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Organización intracelular, comportamientos, etc Veo lo que quiero estudiar, dónde y cómo Técnicas para el estudio celular SISTEMA BIOLÓGICO DE ESTUDIO Sistema donde quiero estudiar una característica específica de mi célula ❖ IN VIVO: la muestra la obtengo de seres vivos (biopsia) o recientemente muertos (necropsia) Órgano o tejido aislado→ estructura aislada→ célula aislada→ célula en cultivo →= obtengo ❖ IN VITRO: fuera del organismo (cultivo) Se usa para experimentar, por ej: el funcionamiento de algún fármaco/droga ❖ LIBRE DE CÉLULAS: se aíslan los compartimentos (órgano o tejido aislado, biopsia, necropsia, estructura aislada, células aisladas, células en cultivo, etc) por fraccionamiento para estudiar particularidades de la estructura y función celular Ej: estudiar las drogas que inactivan las mitocondrias. Para eso bus aislar las mitocondrias puras en un tubo de ensayos AISLAMIENTO Y CULTIVO CELULAR Se usan técnicas para el cultivo de células que las mantienen con vida y en un ambiente adecuado para el crecimiento y proliferación CULTIVO: Técnicas que permiten el crecimiento y mantenimiento de células in vitro. Se obtienen de humanos, animales de experimentación o línea celular. Preserva las propiedades fisiológicas, bioquímicas y genéticas. AISLAMIENTO: depende del tejido es la técnica ❖ LÍQUIDOS: ➢ 1: Permite separar los glóbulos rojos, blancos y las plaquetas ➢ 2: Separa células, moléculas o vesículas Se pone un imán marcado con un anticuerpo específico para el antígeno de superficie de la célula que me interesa El anticuerpo reconoce el antígeno y hace que la célula/ molécula/ vesícula se una al imán Con otro imán separo a las partículas de interés ➢ 3: Separo células asistidas por fluorescencia Marco a la partícula de interés con un anticuerpo fluorescente y la paso por el citrómetro de flujo (envía láser que detectan la emisión fluorescente que permite la separación) ❖ SÓLIDOS: En PBS se hace un picadito y se lo somete a enzimas para separar las células de la matriz extracelular (tripsina, colagenasa, hialuronidasa) y EDTA (forma complejos con el Ca2+) y luego se observa en el microscopio la separación celular Mucha división Velocidad rápida Velocidad constante Poca división Velocidad lenta El tipo celular aislado se recoge en un tubo eppendorf, se centrifuga y se separa el sedimento/pellet (células) del sobrenadante (líquido que no me interesa) CULTIVO PRIMARIO: Se coloca el pellet en un recipiente de cultivo con un medio (células obtenidas directamente del adecuado para que prolifere organismo vivo o recientemente fallecido). VELOCIDAD DE CRECIMIENTO DEL CULTIVO (divisiones celulares/tiempo) La célula puede dividirse un número finito de veces antes de entrar en SENESCENCIA REPLICATIVA→ pérdida de la capacidad de división →Inicia cuando la célula alcanza el LÍMITE DE HAYFLICK (división n° 50 ) →Células in vivo e in vitro quedan detenidas en G0/G1 →No responden a mitógenos →Asociado al acortamiento de telómeros TELÓMERO: Extremos del cromosoma que poseen ADN replicativo no codificante Cierra el cromosoma para estabilizarlo En cada división la ADN Polimerasa corta una parte del telómero (envejece al cromosoma) La TELOMERASA (enzima) evita el acortamiento de lo telómeros ya que repara los extremos cortos del cromosoma. Su actividad disminuye a medida que avanza la edad (muy activa en jóvenes). Para evitar que el cromosoma deje de existir por acortamiento, la célula entra en estado quiescente (no se divide, queda en fase G0 o G1) LÍNEA CELULAR La célula pierde senectud y requieren la capacidad de dividirse Consecuencia de: Transformación espontánea por mutación del genoma: ooncogénica ono oncogénica Transformación no espontánea por manipulación del ADN: o expresión del gen de la telomerasa oMutación de genes que inhiben el ciclo celular (para que no se divida) Transformación oncogénica REQUERIMIENTOS PARA EL CULTIVO El color rojo es in indicador de pH: vira a allo cuando las células son metabólicamente activas (liberan CO2) Para que pase de G0/G1 a fase S Para que la célula construya membranas Evita la contaminación por manipulación SUPERFICIE: Las células pueden crecer de 2 formas Adheridos a un soporte: células de tejido sólido que forman una monocapa En suspensión ej: células de la sangre Crecimiento adherido a soporte: La célula para poder crecer necesita de un SOPORTE donde pueda generar la lámina basal y tenga mitógenos, espacio para crecer y se adhiera a la pared del soporte. superficie sólida (vidrio o plástico), ESTERILIZADA (para evitar contaminación), cubiertos con una sustancia inductora de cargas (tiene densidad + o -), colágeno y polilisina Pasos: 1) Las células se adhieren al material de cultivo Baja densidad de células (10%)= recién cultivado o no proliferó 2) Crecimiento y llegada a confluencia→cuánto ocupó del recipiente de cultivo Para células en suspensión CULTIVO CONFLUENTE: cultivo con el 80-100% de confluencia→ está listo para hacer un subcultivo Disminuye la velocidad de crecimiento por