muestras clínicas) deben utilizarse tubos cerrados; la centrífuga debe disponer de 
rotores o cestillos de seguridad que protejan al operador de los posibles aerosoles. 
• Usar EPP al trabajar en el área de centrifugación: guantes, pechera plástica, 
mascarilla y protección ocular. 
• La rotura accidental de un tubo y su vertido en la cubeta debe ser comunicada 
inmediatamente al jefe directo, de forma que se proceda a la desinfección segura del 
aparato. No abrir inmediatamente la centrífuga, esperar 10 a 15 minutos antes de 
abrir, para permitir la decantación de aerosoles. 
• No se deben utilizar centrífugas antiguas que no posean sistema de cierre de 
seguridad, ni manipular éstas de forma que permitan su apertura mientras están en 
funcionamiento. 
• El equilibrado el equilibrado cuidadoso del rotor es fundamental para el uso seguro de 
ultracentrífugas. 
 
5.7 Transporte y recepción de muestras clínicas: 
 
• El transporte seguro de muestras clínicas hacia, desde y dentro del Laboratorio Clínico 
de be realizarse con precaución, con el objeto de evitar accidentes. 
• El tubo o frasco donde se recolecta la muestra se considera el contenedor primario, y 
éste se considera siempre contaminado, pues existe riesgo de contacto de su 
superficie externa con los fluidos del paciente. 
• Los contenedores para el transporte de muestras deben ser de plástico lavable, y cada 
Unidad que transporta muestras debe programar su aseo en forma periódica. 
• Para evitar derrames, los contenedores secundarios o terciarios se equiparán con 
gradillas de modo que estén los recipientes en posición vertical. 
• Los funcionarios no deben transportar tubos primarios en la mano. 
 
5.7.1. Transporte al interior del Laboratorio: 
 
• Las muestras clínicas al interior del Laboratorio deben transportarse en su contenedor 
primario (tubo o frasco) dentro de un contenedor o gradilla (contenedor secundario). Si 
se transporta una muestra junto con su orden clínica, ésta NO debe envolver el tubo o 
frasco primario, sino que debe permanecer fuera del contenedor con tapa, para evitar 
posible contaminación del papel en caso de derrame. 
• El personal debe utilizar guantes y pechera plástica para transportar las muestras 
dentro del Laboratorio en estas condiciones. 
 
5.7.2. Transporte dentro del Hospital – CDT: 
 
• Dentro del Hospital o CDT, las muestras clínicas deben transportarse en su 
contenedor primario (tubo o frasco) dentro de un contenedor termo aislante con cierre 
hermético (contenedor secundario). Las órdenes clínicas NO deben envolver el tubo o 
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evitar posible contaminación del papel en caso de derrame. 
• Los funcionarios deben utilizar guantes y pechera plástica al recibir muestras, y 
siempre se recomienda utilizar guantes para tomar los tubos o frascos primarios. 
 
5.7.3. Transporte fuera DEL Hospital – CDT: 
 
• El transporte de muestras fuera del recinto hospitalario requiere la utilización de tres 
contenedores, para proteger la muestra clínica, al funcionario que realiza el transporte, 
y el ambiente en caso de accidentes o derrames. 
 
- Las muestras utilizan como contenedor primario el tubo o frasco en el cual se 
obtuvo la muestra. Este debe ser de plástico y hermético. 
- El contenedor secundario en este caso es una bolsa plástica cerrada (hermética). 
- Como contenedor terciario se utiliza una caja hermética termo aislante. 
 
• La orden clínica o de laboratorio debe transportarse dentro del contenedor terciario, 
pero fuera de la bolsa plástica (contenedor secundario), para evitar contaminación del 
papel en caso de derrame. 
• El funcionario que realiza transporte de muestras fuera del recinto del Hospital – CDT 
debe estar capacitado en medidas de bioseguridad básicas y manejo de muestras 
biológicas. Esta capacitación la realizará el Laboratorio Clínico anualmente a todos los 
funcionarios del Laboratorio que transporten muestras fuera del Hospital. 
 
5.8 Precauciones para la recepción de muestras: 
 
El área de trabajo de recepción de muestras se considera como área contaminada, 
ya que existe contacto permanente con las muestras clínicas. 
 
