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XIX CONGRESO SEM DE MICROBIOLOGÍA DE LOS ALIMENTOS 138 Capacidad de la microbiota oral humana para producir compuestos odorantes del vino a partir de precursores no odorantes de la uva Carolina Muñoz-González, Carolina Cueva, M.Ángeles Pozo-Bayón y M.Victoria Moreno-Arribas Instituto de Investigación en Ciencias de la Alimentación (CIAL), CSIC-UAM, CEI UAM+CSIC, España, carolina.cueva@csic.es Los precursores glicosídicos del aroma son compuestos inodoros que se encuentran de forma natural en las uvas y que representan un reservorio natural de moléculas odorantes en el vino. Debido a que el consumo de alimentos se inicia en la cavidad oral, el procesamiento de estos compuestos en la boca puede ser un factor importante que podría influir en la percepción del aroma del vino. El objetivo de este trabajo ha sido evaluar la capacidad de bacterias presentes en la cavidad oral para hidrolizar precursores glicosídicos de la uva y liberar las correspondientes agliconas aromáticas empleando ensayos in vitro y ex vivo. Para ello, en un primer experimento se evaluó el efecto de nueve bacterias representativas de la microbiota oral. Posteriormente, se llevó a cabo el mismo procedimiento experimental, pero utilizando el conjunto de la microbiota oral humana aislada de la saliva de voluntarios sanos. Las agliconas odorantes fueron extraídas y analizadas por HS-SPME-GC/MS. Los resultados mostraron la capacidad de los microorganismos orales para hidrolizar precursores glicosídicos de aroma liberando los correspondientes terpenos, norisoprenoides, derivados bencénicos, etc, que son moléculas caracterizadas por presentar bajos umbrales de olfacción y notas aromáticas positivas en el vino. Se comprobó que la actividad hidrolítica es bacteria-dependiente y está sometida a una gran variabilidad inter-individual. En conjunto, estos hallazgos sugieren que la microbiota oral humana podría desempeñar un papel importante en la percepción del aroma retronasal durante el consumo de vino. INTRODUCCIÓN Los precursores glicosídicos del aroma son compuestos inodoros que se encuentran de forma natural en las uvas y que representan un reservorio natural de moléculas odorantes en el vino. Debido a que el consumo de alimentos se inicia en la cavidad oral, algunos parámetros fisiológicos, como son la composición de la saliva y de la microbiota oral, podrían influir en el procesamiento de estos compuestos, modificando la percepción del aroma del vino. De hecho, estudios recientes han comprobado que microorganismos anaerobios de la cavidad oral pueden hidrolizar precursores cisteínicos azufrados presentes en algunas frutas y verduras para liberar los correspondientes tioles volátiles, moléculas con gran impacto aromático (Starkenmann y col., 2008). El objetivo de este trabajo ha sido evaluar la capacidad de bacterias presentes en la cavidad oral para hidrolizar precursores glicosídicos de la uva y liberar las correspondientes agliconas aromáticas empleando ensayos in vitro y ex vivo. MATERIAL Y MÉTODOS En primer lugar, se procedió a la obtención del extracto de uva, siguiendo la metodología descrita por Rodríguez- Bencomo y col. (2013). Este extracto se utilizó para llevar a cabo ambos tipos de ensayos, in vitro y ex vivo: Ensayos in vitro. Para evaluar la biotransformación de precursores glicosídicos del aroma por bacterias orales se utilizó el método de microdilución descrito por Cueva y col. (2010). Las bacterias utilizadas así como las condiciones de incubación se muestran en la Tabla 1. Tabla 1: Bacterias orales utilizadas en el estudio. Microorganismos Condiciones crecimiento Aerobios Staphylococcus aureus ATCC 25923 Enterococcus faecalis V583 Anaerobios facultativos Streptococcus sanguinis DSMZ 20567 Streptococcus oralis CECT 907 Streptococcus mutans CECT 479 Actinomyces naeslundii CECT 806 TSB, 24 h, 37ºC Modified TSB, 24h, 37ºC BHI, 24 h, 37ºC BHI, 24 h, 37ºC Modified BHI, 48 h, 37ºC Anaerobios Granulicatella adiascens DSMZ 9848 Veillonella dispar DSMZ 20735 Fusobacterium nucleatum DSMZ 15643 WC, 24-48 h, 37ºC Ensayos ex vivo. Para conocer el papel del conjunto de la microbiota oral en la biotransformación de precursores glicosídicos del aroma, se recogieron muestras de saliva de 3 donantes sanos, que fueron incubadas durante 72 h, tanto en condiciones aerobias como anaerobias, con el extracto de precursores de aroma. Análisis. Las agliconas odorantes liberadas en ambos ensayos se aislaron mediante microextracción en fase sólida (HS-SPME), y después se analizaron por cromatografía de gases acoplada a espectrometría de masas (GC-MS). A los resultados obtenidos se les aplicaron diferentes tratamientos estadísticos, que incluían el análisis de componentes principales (PCA) y el