Aplicaciones de la microscopía confocal in vivo en el manejo de la queratitis infecciosa en oftalmología veterinaria

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Aplicaciones  de  la  microscopía  confocal  in  vivo  en  
el  manejo  de  la  queratitis  infecciosa  en  oftalmología  
veterinaria
1  |  PRINCIPIOS  BÁSICOS  DE  IN
Eric  C.  Ledbetter
MICROSCOPIA  CONFOCAL  VIVO
Correo  electrónico:  ecl32@cornell.edu
wileyonlinelibrary.com/journal/vop  |  1
©  2021  Colegio  Americano  de  Oftalmólogos  Veterinarios
DOI:  10.1111/vop.12928
Oftalmología  Veterinaria.  2021;00:1–12.
Recibido:  17  junio  2021  |  Revisado:  6  de  agosto  de  2021  |  Aceptado:  23  de  agosto  de  2021
REVISAR
Departamento  de  Ciencias  Clínicas,
Universidad,  Ithaca,  Nueva  York,  EE.  UU.
Eric  C.  Ledbetter,  Facultad  de  Medicina  
Veterinaria,  Hospital  para  Animales,  
Universidad  de  Cornell,  VMC  Box  24,  Ithaca,  
NY  14853­6401,  EE.  UU.
Correspondencia
PALABRAS  CLAVE
Facultad  de  Medicina  Veterinaria,  Cornell
Esta  revisión  resume  el  conocimiento  actual  y  las  aplicaciones  de  IVCM  en  el  manejo  de  la  
queratitis  infecciosa  en  oftalmología  veterinaria,  incluido  su  uso  en  animales  con  queratitis  
bacteriana,  fúngica,  parasitaria  y  viral.
La  microscopía  confocal  in  vivo  (IVCM)  es  una  técnica  de  imagen  
relativamente  nueva  en  oftalmología  clínica  que  permite  el  análisis  
morfológico  y  cuantitativo  de  la  córnea  viva  a  nivel  celular.  Los  
principios  básicos  de
No  se  requiere  la  viabilidad  de  los  microorganismos  para  su  detección  y  no  son  necesarios  
procedimientos  de  ensayo  de  laboratorio  de  diagnóstico  especializados.  Muchos  agentes  
infecciosos  más  grandes  pueden  identificarse  directamente  dentro  de  las  lesiones  corneales  
mediante  IVCM,  incluidos  hongos  y  parásitos  como  Acanthamoeba  spp.  En  otras  situaciones,  
como  la  queratopatía  cristalina  infecciosa  bacteriana,  los  sistemas  biológicos  asociados  con  el  
microorganismo  pueden  detectarse  dentro  de  la  córnea.  La  resolución  actual  de  IVCM  es  
inadecuada  para  visualizar  directamente  algunos  agentes  infecciosos  de  la  córnea,  como  los  
virus  del  herpes,  pero  se  pueden  identificar  las  respuestas  del  huésped  y  las  células  epiteliales  infectadas  por  virus.
El  microscopio  confocal  se  desarrolló  por  primera  vez  a  fines  de  la  
década  de  1950,  pero  las  primeras  descripciones  publicadas  de  
imágenes  oculares  in  vivo  que  utilizan  estas  técnicas  no  aparecieron  
hasta  la  década  de  1990.1–3  Todos  los  microscopios  confocales  in  
vivo  utilizan  pequeñas  aberturas  y  vías  de  iluminación  y  observación  
con  un  punto  focal  común.4,5  La  luz  reflejada  que  no  está  enfocada  
y  se  origina  fuera  del  campo  de  observación,  es
Abstracto
La  microscopía  confocal  in  vivo  (IVCM)  es  una  técnica  de  imagen  ocular  relativamente  nueva  
que  permite  la  evaluación  morfológica  y  cuantitativa  de  la  córnea  viva  a  nivel  celular.  Las  
aplicaciones  de  IVCM  en  oftalmología  clínica  son  numerosas  y  diversas.  Hay  varias  ventajas  
inherentes  a  la  IVCM  sobre  las  técnicas  de  diagnóstico  estándar  utilizadas  actualmente  para  
confirmar  un  diagnóstico  de  queratitis  infecciosa  en  oftalmología  veterinaria.  Con  IVCM,  las  
imágenes  se  pueden  ver  en  tiempo  real  proporcionando  información  de  diagnóstico  inmediata.  
Se  evitan  las  técnicas  traumáticas  de  muestreo  corneal  y  el  procedimiento  se  puede  repetir  
con  la  frecuencia  que  esté  clínicamente  indicada  sin  riesgo  de  daño  al  tejido  corneal.  Tanto  las  
lesiones  corneales  superficiales  como  las  profundas  pueden  evaluarse  mediante  IVCM  de  
forma  atraumática.
acanthamoeba,  bacterias,  córnea,  hongos,  herpesvirus,  microscopía  confocal  in  vivo
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mailto:ecl32@cornell.edu
www.wileyonlinelibrary.com/journal/vop
En  la  mayoría  de  las  condiciones,  los  microscopios  confocales  in  
vivo  actuales  tienen  aumento  y  resolución  insuficientes  para  permitir  
la  identificación  de  bacterias  individuales  dentro  de  cor
La  microscopía  confocal  in  vivo  proporciona  varias  ventajas  
sobre  las  técnicas  estándar  de  diagnóstico  citológico,  histopatológico,  
molecular  y  microbiológico  que  se  utilizan  actualmente  para  
confirmar  un  diagnóstico  de  queratitis  infecciosa  en  oftalmología  
veterinaria.  Con  IVCM,  las  imágenes  microscópicas  de  la  córnea  
se  pueden  ver  en  tiempo  real  y  le  brindan  al  médico  información  
diagnóstica  inmediata.  Se  evitan  las  técnicas  traumáticas  de  toma  
de  muestras  de  la  córnea,  como  los  raspados  y  las  biopsias,  lo  que  
evita  el  daño  tisular  innecesario  y  permite  que  el  procedimiento  se  
repita  con  la  frecuencia  clínicamente  indicada. ,  y  manera  de  bajo  
riesgo.  No  se  requiere  la  viabilidad  de  los  microorganismos  para  la  
detección,  lo  que  evita  los  problemas  que  pueden  surgir  cuando  se  
recolectan  muestras  para  cultivo  después  de  la  administración  de  
antimicrobianos,  cuando  hay  microorganismos  exigentes  o  cuando  
se  pierde  la  viabilidad  de  los  microorganismos  durante  el  transporte  
de  muestras  de  córnea  a  laboratorios  de  diagnóstico.7  Técnicas  de  
diagnóstico  especializadas,  como  como  cultivo  para  amebas  
patógenas,  que  no  están  ampliamente  disponibles  en  algunos  
laboratorios  de  diagnóstico  veterinario,  también  se  evitan.
en  córneas  de  conejo,  estructuras  nucleoides  de  10  µm  eran  
visibles  con  IVCM  y  se  especuló  que  representaban  bacilos  
intraestromales.13
suprimido  para  que  sólo  la  luz  reflejada  desde  el  plano  focal  
contribuya  a  la  formación  de  la  imagen  final.  Los  sistemas  de  
microscopía  confocal  mejoran  drásticamente  la  resolución  axial  y  
lateral  y  permiten  el  uso  de  mayor  aumento  que  el  que  se  logra  con  
la  microscopía  óptica.4,5  El  ajuste  óptico  del  plano  focal  del  
microscopio  confocal  permite  obtener  imágenes  a  diferentes  
profundidades  de  tejidos  ópticamente  transparentes,  como  la  
córnea  Para  compensar  el  pequeño  campo  de  visión  inherente  a  
estos  instrumentos,  el  punto  focal  se  escanea  rápidamente  
repetidamente  y  la  imagen  se  reconstruye  digitalmente  para  verla  
en  tiempo  real.
Un  pequeño  número  de  informes  humanos  y  experimentales  
tempranos  describen  la  identificación  presuntiva  de  bacterias  por  
IVCM.  En  una  serie  de  casos  de  dos  pacientes  con  queratitis  
bacteriana  relacionada  con  lentes  de  contacto,  se  identificaron  
estructuras  hiperreflectantes  de  1,5  a  2,0  µm  de  diámetro  en  el  
estroma  subepitelial  con  un  microscopio  confocal  in  vivo  de  luz  
blanca  hecho  a  medida  que  se  suponía  que  representaban  cocos  
bacterianos .  Se  cultivaron  Staphylococcus  y  Streptococcus  spp.,  a  
partir  de  muestras  de  córnea  de  los  pacientes).12  Después  de  la  
inyección  intraestromal  experimental  de  Bacillus  cereus
Este  manuscrito  resume  el  conocimiento  actual  y  las  aplicaciones  
de  IVCM  en  el  manejo  de  la  queratitis  infecciosa  en  oftalmología  
veterinaria.  Para  los  fines  de  esta  revisión,  la  queratitis  infecciosa  
se  organiza  en  las  siguientes  categorías  clínicas  generales  basadas  
en  los  agentes  etiológicos:  queratitis  bacteriana,  queratitis  fúngica,  
queratitis  parasitaria  y  queratitis  viral.  También  se  discuten  
brevemente  los  aspectos  comparativos  de  la  IVCM  en  oftalmología  
humana,  con  un  énfasis  particular  en  la  identificación  visual  de  
agentes  infecciosos  dentro  de  la  córnea  mediante  la  IVCM  y  los  
procesos  de  enfermedades  de  queratitis  infecciosa  donde  la  IVCM  
podría  aplicarse  en  la  oftalmologíaveterinaria  en  el  futuro.