5.8.1 Recomendaciones: 
 
• El personal que recibe muestras debe utilizar EPP durante su jornada de trabajo: 
guantes y pechera plástica. 
• Las muestras deben recibirse sobre un mesón seguro, liso (para evitar caídas o 
derrames de las muestras) y de superficie lavable, que debe mantenerse despejado 
para permitir un correcto aseo y desinfección periódica. 
• No deben recibirse muestras que vengan abiertas, derramadas, o en jeringa con 
aguja. 
• Delimitar un área de escritorio limpia, separada del área que tiene contacto con las 
muestras clínicas. 
• El teléfono debe estar ubicado en el área limpia y debe contestarse con manos limpias 
(sin guantes, después de realizar higiene de manos). 
• El traslado de tubos primarios a las diversas áreas de trabajo debe realizarse según la 
normativa. 
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• No deben almacenarse alimentos, comer ni beber en el área de recepción. 
 
5.9 Precauciones para la digitación de muestras: 
 
La zona de digitación de muestras se considera área limpia por lo que no debe estar 
en contacto con muestras clínicas. Ésta zona debe estar separada del área de separación 
y distribución de muestras. 
 
5.9.1 Recomendaciones: 
 
• El personal no requiere uso de EPP para digitar. 
• No llevar muestras clínicas (tubos primarios) al área de digitación. Si se requiere 
verificar información del tubo primario, revisar el tubo en el mesón de separación y 
distribución de muestras, utilizando guantes. Retirarse los guantes y realizar higiene 
de manos antes de volver a digitar. 
• El área de separación y distribución de muestras debe ser segura, lisa y de superficie 
lavable. Debe mantenerse despejada para permitir un correcto aseo y desinfección 
periódica. 
• El traslado de tubos primarios a las diversas áreas de trabajo debe realizarse según la 
normativa. 
• No deben almacenarse alimentos, comer ni beber en el área de digitación. 
 
5.10 Precauciones específicas del área de lavado de material: 
 
El área de lavado de material se considera como área sucia o contaminada, ya que 
existe contacto permanente con muestras clínicas, residuos de muestras, cultivos, etc. 
 
5.10.1 Recomendaciones: 
 
• El personal del área de lavado debe utilizar EPP para el lavado de material: guantes 
de goma largos, pechera plástica y protector facial o mascarilla más antiparras. 
• El área de lavado debe ser exclusiva para esta función. No deben almacenarse 
reactivos o muestras clínicas. La puerta debe mantenerse cerrada para mantener una 
separación real del resto del Laboratorio. 
• Todo el material contaminado debe descontaminarse por autoclavado antes de ser 
lavado y reutilizado. 
• El personal debe tener precaución en la manipulación de residuos para evitar los 
accidentes con exposición a fluidos. 
• Delimitar un área limpia, donde se encuentre el lavamanos y dispositivo de alcohol-gel. 
El área de secado de material debe ubicarse dentro del área limpia. 
• No deben almacenarse alimentos, comer ni beber en el área de recepción. 
• Los funcionarios deben retirarse los EPP y realizar higiene de manos antes de salir del 
área de lavado. 
 
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5.11Manipulación de desechos en el laboratorio: 
 
Los residuos producidos en el laboratorio deben manejarse según la normativa 
nacional (Decreto REAS: Reglamento Sobre Manejo de Residuos de Establecimientos de 
Atención de Salud) y local (Plan de Manejo de Residuos Hospitalarios del Hospital San 
Juan de Dios, Resolución Exenta 3368 del 31 de Diciembre de 2007 ). 
 
