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Importancia del control de enfermedades en los cultivos de camarones. BOLETÍN#28 EDICIÓN JULIO 2022 Silvia Medranda, Jefe de laboratorio de servicios acuícolas Cesar Molina, Gerente de investigación y desarrollo Karina Briones, Gerente de Calidad TOMO I El enfoque de este artículo es proporcionar información técnica, sobre los análisis de laboratorio y su importancia en el control sanitario de los cultivos. Litopenaeus vannamei, más conocido como camarón blanco, es considerado como una especie de alto valor comercial y la más produ- cida en todo el mundo, principalmente por su fácil adaptación a diversas condiciones ambientales (Granda, 2015). Sin embargo, durante los últimos años la activi- dad camaronera se ha visto afectada por diver- sos factores, entre ellos el aumento de la densi- dad de siembra y el deterioro del control de los parámetros productivos, esto a su vez provo- cando el desarrollo desenfrenado de aparición de enfermedades y la proliferación de nuevas patologías que perjudican directamente al rendimiento de la producción camaronera (Mo- rales-Covarrubias et al., 2011). La frecuencia y las diversas formas en que surgen estas enfermedades dentro del cultivo nos impulsan a buscar nuevas alternativas para diagnosticar y mejorar la producción acuícola. El incremento en la incidencia de los brotes infecciosos y su impacto en la producción ha dado lugar al desarrollo gradual de diversas técnicas diagnósticas (Prieto y Rodríguez, 1993; Lightner, 1996), las cuales han respondi- do a las necesidades específicas del momento de su implementación. Así, de procedimientos básicos, se ha ido evolucionando hacia ensa- yos diagnósticos más rigurosos y específicos, lo cual ha facilitado el abordaje de los eventos infecciosos, siendo común la combinación de técnicas (Lightner, 1996; Cuéllar-Anjel, 2008). Entre estas, se tienen técnicas y procedimien- Litopenaeus vannamei tos para el análisis clínico y en fresco, pruebas microbiológicas, histopatológicas, de bioensayo, uso de anticuerpos, hibridación in situ, inmunohis- toquímica y las técnicas moleculares de PCR (Bell y Lightner, 1988; Prieto y Rodríguez, 1993; Light- ner, 1996; Morales-Covarrubias, 2013; OIE, 2018). 1. Introducción Resultados de muestreos de camarones provenientes de granjas ubicadas en El Oro y Guayas. Existen algunas enfermedades cuyo monitoreo es de gran relevancia durante el periodo de cultivo de camarón, su importancia radica el potencial de interferir en el desarrollo estable del crustáceo, retrasando el ciclo de producción y la cadena de comercialización a diferentes niveles. Algunos de los eventos causados por enfermedades han sido asociados con cambios ambientales o estacio- nales, tales como la transición frío-calor y viceversa, lo que ocasiona estrés y susceptibilidad a diversas enfermedades (Romero, 2017). Dentro de las enfermedades que presentan un riesgo sanitario en Ecuador y en el mundo, debido a su frecuencia y naturaleza del agente etiológico son: Baculovirosis (BP), microsporidios hepa- topancreática causada por Enterocytozoon hepatopenaei (EHP), Necrosis aguda del hepa- topáncreas (AHPND), parvovirus hepatopancreático (HPV), Virus de la necrosis infecciosa hipodérmica y hematopoietica (IHHNV), necrosis del hepatopáncreas (NHP), nodavirus de penaeus vannamei (PvNV), Virus de Taura (TSV), mancha blanca (WSSV) y eventos causados por Vibriosis (Varela-Mejías y Peña-Navarro, 2017) Monitorear la salud de los camarones ayuda a la detección temprana y el establecimiento de protocolos y procedimientos que ayuden a evitar infecciones y erradicar las enfermedades. Figura 1. Crecimientos bacterianos en Agar TCBS en diferentes zonas de El Oro. Crecimiento de bacterias en Agar TCBS - Zonas de El Oro Huaquillas Jambelí Las Huacas Pagua Pongalillo Santa Rosa Tendales TCBS Col. Amarillas TCBS Col. Verdes 1.40E+05 1.20E+05 1.00E+05 8.00E+04 6.00E+04 4.00E+04 2.00E+04 0.00E+00 2. Monitoreo de patógenos en camaroneras de Guayas y El Oro Figura 2. Crecimientos bacterianos en Agar TCBS en diferentes zona del Guayas Figura 3. Incidencias de IHHNV, NHP y WSSV en diferentes zonas de Guayas. La figura 1 muestra los crecimientos bacterianos en Agar TCBS (presuntivo para Vibrios) en diferen- tes zonas de El Oro, donde Ponguillo y Santa Rosa resultan con alta presencia de colonias amarillas y verdes, seguido están Pagua y Tendales con colonias verdes, en el primer semestre del 2022. La figura 2 muestra los crecimientos bacterianos en Agar TCBS (presuntivo para Vibrios) en dife- rentes zonas de Guayas, donde Chongón, El Morro y Zafando resultan con altos aumentos de colonias amarillas; Chongón y Playas presentan incremento colonias verdes, en el primer semestre del 2022. La figura 3 se observan los resultados ponderados de las muestras analizadas en el primer semes- tre del 2022 correspondientes a las diferentes zonas de Guayas; donde la mayor incidencia de IHHNV se encontró en Durán y el Golfo (< 25%), NHP (< 14%) y WSSV (11%), seguido por Puná y Sabana Grande. 6,00E+05 5,50E+05 5,00E+05 4,50E+05 4,00E+05 3,50E+05 3,00E+05 2,50E+05 2,00E+05 1,50E+05 1,00E+05 5,50E+04 0,00E+00 A ya la n B al ao C hi co C ho ng ón C hu ru te El G ol fo El M or ro En gu ng a Is la P un á N ar an ja l S ab an a G ra nd e S af an do Ta ur a Ví a D at a P la ya s C ha nd uy TCBS Col. Amarillas TCBS Col. Verdes Crecimiento de bacterias en Agar TCBS - Zonas del Guayas Resultados de Análisis de PCR por Zonas del Guayas 30.0% 25.0% 20.0% 15.0% 10.0% 5.0% 0.0% A ya la n B al ao C hi co C ho ng ón C hu ru te D ur án El G ol fo El M or ro Is la Es ca la nt e Is la P un á N ar an ja l S ab an a G ra nd e S af an do S iti o N ue vo Ta ur a Te ng ue l Y ag ua ch i Ví a D at a P la ya s C ha nd uy WSSV NHP IHHNV 3. Conclusión Figura 4. Incidencias de IHHNV, NHP y WSSV en diferentes zonas de El Oro. La figura 4 se observan los resultados ponderados de las muestras analizadas en el primer semes- tre del 2022 correspondientes a las diferentes zonas de El Oro; donde la mayor incidencia de IHHNV se encontró en Huaquillas y Jambelí (entre 14 y 16 %), en tanto que el NHP (8 %) y WSSV (2%), zonas como Balao, Balosa incidencia de IHHNV 4%. en El Oro. WSSV NHP IHHNV B al ao B al os a B ar bo ne s El C oc o H ua qu ill as Ja m be lí Ju m ón La A gu ad a N ue vo P ilo P ag ua P on ga lil lo P rim av er a P ue rt o G ra nd e Is la M on dr ag ón Resultados de análisis de PCR por zonas de El Oro 18.0% 16.0% 14.0% 12.0% 10.0% 8.0% 6.0% 4.0% 2.0% 0.0% 01 La carga de vibrios colonias amarillas, se mantuvo en un rango de 8.00E+04 a 1.00E+05 UFC ml en los puntos de mues- treo Pongalillo y Santa Rosa de la provincia de El Oro. Sin embargo, en las zonas de Guayas encontramos valores de 2.00E+04 a 6.00E+05 UFC ml correspondientes a Sabana Grande, Zafando, Engunga y Vía Data Playas. 