Las  limitaciones  de  IVCM  incluyen  el  campo  de  visión  
relativamente  pequeño  incluido  en  los  escaneos  de  microscopio  
individuales  y  la  dependencia  de  la  técnica  en  el  nivel  de  experiencia  
del  examinador.  El  área  de  la  córnea  que  se  evalúa  en  un
Nocardia  spp.  Son  bacterias  aeróbicas,  grampositivas,  
delgadas,  ramificadas  y  filamentosas.  Aunque  típicamente  <1,5  µm  
de  diámetro,  la  morfología  filamentosa  y  ampliamente  ramificada  
de  Nocardia  spp.  puede  permitir  su  identificación  por  IVCM  en  
pacientes  humanos  con  queratitis.14,15  Durante  IVCM
Muchas  de  las  limitaciones  potenciales  asociadas  con  el  uso  
de  IVCM  en  la  medicina  clínica  se  pueden  eludir  mediante  la  
selección  cuidadosa  de  pruebas  de  diagnóstico  tradicionales  
complementarias  para  la  superficie  ocular  para  emparejar  con  el  
examen  de  IVCM.  La  información  proporcionada  por  IVCM  se  
puede  utilizar  para  guiar  la  selección  de  ensayos  de  diagnóstico  
complementarios  o  confirmatorios  adicionales  y  hacerlos  más  
directamente  relevantes  para  casos  clínicos  específicos.  De  esta  
manera,  IVCM  puede  aumentar  la  precisión  diagnóstica  y  el  
rendimiento  de  los  ensayos  de  laboratorio  tradicionales.
La  experiencia  y  el  nivel  de  habilidad  del  examinador  también  son  
críticos  tanto  para  el  desempeño  como  para  la  interpretación  de  la  
IVCM  en  la  medicina  clínica.8  Varios  estudios  han  demostrado  que  
la  precisión  diagnóstica  de  la  IVCM  depende  directamente  del  nivel  
de  experiencia  del  microscopista  confocal,  particularmente  para  
diagnosticar  correctamente  la  queratitis  microbiana  y  distinguir  
proteger  las  células  huésped  de  los  microorganismos  patógenos.9–11
tejidos  finos.  Hay  varias  excepciones  notables  en  las  que  la  IVCM  
permite  la  visualización  de  bacterias  o  sus  sistemas  biológicos,  
incluidas  las  bacterias  filamentosas,  las  espiroquetas  y  la  
queratopatía  cristalina  infecciosa.
El  escaneo  individual  varía  según  el  modelo  de  microscopio  y  el  
sistema  de  lentes  que  se  utilice,  pero  en  general  el  campo  de  visión  
está  en  el  rango  de  aproximadamente  300–400  µm  x  300–400  µm.  
Cuando  se  considera  que  el  escaneo  también  se  ubica  con  
precisión  en  una  profundidad  corneal  específica,  se  pueden  pasar  
por  alto  cambios  patológicos  distantes  al  área  examinada,  o  a  
diferentes  profundidades.  Se  debe  seguir  un  enfoque  minucioso  y  
metódico  al  realizar  IVCM  para  minimizar  las  posibilidades  de  pasar  
por  alto  patologías  remotas  al  área  de  la  córnea  examinada.
El  IVCM  tampoco  proporciona  información  sobre  la  identificación  
taxonómica  y  la  susceptibilidad  a  los  antimicrobianos.
LEDMEJOR2  |
2  |  QUERATITIS  BACTERIANA
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En  el  examen,  las  Nocardia  aparecen  como  estructuras  delgadas,  
cortas,  en  forma  de  perlas,  filamentosas,  hiperreflectantes,  ramificadas  
o  entrelazadas,  con  ramificación  en  ángulo  recto.16  Estas  bacterias  
filamentosas  pueden  tener  una  longitud  de  hasta  9,0  µm  y  normalmente  
se  organizan  en  grupos  dentro  del  tejido  corneal.17
Aunque  la  resolución  actual  de  IVCM  es  inadecuada  para  
visualizar  directamente  la  mayoría  de  las  bacterias  que  causan  
queratitis  en  escenarios  clínicos,  IVCM  permite  la  evaluación  y  el  
seguimiento  de  las  respuestas  inflamatorias  y  curativas  de  la  córnea  
a  la  infección  bacteriana.  Además,  la  IVCM  permite  la  exclusión  de  
otros  patógenos  corneales  potenciales  que  son  más  fácilmente  
detectables  (p.  ej.,  infección  fúngica  o  parasitaria)  de  modo  que  se  
pueda  instituir  una  terapia  específica  para  el  agente  etiológico  
mientras  se  esperan  los  resultados  de  otros  ensayos  de  diagnóstico  
confirmatorios.
Los  hallazgos  de  IVCM  de  animales  con  infecciones  corneales  
por  espiroqueta  o  queratitis  bacteriana  filamentosa  no  son
La  queratopatía  cristalina  infecciosa  es  una  infección  corneal  única  
que  se  caracteriza  por  opacidades  del  estroma  corneal  cristalino,  
blancas,  ramificadas  y  lentamente  progresivas.23
son  bacterias  filamentosas  relacionadas  con  Nocardia  que  podrían  
ser  detectables,  con  una  morfología  básica  similar,  por  IVCM.
Se  detectó  un  objeto  hiperreflectante,  lineal,  de  36  µm  de  largo  que  
se  cree  que  representa  una  espiroqueta  de  Borrelia .  La  morfología  
única  en  forma  de  sacacorchos  de  las  espiroquetas,  junto  con  
longitudes  de  hasta  500  µm,  hacen  que  estas  bacterias  únicas  sean  
potencialmente  detectables  con  IVCM.
Nocardia  y  Actinomyces  spp.  se  han  aislado  de  casos  de  enfermedad  
de  la  superficie  ocular  en  una  variedad  de  especies  animales,  
incluidos  perros,  caballos  y  animales  salvajes.19–22  Actinomyces
visible.  La  apariencia  clínica  y  de  IVCM  de  la  queratopatía  cristalina  
infecciosa  es  el  resultado  de  la  colonización  crónica  de  los  espacios  
estromales  interlaminares  por  poblaciones  de  bacterias  que  depositan  
glicocálix.
El  IVCM  describe  la  detección  de  la  espiroqueta  Borrelia  burg  
dorferi  transmitida  por  garrapatas  dentro  de  la  córnea  de  un  paciente  
humano  con  queratitis  intersticial  y  endotelitis.18
Las  características  de  IVCM  de  perros  y  gatos  con  queratopatía  
cristalina  infecciosa  son  similares  a  las  descritas  para  pacientes  
humanos  con  esta  queratopatía.  Los  depósitos  estromales  de  
moderada  a  altamente  reflectantes  están  presentes  en  las  regiones  
corneales  que  contienen  las  estructuras  cristalinas  clínicamente  
aparentes.26  Los  depósitos  aparecen  más  comúnmente  como
descrito;  sin  embargo,  las  bacterias  filamentosas  se  reportan  como  
patógenos  infrecuentes  de  la  superficie  ocular  en  animales.
Generalmente  ocurre  con  inflamación  corneal  asociada  mínima  o  
ausente  y  con  frecuencia  un  epitelio  corneal  intacto.  La  queratopatía  
cristalina  infecciosa  se  asocia  más  comúnmente  con  la  infección  
corneal  por  estreptococos  alfa­hemolíticos  del  grupo  viridans,  pero  
otros  organismos  bacterianos  y  fúngicos  de  baja  virulencia  también  
pueden  producir  esta  lesión  corneal  distinta .  incluyen  dos  patrones  
de  lesiones  reconocibles.24,25  El  primero  consiste  en  opacidades  
claras  en  forma  de  aguja  o  cristalinas  dentro  del  estroma  corneal  que  
varían  en  tamaño,  orientación,  distribución  y  reflectividad.  
Alternativamente,  los  depósitos  estromales  amorfos  pueden  ser  
observados  por  IVCM  en  casos  humanos  de  queratopatía  cristalina  
infecciosa.  Las  bacterias  individuales  no  son
Un  Yorkshire  terrier  macho  de  11  años  de  edad,  castrado,  se  presentó  
con  opacidades  del  estroma  anterior  cristalinas  blancas  finas,  en  
forma  de  aguja  y  ramificadas  (A).  Durante  el  examen  IVCM,  
estaban  presentes  estructuras  ramificadas  lineales  altamente  
reflectantes  dentro  del  estroma  corneal  (B)  asociadas  con  una  clara  
falta  de  cambios  inflamatorios  asociados.  Barra  =  50  µm
FIGURA  1  Fotografía  digital  clínica  (A)  y  fotomicrografía  IVCM  
(B)  de  queratopatía  cristalina  infecciosa  canina.