5.11.1 Clasificación de REAS (residuos de atención en salud): 
 
• Residuos peligrosos (Decreto supremo Nº 148, de 2003, del Ministerio de Salud): 
son aquellos residuos que presentan una o más características de peligrosidad 
- Toxicidad Aguda: Causa daño con exposición breve o única. Ej.: cianuro de 
potasio, warfarina, tetraóxido de osmio, etc. 
- Toxicidad Crónica: Causa efectos adversos a largo plazo, de efecto cancerigeno, 
mutágeno, acumulativo. Ej.: metanol, mercurio, acetona, formaldehído, etc. 
- Toxicidad Extrínseca: Capacidad de un residuo de dar origen, a través de su 
eliminación, a una o más sustancias tóxicas agudas o tóxicas crónicas. Ej.: 
baterías de níquel, cromo, cadmio, etc. 
- Inflamabilidad: Capacidad para iniciar una combustión, ya sea gas, líquido o 
sólido cuyo punto de inflamación sea menor a 61º C. Ej.: acetona, etanol, metanol, 
etc. 
- Reactividad: Capacidad del residuo para reaccionar químicamente con otro, por 
ejemplo generando gases tóxicos en contacto con el agua. 
- Corrosividad: Un residuo tiene la característica de corrosividad si es acuoso y 
tienen un PH inferior o igual a 2 (muy ácido) o mayor o igual a 12,5 (muy básico), o 
si es un líquido capaz de corroer metales. Ej.: ácido sulfúrico, acido clorhídrico, 
etc. 
 
• Residuos radiactivos de baja intensidad: Son aquellos residuos contaminados con 
sustancias radiactivas. 
 
• Residuos especiales: Son aquellos residuos sospechosos de contener agentes 
patógenos en cantidades suficientes para causar enfermedad a un huésped. 
- Cultivos y muestras almacenadas: Placas o tubos de cultivosy sus derivados, 
residuos de cultivos, muestras clínicas almacenadas y cepas de agentes 
infecciosos de laboratorio, vacunas. 
- Residuos patológicos: Restos biológicos, tejidos o partes del cuerpo humano que 
hayan sido removidos incluyendo fluidos corporales. 
- Sangre y productos derivados: Plasma, suero y demás componentes sanguíneos, 
incluyendo gasas y algodones saturados en sangre o cualquiera de sus 
derivados. Se excluyen de esta categoría la sangre y productos derivados 
provenientes de banco de sangre que luego de ser analizados se haya 
demostrado ausencia de riesgos para la salud. 
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- Cortopunzantes: Residuos resultantes del trabajo diario capaces de provocar 
cortes o punciones. Ej: pipetas Pasteur, agujas de hemocultivos, portaobjetos y 
demás cristalería. 
- Residuos de animales. Cadáveres o restos principalmente originados en 
investigaciones. 
 
• Residuos sólidos asimilables : Todos aquellos residuos que por sus características 
físicas, químicas y microbiológicas pueden ser entregadas a la recolección municipal y 
dispuestos en un relleno sanitario, se incluyen en esta categoría las gasas y 
algodones no saturados con sangre o cualquier de sus derivados. 
 
El Laboratorio Clínico produce residuos sólidos asimilables, especiales (cultivos y 
muestras clínicas, cepas de agentes infecciosos, residuos patológicos, sangre y productos 
derivados, y cortopunzantes) y una pequeña cantidad de residuos peligrosos (acetona, 
baterías, etanol, tinciones ácidas y básicas, entre otros). 
 
5.11.2 Recomendaciones: 
 
• Cada sección del Laboratorio debe tener los contenedores adecuados para los 
residuos que produce. 
• El personal de Laboratorio debe conocer los tipos de residuos que produce su trabajo, 
y eliminarlos en los contenedores apropiados para cada tipo de residuo. 
• Es muy importante tener precaución en eliminar correctamente los residuos 
cortopunzantes, para evitar accidentes durante la recolección o lavado del material. 
• En caso de mezclarse residuos de diferentes categorías estos deberán ser manejados 
de acuerdo al protocolo del residuo de mayor peligrosidad. 
• El manejo de cada tipo de desecho se especifica en la tabla Nº 4. 
• La recolección de residuos de los laboratorios debe hacerse a lo menos diariamente, 
sin mezclar los distintos tipos de residuos o contenedores. Los residuos no deben 
mantenerse más de 24 horas en las secciones del Laboratorio Clínico. Además deben 
retirarse cada vez que alcanzan 3/4 de su capacidad. 
• El personal que recolecta o traslada residuos debe utilizar EPP: guantes y pechera 
plástica. 
• El traslado de residuos dentro y fuera del laboratorio debe realizarse dentro de un 
contenedor cerrado. 
• Las cajas de material cortopunzante deben recolectarse separadas del resto de los 
contenedores, para no aplastarlas o presionarlas. Deben mantenerse siempre en un 
espacio adecuado, delimitado e identificado para evitar accidentes. 
 
