Descarga la aplicación para disfrutar aún más
Vista previa del material en texto
INTEGRANTES: ❑ Heras, Winie ❑ Huayanca, Ricardo 2020-I ❑ López, Sebastián Conceptos generales ¿Qué es la Genética Cuantitativa? Es la ciencia que estudia la herencia de los caracteres métricos que están determinados por muchos genes (poligenes) e influenciados por el ambiente, por lo cual muestran una variación continua (distribución normal). Caracteres Discretos Continuos Genética cuantitativa: NO Relación directa entre Fenotipo y Genotipo Distribución continua de genotipos Leyes de Mendel: Relación directa entre Fenotipo y Genotipo Caracteres discretos ¿PARA QUÉ NOS SIRVE LA GENÉTICA CUANTITATIVA? Cruzamientos ¿Cómo se estudian los caracteres métricos genéticos? Los caracteres métricos se estudian a través de los siguientes parámetros poblacionales: Media Varianzas y Covarianzas Coeficientes de Correlación Heredabilidad Heredabilidad • En un sentido estricto, indica la proporción de la variación fenotípica que es atribuible a la variación genética aditiva. • Varía entre 0 a 100% y en función de ella, se definirá el método o procedimiento de mejora a utilizar. • El término general que describe la proporción de la varianza es la Heredabilidad. Se pueden estimar los tipos de heredabilidad. La heredabilidad en sentido amplio es la relación de la Varianza Genética Total a la Varianza Fenotípica: H 2= VG/VP La heredabilidad en sentido estricto es la relación entre la Varianza Genética Aditiva y la Varianza Fenotípica Total: h 2= VA/VP ¿Qué es la genética molecular? Es el campo de la genética que estudia la estructura y la función de los genes a nivel molecular. Técnicas en Genética Molecular Genética Cuantitativa vs Genética Molecular Base Bioquímica GEN MAYOR CONOCIDO Uno o pocos genes con gran defecto INFORMACIÓN Fenotipos + Secuencia ADN ÉXITO Caracteres cualitativos y de difícil medición Base Estadística GEN MAYOR CONOCIDO Muchos genes con efectos pequeños INFORMACIÓN Fenotipos + Pedigree ÉXITO Caracteres cuantitativos y de fácil medición HIBRIDACIÓN EN CAMÉLIDOS ANTECEDENTES FILOGENÉTICOS E HISTÓRICOS DE LOS CAMÉLIDOS ❑ ✓ 0 - 0.15 ✓ 0.15 - 0.4 ✓ 0.4 - 1 ✓ - 1 ✓ +1 (Quispe et al., 2008) (Quispe et al., 2008) (Quispe et al., 2008) (Quispe et al., 2008) (Aguilar et al., 2019) (Cruz, 2018) (Cruz, 2018) (Gutiérrez, 2019) (Daverio, 2014) P. Claros P. Negro P. Oscuros P. Marrón P. Rojo / Amarillento (Daverio, 2014) Alelo Dominante (E) Alelo Recesivo (e) Alelo Dominante (A) Alelo Recesivo (a) * MC1R son epistáticos a los de ASIP * Registro Observación en campo Genética de otras especies B-► Marrón bb► Negro R-► Rojo rr► Blanco S-► No manchas ss► Manchas D-► C-► dd► cc► No se diluye Se diluye W-► Blanco ww ► Otros colores A-► Marrón aa► Otros colores B► Negro C► Leonado D► Gris R► Gris *Más interacción de genes de base y modificadores, que Paul* Alelo Dominante Alelo Recesivo Alelo Dominante Alelo Recesivo * Locus extensión son epistáticos al Locus Agoutí * ❑ Negro es recesivo. ❑ El blanco enmascara todos los demás colores. ❑ La mejor manera de "desenmascarar" un blanco es aparearlo con un negro. ❑ Los grises son colores fabricados. ❑ Los genes productores de gris solo pueden esconderse detrás del blanco. ❑ MC1R, considerado como gen candidato para regular la variedad de tonos de color en alpacas. ❑ Herencia del color