(B)
(A)
|
2.1  |  Queratopatía  cristalina  infecciosa
3LEDMEJOR
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En  los  caballos  con  queratitis  por  hongos  filamentosos,  incluidas  
las  infecciones  por  Aspergillus  y  Fusarium  spp.,  se  observaron  
estructuras  fúngicas  lineales,  ramificadas  o  entrelazadas  e  
hiperreflectantes  de  2  a  6  μm  de  ancho  y  de  200  a  >400μm  de  
largo  dentro  de  las  córneas. .  El  informe  también  describió  hallazgos  
en  un  solo  caballo  con  queratitis  por  hongos  (Candida  albicans  se  
cultivó  a  partir  de  muestras  de  córnea).  Se  detectaron  estructuras  
hiperreflectantes  redondas  a  ovaladas  de  2  a  8  μm  de  diámetro  en  
el  caballo  con  queratitis  fúngica  por  levaduras.32  Todos  los  caballos  
incluidos  en  este  informe  tenían  el  diagnóstico  de  queratomicosis  
confirmado  por  cultivo  positivo  o  histopatología.  Además,  los  
aislamientos  fúngicos  clínicos  de  los  caballos  fueron  examinados  
por  IVCM  en
En  oftalmología  veterinaria,  se  reporta  la  IVCM  para  la  detección  
de  queratitis  fúngica  en  perros,  caballos  y  alpacas;  sin  embargo,  
esta  tecnología  es  fácilmente  adaptable  a  diferentes  y  diversas  
especies  animales.32–36  La  capacidad  de  lograr  un  diagnóstico  
etiológico  definitivo  con  relativa  rapidez  en  contraste  con  muchos  
otros  ensayos  de  diagnóstico  para  la  queratitis  fúngica  (p.  ej.,  
cultivo  fúngico)  y  la  capacidad  de  evaluar  enfermedades  no  
ulcerosas ,  las  lesiones  profundas  del  estroma  corneal  resaltan  
algunas  de  las  ventajas  proporcionadas  por  la  IVCM  en  animales  con  queratitis  fúngica.37
in  vitro  en  placas  de  cultivo  de  agar  y  ex  vivo  utilizando  córneas  
equinas  infectadas  experimentalmente  para  confirmar  la  morfología  
de  los  hongos.  La  apariencia  microscópica  confocal  in  vivo  de  los  
hongos  fue  consistente  con  las  morfologías  del  organismo  
observadas  durante  el  examen  confocal  de  cultivos  in  vitro  y  las  
córneas  equinas  infectadas  ex  vivo.32
estructuras  cristalinas  ramificadas  finas,  en  forma  de  aguja,  que  a  
menudo  asumen  patrones  estrellados  (Figura  1).  Con  menos  
frecuencia,  los  depósitos  son  más  grandes  y  adoptan  la  apariencia  
de  estructuras  ramificadas  lineales  gruesas,  formas  geométricas  
aleatorias  o  son  amorfos.  En  contraste  con  las  descripciones  de  
casos  humanos,  tanto  las  estructuras  cristalinas  en  forma  de  aguja  
como  las  estructuras  amorfas  o  geométricas  más  grandes  a  
menudo  están  presentes  simultáneamente  en  la  misma  córnea  de  
perros  y  gatos  con  queratopatía  cristalina  infecciosa.26  Una  clara  
falta  de  núcleos  de  queratocitos,  nervios,  vasos ,  y  leucocitos  en  la  
región  corneal  en  la  vecindad  inmediata  de  la  lesión  de  queratopatía  
cristalina  infecciosa  también  es  típico  tanto  en  perros  como  en  
gatos  con  queratopatía  cristalina  infecciosa.26
Un  estudio  más  reciente35  evaluó  caballos  específicamente  
con  queratomicosis  no  ulcerosa  epitelial  y  subepitelial  por  IVCM.  
Se  cultivaron  hongos  filamentosos  de  muchos  de  los  caballos,  
incluidos  Aspergillus,  Fusarium  y  Penicillium  spp.  Usando  IVCM,  
queratomicosis  epitelial
La  queratitis  fúngica  es  una  de  las  aplicaciones  más  prácticas  y  
beneficiosas  de  la  IVCM  en  el  entorno  clínico.  Las  formas  
filamentosas  multicelulares  de  los  mohos  son  estructuras  biológicas  
relativamente  grandes  y  las  hifas  son  fácilmente  discernibles  
durante  la  IVCM  (Figura  2).  Aunque  es  más  difícil  distinguirlas  de  
las  células  huésped,  la  levadura  también  se  puede  reconocer  
durante  el  examen  IVCM  (Figura  3).  Se  han  publicado  numerosas  
descripciones  del  uso  de  IVCM  en  el  tratamiento  de  la  queratomía  
cosis  en  pacientes  humanos.27–31
En  un  informe32  de  caballos  con  queratomicosis,  incluidos  
caballos  con  queratitis  ulcerosa  y  abscesos  estromales  profundos,  
los  hallazgos  inespecíficos  de  IVCM  en  las  córneas  incluyeron  
infiltrados  de  leucocitos,  queratocitos  activados,  infiltrados  de  
células  dendríticas  del  estroma  anterior  y  vascularización.
3  |  QUERATITIS  FÚNGICA
LEDMEJOR4  |
(A)
(B)
FIGURA  2  Fotografía  digital  clínica  (A)  y  fotomicrografía  IVCM  
(B)  de  un  caballo  con  queratitis  fúngica  estromal  profunda.  Un  
Paint  Horse  americano  de  20  años  de  edad,  macho  castrado,  se  
presentó  con  un  infiltrado  leucocitario  estromal  profundo  adyacente  a  
la  membrana  de  Descemet  (flecha)  (A).  Durante  el  examen  IVCM,  
hifas  fúngicas  lineales,  ramificadas  e  hiperreflectantes  están  
presentes  dentro  de  la  lesión  (B).  Barra  =  50  µm
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|LEDMEJOR 5
(A)
(B)
FIGURA  3  Fotografía  digital  clínica  (A)  y  fotomicrografía  IVCM  
(B)  de  un  perro  con  queratitis  fúngica  ulcerosa  del  estroma  superficial.  
Una  hembra  bulldog  francés  intacta  de  3  meses  de  edad  se  presentó  
con  una  úlcera  corneal  del  estroma  anterior  asociada  con  un  denso  
infiltrado  leucocitario  perilesional,  edema  y  vascularización  periférica  (A).  
Durante  el  examen  IVCM,  se  mezclaron  estructuras  fúngicas  altamente  
reflectantes,  lineales,  ramificadas  y  bifurcadas  (hifas  y  pseudohifas)  
con  estructuras  circulares  y  ovaladas  hiperreflectantes  (levadura)  dentro  
del  estroma  corneal  (B).  El  hongo  pleiomorfo  Candida  albicans  se  cultivó  
a  partir  de  muestras  de  córnea.