 
 
 
 
 
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Tabla Nº 4. Eliminación de desechos en el Laboratorio Clínico. 
 
TIPO DE 
DESECHO CONTENEDOR DESTINO 
Especial 
• Amarillo: secciones del laboratorio 
• Bolsas rojas con logo (empresa 
externa): sección de lavado de 
material y zona de almacenamiento 
transitorio. 
Incineración o autoclavado por 
empresa externa. 
Peligroso Rojo Según normativa específica 
Asimilable a 
domiciliario 
Blanco, gris o negro Recolección municipal. 
Cortopunzante Contenedor rígido específico para 
material cortopunzante 
Incineración por empresa 
externa. 
Reciclable limpio Blanco, gris o negro o caja de reciclaje Recolección municipal o 
Servicio de reciclaje. 
Reciclable 
contaminado * 
• Amarillo: secciones del laboratorio 
• Bolsas amarillas con logo (empresa 
externa): sección de lavado de 
material y zona de almacenamiento 
transitorio. 
Autoclave de material 
contaminado. 
* Cualquier material de vidrio o metal o material autoclavable que tenga contacto con sangre, 
fluidos corporales, cultivos microbiológicos o de Koch. 
 
5.11.3 Contenedores: 
 
Los contenedores son los recipientes o envases donde se almacenan los residuos 
antes de su eliminación. Deben cumplir con ciertas características: 
 
• Portátiles. 
• Material resistente. 
• Bordes romos y superficies lisas. 
• Estar señalados con el logo correspondiente a cada tipo de residuo. 
• Estar ubicados en zonas específicas e identificadas (dentro del área sucia). 
• Deben tener tapa de cierre ajustada. 
• Deben retirarse en forma programada y en forma extraordinaria siempre que sea 
necesario (al llegar al nivel de llenado). 
• Deben cumplir con los estándares de color y rotulación (símbolo) que se indican en el 
reglamento nacional (figura Nº 2). 
• El tamaño debe ser tal que una vez llenos puedan ser manipulados cómodamente por 
una persona. 
• Los contenedores para residuos cortopunzantes deben ser rígidos, impermeables, 
resistentes a caídas, resistentes a cortes o punzonamientos. Estos recipientes NO 
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DEBEN LLENARSE MÁS DE 3/4 DE SU CAPACIDAD para permitir un cierre 
adecuado. 
• Si se utilizan bolsas, éstas deben ser resistentes, opacas y resistentes al residuo 
destinado. Las bolsas no deben sobrepasar su capacidad de llenado. 
 
Figura 2 . Tipos de contenedores según categoría del residuo 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
5.12 Conducta frente derrames y accidentes: 
 
• Frente a un derrame o accidente el personal de Laboratorio Clínico está 
especialmente expuesto a riesgos biológicos, pero también pueden ocurrir accidentes 
con riesgos físicos o químicos. 
• El funcionario que sufre un accidente debe mantener la calma, y avisar siempre del 
accidente (independiente de la gravedad del mismo) a su jefe directo, para la 
evaluación de los riesgos sufridos. 
 
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En caso de derrame o quiebre de tubos con fluidos corporales u otro material 
contaminado, deben tomarse inmediatamente las siguientes medidas: 
 
• Cubrir la zona del derrame con papel absorbente. 
• Empapar el papel absorbente con solución de hipoclorito de sodio al 0,5% (dilución 
1:10 de cloro líquido). 
• Avisar para evitar flujo de personas al sitio del derrame. 
• Esperar 10 minutos, para que decantes los aerosoles potencialmente infecciosos. 
• Recoger el papel y los desechos. Colocarse guantes y elementos de protección 
personal antes de acercarse al sito del evento. Si hay desechos cortopunzantes, no 
recogerlos directamente con la mano. 
• Limpiar la superficie con alcohol o con solución de hipoclorito de sodio de uso 
corriente antes de retomar el trabajo. 
 