03 La detección de agentes patógenos de origen virales en Guayas da información sobre la incidencia de IHHNV en un valor < 25% y WSSV 11% en Durán, el Golfo, Puná y Sabana Grande. 05 La presencia de NHP se detectó en zonas como Balao y Balosa con un 8% de incidencia. Este mismo patógeno en Guayas arrojó valores < 14%. 02 Los valores aquí conseguidos repre- sentan una referencia sobre la calidad bacteriológica dentro de los cultivos, y pueden ser utilizados en términos de relación tomando en consideración las características de cada sistema. 04 En El Oro la afectación del virus IHHNV se encontró en un 14 - 16 % y WSSV 2% esto en Huaquillas y Jambelí respectivamente. Alexander Varela-Mejías1 & Nelson Peña-Navarro: Transfronterización de enfermedades infeccio- sas en la camaronicultura. Laboratorio de Patologías y Parasitología de Crustáceos. Nicoya, Costa Rica. 16 de enero, 2017. Bell TA, Lightner DV. 1988. A handbookof normal Penaeid shrimp histology. Baton Rouge, USA: World Aquaculture Society. 114 p. Granda G., A. F. (2015). Estudio de factibilidad para la implementación de una camaronera inten- siva de agua dulce. Guayaquil. From http://repositorio.ug.edu.ec/bitstream/ Itsathitphaisarn, O., Thitamadee, S., Weerachatyanukul, W., & Sritunyalucksana, K. (2017a). Potential of RNAi applica- tions to control viral diseases of farmed shrimp. Journal of Invertebrate Pathology, 147, 76-85. doi: https://doi.org/10.1016/j.jip.2016.11.006. GORDlN, H., M. D. KROM, A. HUGHES-GAMES y C. PORTER. 1984. Intensive sea water aqua- culture ponds. EMS Special Publ. No. 8. Resumen. Lightner DV. 1996. A handbook of shrimp pathology and diagnostic procedures for diseases of cultured penaeid shrimp. Baton Rouge, LA, USA: World Aquaculture Society. CD-ROM. Morales-Covarrubias, M., Ruiz-Luna, A., Pereira, V., & Solís y Conroy, G. (2011). Prevalencia de enfermedades de camarón blanco (Litopenaeus vannamei) cultivados en ocho regiones de Lati- noamérica. Revista Científica, Facultad de Ciencias Veterinarias de la Universidad del Zulia. From http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=95919362010. Romero, P. (2017). Comparación de dos densidades de siembra de camarón blanco Litopenaeus vannamei y su incidencia en el aumento de la eficiencia productiva en la provincia de El Oro (tesis de pregrado). Universidad Católica de Guayaquil, Guayaquil, Ecuador). Recuperado de: http://re- positorio.ucsg.edu.ec/bitstream/3317/7756/1/T-UCSG-PRETECAGRO-125.pdf. www.globalseafood.org Efectos de la temporada de lluvias en estanques de engorde de camaro- nes « Global Aquaculture Advocate. 25, junio de 2018. Prieto, A; Rodríguez, MC. 1993. Diagnóstico y control de enfermedades bacterianas en camarón de cultivo. Programa cooperativo gubernamental. Proyecto Aquila II: Apoyo a las actividades regionales de acuicultura. Documento de campo No. 14. Bibliografías www.skretting.ec | SkrettingEc ● Ventas: andrea.marin@skretting.com / 0981523250 - juan.ayala@skretting.com / 0999524696 ● Servicio Técnico: marita.monserrate@skretting.com / 0980364317 - maximo.quispe@skretting.com / 0967639666 SOLUCIONES NUTRICIONALES PARA CADA ETAPA DE CULTIVO DEL CAMARÓN
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