Barra  =  50  µm
La  morfología  de  estos  hongos  parecía  similar  a  lo  informado  
en  caballos  con  queratomicosis.32,34–36  La  apariencia  
morfológica  de  los  hongos  por  IVCM  también  se  confirmó  
mediante  el  examen  de  córneas  caninas  ex  vivo  inoculadas  
experimentalmente  con  aislamientos  clínicos.  En  un  estudio,  
también  se  realizaron  exámenes  microscópicos  confocales  en  
serie  en  los  perros  durante  varias  semanas  para  guiar  su  
tratamiento  con  terapias  antimicóticas .  acortamiento  y  fractura  
de  las  hifas),  disminución  del  número  de  leucocitos,  restauración  
de  las  capas  epiteliales  de  la  córnea  y  aumento  del  número  de  
núcleos  de  queratocitos  visibles.  Ningún  perro  tuvo  una  
recurrencia  de  la  queratitis  fúngica  después  de  la  interrupción  
del  medicamento  cuando  la  duración  del  tratamiento  estuvo  
directamente  guiada  por  los  hallazgos  de  la  IVCM.34  El  uso  
de  la  IVCM  para  monitorear  la  respuesta  terapéutica  y  la  
duración  en  casos  de  queratitis  fúngica  también  se  describe  en  
pacientes  humanos.31,38  ,39  Este  enfoque  clínico
El  examen  de  caballos  con  queratomicosis  subepitelial  por  
IVCM  reveló  que  la  morfología  y  organización  de  las  células  
epiteliales  corneales  eran  relativamente  normales.35  No  había  
hifas  fúngicas  en  el  epitelio  corneal  y  solo  había  unos  pocos  
leucocitos  dispersos.  Acumulaciones  densas  numerosas  y  
multifocales  de  hifas,  con  cantidades  moderadas  de  leucocitos  
circundantes,  estaban  presentes  en  el  estroma  subepitelial.  Los  
núcleos  de  queratocitos  estaban  ausentes  en  el  estroma  en  la  
vecindad  inmediata  de  las  hifas.  También  estaban  presentes  
acumulaciones  discretas  multifocales  de  material  altamente  
reflectante  en  el  estroma  subepitelial  inmediato.  La  densidad  y  
la  reflectividad  de  estos  materiales  impidieron  una  evaluación  
detallada  de  la  composición  de  la  mayoría  de  estas  
acumulaciones;  sin  embargo,  fue  evidente  en  los  caballos  
examinados  que  estaban  compuestos  al  menos  parcialmente  de  hifas.35
se  caracterizó  por  un  epitelio  corneal  desorganizado  y  
displásico.  El  desprendimiento  de  las  células  epiteliales  
superficiales  y  los  defectos  epiteliales  de  espesor  parcial  
estaban  comúnmente  presentes  en  los  caballos.  Los  defectos  
epiteliales  de  espesor  parcial  aparecían  como  hoyos  o  
depresiones  en  el  epitelio  que  estaban  revestidos  lateral  y  
posteriormente  por  capas  de  célulasepiteliales.35  Hifas  raras  y  leucocitos  ocasionales
Se  describen  hallazgos  similares  de  IVCM  en  perros  con  
queratitis  fúngica.34,36  La  IVCM  evaluó  la  queratitis  ulcerosa  
fúngica  y  los  abscesos  del  estroma  profundo  en  los  perros.  Se  
describieron  infecciones  corneales  por  una  mezcla  de  hongos  
filamentosos  (es  decir,  Fusarium  spp.  y  hongos  dematiáceos)  
y  levaduras  (es  decir,  Candida,  Malassezia  y  Rhodotorula  spp.).34,36
estaban  presentes  en  las  capas  epiteliales  superficiales  de  los  
caballos  con  queratomicosis  epitelial.  Las  hifas  a  menudo  
parecían  diseccionar  y  migrar  entre  las  células  epiteliales  de  la  
córnea  y  los  filamentos  de  las  hifas  eran  visibles  extendiéndose  
entre  múltiples  células .  defectos  Muchas  hifas  estaban  
presentes,  con  una  distribución  difusa,  en  las  capas  epiteliales  
más  profundas  adyacentes  a  la  membrana  basal.  El  estroma  
anterior  parecía  normal  con  una  distribución  normal  de  núcleos  
de  queratocitos  y  ausencia  de  hifas  o  leucocitos  en  todos  los  
caballos  descritos.35
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LEDMEJOR6  |
(A)
(D)
(C)
(B)
3.1  |  Diagnóstico  
diferencial  de  objetos  corneales  lineales  
durante  microscopía  confocal  in  vivo
FIGURA  4  Fotomicrografías  IVCM  (A,  B,  C,  D)  de  
estructuras  corneales  lineales  que  pueden  
confundirse  con  hifas  fúngicas.
Barras  =  50  µm
Estas  estructuras  incluyen  nervios  corneales
(A:  plexo  nervioso  subbasal  felino),  vasos  
sanguíneos  corneales  (B:  vascularización  corneal  
equina),  cuerpos  extraños  corneales  
microscópicos  (C:  cerdas  de  vilano  de  
bardana  en  la  córnea  equina)  y  artefactos  
de  compresión  (flechas)  que  resultan  de  una  
presión  de  aplanación  excesiva  en  la  córnea  (D  
–  artefactos  de  compresión  en  una  córnea  
canina).  Cada  una  de  estas  estructuras  
corneales  se  puede  distinguir  de  los  elementos  
fúngicos  mediante  la  evaluación  de  su  forma,  
reflectividad,  tamaño,  patrón  de  ramificación  y  
ubicación  dentro  de  la  córnea.
Aunque  la  aparición  de  hifas  fúngicas  con  IVCM  es  
relativamente  distinta,  otras  estructuras  corneales  lineales  pueden
ser  detectado  en  la  córnea  sana  y  enferma  por  IVCM  que  
debe  distinguirse  de  los  elementos  fúngicos.  Estas  
estructuras  incluyen  nervios  corneales,  vasos  sanguíneos,  
cuerpos  extraños  microscópicos  y  artefactos  de  compresión  
que  resultan  de  una  presión  de  aplanación  excesiva  sobre  
la  córnea  por  el  objetivo  del  microscopio  confocal  (Figura  
4).40  Evaluación  crítica  de  la  reflectividad,  tamaño,  patrón  
de  ramificación  y  La  ubicación  de  estas  estructuras  permite  
la  diferenciación  de  las  hifas  fúngicas  en  la  mayoría  de  los  
casos.41  Con  IVCM,  todos  los  nervios  corneales  aparecen  
como  estructuras  ramificadas,  lineales  y  reflectantes.42–
44  El  plexo  nervioso  subbasal  está  ubicado  inmediatamente  
posterior  al  epitelio  basal  y  es  com  compuesto  de  fibras  
nerviosas  paralelas  orientadas  oblicuamente  que  tienen  
numerosas  ramas  interconectadas.43,44  El  plexo  nervioso  
subepitelial  está  ubicado  en  el  estroma  anterior  
inmediatamente  posterior  a  la  lámina  basal  y  está  
compuesto  por  fibras  nerviosas  que  forman  una  red  densa  
de  ramas  interconectadas  dispuestas  irregularmente. .  Los  
nervios  del  estroma  se  detectan  con  frecuencia  en  la  parte  
anterior  y  en  la  parte  media  del  arma ,  tienen  una  
distribución  radial,  muestran  diámetros  relativamente  
grandes  y  se  ramifican  a  intervalos  irregulares.  lumen.45  
En  la  mayoría  de  los  casos,  los  eritrocitos  y  leucocitos  se  
detectan  fluyendo  dentro  de  los  lúmenes  de  los  vasos  
durante  las  imágenes  en  tiempo  real.46,47  Estas  características  morfológicas  ayudan  a  distinguir
proporciona  un  método  directo  para  determinar  la  eficacia  
del  tratamiento  y  es  más  preciso  que  el  uso  de  
características  clínicas  o  hallazgos  biomicroscópicos  con  
lámpara  de  hendidura.  La  IVCM  no  solo  ayuda  a  garantizar  
una  duración  adecuada  del  tratamiento  médico,  sino  que  
también  puede  ayudar  a  evitar  duraciones  de  tratamiento  
innecesariamente  prolongadas.  los  pacientes  responderán  
a  la  terapia  médica  y  qué  pacientes  finalmente  fallarán  la  
terapia  médica  y  requerirán  una  intervención  quirúrgica.39
Se  informa  el  uso  de  IVCM  para  confirmar  el  diagnóstico  
clínico  de  queratomicosis  en  alpacas  con  úlceras  del  
estroma  corneal  infectadas  con  Aspergillus  fumigatus .  2–
6  μm  de  ancho  y  50–400  μm  de  largo.  Las  morfologías  de  
las  hifas  observadas  fueron  consistentes  con  lo  encontrado  
en  la  histopatología  corneal  en  los  camélidos.33
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|LEDMEJOR 7
4  |  QUERATITIS  PARASITARIA
Onchocerca  spp.  y  otros  parásitos  microfilariales  pueden  inducir  
queratitis  en  una  variedad  de  especies  huésped,  incluidos  humanos,  
caballos  y  perros.66–68  Se  cree  que  la  migración  de  microfilarias  
hacia  la  córnea  y  la  respuesta  inflamatoria  subsiguiente  inducida  por  
su  muerte  producen  la  queratitis  en  la  mayoría  de  las  situaciones.  El  
uso  de  IVCM  para  detectar
hifas  de  nervios  y  vasos  corneales;  sin  embargo,  dado  que  la  mala  
interpretación  de  los  hallazgos  de  la  IVCM  puede  conducir  a  un  
diagnóstico  clínico  erróneo,  siempre  es  recomendable  utilizar  
múltiples  modalidades  de  diagnóstico  para  la  confirmación.48  Los  
artefactos  de  compresión  corneal  ocurren  cuando  el  objetivo  del  
microscopio  ejerce  una  presión  de  aplanación  excesiva  sobre  la  
córnea  durante  la  IVCM.  Esto  puede  producir  lesiones  lineales  
hiporreflectantes  transitorias  durante  la  CMIV  que  a  menudo  tienen  
una  forma  ligeramente  curva.40  Los  artefactos  de  compresión  se  
resuelven  rápidamente  cuando  se  reduce  la  presión  de  aplanación.
oftalmología.  Cuando  se  ve  con  IVCM,  Acanthamoeba
queratitis  mal  (el  diagnóstico  finalmente  se  confirmó  en  el  gato  
mediante  cultivo  amebiano,  ensayo  PCR,  histopatología  e  
inmunohistoquímica),  se  detectaron  amebas  en  la  córnea  del  gato  
con  IVCM.  Durante  el  examen  IVCM  de  la  córnea  del  gato,  las  
amebas  aparecieron  como  numerosas  estructuras  redondas  y  ovales  
de  alto  contraste  de  15  a  30  µm  de  diámetro,  algunas  con  una  
pared  doble  distinta,  que  se  detectaron  multifocalmente  en  grupos  
dentro  del  epitelio  basal  y  el  estroma  en  el  primer  Examen  
IVCM.64,65  Durante  el  examen  IVCM  repetido  realizado  después  
de  4  semanas  de  una  terapia  tiamebiana  (es  decir,  aplicación  ocular  
tópica  de  solución  de  biguanida  de  polihexametileno  al  0,2  %),  el  
número  de  estructuras  compatibles  con  quistes  de  ameba  en  el  
estroma  corneal  del  gato  aumentó  subjetivamente  y  el  cliente  eligió  
la  enucleación.64
Los  microsporidios  son  un  grupo  único  de  parásitos  unicelulares  
en  intracelulares  que  históricamente  se  consideraban  protozoos,  
pero  recientemente  se  reclasificaron  como  parientes  de  los  hongos.  
