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UNIVERSIDAD NACIONAL AUTONOMA DE MÉXICO FACULTAD DE MEDICINA DIVISIÓN DE ESTUDIOS DE POSGRADO INSTITUTO DE OFTALMOLOGÍA “FUNDACIÓN CONDE DE VALENCIANA” DESCRIPCIÓN CLÍNICA Y ANÁLISIS MOLECULAR DE LOS GENES FOXC1 Y PITX2 EN FAMILIAS MEXICANAS CON EL ESPECTRO DE AXENFELD-RIEGER TESIS DE POSGRADO PARA OBTENER EL DIPLOMADO DE ESPECIALIDAD EN OFTALMOLOGÍA PRESENTA DRA. DEISY NALLELY DELGADO ARELLANO DIRECTOR DE TESIS DRA. MARISOL GARZÓN CIUDAD DE MÉXICO 2019 UNAM – Dirección General de Bibliotecas Tesis Digitales Restricciones de uso DERECHOS RESERVADOS © PROHIBIDA SU REPRODUCCIÓN TOTAL O PARCIAL Todo el material contenido en esta tesis esta protegido por la Ley Federal del Derecho de Autor (LFDA) de los Estados Unidos Mexicanos (México). El uso de imágenes, fragmentos de videos, y demás material que sea objeto de protección de los derechos de autor, será exclusivamente para fines educativos e informativos y deberá citar la fuente donde la obtuvo mencionando el autor o autores. Cualquier uso distinto como el lucro, reproducción, edición o modificación, será perseguido y sancionado por el respectivo titular de los Derechos de Autor. 2 ÍNDICE: INTRODUCCIÓN ………………………………………………………………….. 3 PREGUNTA DE INVESTIGACIÓN ……………………………………………. 7 JUSTIFICACIÓN …………………………………………………………………... 7 OBJETIVOS …………………………………………………………………………. 8 DISEÑO DEL ESTUDIO ……………………………………………………………. 8 MATERIAL Y MÉTODOS …………………………………………………………. 8 METODOLOGÍA ESTADÍSTICA ………………………………………………….. 10 RESULTADOS ……………………………………………………………………….10 CONCLUSIONES …………………………………………………………….…….. 11 BIBLIOGRAFÍA …………………………………………………………………….. 12 3 INTRODUCCIÓN El espectro de Axenfeld-Rieger (EAR), es un trastorno autosómico dominantes raro con una incidencia de 1: 200,000 en todo el mundo, descrito por primera vez en 1920 por Axenfeld (8), quien denominó con el término de anomalía de Axenfeld a los pacientes que presentaban una línea blanca en la cara posterior de la córnea y hebras de tejido iridiano que se extendían a la periferia, (8.17,18), si a estas alteraciones se agregaba Glaucoma lo refirió ahoria como Síndrome de Axenfeld. Rieger (9) por su parte, en 1930 agregó anomalías del segmento anterior similares como corectopia, atrofia iridiana y orificios iridianos, llamado como disgenesia mesodérmica del iris y córnea (5,8, 17 y 19), si además de esto se sumaba Hipoplasia maxilar y hernia umbilical introdujo el término de Síndrome de Rieger. Siendo aceptado espectro de Axenfedl-Rieger considerando que todas estas anomalías forman parte del mismo. Las alteraciones oculares que ocmponen el espectro de Axenfeld-Rieger se asocian a glaucoma en un 50% de los casos, esto ocurre generalmente durante la niñez tardía o en adultos jóvenes, sin embargo puede presentarse a cualqueir edad a partir del nacimiento, por lo que se requiere vigilancia y seguimeinto durante toda su vidas. El riesgo de desarrolar glacuoma no parece estar relacionado con la severidad del feniotipo. MANIFESTACIONES OFTALMOLÓGICAS DEL ESPECTRO AXENFELD-RIEGER - Córnea: El embriotoxón posterior es una disgenesia muy frecuente, sin repercusión visual, que consiste en la presencia de una banda prominente blanca (línea de Schwalbe) en el ángulo camerula, que se puede apreciar en la biomicroscopía en la córnea periférica posterior. Sin embargo se debe de tomar en cuenta que esta característica esta presente del 8% al 15% de la población normal. - Ángulo camerular: En la gonioscopia, se evidencian bandas que pueden asemejarse a sinequias anteriores periféricas, las cuales pueden abarcar 10 a 20 grados del ángulo camerular. Las bandas más grandes de estas adherencias se pueden asociar 4 con la corectopia con la pupila desplazada