ANOVA de 3 vías. XIX CONGRESO SEM DE MICROBIOLOGÍA DE LOS ALIMENTOS 139 RESULTADOS Y DISCUSIÓN La capacidad de la microbiota oral humana para hidrolizar precursores glicosídicos de un extracto de uva se ha llevado a cabo utilizando 2 aproximaciones. En la primera se han utilizado bacterias orales representativas, mientras que en la segunda se ha tenido en cuenta el conjunto de la microbiota oral. Ensayos in vitro con bacterias orales. Los resultados obtenidos mostraron que, en general, todas las bacterias orales fueron capaces de hidrolizar los precursores glicosídicos, liberando las correspondientes agliconas aromáticas pertenecientes a distintas familias químicas, que incluían terpenos, derivados bencénicos y alcoholes (resultados no mostrados). Además, como se puede observar en la Figura 1, la liberación de agliconas fue dependiente tanto del tipo de bacteria como de sus condiciones de incubación. En concreto, la PC1 está fuerte y negativamente correlacionada con la liberación de terpenos como el linalool, lo que indica que los microorganimos situados a la izquierda de esta componente, como son A. naeslundii y la mayoría de los estreptococos, fueron los mayores liberadores de este compuesto volátil, relacionado con el aporte de notas florales positivas en los vinos. Este hecho, unido a que estos microrganismos son los primeros colonizadores en la formación del biofilm, podría influir en la percepción del aroma del vino durante el consumo. PC1 (62,26%) P C 2 (1 5, 62 % ) E.faecalis E.faecalis S. aureus S. aureus S. mutans S. mutans S. oralis S. oralis S. sanguinis S. sanguinis A. naeslundii A. naeslundii G. adiascens G. adiascens V. disparV. dispar F. nucleatumF. nucleatum -2,5 -2,0 -1,5 -1,0 -0,5 0,0 0,5 1,0 1,5 -2,0 -1,5 -1,0 -0,5 0,0 0,5 1,0 1,5 2,0 2,5 Aerobes Facultative anaerobes Anaerobes Figura 1: Análisis de componentes principales (PCA) llevado a cabo con los datos de las agliconas liberadas por diferentes bacterias orales a partir de los glicósidos de uva. Ensayos ex vivo con microbiota oral. Los resultados obtenidos con el conjunto de la microbiota confirmaron los obtenidos en los ensayos in vitro, esto es, la liberación de compuestos volátiles a partir de los precursores glicosídicos se produjo tanto en las muestras incubadas en condiciones aerobias como anaerobias. Por otro lado, se comprobó que la liberación del aroma era dependiente del tiempo y tipo de incubación (aerobias/anaerobias), y además estaba sujeta a una gran variabilidad interindividual. A modo de ejemplo, en la Figura 2 se muestra la liberación del linalool. 0 500000 1000000 1500000 2000000 2500000 0 2 24 72 L in ao ol Incubation time (h) Aerobic conditions Individual 1 Individual 2 Individual 3 0 500000 1000000 1500000 2000000 2500000 0 2 24 72 L in ao ol Incubation time (h) Anaerobic conditions Individual 1 Individual 2 Individual 3 Figura 2: Linalool producido a diferentes tiempos (áreas de picos absolutos) tras la incubación de saliva con precusores glicosídicos de uva en condiciones aerobias y anaerobias. Enconjunto, estos resultados sugieren que la microbiota oral humana podría desempeñar un papel importante en la percepción del aroma retronasal durante el consumo de vino. BIBLIOGRAFÍA Cueva, C., Victoria Moreno-Arribas, M., Martin-Alvarez, P.J., Bills, G., Vicente, M.F., Basilio, A., Lopez Rivas, C., Requena, T., Rodriguez, J.M., Bartolome, B. 2010, Antimicrobial activity of phenolic acids against commensal, probiotic and pathogenic bacteria. Res. Microbiol., 161:372- 382. Li, J., Helmerhorst, E.J., Leone, C.W., Troxler, R F., Yaskell, T., Haffajee, A.D., Socransky, S.S., Oppenheim, F.G. 2004, Identification of early microbial colonizers in human dental biofilm. J. Appl. Microbiol., 97:1311-1318. Rodriguez-Bencomo, J.J., Selli, S., Muñoz-Gonzalez, C., Martin- Álvarez, P.J., Pozo-Bayón, M.A. 2013, Application of glycosidic aroma precursors to enhance the aroma and sensory profile of dealcoholised wines. Food Res. Int., 51:450-457. Starkenmann, C., Le Calve, B., Niclass, Y., Cayeux, I., Beccucci, S., Troccaz, M. 2008, Olfactory Perception of Cysteine-S- Conjugates from Fruits and Vegetables. J. Agr. Food Chem., 56:9575-9580. A. naeslundii E. faecalis A. naeslundii E. faecalis S. aureus S. aureus S. mutans S. sanguinis S. sanguinis Aerobios Anaero. facultativos Anaerobios G. adiascens S. mutans S. oralis S. oralis G. adiascens F. nucleatum V. dispar PC1 (62,26%) P C 2 (1 5, 62 % ) Condiciones aerobias Condiciones anaerobias Tiempo incubación (h) Tiempo incubación (h) Li na lo ol Li na lo ol Individuo 1 Individuo 2 Individuo 3 Individuo 1 Individuo 2 Individuo 3 2500000 2000000 1000000 1500000 500000 0 2500000 200000 1000000 1500000 500000 0 0 2 24 72 0 2 24 72
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