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Docente: Paula Casati METABOLISMO DE LAS PROTEINAS Es el proceso biosintético más complejo, emplea: • +70 proteínas ribosomales, • ~ 20 enzimas para activar los ARNt, • ~12 enzimas auxiliares y factores de inicio, elongación y terminación, • ~ 100 enzimas para el procesamiento final y • ~ 40 ARNt y ARNr Puede utilizar el 90% de la energía celular 35% del peso seco de una célula Velocidad en E. coli: 100 AA en 5´ CARACTERÍSTICAS DE LA BIOSÍNTESIS DE PROTEÍNAS • Zamecnik y col. (1950s): pulso con AAs marcados en células de ratas=>marca asociada con RIBOSOMAS (lugar de la síntesis proteica). •Niremberg y Leder (1964): Los ribosomas aislados de E. coli fijaban un aminoacilARNt específico en presencia del correspondiente polinucleótido mensajero sintético. Información adicional •Hipótesis del adaptador de Crick: ¿Cómo el lenguaje de 4 letras del ADN puede ser trasladado a un lenguaje de 20 AA de las proteínas? Existencia de un pequeño ácido nucleico adaptador Información adicional CÓDIGO GENÉTICO Al menos 3 nt son necesarios para codificar cada AA: - 4 bases en grupos de 2: 42 =16, poco para codificar 20AA - 4 bases en grupos de 3: 43 =64 • CODÓN: triplete de nucleótidos que codifica para un AA • MARCO ABIERTO DE LECTURA (ORF): entre codón de iniciación y terminación, con 50 o más codones. • No existe puntuación, lineal • CODÓN DE INICIACIÓN: AUG • CODONES TERMINACIÓN: se termina la traducción: UAA, UAG, UGA En un código de tripletes sucesivos sin solapamiento, todos los ARNms tienen 3 marcos de lecturas potenciales degenerado: 1AA tiene más de un codón, cada codón especifica sólo 1AA casi universal (excepciones en mitocondria, algunas bacterias, algunos eucariotas unicelulares) Cuando distintos codones codifican para un mismo AA, en general difieren en la 3º base Cuando un AA es reconocido por distintos codones, si los codones difieren en la 1º o 2 º base, se requieren distintos ARNt, se requiere un mínimo de 32 ARNt para traducir los 61 codones CARACTERÍSTICAS DEL CÓDIGO GENÉTICO Información adicional La degeneración del código genético no es uniforme Cuando distintos codones codifican para un mismo AA, en general difieren en la 3º base Precisión y velocidad Hipótesis del balanceo Información adicional Variaciones en la asignación de codones en mitocondrias 2 subunidades con coeficientes de sedimentación 30S y 50S (70S combinadas) *Bacterias: 65% ARNr, 35% proteínas El ribosoma es una compleja maquinaria supramolecular 50S: Contiene los ARNr 23S y 5S Las proteínas son elementos secundarios. RIBOZIMA Tabla suplementaria *Eucariotas: más grandes y complejos: 80S subunidades 60S y 40S más de 80 proteínas *Mitocondrias y cloroplastos: más pequeños y más simples que los bacterianos TRADUCCIÓN O BIOSÍNTESIS PROTEICA La biosíntesis proteica consta de cinco etapas 1. Activación del ARNt: Activación del COO- de los AA para la formación del enlace peptídico en el citosol Aminoacil ARNt sintetasa: - específica para cada AA y sus ARNts Mg2+ - AA + ARNt + ATP → aminoacilARNt + AMP + PPi - actividad correctora de prueba El grupo aminoacilo es esterificado en la posición 3′ de un ARNt La unión éster activa al aminoácido y lo une al ARNt Aminoacil-ARNt Intermediario aminoacil-AMP Reacción en 2 pasos: Ala-ARNt sintetasa La interacción entre la aminoacil ARNt sintetasa y el ARNt especifica un 2º código genético: las distintas enzimas reconocen diferentes partes del ARNt Aminoacil ARNt sintetasa: Actividad correctora de prueba (si el AA-AMP no es el correcto se produce la hidrólisis del AA + AMP), también pueden hidrolizar la unión tioéster del AA y el ARNt si no es correcta La identidad de cada AA unido al ARNt no se comprueba en el ribosoma La tasa de error media en la síntesis de proteína (1 error cada 104 AA) no es tan baja como en la replicación del ADN 2. Iniciación La síntesis comienza con un aminoácido específico: la metionina (eucariotas) o formil- metionina (bacterias) •Dirección de síntesis: Amino terminal →Carboxilo terminal •Codón de inicio: AUG •Aunque existe sólo un