en la dirección de la banda engrosada, que ocasiona persistencia de la capa endotelial en las estructuras angulares y la inserción de la raíz anterior del iris, con una disminución del flujo del humor acuoso. El desarrollo de glaucoma secundario a estas anomalías de desarrollo en el Espectro de Axenfeld Rieger tiende a correlacionarse más con los cambios en el iris ( la inserción anterior de la raíz del iris en la malla trabecular) que las adherencias del iris periférico a la línea de Schwalbe. - Iris: Aparecen cambios que van desde una leve atrofia estromal hasta solo encontrar tejido iridiano en una mínima cantidad. Lo más común es la presencia de corectopia o pseudopolicoria asociada con atrofia estromal del iris anterior. Estas anomalías pueden ser el primer signo reconocible a la exploración. Estos cambios están relacionadas con la falta de progresión en el desarrollo de los tejidos de la cresta neural; dando como resultado los hallazgos de corectopia, ectropion uveal formación de orificios en el iris, localizándose opuestos a la pupila. Las anomalías en los vasos iridianos pueden ser secundarias a estos cambios, junto con un componente isquémico. - Músculos extraoculares: Las personas con espectro axenfeld rieger, se han descrito características de exodesviaciones, ya sea por hipertelorismo o secundarios a mala visión; existen reportes de caso, con alteración de la inserción de oblicuo superior o hipoplasia del recto inferior. (3) (18) MANIFESTACIONES SISTÉMICAS - Existe involucro sistémico con dismorfias características: hipoplasia maxilar, telecanto, hipertelorismo y puente nasal deprimido; anomalías dentales que incluyen hipodoncia y microdoncia, en región umbilical puede existir piel redundante, anomalía pituitaria y retardo del crecimiento. En varones se puede presentar hipospadias (7). 5 ESTUDIO GENÉTICO - Bases genéticas del espectro Axenfeld-Rieger: Basados en estudios familiares, utilizando análisis de ligamiento se han identificado 2 genes comunes para el espectrum Axenfeld-Rieger, PITX2 y FOXC1, revelando un amplio espectro de mutaciones, las cuales asisten al diagnóstico molecular de los ARS tipo 1 y 3, respectivamente (Acharya et al., 2011). Aunada a las mutaciones puntuales en estos 2 genes, varios pacientes han reportado deleciones cromosómicas en 4q y 6p25, incluyendo el locus de PITX2 y de FOXC1, respectivamente (Tonoki et al., 2011; Schinzel et al., 1997). Pacientes con mutaciones en estos dos genes tienen una penetrancia completa, pero con expresividad variable, y a pesar de los avances en tecnologías moleculares, la causa genética del ARS permanece desconocida en el 60% de los casos (Seifi y Walter, 2018). FOXC1 (Forkhead box protein C1) Es un miembro de la familia de factores de transcripción fork-head/winged helix caracterizados por un motivo de 110 aminoácidos conservados conocido como dominio forkhead (FHD). La proteína FOXC1 tiene señales localización nuclear en los extremos de FHD que permite a FOXC1 transferir al núcleo y unirse al DNA, regulando la expresión de genes blanco. Además, FOXC1 tiene dos dominios de transactivación (AD), localizados fuera del FHD, y un dominio inhibitorio fosforilado (ID) (Seifi y Walter, 2018). FOXC1 tiene un único exón que codifica para una proteína conservada evolutivamente de 553 aminoácidos que se expresa en tejidos fetales y del adulto incluyendo ojos, cerebro, riñon y corazón, y actúa como regulador del desarrollo, proliferación, migración y diferenciación celular (Saleen et al., 2003). A la fecha, 140 mutaciones han sido descritas, la mayoría de las cuales son de sentido alterado que se encuentran localizadas en el FHD (Stenson etal., 2017). Esas mutaciones dañan la función de FOXC1 a través de