Las  esporas  microsporidiales  de  las  especies  de  hormigas  
médicamente  importantes  de  estos  parásitos  fúngicos  miden  
generalmente  de  1  a  5  µm  de  largo  y  se  pueden  detectar  mediante  
IVCM  en  algunos  pacientes  humanos  con  queratitis  microsporidial.  
cuerpos  celulares  dentro  de  las  células  epiteliales  de  la  córnea  o  
alineados  a  lo  largo  de  los  queratocitos.74–76  Se  informa  queratitis  
estromal  microsporidial  en  perros  y  gatos,  perono  se  describe  el  
uso  de  IVCM  en  animales  con  estas  infecciones.77–79
La  evaluación  de  pacientes  con  queratitis  por  Acanthamoeba  es  uno  
de  los  usos  clínicos  más  comunes  de  la  IVCM  en  humanos.
e  infección  escleral  asociada  con  stro  no  ulcerosa
En  el  perro  descrito  con  masas  subconjuntivales,  el  centro  de  los  
nódulos  conjuntivales  contenía  nemátodos  adultos  que  se  
reconocieron  por  su  característica  morfología  cuticular  hiperreflectante  
y  rugosa.  Se  repitió  el  examen  conjuntival  de  IVCM  del  perro  
después  de  la  citorreducción  quirúrgica  y  1  año  de  tratamiento  
médico  sin  nematodos  visibles.69  También  se  informa  queratitis  por  
protozoos  en  perros,  incluidas  infecciones  de  la  córnea  con  amebas  
no  identificadas,  Toxoplasma  gondii  y  Leishmania  spp.;  sin  embargo,  
las  características  de  IVCM  de  estas  condiciones  no  han  sido  
descritas.70–72
La  queratitis  por  Acanthamoeba  se  describió  recientemente  en  
gatos  domésticos,  incluido  el  uso  de  IVCM  para  detectar  las  amebas  
dentro  de  los  tejidos  corneales  (Figura  5).64,65  En  la  descripción  
de  un  caso64  de  un  gato  que  desarrolló  una  ameba  corneal
no  se  describen  microfilarias  dentro  de  la  córnea  de  estas  especies  
huésped;  sin  embargo,  se  reporta  la  detección  por  IVCM  de  
Onchocerca  lupi  en  el  espacio  subconjuntival  de  un  perro.69
los  quistes  y  trofozoítos  aparecen  como  estructuras  redondas,  ovales  
o  hexagonales  de  alto  contraste  de  10  a  40  µm  de  diámetro,  a  
menudo  con  una  pared  doble  distintiva.56–58  Estos  quistes  y  
trofozoítos  se  organizan  con  frecuencia  dentro  del  estroma  corneal  
en  distribuciones  de  agrupamiento  o  cadena.59  Cuando  están  
disponibles ,  la  IVCM  a  menudo  se  considera  el  método  de  primera  
línea  para  confirmar  el  diagnóstico  de  nuevos  casos  de  queratitis  por  
Acanthamoeba ,  ya  que  es  rápido  y  tiene  una  alta  especificidad  y  
sensibilidad  para  la  detección  de  amebas.60,61  Además  de  su  
utilidad  clínica  para  establecer,  o  excluyendo  el  diagnóstico  de  
queratitis  por  Acanthamoeba  en  medicina  humana,  la  IVCM  se  está  
utilizando  más  recientemente  para  monitorear  las  respuestas  
terapéuticas.62,63  Durante  el  curso  de  una  terapia  médica  
antiamebiana  exitosa,  la  densidad  del  quiste  dentro  de  la  córnea  
disminuye  gradualmente  y  el  núcleo  de  los  quistes  se  disuelve  
gradualmente.  a  una  configuración  hueca.62,63  El  tratamiento  
médico  de  la  queratitis  por  Acanthamoeba ,  si  a  menudo  se  prolonga,  
dura  varios  meses,  y  el  uso  de  IVCM  para  guiar  la  duración  del  
tratamiento  puede  mejorar  los  resultados  clínicos  y  evitar  el  
sobretratamiento  innecesario  con  estos  medicamentos  potencialmente  tóxicos.
Los  cuerpos  extraños  microscópicos  corneales  también  pueden  
confundirse  con  queratitis  fúngica  por  IVCM.  Los  ejemplos  incluyen  
oftalmía  nodosa  asociada  con  pelos  de  insectos,  espinas  de  cactus  
y  cerdas  de  bardana.49–52  Excepto  en  los  casos  más  extremos,  se  
espera  que  el  número  y  la  distribución  de  cuerpos  extraños  
microscópicos  en  la  córnea  sean  menores  que  las  hifas  en  casos  de  
queratitis  infecciosa.  Además,  la  evaluación  cuidadosa  de  la  forma,  
la  longitud  y  otras  características  distintivas  únicas  a  menudo  pueden  
ayudar  a  diferenciar  las  hifas  fúngicas  de  muchos  cuerpos  extraños.  
Por  ejemplo,  aunque  los  pelos  de  la  oruga  procesionaria  del  pino  
parecen  similares  a  las  hifas  fúngicas  por  IVCM,  se  puede  usar  un  
examen  minucioso  de  los  pelos  en  busca  de  las  pequeñas  
protuberancias  de  espículas  características  orientadas  hacia  las  
puntas  para  distinguir  estas  entidades.53–55
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y  herpes  zoster  oftálmico  se  han  centrado  en  gran  medida  en  los  cambios  
crónicos  en  la  inervación  corneal  y  otras  características  morfológicas  de  
la  córnea  que  se  desarrollan  durante  la  queratitis  no  epitelial  por  HSV­1  
(p.  ej.,  endotelitis)  o  después  de  la  resolución  de  la  queratitis  herpética  
activa.80–89  Estas  investigaciones  han  contribuido  a  una  mejor  
comprensión  de  la  fisiopatología  de  muchas  de  las  condiciones  
metaherpéticas  crónicas  que  se  desarrollan  en  humanos  después  de  la  
resolución  de  la  queratitis  viral  activa.  Los  episodios  recurrentes  de  
queratitis  por  HSV  se  asocian  con  alteraciones  morfológicas  en  los  
plexos  nerviosos  tanto  subbasales  corneales  como  subepiteliales  que  
son  detectados  por  IVCM.  Estos  cambios  están  asociados  con  la  pérdida  
de  la  sensibilidad  corneal  e  incluyen  reducciones
En  pacientes  con  queratitis  dendrítica  por  el  virus  del  herpes  simple,  se  
observaron  regiones  oscuras  centrales  que  representaban  el  defecto  
epitelial  cuando  se  examinaron  mediante  IVCM.  Los  bordes  epiteliales  
de  las  úlceras  consistían  en  células  epiteliales  irregulares  hiperreflectantes  
y  células  epiteliales  distorsionadas  y  alargadas.  Depósitos  hiperreflectantes  
a  veces  estaban  presentes
Las  descripciones  de  las  características  de  la  IVCM  de  la  queratitis  
herpética  epitelial  activa  en  pacientes  humanos  son  limitadas.92,93
Publicaciones  que  describen  el  uso  de  IVCM  para  la  evaluación  de  
pacientes  humanos  con  queratitis  por  el  virus  del  herpes  simple
Se  identificaron  alteraciones  en  los  plexos  nerviosos  subbasales  y  
subepiteliales  mediante  IVCM,  histopatología  e  inmunohistoquímica  en  
un  perro  con  queratitis  neurotrófica  y  deficiencia  de  células  madre  
limbares  que  se  desarrolló  después  de  la  recuperación  de  una  queratitis  
ulcerosa  dendrítica  grave  por  herpesvirus  canino­1  (CHV­1).90  La  
sensibilidad  corneal  medida  con  un  estesiómetro  Cochet­Bonnet  se  
redujo  drásticamente  en  el  perro  después  de  la  infección  por  CHV­1,  y  
el  plexo  nervioso  subbasal  estuvo  completamente  ausente  o  
notablemente  disminuido  durante  el  examen  con  IVCM.  La  
conjuntivalización  corneal,  un  rasgo  característico  de  la  deficiencia  de  
células  madre  limbares,  fue  evidente  durante  el  examen  de  IVCM  y  el  
epitelio  corneal  superficial  era  delgado,  desorganizado  y  compuesto  por  
células  epiteliales  hiperreflectantes.  Las  células  caliciformes  y  las  células  
de  Langerhans  también  fueron  detectadas  con  frecuencia  en  la  córnea  
del  perro  por  IVCM.90
Como  resultado  de  los  desafíos  técnicos,  en  el  estudio  solo  se  analizaron  
los  nervios  del  estroma  corneal.  Aunque  no  se  detectaron  diferencias  
estadísticas  en  los  dos  grupos  de  estudio,  una  variedad  de  parámetros  
nerviosos  (p.  ej.,  número  de  troncos  nerviosos,  ramas,  grosor,  longitud,  
reflectividad  y  tortuosidad)  se  redujeron  en  los  gatos  expuestos  al  
FHV­1.91
Un  estudio  intentó  evaluar  los  nervios  de  la  córnea  en  gatos  con  o  
sin  exposición  previa  al  herpesvirus  felino­1  (FHV  1)  (basado  en  
información  histórica  y  serología)  utilizando  microscopía  confocal  
realizada  post­mortem.91
En  oftalmología  veterinaria,  nuestra  comprensión  y  reconocimiento  
de  las  infecciones  corneales  parasitarias  son  actualmente  limitados  y  la  
IVCM  podría  ayudar  a  avanzar  en  esta  área  de  la  medicina  veterinaria.
