embriología de guacamayas

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EXPOSICIÓN DE EMBRIOLOGÍA
1. TAXONOMÍA
2. CARACTERÍSTICAS *Cata*
Se reconocen 17 especies de guacamayos,
durante la exposición se hablará sobre la
GUACAMAYA BANDERA O TRICOLOR
Nombre científico: Ara macao,
Coloración general escarlata; con la rabadilla:
coberteras infra y supracaudales, azul celeste;
rostro sin plumas, de color blanco; alas con
predominancia del azul, con las coberteras
alares del hombro rojas, y las coberteras alares
mayores amarillas con los ápices verdes. La
cola es roja en casi toda su extensión, tiñéndose
de azul en la porción basal de las rectrices
centrales. Pico con maxilar mayormente marfil
con una franja negra hasta los tomios y la
mandíbula negra. Pies negros. Iris de color
amarillo.
El Ara macao mide alrededor de 85 á 96 cm de
cabeza a cola y pesa sobre 1.060 á 1.123
gramos. Las alas tienen una longitud
aproximada de 41 cms y la cola sobre 53 cms.
pesan un poco más de 1 kg aproximadamente. La guacamaya roja ocupa el cuarto lugar en
tamaño entre las 17 especies de guacamayas que habitan en América
Muchos autores mencionan que las características fenotípicas de los ejemplares de la especie
sugieren la existencia de dos subespecies de Ara macao. Una que se distribuiría en
América Central y la otra en América del Sur. La subespecie de América Central, Ara macao
cyanoptera es la más grande de todas La subespecie de América del Sur Ara macao macao
tiene la cabeza ligeramente más pequeña en comparación con el cuerpo y éste más corto y
ligeramente más fornido.
Hábitat
Desde áreas muy húmedas a semi-secas, principalmente en áreas boscosas, pero también
presente en menor abundancia en áreas intervenidas, Su distribución incluye desde México
hasta Bolivia y en Colombia, existen registros para el norte del Chocó, bajo Cauca y Henchí,
Magdalena medio y bajo, Amazonia y Orinoquia. suele hacer sus nidos a 1500 msnm
● https://www.corantioquia.gov.co/ciadoc/fauna/AIRNR_CN_7046_2006.pdf
● https://docplayer.es/14286402-Ara-macao-cyanoptera-guacamayo-escarlata-por-jesus-
gomez-pina-jose-a-valero-perez.html
Palabras clave para la cartelera:
- Nombre científico: Ara macao.
- Colores: escarlata, azul, amarillo, ápices verdes.
- mide: 85 a 96 cm.
- Hábitat: áreas boscosas.
- Desde México hasta Bolivia.
- Colombia: Chocó, bajo Cauca, Magdalena, Amazonia y Orinoquia.
3. GÓNADAS HEMBRAS CROMOSÓMICO - GONADAL FENOTÍPICO CAMILA
En aves, los machos poseen el así llamado patrón cromosómico zz y las hembras poseen el
patrón cromosómico wz
A. macao presentan un número diploide de cromosomas 2n = 70, al igual que otras especies
del género Ara; http://www.scielo.org.co/pdf/bccm/v21n1/v21n1a09.pdf
https://www.corantioquia.gov.co/ciadoc/fauna/AIRNR_CN_7046_2006.pdf
https://docplayer.es/14286402-Ara-macao-cyanoptera-guacamayo-escarlata-por-jesus-gomez-pina-jose-a-valero-perez.html
https://docplayer.es/14286402-Ara-macao-cyanoptera-guacamayo-escarlata-por-jesus-gomez-pina-jose-a-valero-perez.html
http://www.scielo.org.co/pdf/bccm/v21n1/v21n1a09.pdf
b) En aves, las gónadas se forman temprano durante el desarrollo y surgen como un
engrosamiento a través de la superficie ventromedial de los mesonefros (Hamburguer y
Hamilton, 1951). Previamente a la diferenciación sexual, las gónadas de ambos sexos se
componen de una capa de células epiteliales y otra de células germinales dispuestas en
distintas posiciones del primordio. Al inicio de la diferenciación sexual gonadal, en los
embriones ZZ existe un condensamiento de células en la región medular cuya asociación con
las CGP promueve la aparición de los cordones sexuales y la regresión del epitelio cortical.