codón para Met, existen 2 ARNt: ARNtFMet (bacterias) o ARNtMet (inicio eucariotas) ARNtMet (bacterias) o ARNtMet (elongación eucariotas) Se sintetiza a partir de Met-ARNt y N10formil-THF por una enzima que reconoce el ARNtfMet También en mitocondrias y cloroplastos *En eucariotas comienza con Met, pero existen dos ARNt distintos para Met inicio y Met en el medio El ARNm se une a la subunidad menor del ribosoma y al ARNt de iniciación -Se requiere GTP y factores de iniciación (IF-1, IF-2 e IF-3). Al final se une la subunidad mayor. En 3 pasos -Formación del complejo de iniciación Iniciación en bacterias: Unión de los factores IF-1 e IF-3 Unión del ARNm El ARNm es guiado hacia su posición correcta por la secuencia Shine-Dalgarno IF-3 impide que 30S y 50 S se unan prematuramente 1º paso: IF-1 impide que el ARNt se una al sitio A durante la iniciación 2º paso: Se incorpora al complejo el IF-2 unido a GTP Unión de fMet- ARNtMet 3º paso: Se une la subunidad 50S Se hidroliza el GTP Se liberan los factores de inicio La unión correcta del AUG al sitio P está guiada por la secuencia de Shine-Dalgarno rica en purinas a 8-13 bp 5´del sitio de inicio complementaria al 3´del ARN 16S • al menos 9 IF • eIF4 se une al 5´CAP e interactúa con la PAB y la eIF3 para interaccionar con la subunidad 40S • el AUG se detecta por un scan desde el 5´hasta que se encuentra el AUG, probablemente con la ayuda de eIF4 *Iniciación eucariotas: la mayores diferencias en la traducción se encuentran en esta etapa Además, la secuencia de Kozak facilita el reconocimiento del AUG de inicio en los eucariotas. ACCAUGG La A que precede a la secuencia AUG y la G ubicada en la última posición determinan la eficiencia de la iniciación de la traducción. Información adicional 3. Elongación en bacterias: Se forman los enlaces peptídicos El polipéptido se elonga por el agregado de los sucesivos AA a partir de los AA-ARNt que se aparean con sus correspondientes codones, se requiere factores elongación EF-Tu, EF-Ts, EF-G y GTP 3 pasos: 1º paso: unión de AA-ARNt entrante 2º paso: formación del enlace peptídico Actividad dipeptidil transferasa de la ribozima ARNr 23S Estado híbrido de unión de ambos tRNAs sobre la subu50S 3º paso: translocación El ribosoma se desplaza de un codón hacia el extremo 3’ del ARNm El polipéptido permanece unido al tRNA del último AA incorporado Por cada AA que se agrega, se produce la hidrólisis de 2 GTPs Los ribosomas tienen actividad “proofreading”: Antes de la hidrólisis del GTP del EF-Tu se verifica la correcta unión del codón al anticodón, si no existe se disocia. La identidad de los AA unidos a los ARNt no se revisa en el ribosoma *Elongación en eucariotas: -muy similar, 3 factores de elongación eEF1α, eEF1βγ y eEF2 con funciones análogas a Tu, Ts y G -no poseen sitio E, los ARNt se liberan directamente del sitio P 4. Terminación en bacterias: Requiere una señal específica (codón de terminación) Factores de terminación: RF-1 (UAG y UAA) RF-2 (UAA y UGA) RF-3 Hidrólisis del enlace peptidilt- ARNt-terminal Liberación del péptido *Terminación en eucariotas: un único factor eRF Factor de reciclado del ribosoma (RRF) y EF-G hidroliza GTP provocando la disociación de la subunidad 50S EF-G y RRF son reemplazados por IF-3· que promueve la liberación del último ARNt *TRADUCCIÓN POR AA: 4 GTP • Activación: 1ATP→ 1AMP+PPi • 1º paso elongación: 1GTP • Translocación: 1GTP *Además por polipétido sintetizado: 1GTP en la iniciación y 1 GTP para reciclar el ribosoma COSTO ENERGÉTICODE LA FIDELIDAD DE LA SÍNTESIS PROTEICA Traducción de un mensajero individual por los polisomas (10- 100 ribosomas) *Procariotas: transcripción y traducción simultáneas *Eucariotas: transcripción en núcleo, traducción en citosol Acoplamiento de la transcripción y la traducción en las bacterias • 5. Plegado y procesamiento: Proteínas en su forma biológicamente activa y correcta Modificaciones postraduccionales: 1- Procesamiento de 1 o + AA del extremo NH2-t 2- En eucariotas, el 50% del NH2-t se encuentra N- acetilado 3- El COO-t a veces también se modifica 4- Modificaciones