inhibición celular→ mucho contacto entre las células *Transwells: me permite cultivar en condiciones determinadas Tiene un filtro poroso donde se siembra la muestra Puedo generar condiciones similares a las del organismo para estudiar algo en particular, por ej: Migración: Separo la muestra, la coloco en el transwell (células en el medio, abajo está vacío) y veo la migración en la superficie basal Polarización: coloco células que tengan bien definidas la capa apical y basal en el transwell y agrego un medio para la superficie apical y otro para la superficie basal. CULTIVOS BIDIMENSIONALES: crecen y se dividen a lo largo y ancho de la superficie CULTIVOS TRIDIMENSIONALES: aspecto similar al que encontramos en el organismo Se las hace crecer en gotas o patrigel CRECIMIENTO EN GOTAS (cultivo esferoide): se siembran pequeñas cantidades del medio de cultivo con células separadas en la caja de Petri y se invierte Las células no se adhieren al medio de cultivo sino que se aglomeran mediante interacciones entre ellas CULTIVO DE ORGANOIDE: cultivo 3D con distintos tipos celulares. El resultado es similar a un órgano (DEFINICIÓN EN TALLER 2) Se usan cabinas de seguridad biológica o de flujo láminar Tienen filtros para evitar el ingreso de microorganismos a través del aire Antes de meter las cosas se desinfectan con EtOH al 70° Depende del material con el que se trabaja es el tipo de cabina que se usa y los cuidados a tener en cuenta: • Tipo I: el material es poco probable que cause una enfermedad en el humano Se usa para filtrar medios de cultivo, exrtacción de ARN, entre otros • Tipo II: El material puede enfermar o es peligroso para el humano Poco probable que se propague y en caso de hacerlo tiene una cura Ej: células tumorales humanas, transformación celular, etc • Tipo III: material que puede enfermar al humano y se puede propagar pero tiene tratamiento eficaz • Tipo IV: material que puede enfermar al humano, se puede propagar y no tiene tratamiento. Es importante esterilizar el medio de cultivo, el ambiente, el operador, las soluciones y el material de trabajo ✓ Medio de cultivo y las soluciones de trabajo→ FILTROS con poros de 0,22 micrones (retienen los microorganismos que me molestan como las bacterias y hongos) ✓ Material de laboratorio→ calor seco (estufa de esterilización), calor húmedo (autoclave) o radiación gamma ✓ Operador→ debe usar elementos de protección personal ✓ Ambiente→ se lava y desinfecta con Para realizar un cultivo se necesita:Por los pasajes No estoy del todo seguro del resultado que obtuve No están en las mismas condiciones que están en el organismo APLICACIONES 1° se coloca en el Mr Frosty para bajarle la temperatura lentamente 2°Mr Frosty se coloca en un freezer 3° se pasa la muestra al tanque de nutrógeno Para que crezcan las células Tiene temperatura, humedad y atmosfera controladas Centrifugación: técnica de separación para aislar o concentrar partículas en suspensión usando las distintas formas o pesos de esas partículas Métodos de Homogeneización: SHOSK O LISIS HIPOTÓNICA: cc sc<cc intracelular Hago que el líquido fluya hacia adentro de la célula hasta que explote Se usa en células aisladas y con soluciones de NaCl< 130nM (<280 mOsm) SONICACIÓN: (células aisladas) se usa un sonicador→ emite sondas de ultrasonido que producen burbujas dentro y fuera de la célula CONGELACIÓN/DESCONGELACIÓN: el H2O de la célula se congela y daña la membrana HOMOGENEIZADOR MECÁNICO: Método por excelencia. Ruptura pro fricción Separación:por centrifugación: SACAROSA ISOTÓNICA: Sc de la homogeneización: sacarosa 0,25M (isotonica) + buffer THS HCl 25nM pH 7,4 a 4°C + EDTA+ MgCl2 (estbiliza ácidos nucleéicos) + Hielo (para amntener la temperatura) El homogenado se centrigufa a distintas velocidades→ CENTRIFUGACIÓN DIFERENCIAL: obtengo fracciones enriquecidad en algún compartimento (impuras) GRADIENTE: permite obtener FRACCIONES PURAS Puede ser por VELOCIDAD DE SEDIEMTNACIÓN (depende de la masa y forma) donde se centrifuga a una velocidad fija y se forman bandas según los pesos de las organelas (la mas pesada abajo y la mas liviana arriba) o por EQUILIBRIO DE SEDIMENTACIÓN , se centrifuga durante un período largo y se separan fracciones según su densidad (pueden ser proteinas del adn por ej) En ambos casos se observan bandas en el tubo que corresponden a las fracciones DYNABEDS: Separar vesículas y compartimentos livianos CARACTERIZACIÓN DE LA FRACCIÓN Para saber que tengo en las fracciones y si son puras o no Busco una molécula que está presente en la fracción de interés o Si está=> tengo lo que busco o Si no está => no tengo lo que quiero Busco una enzima o lípido exclusiva y veo su está o no midiendo su actividad Para saber si es pura o no uso un CRITERIO DE PUREZA→ busco la molécula y la enzima/ lípido y descarto todo el resto de los compartimentos→mido las moléculas/enzimas/proteínas/etc del resto y verifico que no tengan lo que quiero) Una vez hecho esto miro al MET mi fracción para terminar de saber si está pura 2 1
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