En los embriones ZW, solo la gónada izquierda se desarrolla como un ovario, y esto se debe a
una fragmentación medular e hipertrofia del epitelio germinal de la gónada derecha (Carlton
y Stahl, 1985). En la gónada femenina izquierda, a diferencia de la gónada masculina, existe
una extensa proliferación celular y un aumento de tamaño del compartimiento cortical,
mientras que los cordones medulares se vuelven huecos y forman lagunas (De Falco y Capel,
2009).
https://repositorioinstitucional.buap.mx/bitstream/handle/20.500.12371/5229/100414TL.pdf?
sequence=1&isAllowed=y
En cuanto a los principales genes que juegan un papel importante en la determinación del
sexo en las aves encontramos el gen DMRT1 y HINTW (Raymond et al., 1999). El gen
DMRT1 se encuentra ausente en W y en los embriones de las aves, se expresa sólo en las
gónadas y en los conductos de Müllerianos en donde la expresión es más alta en los machos
https://repositorioinstitucional.buap.mx/bitstream/handle/20.500.12371/5229/100414TL.pdf?sequence=1&isAllowed=y
https://repositorioinstitucional.buap.mx/bitstream/handle/20.500.12371/5229/100414TL.pdf?sequence=1&isAllowed=y
https://repositorioinstitucional.buap.mx/bitstream/handle/20.500.12371/5229/100414TL.pdf?sequence=1&isAllowed=y
que en las hembras. Entre tanto el gen HINTW se encuentra presente tanto en el cromosoma
W y Z, pero la actividad dominante de este inhibe bioquímicamente la función de HINTZ,
permitiendo que se exprese fuertemente en los embriones femeninos y de esta manera
participa en una forma activa en el desarrollo de las gónadas, llevando a la diferenciación
sexual (Pace y Brenner, 2003; Moriyama et al.,
2006).http://www.scielo.org.co/pdf/abc/v14n1/v14n1a02.pdf
los machos de la especie poseen un cráneo más alargado y a su vez profundo, su nuca es
menos pronunciada y poseen una posición ocular más rostral en comparación de las hembras,
corroborando así la hipótesis que la cabeza de los machos es más alargada que en las
hembras, los machos de Ara macao a su vez poseen una posición del ojo más rostral que las
hembras.
.https://repositorio.utp.edu.co/server/api/core/bitstreams/e1f1ff8d-e04e-459f-8b83-ada644b50
192/content
4. GÓNADAS MACHO LUISA
. Algunas células de Sertoli se diferencian en células de Leydig esteroidogénicas. ( B ) El
testículo tiene en la ves la determinacion de cromosomas, en macos el par de cromosomas es
homogametico (ZZ) , mientras que en la hembra es heterogametico(ZW), los genes
derteminantes del sexo estan mediados por HITNW ligado al cromosoa W y el DRMTI
ligado a en cromosoma Z, lasgonadas embrionarias son de origen mesodermico y se forman
en la superficie medial de los riñones, en aves el primer indicio del desarrollo goadal es la
aparicion de la cresta genital un engrosamiento local del epitelio celiomico que recubre el
mesonefros y una acumulacion de mesenquima inmediatamente debajo del epiteli, en esta
etapa las Las gónadas en esta etapa se consideran “indiferentes” o “bipotenciales”, aunque su
destino ya está determinado por la constitución de sus cromosomas sexuales (ZZ o ZW).