postraduccionales (fosforilaciones, carboxilaciones, metilaciones, formación de puentes disulfuros, glicosilaciones, adición de grupos prostéticos o isoprenilos, etc.) 5- Clivaje proteolítico: pérdida de secuencia señal, otros Fosforilación Metilación Carboxilación Farnesilación de un residuo de Cys Citosol Secreción, integración en la membrana plasmática o integración en lisosomas: pasan por el RE (secuencia señal) Mitocondrias, cloroplastos o núcleo: secuencia señal DESTINO DE LAS PROTEINAS Imagen suplementaria Las proteínas eucarióticas que poseen secuencias señales que dirigen la translocación al RE se sintetizan en ribosomas unidos al RE La glicosilación juega un papel clave en el destino de las proteínas Información adicional Procariotas Eucariotas Procariotas La traducción se inhibe por antibióticos y toxinas Información adicional DEGRADACIÓN DE PROTEÍNAS DEGRADACIÓN DE PROTEÍNAS Previene el mantenimiento de proteínas defectuosas o innecesarias, y permite el reciclado de AA tv1/2 (eucariotas): 30s a varios días. Por ej, las enzimas claves de vías metabólicas se degradan rápidamente, la Hemoglobina puede durar toda la vida de un GR (110 días) Tan importante como la SÍNTESIS Fundamental en la regulación de funciones biológicas: alteración dinámica de la estabilidad y abundancia de proteínas regulatorias. Ej: ritmos circadianos DEGRADACIÓN DE PROTEÍNAS Degradación de proteínas malformadas o de tv1/2 corta: sistemas citosólicos dependientes de ATP En vertebrados, existe un 2º sistema en lisosomas que recicla AA de proteínas de membranas, proteínas extracelulares y de larga vida Eucariotas: sistema dependiente de ubiquitina Ubiquitina: una de las proteínas más altamente conservada (76AA), esencialmente idéntica en todos los eucariotas Las proteínas a ser destruidas se unen covalentemente a la ubiquitina con consumo de ATP (una o más) E1: Enz activadora de Ub E2: Enz conjugadora de Ub E3: Ub-proteín ligasa Enlace isopeptídico Enlace tioéster E1: única o número pequeño E2: única flia relacionada evolutivamente E3: muchas familias distintas Especificidad: -E3 -Combinaciones E2-E3 Muy importante como vía regulatoria: E2 y E3 son flias génicas muy grandes con distintas especificidades de sustratos y regulan distintos procesos y se localizan en lugares diferentes Proteínas ubiquitinadas: sustratos del proteosoma 26S 2 copias de al menos 32 subunidades distintas muy conservadas Partícula regulatoria 19S en los extremos que reconoce y unen las proteínas ubiquitinadas, algunas subunidades con actividad ATPasa, actividad isopeptidasa que escinde las moléculas de ubi intactasCore 20S con actividad proteasa Residuo aminoterminal Vida media Estabilizante Desestabilizante Met, Gly, Ala,Ser,Thr,Val >20 h Ile, Gln 30 min Tyr, Glu 10 min Pro 7 min Leu,Phe, Asp, Lys 3 min Arg 2 min Señales para ubiquitinización • Más simple: AA en el N-terminal luego de la remoción de Met, son los mismos en bacterias y eucariotas • Otros: otras secuencias: cajas de destrucción Tabla suplementaria Defectos en la ubiquitinación asociados a: •Formación de tumores •Enfermedades renales •Enfermedades neurodegenerativas •Fibrosis quística, etc. Información adicional PROTEASAS BACTERIANAS Las bacterias carecen de la vía ubiquitina-proteosoma (homólogos del proteosoma sin función establecida, pero no existe ubiquitina) E.coli: proteasa LON dependiente de ATP • Cataliza los pasos limitantes de la reacción endoproteolítica de la degradación de proteínas. • Se activa en presencia de proteínas defectuosas o de vida corta. • Se hidrolizan 2 ATPs por cada enlace peptídico que se rompe. • Se liberan pequeños péptidos inactivos, se activan otras proteasas independientes de ATP para completar el proceso Sistema proteolítico ClpA y ClpX ATPasas en complejo con ClpP peptidasa Diferentes proteasas que degradan las proteínas procesivamente: • Bacterias: homólogos del proteosoma sin función establecida, pero no existe ubiquitina • Proteosoma de arqueobacterias: muy parecido al de eucariotas. Información adicional
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