en  la  densidad  nerviosa,  el  número  total  de  nervios  y  la  densidad  de  las  
ramas  nerviosas.80,85,86  Las  poblaciones  de  células  madre  del  limbo  
se  reducen,  la  densidad  de  células  endotelialesde  la  córnea  es  más  baja  
y  hay  numerosos  cambios  microanatómicos  que  se  pueden  detectar  en  
las  células  epiteliales  corneales  superficiales  de  los  humanos.  después  
de  la  recuperación  de  la  queratitis  herpética.80,83–86
FIGURA  5  Fotografía  clínica  digital  (A)  y  fotomicrografía  IVCM  
(B)  de  un  gato  con  queratitis  por  Acanthamoeba .  Una  gata  
doméstica  de  pelo  corto,  hembra  intacta,  de  6  meses  de  edad,  se  
presentó  con  una  úlcera  corneal  del  estroma  anterior  asociada  con  una  densa
Infiltrado  leucocitario  corneal  axial  y  vascularización  periférica  (A).  
Durante  el  examen  IVCM,  se  detectaron  grupos  y  cadenas  de  
numerosas  estructuras  redondas  y  ovales  de  alto  contraste  de  15–30  
µm  de  diámetro  dentro  del  estroma  anterior  (B).  Barra  =  50  µm
LEDMEJOR8  |
(A)
(B)
5  |  QUERATITIS  VIRAL
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LEDMEJOR 9
comparado  en  este  estudio  con  perros  y  gatos  libres  de  patógenos  
específicos  (es  decir,  libres  de  herpesvirus),  no  afectados  con  exámenes  
oftalmológicos  normales.  Los  cambios  en  la  córnea  asociados  con  su  
queratitis  pética  que  fueron  identificados  por  IVCM  fueron  similares  tanto  
para  perros  como  para  gatos  con  infección  por  CHV­1  y  FHV­1,  
respectivamente.  Se  identificaron  alteraciones  morfológicas  en  el  epitelio  
corneal  de  animales  con  queratitis  herpética,  pero  no  en  los  grupos  no  
afectados  (Figura  6).  Los  cambios  epiteliales  incluían  morfologías  celulares  
anormales  caracterizadas  por  células  hiperreflectantes  de  forma  irregular  
inmediatamente  adyacentes  a  las  úlceras.94  Estas  morfologías  celulares  
anormales  incluían  células  redondas,  relativamente  pequeñas,  
hiperreflectantes  entremezcladas  con  células  alargadas,  agrandadas  e  
hiperreflectantes.  Había  opacidades  puntiformes  hiperreflectantes  y  
células  inflamatorias  ocasionales  en  todas  las  capas  epiteliales.  Las  células  
de  Langerhans  y  las  células  dendríticas  del  estroma  anterior  estaban  
frecuentemente  presentes  en  las  córneas  de  perros  y  gatos  con  queratitis  
herpética,  pero  no  en  los  grupos  no  afectados .  células  en  el  estroma  
anterior  y  morfologías  nerviosas  corneales  anormales  dentro  de  los  plexos  
nerviosos  subbasales  y  subepiteliales.  Se  creía  que  estas  alteraciones  
morfológicas  en  las  córneas  de  perros  y  gatos  con  queratitis  ulcerosa  
dendrítica  herpética  se  debían  a  la  presencia  de  células  epiteliales  
infectadas  por  virus,  necrosis  de  células  epiteliales  y  la  respuesta  
inflamatoria  resultante.94  Los  cambios  en  los  usos  de  los  plexos  nerviosos  
que  se  identificaron  por  IVCM  se  especuló  que  eran  precursores  potenciales  
del  desarrollo  de  alteraciones  nerviosas  más  crónicas  que  pueden  ocurrir  
después  de  la  queratitis  herpética  en  individuos  que  finalmente  progresan  
a  queratitis  neurotrófica.90,94
Ninguno.
CONFLICTO  DE  INTERESES
La  queratitis  por  CHV­1  y  los  gatos  con  queratitis  por  FHV­1  fueron  comunes.
Una  publicación  reciente  describió  las  características  de  IVCM  del  
epitelio  corneal  y  el  estroma  en  perros  y  gatos  con  queratitis  ulcerosa  
dendrítica  herpética.94  Perros  con
en  la  línea  media  de  las  lesiones  y  se  especuló  que  representaban  células  
epiteliales  anormales  necróticas.92,93  Las  células  inflamatorias  se  
detectaron  escasamente  entre  las  células  epiteliales.  En  el  epitelio  corneal  
posterior,  se  detectaron  numerosos  leucocitos,  incluyendo  lo  que  se  creía  
que  eran  células  de  Langerhans.  Cambios  morfológicos  en  el  nervio  
subbasal
La  microscopía  confocal  in  vivo  ha  contribuido  a  una  mejor  comprensión  
de  la  queratitis  infecciosa  tanto  en  medicina  humana  como  veterinaria.  Las  
aplicaciones  clínicas  de  IVCM  en  oftalmología  veterinaria  son  numerosas  
y  se  justifica  una  mayor  investigación  sobre  los  usos  de  esta  poderosa  
tecnología.
plexo  nervioso,  incluidas  áreas  hiperreflectantes  y  formaciones  en  forma  
de  cuentas  a  lo  largo  de  las  fibras  nerviosas,  también  se  detectaron  en  
algunos  individuos.92,93
|
(B)
(A)
FIGURA  6  Fotografía  digital  clínica  (A)  y  fotomicrografía  IVCM  (B)  
de  un  gato  con  queratitis  ulcerativa  dendrítica  por  herpesvirus­1  felino.  
Una  gata  doméstica  de  pelo  corto  esterilizada  de  13  años  de  edad  
se  presentó  con  una  única  úlcera  corneal  dendrítica  grande  en  la  córnea  
axial  que  se  tiñó  con  rosa  de  bengala  (A).
Durante  el  examen  IVCM,  grupos  de  células  epiteliales  corneales  con  
morfologías  anormales  (flechas)  están  presentes  en  las  regiones  corneales  
inmediatamente  adyacentes  al  área  de  ulceración  dendrítica.  Estas  
células  epiteliales  anormales  incluyen  células  redondas,  pequeñas  e  
hiperreflectantes  entremezcladas  con  células  alargadas,  agrandadas  e  hiperreflectantes  (B).
Barra  =  50  µm
6  |  CONCLUSIONES
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Eric  C.  Ledbetter  https://orcid.
REFERENCIAS
ORCIDO
org/0000­0003­1894­8839
10  | LEDMEJOR
11.  Sabour  S,  Ghassemi  F.  Sensibilidad  y  especificidad  de  la  microscopía  
confocal  in  vivo  de  barrido  láser  para  la  queratitis  por  hongos  filamentosos  
gal:  papel  de  la  experiencia  del  observador.  Soy  J  Ophthalmol.  
2017;182:201­202.
24.  Sutphin  JE,  Kantor  AL,  Mathers  WD,  Mehaffey  MG.  Evaluación  de  la  
queratitis  cristalina  infecciosa  con  microscopía  confocal  en  una  serie  de  
casos.  Córnea.  1997;  16:21­26.
20.  Muñoz  Gutiérrez  JF,  Sondgeroth  KS,  Williams  ES,  Montgomery  DL,  
Creekmore  TE,  Miller  MM.  Queratoconjuntivitis  infecciosa  en  venado  bura  
en  libertad  en  Wyoming:  un  estudio  retrospectivo  e  identificación  de  un  
nuevo  alfaherpesvirus.  J  Vet  Diag  Invest.  2018;30:663­670.