diferentes mecanismos por alteración de la estructura de FOXC1, de la localización nuclear, la capacidad de unión a DNA, la actividad de transactivación, y la estabilidad de la proteína (Saleen et al., 2003). También han sido reportadas mutaciones de FOXC1 con anomalía de Peters, glaucoma congénito primario, aniridia e hipoplasia de iris (Tümer y Bach- Holm, 2009). PITX2 (Pituitary homeobox 2) En 1996, el gen PITX2 fue reportado por primera vez como un factor de transcripción causante de ARS (Semina et al., 1996). Las mutaciones en 6 PITX2 también han sido raras veces asociadas con la anomalía de Peters, dermoides de córnea, e hipoplasia de iris (Kulak et al., 1998). PITX2 es un miembro de la familia de genes homeobox, los cuales actúan tempranamente durante el desarrollo embrionario para regular la formación de tejidos oculares y no oculares incluyendo los dientes, órganos abdominales cerebro, corazón, y riñones. Este gen contiene 8 exones de splicing alternativo, los cuales producen 4 distintas isoformas: PITX2A, PITX2B, PITX2C y PITX2D. Todos, excepto PITX2D, tienen idénticos homeodominio de 60 aminoácidos, el cual es responsable para la localización de la proteína en el núcleo, la unión a DNA, la actividad de transactivación y la interacción proteína-proteína (Hjalt y Semina, 2005). PITX2A, PITX2B, y PITX2C tienen 271 aminoácidos, 317 aminoácidos y 324 aminoácidos, respectivamente. Hay una segunda región conservada en el gen PITX2, el dominio OAR (Orthopedia, Aristaless, y Rax) que se encuentra localizado en la región C-terminal y consiste de 14 aminoácidos que se piensa median la interacción proteína-proteína e interacciones autoinhibitorias con la región N- terminal de PITX2 (Amendt et al., 2000). A la fecha, 104 mutaciones han sido identificadas en el gen PITX2, la mayoría de las cuales son cambios de sentido alterado (Stenson, et al., 2017). Aproximadamente un 40% de pacientes con ARS tienen mutación en FOXC1 o PITX2, el resto de la etiología es desconocida (Seifi y Walter, 2018). Por lo tanto, más estudios son requeridos para identificar genes adicionales involucrados en ARS. En 2016, Micheal et al. Identificaron una mutación heterocigota de sentido alterado en el gen PRDM5 en una familia con ARS utilizando WES (whole exome sequencing) (Micheal et al., 2016). 7 PREGUNTA DE INVESTIGACIÓN A) ¿Qué proporción de pacientes mexicanos con el espectro de Axenfeld Rieger presenta mutaciones en el gen FOXC1 y PITX2? B) ¿Existen características fenotipicas y genotipicas definidas en pacientes mexicanos con el espectro de Axenfeld Rieger? JUSTIFICACIÓN En los últimos años se han realizado diversos estudios genéticos para contribuir al entendimiento de las enfermedades oculares. Sin embargo, la etiología genética de enfermedades con espectro de axenfeld rieger no es totalmente conocida, por lo que es necesario realizar una asociación familiar con los genes que se han identificado en la literatura y que se asocian en un 40% a esta patología, que indiquen susceptibilidad de los individuos a padecer dicha enfermedad. Identificar mutaciones de los genes FOXC1 y PITX2, y las frecuencias de éstas, presentes en pacientes mexicanos con espectro de Axenfeld Rieger, puede ayudar a definir si existe una correlación fenotipo-genotipo al describir las características clínicas y la mutación causal encontrada en los pacientes con alguna de estas disgenesias de segmento anterior, así como la posibilidad de determinar en casos familiares, si se observa expresividad variable o no penetrancia. Por otro lado, una vez que se identifican las mutaciones causales de la patología en los casos familiares es relevante brindar un asesoramiento genético. 