Hasta E5.5 (etapa 27), la gónada indiferenciada comprendía el epitelio celómico externo y los
cordones de células subyacentes (los llamados "cordones medulares") intercalados con
células mesenquimales sueltas ( Figura 2 A). La gónada izquierda (en ambos sexos) es algo
más grande que la derecha y acumula una mayor cantidad de células germinales [ 50 , 54]. A
medida que avanza el desarrollo, esta asimetría gonadal izquierda-derecha se vuelve muy
marcada en las hembras, pero se reduce en los machos. La asimetría gonadal está impulsada
por la acción sesgada hacia la izquierda del gen PITX2 en el pollo. Los primeros marcadores
genéticos de la gónada antes de la diferenciación sexual incluyen el factor de transcripción,
LHX1, y la molécula de señalización, FGF9 , expresada en el epitelio de la superficie
gonadal, y SF1 (Ad4BP) y PAX2 , expresados en el mesénquima subyacente [ 55 , 56 ]. El
factor de transcripción, GATA4, se expresa en el epitelio externo y la médula subyacente.
El primer signo morfológico evidente de la formación de testículos es el agrandamiento y la
proliferación de células somáticas en los cordones medulares de la gónada ( Figura 2 A) [ 51
, 69 ]. Estas células representan el linaje de células pre-Sertoli. Estas células se organizan en
los cordones de tipo epitelial medular, elaboran la membranabasal y encierran las CGP. En el
http://www.scielo.org.co/pdf/abc/v14n1/v14n1a02.pdf
https://repositorio.utp.edu.co/server/api/core/bitstreams/e1f1ff8d-e04e-459f-8b83-ada644b50192/content
https://repositorio.utp.edu.co/server/api/core/bitstreams/e1f1ff8d-e04e-459f-8b83-ada644b50192/content
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https://www.mdpi.com/2073-4425/12/9/1459/htm#B50-genes-12-01459
https://www.mdpi.com/2073-4425/12/9/1459/htm#B54-genes-12-01459
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https://www.mdpi.com/2073-4425/12/9/1459/htm#B69-genes-12-01459
embrión de pollo, esto ocurre desde E6.0 (HH etapa 30 -31) [ 73]. Fuera de estos cordones
medulares, las células mesenquimales positivas para desmina y fibronectina dan lugar a
células intersticiales [ 74 ], el sitio del desarrollo posterior de células de Leydig mioides y
esteroidogénicas. Para E9 (HH etapa 35), los cordones testiculares (seminíferos) son
evidentes y las células mesenquimatosas sueltas se dispersan en el intersticio circundante (
Figura 2 A). La vista de gran aumento de los testículos de pollo en desarrollo en este
momento revela células de Sertoli y PGC dentro de los cordones testiculares ( Figura 2 B).
Al igual que en los mamíferos, las células de Sertoli representan el primer linaje testicular en
diferenciarse en los testículos de pollo, expresando los marcadores DMRT1 , AMH y SOX9 (
Figura 2 C, D) [ 3 ,75 ].
Del mismo modo, la expresión de WNT4 se mantiene en el ovario de pollo en
desarrollo, pero se regula a la baja durante la morfogénesis testicular [ 86 , 90 ]. De estos
cuatro factores de diagnóstico expresados en la gónada embrionaria de pollo indiferente, la
expresión de DMRT1 se mantiene en un nivel alto en los machos y se expresa en un nivel más
bajo en las hembras. DMRT1 codifica un factor de transcripción similar a un dedo de zinc con
un dominio DM de unión al ADN. Ahora se ha demostrado que este gen es el desencadenante
genético principal para la formación de testículos en el pollo [ 24 , 67 ], y probablemente en
todas las aves [61 ]. Un estudio comparativo reciente realizado en nuestro laboratorio
encontró que PAX2 y DMRT1 exhiben expresión conservada en las gónadas embrionarias de
codorniz japonesa ( Coturnix japonica ), pinzón cebra ( Taeniopygia guttata ) y emú (
Dromaius novaehollandiae ). Estas especies representan cada uno de los principales clados de
aves (Galliformes, Neoaves y Paleaognaths) (Estermann et al. en prensa). En cada especie, la
expresión de PAX2 se extingue a medida que se activa la expresión de DMRT1 . Al igual que
en el pollo, DMRT1 se expresa más en las gónadas masculinas que en las femeninas de
codorniz, pinzón y emú.