En caso de accidente con exposición del funcionario a fluidos corporales de riesgo 
(incluidos los accidentes cortopunzantes), deben tomarse inmediatamente las siguientes 
medidas: 
 
• En caso de corte o punción, lavar con abundante agua y jabón la zona de la lesión. 
Compresión en caso de hemorragia. 
• En caso de exposición de mucosas o piel no indemne, lavado por arrastre con 
abundante agua o solución salina estéril. 
• Comunicar al jefe directo del momento. Éste realizará la primera evaluación y 
derivación del funcionario expuesto. Procedimiento: 
Informar al funcionario 
• Tomar exámenes basales (Ag VHB, Ac anti VHC y serología VIH) con consentimiento 
informado. Utilizar 2 tubos tapa verde. Registrar en la orden de examen “Accidente 
Cortopunzante”. 
• Si la fuente es conocida (accidente en toma de muestra o accidente con tubo primario 
conocido) informar y tomar exámenes a la fuente si está disponible (Ag VHB, Ac anti 
VHC y serología VIH) con consentimiento informado. Utilizar 2 tubos tapa verde. 
Registrar en la orden de examen “Accidente Cortopunzante”. 
• Llenar los formularios correspondientes. 
• En horario hábil, el funcionario debe dirigirse (después de realizado todo lo anterior, 
con los formularios completos) a la Unidad de Calidad y Seguridad del Paciente. 
• En horario inhábil, el funcionario debe acudir a la UCI médica, para la evaluación de 
indicación de terapia antirretroviral. 
• El seguimiento del funcionario se realizará según protocolo, por la Unidad de 
Infectología y Unidad de Calidad y Seguridad del Paciente. 
• Para evaluación del riesgo y detalles, ver Norma de Infecciones Intrahospitalarias de 
Manejo de accidentes con exposición a fluidos corporales de alto riesgo biológico 
(disponible en la intranet). 
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• En caso de otro tipo de accidentes (caídas, golpes, accidentes de riesgo químico o 
físico, etc.), seguir las indicaciones de la Unidad de Prevención de Riesgos. 
 
 
6. Flujograma : N/A 
 
 
7. Indicador y método de evaluación: 
 
7.1 Indicadores: 
 
 
Uso adecuado de elementos de protección personal 
Objetivo Evaluar el uso de elementos de protección personal (EPP) ante 
situaciones de exposición a fluidos. 
Fórmula 
Nº de funcionarios que usan adecuadamente los EPP x 100 
 Nº total de funcionarios evaluados 
Rango de Desempeño 
Rango Máx = 100 % 
Rango Mín = 80% 
Valores de 
Análisis 
Excelente: 95 - 100% 
Aceptable: 80 – 94% 
Deficiente: < 80% 
Fuente de Datos Pauta de evaluación Frecuencia Semestral 
Niveles de Aplicación Laboratorio Clínico CDT – Hospital San Juan de Dios 
 
Cumplimiento de las medidas generales de biosegurid ad 
Objetivo Evaluar el cumplimiento de las medidas de bioseguridad en el 
Laboratorio clínico. 
Fórmula 
Nº de pautas con cumplimiento ≥ 90% x 100 
 Nº total de pautas aplicadas 
Rango de Desempeño 
Rango Máx = 100 % 
Rango Mín = 80% 
Valores de 
Análisis 
Excelente: 95 - 100% 
Aceptable: 80 – 94% 
Deficiente: < 80% 
Fuente de Datos Pauta de evaluación Frecuencia Semestral 
Niveles de Aplicación Laboratorio Clínico CDT – Hospital San Juan de Dios 
 
 
 
 
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7.2 Fuente de registro y evaluación: 
 
• El cumplimiento de las medidas de Bioseguridad se realizará en forma anual el año 
2010 y semestral desde el 2011, mediante la aplicación de una pauta de supervisión. 
• Se aplicarán un número suficiente de pautas para cubrir al 10% del personal del 
Laboratorio Clínico en cada evaluación. Las evaluaciones las realizarán los mismos 
funcionarios del Laboratorio Clínico, coordinados por Encargado de Bioseguridad y 
Encargado de Calidad. 
• Los resultados serán evaluados por la jefatura del Laboratorio y los encargados de 
Bioseguridad y de Calidad. 
• De acuerdo a los resultados obtenidos en la evaluación, se planificarán medidas de 
intervención atingentes. 
 