blanco: gen KIT, MITF. ❑ TYR y MAPT, no presentaron efecto. ❑ Melaninas de alpacas marrones eran predominantemente feomelaninas con cantidades pequeñas de eumelaninas. Técnicas moleculares ¿Qué es lo que se busca con las técinas moleculares? • Mejoramiento en menos generaciones en comparación al mejoramiento tradicional. • Generación de marcadores. • Identificación de genes: mapa genético y QTLs. Problema central • Escasez de parámetros racionales para el mejoramiento de alpaca peruana. • 80% especímenes de mala calidad textil (fibra gruesa) • Se necesita recuperar genes de calidad. • No existe aún un banco genómico de camelidos. • Se deben generar más marcadores genéticos (100/500-1000) Software PACO PRO Fibre production in South American camelids and other fibre animals editado por Maria Ángeles Pérez-Cabal, Juan Pablo Gutiérrez, Isabel Cervantes, Maria Jesús Alcalde ADN microsatélite • Conocidos como repetidores cortos en serie. • Es una secuencia corta (no mayor a 6 pares de bases) repetidas en serie que se pueden anplificar: 1. PCR 2. Electroforesis en gel y posterior teñido con nitrato de plata o marcado con sustancias fluorescentes. Determinación de parentesco en alpacas • Técnica utilizada: análisis de ADN microsatélite. • Métodos: 1. Tres reacciones de PCR múltiple y su análisis mediante un sistema automatizado. (secuenciador automático) 2. Diez reacciones de PCR de locus simple y su análisis mediante un sistema no automatizado de tinción con nitrato de plata. (análisis convesional Muestras El ADN genómico fue extraído de la sangre utilizando el ULTRACLEAN DNA. La calidad y la cantidad del ADN fue determinada comparando diluciones seriadas de un marcador de peso molecular, AMRESCO a una concentración de 50 ng/microlitro en un gel de agarosa al 0.8% LOCI microsatélite • se utilizaron 10 loci microsatélite designados para llama y alpaca. Fueron amplificados por medio de la técnica de reacción en cadena de polimerasa en un termociclador mediante dos métodos. Resultados • Se encontró que los diez microsatélites analizados amplificaron y presentaron polimorfismo en alpacas. • Presentaron un número de alelos que varió entre cuatro para el locus LCA22, YWLL46 y veinte para el locus YWLL08, con un promedio de 9.1 alelos por locus. • Aunque presentaba ligeras variaciones en el YWLL08 y el YWLL36, posiblemente debido al distinto origen de los animales. • Los análisis de exclusión de paternidad determinarion 4 erores en la asignación de paternidad de los 18 casos evaluados. 46 Iniciativas del Perú • Inca Tops SA, Pacomarca, Puno • INIA, Quimsachata, Puno • Michell, Mallkini Puno 48 50 Fundo privado Mallkini-Puno Centro genético y de crianza de alpacas Mejoramiento de la precisión de la selección genética del diámetro de la fibra usando filación genética en alpaca huacaya del fundo Mallkini y Munay Pacocha Investigación comparativa de 4 tratamientos con el fin de determinar en qué medida se incrementa la precisión con cada tratamiento . T1--> Evaluación genética clásica. T2--> Método clásico+medición de la densidad de los folículos de la piel para correlacionarla con finura de la fibra. T3--> Método clásico+información sobre la filación paternl en bases a análisis de ADN. T4--> Método clásico+medición de densidad folicular+filación paternal en base a ADN. Análisis de ADN microsatélite. Empadres de 97 machos y 10078 hembras que conformaron 97 grupos genealógicos. Genómica en camélidos sudamericanos 57 58 Aguilar, H., Gutiérrez R, G., & Wurzinger, M. (2019). Parámetros genéticos de caracteres asociados a la uniformidad del diámetro de fibra en alpacas Huacaya en Puno, Perú. Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú, 30(3), 1150-1157. https://doi.org/10.15381/rivep.v30i3.15370 Arias, J. (2019). CARACTERIZACIÓN DE LA SECUENCIA Y LA VARIABILIDAD GENÉTICA DEL GEN KIT EN ALPACAS (Vicugna pacos) PARA EL COLOR BLANCO, GRIS Y OJO ZARCO. UNIVERSIDAD NACIONAL DE SAN ANTONIO ABAD DEL CUSCO. Cruz, L. (2018). Parámetros genéticos de caracteres funcionales y secundarios en alpacas. UNIVERSIDAD COMPLUTENSE DE MADRID. Daverio, S. (2014). Caracterización de genes vinculados al crecimiento y al color de capa en la Llama (Lama glama). Universidad Nacional de La Plata. Gallegos, R. (2012). EXPRESIÓN FENOTÍPICA DEL COLOR DE FIBRA EN ALPACAS (Vicugna pacos Linneaus) EN EL ALTIPLANO PERUANO. Universidad Nacional del Altiplano.Gutiérrez, G. (2019). Investigaciones sobre mejoramiento de la calidad de fibra de alpaca. http://aia.org.pe/wp- content/uploads/2019/10/Ponencia-1-Gustavo-Gutie%CC%81rrez.pdf Quispe, E., Mueller, J., Ruiz, J., Alfonso, L., & Gutierrez, G. (2008). Actualidades sobre adaptación, producción, reproducción y mejora genética en camélidos. https://doi.org/10.15381/rivep.v30i3.15370 Mueller J.P., 2008. Estrategias para el mejoramiento de Camélidos sudamericano. En: Actualidades sobre adaptación,, production, reproduction y mejora génetica en Camélidos. Universidad Nacional de Huancavelica. First edition, Huancavelica, Perú, pp. 93-112. Pérez, David, Maturrano, Lenin, & Rosadio, Raúl. (2012). Molecular genotyping and subtyping of clostridium perfringens isolated from fatal enterotoxemia in alpacas. Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú, 23(3), 272-279. Recuperado en 28 de mayo de 2020, de http://www.scielo.org.pe/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1609- 91172012000300003&lng=es&tlng=en. Renieri, C., Pacheco, C., Valbonesi, A., Frank, E., & Antonini, M. (2007). Programa de mejoramiento genético en camélidos domésticos. Arch. Latinoamer. Prod. Anim., 15: 205, 210. Rodríguez B., Jorge, Wheeler, Jane C., Dodd, Ciara S., Bruford, Michael W., & Rosadio A., Raúl. (2004). Determinación de parentesco en alpacas (Vicugna pacos) por medio del análisis de ADN microsatélite. Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú, 15(2), 113-119. Recuperado en 28 de mayo de 2020, de http://www.scielo.org.pe/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1609- 91172004000200004&lng=es&tlng=es. Yábar Varas, C. 2003. Manual de procedimientos de electroforesis para proteínas y ADN. Serie de Normas Técnicas, Lima. 38. • http://repositorio.lamolina.edu.pe/bitstream/handle/UNALM/3156/L10- A4-T.pdf?sequence=3&isAllowed=y • http://repositorio.lamolina.edu.pe/bitstream/handle/UNALM/3388/paja res-chirre-wendy-beatriz.pdf?sequence=1&isAllowed=y • aida-itea.org/aida- itea/files/jornadas/2011/comunicaciones/2011_Gen_31.pdf • https://citarea.cita- aragon.es/citarea/bitstream/10532/3477/1/2016_241.pdf • http://uvigen.fcien.edu.uy/utem/gencuan/Gen%E9tica%20cuantitativa .pdf • https://eprints.ucm.es/46351/1/T39566.pdf • http://www.bioline.org.br/pdf?la07054
Compartir