En las gónadas embrionarias de pollo, DMRT1 se expresa en el linaje celular de soporte
de ambos sexos (células pre-Sertoli en machos y progenitores de células fetales pre-granulosa
en hembras). Sin embargo, siempre se expresa más en los hombres, lo que refleja la falta de
inactivación global de Z [ 112 , 113 , 114 ]. Esta diferencia inicial de dos veces en la
expresión de DMRT1 entre los sexos es suficiente para impulsar la formación de testículos en
lugar de la formación de ovarios. La inactivación de DMRT1 en embriones de pollo ZZ
mediante el uso de ARN de horquilla corta entregados viralmente da como resultado la
feminización de las gónadas, con regulación a la baja de SOX9 y AMH , y regulación al alza
de los marcadores ováricos, FOXL2 y aromatasa [ 67 ].]. Por el contrario, la expresión
errónea de DMRT1 en las gónadas ZW por electroporación in ovo da como resultado la
activación ectópica de SOX9 y AMH , y la interrupción de la expresión de aromatasa [ 75 ].
Más recientemente, se utilizó la edición del genoma CRISPR/Cas9 para eliminar una copia de
DMRT1 en el pollo, lo que provocó que las aves ZZ desarrollaran gónadas u ovarios
feminizados. Se han informado dos estudios diferentes. Ioannidis y sus colegas utilizaron
oligonucleótidos monocatenarios (ssODN) para introducir una mutación con pérdida de
función y la inactivación monoalélica de DMRT1 . Esto resultó en un claro desarrollo de
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https://www.mdpi.com/2073-4425/12/9/1459/htm#B3-genes-12-01459
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https://www.mdpi.com/2073-4425/12/9/1459/htm#B86-genes-12-01459
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https://www.mdpi.com/2073-4425/12/9/1459/htm#B24-genes-12-01459
https://www.mdpi.com/2073-4425/12/9/1459/htm#B67-genes-12-01459
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https://www.mdpi.com/2073-4425/12/9/1459/htm#B67-genes-12-01459
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ovario en aves genéticamente macho (ZZ) (embriones y adultos) [ 24 ]. Lee y otros. usó un
NHEJ (unión de extremos no homólogos) mediado por Cas9 para generar un alelo DMRT1
interrumpido a través de la inserción de GFP. Encontraron feminización, pero no formación
completa de ovarios en aves DMRT1 -/Z , quizás debido a algunos efectos secundarios [ 115
]. Sin embargo, en general, los datos actuales confirman que DMRT1 es el desencadenante
genético maestro ligado a Z para la formación de testículos en el pollo [ 24 , 115 ]. La pérdida
de la expresión de DMRT1 es prescindible para el desarrollo de los ovarios de pollo, aunque
la ovogénesis se ve afectada. Con base en estos estudios, actualmente se considera que la
expresión elevada de DMRT1en embriones aviares ZZ antagoniza el eje FOXL2-Aromatasa
en los cordones medulares, lo que de otro modo da como resultado la síntesis de estrógenos y
la diferenciación ovárica [ 24 ]. Sin embargo, cuando se elimina una copia de DMRT1 en las
aves ZZ, el resto del cuerpo permanece "masculino", con peso, cresta y barba de tipo
masculino, lo que respalda la noción de identidad sexual autónoma celular, como se discutió
anteriormente [ 24 ].