8 OBJETIVOS A) Objetivo general. Conocer las características clínicas y genéticas en una muestra de pacientes mexicanos en el espectro de Axenfeld-Rieger en un Hospital de referencia oftalmológica en México. Instituto de oftalmología “ Conde de Valenciana”, desde 2002 - 2019. B) Objetivos específicos. 1. Putualizar las características clínicas del espectro y su asociación con PTX2 y FOXC1 en el espectro. 2. Identificación del espectro mutacional de las familias con Axenfeld- Rieger DISEÑO DEL ESTUDIO Se trata de un estudio transversal y descriptivo en el cual se realizó una sola medición (genotipificación) en sujetos con criterios clínicos del espectro de Axenfeld-Rieger. A partir de la frecuencia observada en cada una de las familias en estudio se realizó un análisis estadístico que permitió identificar si la variante confiere riesgo de desarrollar enfermedad. MATERIAL Y MÉTODOS Se estudiarán los expedientes de pacientes del Instituto de Oftalmología Fundación de Asistencia Privada “Conde de Valenciana” que tengan diagnóstico de Sindrome de axenfeld Rieger. Se recabarán los datos demográficos, así como de la exploración oftalmológica, desde su primera visita, se buscará si realizaron el diagnostico clínico o genético, y si comparte familiares con disgenesia del segmento anterior. Población. Pacientes visto en Servicio de Glaucoma, Segmento anterior o Vision Baja, con diagnostico de espectro de axenfeld Rieger. 9 Lugar del estudio. Instituto de Oftalmología “Fundación Conde de Valenciana” I. A. P. Duración del estudio. Período comprendido entre y Agosto-Diciembre 2019. Criterios de inclusión: - Diagnóstico clínico incluido en el espectro de Axenfeld Rieger. - Únicamente casos familiares con espectro Axenfeld Rieger, o casos esporádicos que cumplan todas las características clínicas de espectro de Axenfeld-Rieger. - Sujetos con espectro Axenfeld-Rieger que acepten realizarse el estudio genético y firmen la hoja de consentimiento informado. Criterios de exclusión: - Sujetos con espectro Axenfeld-Rieger que no acepten realizarse el estudio genético y no quieran firmar la hoja de consentimiento informado. CONSIDERACIONES BIOÉTICAS El documento de consentimiento informado se le presento a cada uno de los pacientes (sin excepción) que cumplan con los criterios previamente establecidos. Se explicó al momento el procedimiento de la toma de muestra con sus riesgos y complicaciones. Se dio a conocer el uso de la información y la confidencialidad de datos. Se respondieron todas las dudas previo a la firma del consentimiento. Este protocolo de estudio se apega a las normas establecidas por el Comité Científico y de Ética. El consentimiento informado y su proceso cumplió con leyes y regulaciones aplicables en México, D.F. Los pacientes otorgaron su consentimiento para los estudios de ADN mediante la firma de una Carta de Información y Consentimiento, la cual cumple con lo establecido por la Ley General de Salud en sus Capítulos 21 y 22 (anexo 1). 10 METODOLOGÍA ESTADÍSTICA Para llevar a cabo el análisis estadístico utilizaremos el software de IBM SPSS versión 25.0. Haremos un análisis descriptivo basado en frecuencias, porcentajes y medidas de tendencia central. Se analizará la distribución de los datos para cada una de las variables continuas por medio de la prueba de Kolmogorov-Smirnov. De presentar los mismos una distribución normal (gaussiana) haremos pruebas de comparación de medias mediante una t student para muestras dependientes para las variables cuantitativas. En caso de presentar una distribución no paramétrica el análisis comparativo se realizará con la prueba U de Mann-Whitney. Se realizará el análisis entre los resultados pre y postquirúrgicos en un mismo grupo utilizando una regresión lineal, así como también