2.  Cavanagh  HD,  Jester  JV,  Essepian  J,  Shields  W,  Lemp  MA.
28.  Chidambaram  JD,  Prajna  NV,  Larke  N,  et  al.  Aspecto  de  microscopía  
confocal  in  vivo  de  especies  de  Fusarium  y  Aspergillus  en  la  queratitis  
fúngica.  Br  J  Ophthalmol.  2017;101:1119­1123.
35.  Ledbetter  EC,  Irby  NL,  Teixeira  LBC.  Características  de  la  microscopía  
confocal  in  vivo  de  la  queratomicosis  no  ulcerativa  epitelial  y  subepitelial  
equina.  Oftalmol  veterinario.  2019;22:168­176.
14.  Vaddavalli  PK,  Garg  P,  Sharma  S,  Thomas  R,  Rao  GN.
19.  Ledbetter  CE,  Scarlett  JM.  Aislamiento  de  bacterias  anaerobias  obligadas  
de  queratitis  ulcerosa  en  animales  domésticos.  Veterinario
1.  Memorias  de  Minsky  M.  sobre  la  invención  del  micro  de  escaneo  confocal
2012).  J  Am  Vet  Med  Assoc.  2013;243:1616­1622.
23.  Porter  AJ,  Lee  GA,  Jun  AS.  Queratopatía  cristalina  infecciosa.
9.  Hau  SC,  Dart  JK,  Vesaluoma  M,  et  al.  Precisión  diagnóstica  de  la  queratitis  
microbiana  con  microscopía  confocal  láser  de  barrido  in  vivo.  Br  J  
Ophthalmol.  2010;94:982­987.
27.  Anutarapongpan  O,  Thanathanee  O,  Worrawitchawong  J,  Suwan­Apichon  
O.  Papel  de  la  microscopía  confocal  en  el  diagnóstico  de  la  queratitis  por  
Pythium  insidiosum .  Córnea.  2018;37:156­161.
31.  Takezawa  Y,  Shiraishi  A,  Noda  E,  et  al.  Efectividad  de  la  microscopía  
confocal  in  vivo  en  la  detección  de  hongos  filamentosos  durante  el  curso  
clínico  de  la  queratitis  fúngica.  Córnea.  2010;29:1346­1352.
12.  Kaufman  SC,  Laird  JA,  Cooper  R,  Beuerman  RW.  Diagnóstico  de  queratitis  
bacteriana  relacionada  con  lentes  de  contacto  con  el  microscopio  confocal  
de  luz  blanca.  CLAO  J.  1996;22:274­277.15.  Javadi  MA,  Kanavi  MR,  Zarei­Ghanavati  S,  et  al.  Brote  de  queratitis  por  
Nocardia  después  de  queratectomía  fotorrefractiva:  estudio  clínico,  
microbiológico,  histopatológico  y  de  escaneo  confocal.  J  Cirugía  refractiva  
de  cataratas.  2009;35:393­398.
5.  Jalbert  I,  Stapleton  F,  Papas  E,  Sweeney  DF,  Coroneo  M.  Microscopía  
confocal  in  vivo  de  la  córnea  humana.  Br  J  Ophthalmol.  2003;87:225­236.
18.  Linna  T,  Mikkila  H,  Karma  A,  Seppala  I,  Petroll  WM,  Tervo  T.
25.  Mesiwala  NK,  Chu  CT,  Raju  LV.  Queratopatía  cristalina  infecciosa  que  
afecta  predominantemente  a  la  córnea  posterior.  Int  J  Clin  Exp  Pathol.  
2014;7:5250­5253.
21.  Verwer  MA,  Gunnink  JW.  La  aparición  de  bacterias  en  la  secreción  ocular  
purulenta  crónica.  J  Pequeño  Anim  Pract.  1968;  9:33­36.
Microscopía  confocal  del  ojo  vivo.  CLAO  J.  1990;16:65­73.
8.  Alsoudi  AF,  Golen  JR,  Seitzman  GD,  Lietman  TM,  Keenan  JD.  Comparación  
de  dos  microscopios  confocales  para  el  diagnóstico  de  queratitis  por  
acanthamoeba.  Ojo.  2020;35(7):1­3.  10.1038/s4143
29.  Brasnu  E,  Bourcier  T,  Dupas  B,  et  al.  Microscopia  confocal  in  vivo  en  
queratitis  fúngica.  Br  J  Ophthalmol.  2007;91:588­591.
33.  Ledbetter  EC,  Montgomery  KW,  Landry  MP,  Kice  NC.
Córnea.  1998;  17:485­492.
36.  Ledbetter  CE,  Starr  JK.  Malassezia  pachydermatis  keratomyco  sis  en  un  
perro.  Informe  de  caso  Med  Mycol  2016;10:24­26.
alcance.  Exploración.  1988;10:128­138.
Oftalmol.  2008;11:114­122.
Surv  Oftalmol.  2018;63:480­499.
10.  Chidambaram  JD,  Prajna  NV,  Larke  NL,  et  al.  Estudio  prospectivo  de  la  
precisión  diagnóstica  del  microscopio  confocal  de  barrido  láser  in  vivo  
para  la  queratitis  microbiana  grave.  Oftalmología.  2016;123:2285­2293.
34.  Ledbetter  EC,  Norman  ML,  Starr  JK.  Microscopia  confocal  in  vivo  para  la  
detección  de  queratitis  fúngica  canina  y  seguimiento  de  la  respuesta  
terapéutica.  Oftalmol  veterinario.  2016;19:220­229.
16.  Soleimani  M,  Masoumi  A,  Khodavaisy  S,  Heidari  M,  Haydar  AA,  Izadi  A.  
Herramientas  de  diagnóstico  actuales  y  modalidades  de  manejo  de  la  
queratitis  por  Nocardia .  J  Inflamación  oftálmica  Infect.  2020;10:36.
Microscopía  confocal  in  vivo:  ¿una  nueva  posibilidad  para  confirmar  el  
diagnóstico  de  queratitis  por  Borrelia ?  Córnea.  1996;  15:639­640.
3­020­1117­4
6.  Patel  DV,  McGhee  CN.  Copia  de  micros  confocales  in  vivo  contemporáneos  
de  la  córnea  humana  viva  utilizando  técnicas  de  escaneo  láser  y  luz  
blanca:  una  revisión  importante.  Clin  Exp  Oftalmol.  2007;35:71­88.
Caracterización  de  queratitis  fúngica  en  alpacas:  11  casos  (2003–
Microscopía  confocal  para  queratitis  por  Nocardia.  Oftalmología.  2006;  
113:  1645­1650.
4.  Alzubaidi  R,  Sharif  MS,  Qahwaji  R,  Ipson  S,  Brahma  A.  Imágenes  corneales  
microscópicas  confocales  in  vivo  en  salud  y  enfermedad  con  énfasis  en  la  
extracción  de  características  y  firmas  visuales  para  enfermedades  
corneales:  un  estudio  de  revisión.  Br  J  Ophthalmol.  2016;100:41­55.
17.  Faramarzi  A,  Feizi  S,  Javadi  MA,  Rezaei  Kanavi  M,  Yazdizadeh  F,  Moein  
HR.  Queratitis  por  nocardia  bilateral  después  de  queratectomía  
fotorrefractiva.  J  Oftálmica  Vis  Res.  2012;7:162­166.
7.  Kanavi  MR,  Javadi  M,  Yazdani  S,  Mirdehghanm  S.  Sensibilidad  y  
especificidad  de  la  exploración  confocal  en  el  diagnóstico  de  queratitis  
infecciosa.  Córnea.  2007;26:782­786.
32.  Ledbetter  CE,  Irby  NL,  Kim  SG.  Microscopía  confocal  in  vivo  de  la  queratitis  
fúngica  equina.  Oftalmol  veterinario.  2011;  14:1­9.
13.  Chew  SJ,  Beuerman  RW,  Assouline  M,  Kaufman  HE,  Barron  BA,  Hill  JM.  
Diagnóstico  precoz  de  la  queratitis  infecciosa  con  microscopía  confocal  
en  tiempo  real  in  vivo.  CLAO  J.  1992;18:197­201.
22.  Sherman  A,  Daniels  JB,  Wilkie  DA,  Lutz  E.  Queratitis  ulcerativa  por  
Actinomyces  bowdenii  en  un  perro.  Oftalmol  veterinario.  2013;16:386­391.
30.  Nielsen  E,  Heegaard  S,  Prause  JU,  Ivarsen  A,  Mortensen  KL,  Hjortdal  J.  
Queratitis  fúngica:  mejora  del  diagnóstico  mediante  microscopía  confocal.  
Caso  Rep  Ophthalmol.  2013;4:303­310.
3.  Mustonen  RK,  McDonald  MB,  Srivannaboon  S,  Tan  AL,  Doubrava  MW,  Kim  
CK.  Poblaciones  de  células  corneales  humanas  normales  evaluadas  
mediante  microscopía  confocal  de  hendidura  de  barrido  in  vivo.
26.  Ledbetter  EC,  McDonough  PL,  Kim  K.  Queratopatía  cristalina  infecciosa  en  
perros  y  gatos:  características  clínicas,  microscópicas  confocales  in  vivo,  
histopatológicas  y  microbiológicas  de  ocho  casos.  Oftalmol  veterinario.  