La expresión de DMRT1 enriquecida en testículos se conserva durante el desarrollo
gonadal en otras especies de aves. Recientemente hemos informado sobre la regulación
masculina al inicio de la diferenciación sexual gonadal en representantes de cada uno de los
principales clados de aves (Galliformes, Neoaves y Palaeognaths). Al igual que en el pollo,
DMRT1 está regulado al alza por los machos durante el desarrollo gonadal embrionario en
todas las demás aves examinadas, incluidas diversas especies como la codorniz japonesa, el
pinzón cebra y el emú (Estermann et al., en prensa) [ 61 ]. Lo mismo se aplica al desarrollo
embrionario de las gónadas en el pato Muscovy [ 116 ]. Estos datos indican fuertemente que
DMRT1 ligado a Zes el principal regulador de la formación de testículos en todas las aves, en
consonancia con su profunda conservación y función en los testículos de otros animales. En
las aves, DMRT1 puede haber sido uno de los primeros genes en expresarse diferencialmente
entre los sexos al principio de la evolución de los cromosomas sexuales Z y W. Se espera que
otros genes específicos de machos también hayan sido reclutados y enriquecidos en la Z aviar
[ 117 , 118 ], a la luz del concepto CASI. A través del análisis de las regiones reguladoras 5',
se ha propuesto que DMRT1 primero desempeñó un papel en el desarrollo decélulas
germinales en vertebrados (peces), pero luego fue reclutado por las células somáticas de las
gónadas, donde adquirió un papel en la especificación de células de Sertoli. también [ 107].
Esto se aplicaría a las aves y los reptiles, pero en los mamíferos, el papel inicial de DMRT1
ha sido suplantado por el gen SRY ligado al cromosoma Y , al menos entre los euterios.
Si bien el desencadenante genético para la formación de testículos difiere entre los
vertebrados, la jerarquía genética aguas abajo se conserva, al menos en parte [ 125 ]. En las
aves, DMRT1 participa en la vía de desarrollo de los testículos durante la embriogénesis
temprana.La Figura 4 muestra el patrón de expresión temporal de DMRT1 junto con otras
proteínas testiculares clave, SOX9, AMH y HEMOGEN ligado a Z ( HEMGN ). DMRT1 se
expresa primero, al menos desde E4.5 (etapa 25). Posteriormente, se detecta HEMGN , en
niveles variables entre las células, desde E5.5 (etapa 28), junto con SOX9, que se expresa de
manera más homogénea. Esto es seguido por AMHexpresión de proteínas ( Figura 4 ). SOX9
es un gen concentrador central requerido para el inicio del desarrollo de células pre-Sertoli en
la médula gonadal. SOX9 es un factor de transcripción de caja SOX de la misma familia que
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https://www.mdpi.com/2073-4425/12/9/1459/htm#B115-genes-12-01459
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SRY. En ratones o humanos, el gen SOX9 se activa mediante la acción concertada de SRY y
SF1, que se unen a la región reguladora de SOX9 [ 126 , 127 , 128 , 129 , 130 ]. En pollos,
codornices y patos, SOX9 está regulado por machos durante la formación de testículos [ 131 ,
132 , 133 ]. La evidencia indirecta indica que DMRT1 activaSOX9 durante la especificación
de celdas pre-Sertoli. La expresión de SOX9 se regula a la baja después de la caída de
DMRT1 en las gónadas masculinas (ZZ), y se activa ectópicamente cuando DMRT1 se
expresa incorrectamente en las gónadas femeninas (ZW) [ 24 , 67 , 75 ]. Al igual que en otros
vertebrados, es probable que esto desencadene la diferenciación de las células del cordón
medular somático en el linaje de células pre-Sertoli [ 134 ]. En los mamíferos, uno de los
principales objetivos de SOX9 es la AMH , una glicoproteína de diagnóstico de las células de
Sertoli responsable de la regresión del conducto de Müller [ 135 ]. En consecuencia, las
transcripciones de Sox9 se detectan primero antes de AMHtranscripciones en el embrión de
ratón. Sin embargo, el pollo es notablemente diferente; El ARNm de AMH se expresa por
primera vez antes que el ARNm de SOX9 (E4.5 frente a E6.5), y en ambos sexos, aunque
siempre se expresa más en los machos [ 85 , 136 , 137 ]. ( La AMH también se expresa en las
gallinas porque el conducto de Müller derecho también retrocede, en consonancia con la
regresión de la gónada femenina derecha). Los datos indican que SOX9 no activa la
expresión del gen AMH en el modelo aviar, aunque puede mantenerla. AMH puede ser
activado por DMRT1 , ya que la expresión de AMH disminuye después de DMRT1caída,
aunque falta evidencia directa. Otra posibilidad es que, mientras que la transcripción de AMH
se inicia antes que la de SOX9 , su traducción a proteína se puede retrasar, ocurriendo después
de la de SOX9 , como sugiere la inmunofluorescencia que se muestra en la Figura 4 .