pruebas comparativas de los resultados postquirúrgicos de ambos grupos (la prueba a utilizar dependerá de la distribución de los datos). No se realizaráanálisis por subgrupos. Se tomará en cuenta como estadísticamente significativo aquellos resultados con p ≤ 0.05. RESULTADOS Las doce familias con el espectro de Axenfeld-Rieger se seleccionaron mediante secuenciación directa de productos de reacción en cadena de polimerasa para detectar mutaciones en los genes PITX2 y FOXC1. Entonces de las 12 familias se encontraron mutaciones dentro de la región de codificación del gen FOXC1 en 5 familias, mientras tanto para el gen PITX2 se encontraron mutaciones en 5 familias, mientras que sólo en 2 familias no se encontró ninguna mutación. A continuación explicamos las dos principales mutaciones: La primera mutación que se encontró comprende una deleción de 1 pb dentro del exón 3 en la posición 690 del gen PITX2. La segunda mutación consiste en un cambio de A a G en la posición -11 dentro del intrón 3 del gen FOXC1. Presumiblemente, esta mutación actúa creando un nuevo sitio aceptor de empalme que se usa en lugar o en conjunto con el sitio aceptor normal de empalme. No se detectaron mutaciones en las otras dos familias estudiadas. Por su parte locas cambios clínicos se pueden apreciar en la siguiente tabla: Familia Alteración corneal Glaucoma Atrofia del iris Involucro músculos extraoculares Involucro sistémico 11 1 SI SI SI NO SI 2 SI SI SI NO SI 3 SI SI SI SI NO 4 SI SI SI NO SI 5 SI SI SI SI SI 6 SI SI SI SI SI 7 SI SI SI NO SI 8 SI SI SI NO NO 9 SI SI SI NO NO 10 SI SI SI NO NO 11 SI SI SI NO NO 12 SI SI SI SI SI CONCLUSIONES Parece que el gen PITX2 y FOXC1 es responsable de una porción significativa del espectro de Axenfeld-Rieger en la población estudiada en nuestro Instituto, Además, también hay evidencia de la presencia de heterogeneidad genética del trastorno en la población mexicana. Finalmente, se han identificado dos familias con síndrome de Axenfeld-Rieger que no parecen albergar ninguno de los tres loci conocidos. La segregación genética del síndrome de Axenfeld-Rieger en estas dos familias probablemente representa un nuevo locus que sería conveniente analizar. 12 Bibliografía 1. Alward, W. L. . (2000). Axenfeld-Rieger syndrome in the age of molecular genetics. American Journal of Ophthalmology, 130(1), 107–115. doi:10.1016/s0002- 9394(00)00525-0 2. Bhandari R, Ferri S, Whittaker B, et al. Peters anomaly: Review of the literature. Cornea. 2011;30:939-44. 3. Bhate M, Martin FJ. Unilateral inferior rectus hypoplasia in a child with Axenfeld-Rieger syndrome. J AAPOS. 2012;16: 304-6. 4. Bohnsack, B. L., Kasprick, D. S., Kish, P. E., Goldman, D., & Kahana, A. (2011). A Zebrafish Model of Axenfeld-Rieger Syndrome Reveals That pitx2 Regulation by Retinoic Acid Is Essential for Ocular and Craniofacial Development. Investigative Ophthalmology & Visual Science, 53(1), 7–22. doi:10.1167/iovs.11- 8494 5. Cella, W., Cabral de Vasconcellos, J. P., Barbosa de Melo, M., Kneipp, B., Costa, F. F., Longui, C. A., & Costa, V. P. (2006). Structural Assessment of PITX2,FOXC1,CYP1B1, andGJA1Genes in Patients with Axenfeld-Rieger Syndrome with Developmental Glaucoma. Investigative Opthalmology & Visual Science, 47(5), 1803. doi:10.1167/iovs.05-0979 6. Chang, T. C., Summers, C. G., Schimmenti, L. A., & Grajewski, A. L. (2011). Axenfeld-Rieger syndrome: new perspectives: Figure 1. British Journal of Ophthalmology, 96(3), 318–322. doi:10.1136/bjophthalmol-2011-300801 7. Espana EM, Mora R, Liebmann J, et al. Bilateral promi- nent schwalbe ring in the anterior chamber in a patient with Axenfeld-Rieger syndrome and megalocornea. Cornea. 2007;26:379-81. 