 
8. Distribución del documento: 
 
8.1 Laboratorio clínico CDT – Hospital San Juan de Dios. 
8.2 Unidad de Toma de Muestras. 
8.3 Unidad de Calidad y Seguridad del Paciente. 
 
9. Referencias bibliográficas: 
 
9.1 Laboratory biosafety manual. Third edition. World health organization. Geneve, 2004. 
http://www.who.int/ 
9.2 Guideline for Isolation Precautions: Preventing Transmission of Infectious Agents in 
Healthcare Settings. CDC 2007. 
9.3 García P., Quiroga T. Manual de Bioseguridad de Laboratorios. Pontificia Universidad 
Católica de Chile. 2da Edición 2008. 
9.4 Manual de Procedimientos Accidentes del Trabajo y Enfermedades Profesionales de 
los y las funcionarias del Servicio de Salud Metropolitano Occidente, Ley Nº 16.744, 
Unidad Salud Ocupacional, 2000. 
9.5 Manual de Seguridad en Laboratorios, Asociación Chilena de Seguridad, 2002. 
9.6 Seguridad en el Laboratorio de Microbiología Clínica. Sociedad Española de 
Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica, 2000. 
9.7 Decreto REAS: Reglamento Sobre Manejo de Residuos de Establecimientos de 
Atención de Salud. MINSAL 2009. 
 
10. Anexos: 
 
10.1 Evaluación cumplimiento Uso de elementos de protección personal. 
10.2 Evaluación del cumplimiento de medidas de bioseguridad. 
 
 
 
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Vigencia: Diciembre 2013Anexo 1 : Evaluación cumplimiento uso de elementos de protección personal. 
 
 
Pauta de evaluación cumplimiento uso de elementos d e protección personal 
 
 
Fecha de la evaluación: ___________________________________________________ 
Nombre de la sección evaluada: ____________________________________________ 
Lugar de la sección donde se realiza la evaluación: _____________________________ 
Estamento Funcionario evaluado: 
Profesional _____ Técnico _____ Administrativo _____ Auxiliar _____ 
Nombre del evaluador: ___________________________________________________ 
 
 
Actividad Cumple No Cumple 
No 
Aplica 
Uso de guantes de procedimiento en manipulación de 
muestras clínicas y tubos primarios. 
 
Uso de guantes para la toma de muestra de sangre venosa. 
Uso de pechera plástica para la manipulación de muestras 
clínicas (siembra microbiológica, dilución, agitación, 
centrifugación, traspaso de muestras). 
 
Uso de protección ocular para procedimientos que generen 
aerosoles (centrifugación, uso del vórtex). 
 
Uso de mascarilla para procedimientos que generen 
aerosoles (centrifugación, uso del vórtex). 
 
Uso de guantes largos de goma, pechera y protección ocular 
para el lavado de material. 
 
 
Observaciones: __________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________ 
 
 
 
 
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Anexo 2: Evaluación del cumplimiento de medidas de bioseguridad. 
 
 
Pauta evaluación cumplimiento medidas de biosegurid ad 
 
 
Fecha de la evaluación: ____________________________________________________ 
Nombre de la sección evaluada: _____________________________________________ 
Lugar de la sección donde se realiza la evaluación: _____________________________ 
Estamento Funcionario evaluado: 
Profesional _____ Técnico _____ Administrativo _____ Auxiliar _____ 
Nombre del evaluador: ____________________________________________________ 
 
Actividad Cumple No Cumple 
No 
Aplica 
Mantención de puertas y ventanas cerradas. 
Delimitación de áreas limpia y contaminada correctamente 
rotulada. 
Cumplimiento de la separación de áreas. 
Área de lavado de manos con jabón y papel disponible (N/A 
para secciones que sólo usan alcohol gel). 
 
Conocimiento de la conducta a tomar frente a derrames. 
Caja de desecho de material cortopunzante asequible en el 
puesto de trabajo cuando corresponda. 
Llenado de la caja de desecho de material cortopunzante no 
sobrepasa nivel indicado. 
 
Uso de contenedor rotulado para desechos especiales. 
Ausencia de objetos personales en el área de trabajo. 
Ausencia de alimentos u objetos para consumir alimentos en el 
área de trabajo. 
 
Observaciones: __________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
________________________________________________________________________
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