Se ha demostrado que HEMOGN desempeña un papel en el desarrollo de testículos
embrionarios de pollo. Este gen codifica un factor de transcripción localizado en el núcleo
con un papel en la modulación de la hematopoyesis [ 150 ]. Una pantalla basada en la
expresión reveló que HEMGN se expresaba en gónadas embrionarias de pollo masculinas
pero no femeninas, y en el linaje de células clave de Sertoli [ 68 ]. Al igual que DMRT1 ,
HEMGN está ligado a Z en el pollo, aunque su expresión se inicia después de la de DMRT1 ,
como se muestra en la Figura 4 [ 68 , 75 ]. La sobreexpresión de DMRT1 en gónadas
embrionarias de pollo hembra puede inducir HEMGNexpresión, lo que implica además que
se encuentra aguas abajo de DMRT1 [ 75 ]. La sobreexpresión de HEMGN en las gónadas
femeninas puede inducir la masculinización, con expresión ectópica de SOX9 y represión de
los marcadores femeninos, FOXL2 y Aromatasa [ 68 ]. Curiosamente, este experimento
también regula al alza DMRT1 , lo que implica una relación de retroalimentación positiva
entre los dos factores. No se ha informado de la eliminación o eliminación selectiva de
HEMGN . Sin embargo, curiosamente, la expresión de HEMGN no se ha detectado en las
gónadas embrionarias de otras aves, como el pinzón cebra y el emú [ 61 ]. El papel de
HEMGNen la diferenciación del linaje de células de Sertoli podría ser específico de pollo (o
Galliform).
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https://www.mdpi.com/2073-4425/12/9/1459/htm#B75-genes-12-01459
https://www.mdpi.com/2073-4425/12/9/1459/htm#B134-genes-12-01459
https://www.mdpi.com/2073-4425/12/9/1459/htm#B135-genes-12-01459
https://www.mdpi.com/2073-4425/12/9/1459/htm#B85-genes-12-01459
https://www.mdpi.com/2073-4425/12/9/1459/htm#B136-genes-12-01459
https://www.mdpi.com/2073-4425/12/9/1459/htm#B137-genes-12-01459
https://www.mdpi.com/2073-4425/12/9/1459/htm#fig_body_display_genes-12-01459-f004
https://www.mdpi.com/2073-4425/12/9/1459/htm#B150-genes-12-01459
https://www.mdpi.com/2073-4425/12/9/1459/htm#B68-genes-12-01459
https://www.mdpi.com/2073-4425/12/9/1459/htm#fig_body_display_genes-12-01459-f004
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Más recientemente, se ha utilizado RNA-seq de una sola célula (scRNA-seq) para
proporcionar información sobre la red reguladora de genes activada por DMRT1 y la
inducción de la especificación del linaje celular. En comparación con las mujeres (ZW), la
mayor expresión de DMRT1 en los hombres (ZZ) induce una rápida regulación positiva de
miles de genes que da como resultado la diferenciación de las células de Sertoli, incluidos
factores conocidos como AMH y SOX9 , y factores previamente desconocidos [ 86 ]. El
scRNA-seq indica que además de estas células de Sertoli "típicas", expresan niveles más altos
de DMRT1 , SOX9 y AMH, se identificó un segundo tipo de células de Sertoli en testículos de
pollo embrionario. Estas células de Sertoli "tipo 2" expresan los mismos marcadores que las
células de Sertoli típicas, pero en niveles más bajos [86 ]. En E10.5, estas dos poblaciones
aparecen en diferentes regiones testiculares. Las células de Sertoli típicas se encuentran en los
cordones testiculares basales, mientras que las células de tipo 2 se localizan en los cordones