8. Hjalt, T. A., & Semina, E. V. (2005). Current molecular understanding of Axenfeld–Rieger syndrome. Expert Reviews in Molecular Medicine, 7(25). doi:10.1017/s1462399405010082 9. Honkanen RA, Nishimura DY, Swiderski RE, et al. A family with Axenfeld- Rieger syndrome and Peters anomaly caused by a point mutation (Phe112Ser) in the FOXC1 gene. Am J Ophthalmol. 2003;135:368-75. 10. Honkanen R, Alward WL, Cossari AJ. Progressive iris chan- ges in a case of Axenfeld-Rieger syndrome. Arch Ophthalmol. 2006;124:1793. 13 11. Idrees, F., Vaideanu, D., Fraser, S. G., Sowden, J. C., & Khaw, P. T. (2006). A Review of Anterior Segment Dysgeneses. Survey of Ophthalmology, 51(3), 213– 231. doi:10.1016/j.survophthal.2006.02.006 12. Ito, Y. A., & Walter, M. A. (2013). Genomics and anterior segment dysgenesis: a review. Clinical & Experimental Ophthalmology, 42(1), 13–24. doi:10.1111/ceo.12152 13. Li, K., Yang, L., Liu, Y., & Lin, D. (2017). Novel Genetic Findings in a Chinese Family with Axenfeld-Rieger Syndrome. Journal of Ophthalmology, 2017, 1–6. doi:10.1155/2017/5078079 14. Micheal, S., Siddiqui, S. N., Zafar, S. N., Villanueva-Mendoza, C., Cortés- González, V., Khan, M. I., & den Hollander, A. I. (2016). A Novel Homozygous Mutation in FOXC1 Causes Axenfeld Rieger Syndrome with Congenital Glaucoma. PLOS ONE, 11(7), e0160016. doi:10.1371/journal.pone.0160016 15. Nishimura, D. Y., Searby, C. C., Alward, W. L., Walton, D., Craig, J. E., Mackey, D. A., … Sheffield, V. C. (2001). A Spectrum of FOXC1 Mutations Suggests Gene Dosage as a Mechanism for Developmental Defects of the Anterior Chamber of the Eye. The American Journal of Human Genetics, 68(2), 364–372. doi:10.1086/318183 16. Ozeki, H., Shirai, S., Ikeda, K., & Ogura, Y. (1999). Anomalies associated with Axenfeld-Rieger syndrome. Graefe’s Archive for Clinical and Experimental Ophthalmology, 237(9), 730–734. doi:10.1007/s004170050304 17. Park SW, Kim HG, Heo H, et al. Anomalous scleral insertion of superior oblique in Axenfeld-Rieger syndrome. Korean J Ophthalmol. 2009;23:62-4. 18. Reis LM, Tyler RC, Volkmann Kloss BA, et al. PITX2 and FOXC1 spectrum of mutations in ocular syndromes. Eur J Hum Genet. 2012;20:1224-33. 19. ShieldsMB. Axenfeld-Riegersyndrome: a theory of mechanism and distinction from the iridocorneal endothelial syndrome. Trans Am Ophthalmol Soc 1983;81:736-84 20. Shields MB, Buckley E, Klinworth GK, et al Axenfeld- Rieger syndrom: a spectrum of evelopmental disorders. Surv Ophtalmol 1985;29:387e409 21. Song, W., & Hu, X. (2017). The rare Axenfeld–Rieger syndrome with systemic anomalies. Medicine, 96(33), e7791. doi:10.1097/md.0000000000007791 14 22. Souzeau, E., Siggs, O. M., Zhou, T., Galanopoulos, A., Hodson, T., Taranath, D., … Craig, J. E. (2017). Glaucoma spectrum and age-related prevalence of individuals with FOXC1 and PITX2 variants. European Journal of Human Genetics, 25(7), 839–847. doi:10.1038/ejhg.2017.59 23. Sowden, J. C. (2007). Molecular and developmental mechanisms of anterior segment dysgenesis. Eye, 21(10), 1310–1318. doi:10.1038/sj.eye.6702852 24. Strungaru, M. H., Dinu, I., & Walter, M. A. (2007). Genotype-Phenotype Correlations in Axenfeld-Rieger Malformation and Glaucoma Patients withFOXC1andPITX2Mutations. Investigative Opthalmology & Visual Science, 48(1), 228. doi:10.1167/iovs.06-0472 25. Yoshida S, Miyazaki A, Ishikawa K, et al. Clinical course during 40-year follow-up of Axenfeld-Rieger syndrome in a Japanese family. Oman J Ophthalmol. 2010;3:34-5. 26. Tümer, Z., & Bach-Holm, D. (2009). Axenfeld–Rieger syndrome and spectrum of PITX2 and FOXC1 mutations. European Journal of Human Genetics, 17(12), 1527–1539. doi:10.1038/ejhg.2009.93 Portada Índice Texto Conclusiones Bibliografía
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