testiculares periféricos. Las células de Sertoli tipo 2 expresan niveles bajos de genes
mitocondriales y niveles altos de GSTA2 y CBR4 ( Figura 5 ) [ 86 ]. Estas diferencias
apuntan a una diferencia metabólica entre los tipos de células de Sertoli. Curiosamente, las
células madre tienden a depender del metabolismo glucolítico en lugar de la respiración
oxidativa mitocondrial [ 151], lo que sugiere que las células de tipo 2 podrían ser una
población similar a un tallo de células de Sertoli. Los dos tipos de células pueden representar
dos estados de maduración de las células de Sertoli. Las células de soporte apicales son las
primeras en regular al alza los marcadores de células de Sertoli como AMH y SOX9, lo que
sugiere una onda apical-basal de diferenciación. Por lo tanto, esto puede reflejar etapas
distintivas de la maduración de las células de Sertoli, una más madura que la otra. Se requiere
más investigación para explorar más esta dicotomía.
https://www.mdpi.com/2073-4425/12/9/1459/htm#B86-genes-12-01459
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Figura 7. Diferenciación testicular en el embrión de pollo. ( A ) Las primeras células en
diferenciarse son las células de Sertoli. Luego regulan la diferenciación de otros tipos de
células en los testículos. Las células epiteliales se vuelven escamosas, las células intersticiales
se diferencian en células mioides peritubulares y regulan positivamente ACTA2 . Las células
germinales no entran en meiosis y son detenidas en G1/G0una estructura organizada clara de
túbulos seminíferos, que contienen células de Sertoli y células germinales. Las células
mioides están presentes alrededor de esos túbulos. Las células de Leydig y las células
intersticiales se encuentran en el espacio entre los túbulos. Imagen creada con
BioRender.com.
5. GENES ANGELA
● El CHD (Chromo Helicase DNA Binding Domain) se convierte así en la etiqueta
universal para la determinación del sexo en aves, ya que tiene un papel importante en
la renovación de la cromatina, en el control de la elongación de la transcripción y
contiene al menos dos intriones que difieren en la longitud de los cromosomas Z y W.
Gen localizado en el cromosoma W y por tanto específico de las hembras. Al contrario de lo
que sucede en mamíferos donde las hembras son homogaméticas (XX) y los machos
heterogaméticos (XY), en aves la pareja de cromosomas sexuales son iguales en los machos
(ZZ) y distintos en las hembras (ZW).
● El gen WT1 proporciona instrucciones para producir una proteína que es necesaria
para el desarrollo de los riñones y las gónadas (ovarios en las mujeres y testículos en
los hombres) antes del nacimiento. Después del nacimiento, la actividad de la proteína
WT1 se limita a una estructura conocida como glomérulo, que filtra la sangre a través
de los riñones. La proteína WT1 juega un papel en el crecimiento celular, el proceso
por el cual las células maduran para realizar funciones específicas (diferenciación) y
la autodestrucción de las células (apoptosis). Para llevar a cabo estas funciones, la
proteína WT1 regula la actividad de otros genes uniéndose (uniéndose) a regiones
específicas de ADN. Sobre la base de esta acción, la proteína WT1 se denomina factor
de transcripción.
● SF-1 Factor esteroidogénico
● El papel de FGF9 (Factor de crecimiento de fibroblastos) en la determinación del sexo
comienza con su expresión en las gónadas bipotentes tanto para hembras como para
machos. [3] Una vez activado por SOX9 , es responsable de formar un bucle feedforward con
Sox9, aumentando los niveles de ambos genes. Forma un circuito de retroalimentación
positiva que regula al alza SOX9, mientras que simultáneamente inactiva la vía de
señalización Wnt4 femenina. [3] La ausencia de Fgf9 hace que un individuo, incluso un
individuo con cromosomas X e Y , se convierta en una mujer, ya que es necesario para llevar
a cabo importantes funciones de desarrollo masculinizantes, como la multiplicación de las
células de Sertoli .y creación de los cordones testiculares .
el escaso desarrollo de la gónada derecha en la hembra se ha relacionado con otros factores,
como por ejemplo, influencia hormonal o de factores de crecimiento.( Yoshioka et al 2005)
observando que el factor de crecimiento fibroblástico 9 (FGF9), es expresado en mayor
cantidad en la gónada indiferenciada del macho en comparación con la hembra, y también
https://www.wikidoc.org/index.php/FGF9#cite_note-biomedcentral-3
https://www.wikidoc.org/index.php/SOX9
https://www.wikidoc.org/index.php/Positive_feedback_loop#Examples_and_applications#in_biology
https://www.wikidoc.org/index.php/Positive_feedback_loop#Examples_and_applications#in_biology
https://www.wikidoc.org/index.php?title=Wnt4&action=edit&redlink=1
https://www.wikidoc.org/index.php/FGF9#cite_note-biomedcentral-3
https://www.wikidoc.org/index.php/Chromosome
https://www.wikidoc.org/index.php/Chromosome
https://www.wikidoc.org/index.php/Sertoli_cell
https://www.wikidoc.org/index.php/Testis_cords
que en esta última el FGF9 se expresa notoriamente en el ovario izquierdo y muy poco en el
derecho, concluyendo que este factor podría ser determinante en la ausencia de desarrollo del
ovario derecho.
6. IDENTIFICACION DEL SEXO “laparoscopia”
*Se realiza decúbito lateral izquierdo en el triángulo formado por la última costilla, borde
craneal del íleon y mitad proximal de la diafisis del femur
*introduce el trocar y luego en endoscopio
NOTA: en aves silvestres hay épocas de cría, en este periodo del año las gónadas están
inactivas por lo que se realiza el sexaje con laparoscopia en animales adultos y al principio de
la época reproductiva.
HEMBRAS
“Ovario Izquierdo poco activo”
“Ovario con actividad, se muestra la presencia de diferentes folículos” “Buho
MACHOS
“Testículos inactivos” Importante su color depende de la especie
“Testículos con actividad, se observa su volumen y vascularización”
Referencias
https://sci-hub.se/https://doi.org/10.1152/physrev.00044.2019
https://www.pnas.org/doi/10.1073/pnas.2020909118
https://www.mdpi.com/2073-4425/12/9/1459/htm
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https://www.sciencedirect.com/topics/medicine-and-dentistry/gonad
http://www.dspace.uce.edu.ec/bitstream/25000/24393/1/UCE-FMVZ-GUTIERREZ%20GLO
RIA.pdf
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https://www.youtube.com/watch?v=zUtiT0kr6bU
http://www.dspace.uce.edu.ec/bitstream/25000/24393/1/UCE-FMVZ-GUTIERREZ%20GLO
RIA.pdf
PRESENTACIÓN laura mendez
INTRODUCCIÓN
PUBERTAD luisa
OVOGENESIS: laura mendez
FOLICULOGÉNESIS laura mendez
ESPERMATOGÉNESIS cata
CICLO ESTRAL luisa
GESTACIÓN angela
DESARROLLO EMBRIONARIO Laura a.
IMPLANTACIÓN angela
PLACENTACIÓN
DESARROLLO FETAL laura a
PARTO angela
LACTACIÓN-MAMOGÉNESIS cata
LACTOGÉNESIS cami
GALACTOPOYESIS cami
https://www.sciencedirect.com/topics/medicine-and-dentistry/gonad
http://www.dspace.uce.edu.ec/bitstream/25000/24393/1/UCE-FMVZ-GUTIERREZ%20GLORIA.pdf
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