2017;20:250­258.
Machine Translated by Google
https://orcid.org/0000-0003-1894-8839
https://orcid.org/0000-0003-1894-8839
https://doi.org/10.1038/s41433-020-1117-4
https://doi.org/10.1038/s41433-020-1117-4
LEDMEJOR 11
45.  Yaylali  V,  Ohta  T,  Kaufman  SC,  Maitchouk  DY,  Beuerman  RW.  Imágenes  confocales  
in  vivo  de  la  neovascularización  corneal.
42.  Patel  DV,  McGhee  CN.  Microscopía  confocal  in  vivo  de  los  nervios  corneales  
humanos  en  salud,  en  enfermedades  oculares  y  sistémicas,  y  después  de  la  
cirugía  corneal:  una  revisión.  Br  J  Ophthalmol.  2009;93:853­860.
52.  Reed  Z,  Doering  C,  Barrett  PM.  Queratoconjuntivitis  de  pelo  de  tarántula  con  
infección  fúngica  concurrente  en  un  rat  terrier.  J  Am  Anim  Hosp  Assoc.  
2016;52:292­297.
68.  Schmidt  GM,  Krehbiel  JD,  Coley  SC,  Leid  RW.  Oncocercosis  ocular  equina:  estudio  
histopatológico.  Soy  J  Vet  Res.  1982;  43:1371­1375.
50.  Dowler  KK,  Scott  EM,  Teixeira  LBC,  Vallone  LV.  Queratoconjuntivitis  inducida  por  
cactus  en  Texas:  una  serie  de  casos  de  tres  perros  y  un  gato.  Oftalmol  veterinario.  
2020;23:374­385.
66.  Tonjum  AM,  Thylefors  B.  Aspectos  de  los  cambios  corneales  en  la  oncocercosis.  Br  
J  Ophthalmol.  1978;62:458­461.
56.  Kobayashi  A,  Ishibashi  Y,  Oikawa  Y,  Yokogawa  H,  Sugiyama  K.  Hallazgos  de  
microscopía  confocal  láser  in  vivo  y  ex  vivo  en  pacientes  con  queratitis  por  
acanthamoeba  en  etapa  temprana.  Córnea.  2008;27:439­445.
41.  Chiou  AG,  Kaufman  SC,  Beuerman  RW,  Ohta  T,  Kaufman  HE.
44.  Ledbetter  CE,  Scarlett  JM.  Microscopía  confocal  in  vivo  de  la  córnea  y  el  limbo  equino  
normal.  Oftalmol  veterinario.
39.  Tabatabaei  SA,  Soleimani  M,  Tabatabaei  SM,  Beheshtnejad  AH,  Valipour  N,  
Mahmoudi  S.  El  uso  de  microscopía  confocal  in  vivo  para  rastrear  el  éxito  del  
tratamiento  en  la  queratitis  fúngica  y  diferenciar  entre  la  queratitis  por  Fusarium  y  
Aspergillus .  Oftalmol  Int.  2020;40:483­491.
Reducción  de  la  densidad  de  quistes  de  Acanthamoeba  asociada  con  el  
tratamiento  detectado  por  microscopía  confocal  in  vivo  en  la  queratitis  por  
Acanthamoeba.  Córnea.  2019;38:463­468.
queratitis  mal  diagnosticada  como  queratitis  fúngica  por  microscopía  confocal  in  
vivo:  informe  de  un  caso.  Notas  BMC  Res.  2014;7:7­907.
Papel  de  la  microscopía  confocal  en  la  queratitis  fúngica  profunda.  Córnea.  
2009;28:11­13.
Asoc.  2020;257:1280­1287.
55.  Perez  Bartolome  F,  Peraza­Nieves  J,  Fernandez­Vigo  JI,  Mendez  Fernandez  R,  
Gonzalez  Martin­Moro  J,  Arriola­Villalobos  P.
71.  Schlemmer  SN,  Scott  EM,  Vallone  LV,  Johnson  MC,  Guo  F,  Zhu  G.  ¿Cuál  es  su  
diagnóstico?  Raspado  corneal  de  un  perro.  Veterinario  Clin  Pathol.  2018;47:315­316.
Queratitis.  Soy  J  Ophthalmol.  2020;217:38­48.
62.  Li  S,  Bian  J,  Wang  Y,  Wang  S,  Wang  X,  Shi  W.  Características  clínicas  ycambios  en  
serie  de  la  queratitis  por  Acanthamoeba :  un  estudio  de  microscopía  confocal  in  
vivo.  Ojo.  2020;34:327­334.
47.  Romano  V,  Steger  B,  Zheng  Y,  Ahmad  S,  Willoughby  CE,  Kaye  SB.  Caracterización  
microscópica  confocal  angiográfica  e  in  vivo  de  sangre  corneal  humana  y  
neovascularización  linfática  presunta:  un  estudio  piloto.  Córnea.  2015;34:1459­1465.
60.  Goh  JWY,  Harrison  R,  Hau  S,  Alexander  CL,  Tole  DM,  Avadhanam  VS.  Comparación  
de  microscopia  confocal  in  vivo,  PCR  y  cultivo  de  raspados  corneales  en  el  
diagnóstico  de  queratitis  por  Acanthamoeba .  Córnea.  2018;37:480­485.
Córnea.  1998;  17:646­653.
53.  Bayraktutar  BN,  Tas  AY,  Sahin  A.  ¿Queratitis  fúngica  o  engañada  por  un  pequeño  
insecto?  Turk  J  Ophthalmol.  2020;50:107­109.
Córnea.  1995;  14:10­17.
69.  Edelmann  ML,  Jager  M,  Espinheira  F,  Ledbetter  EC.  Microscopía  confocal  in  vivo  
para  la  detección  de  infección  subconjuntival  por  Onchocerca  lupi  en  un  perro.  
Oftalmol  veterinario.  2018;21:632­637.
67.  Morales  A,  Perlmann  E,  Abelha  ANV,  Levy  CE,  de  Goes  ACA,  Safatle  AMV.  Queratitis  
por  microfilarias  en  perros:  una  enfermedad  recientemente  reconocida.  Oftalmol  
veterinario.  2018;21:305­311.
57.  Bourcier  T,  Dupas  B,  Borderie  V,  et  al.  Hallazgos  de  la  tomografía  de  retina  II  de  
Heidelberg  de  la  queratitis  por  Acanthamoeba .  Ocul  Immunol  Inflamm.  
2005;13:487­492.
Diagnóstico  diferencial  de  imágenes  corneales  lineales  en  microscopía  confocal.  
Córnea.  1999;  18:63­66.
2009;12(Suplemento  1):57­64.
51.  Costa  D,  Esteban  J,  Sanz  F,  Vergara  J,  Huguet  E.  Lesiones  oculares  producidas  
por  setas  de  la  oruga  procesionaria  del  pino  (Thaumetopoea  pityocampa)  en  
perros:  un  estudio  descriptivo.  Oftalmol  veterinario.  2016;19:493­497.
43.  Kafarnik  C,  Fritsche  J,  Reese  S.  Inervación  corneal  en  perros  y  gatos  mesocefálicos  
y  braquicefálicos:  evaluación  mediante  microscopía  confocal  in  vivo.  Oftalmol  
veterinario.  2008;11:363­367.
49.  Ledbetter  EC,  Irby  NL,  Schaefer  DM.  Microscopía  confocal  in  vivo  de  cuerpos  
extraños  microscópicos  corneales  en  caballos.  Oftalmol  veterinario.  
2014;17(Suplemento  1):69­75.
65.  Ledbetter  EC,  Kim  SG,  Schaefer  DM,  Liotta  JL,  Bowman  DD,  Lejeune  M.  Detección  
de  amebas  de  vida  libre  en  gatos  domésticos  con  y  sin  queratitis  adquirida  
naturalmente.  Vet  J.  2021;274:105712.
Comparación  de  microscopía  confocal  in  vivo  e  imágenes  de  microscopía  
electrónica  de  barrido  y  de  luz  ex  vivo  de  los  pelos  de  la  oruga  procesionaria  del  
pino  incrustados  en  la  córnea:  Informe  de  tres  casos.  Indio  J  Ophthalmol.  
2020;68:1672­1675.
40.  Bohn  S,  Sperlich  K,  Allgeier  S,  et  al.  Imágenes  celulares  en  3D  in  vivo  de  la  córnea  
mediante  microscopía  de  barrido  láser  confocal.  Biomed  Opt  Express.  
2018;9:2511­2525.
72.  Swinger  RL,  Schmidt  KA  Jr,  Dubielzig  RR.  Queratoconjuntivitis  asociada  a  
Toxoplasma  gondii  en  un  perro.  Oftalmol  veterinario.  2009;12:56­60.
37.  Das  S,  Samant  M,  Garg  P,  Vaddavalli  PK,  Vemuganti  GK.
63.  Wang  YE,  Tepelus  TC,  Gui  W,  Irvine  JA,  Lee  OL,  Hsu  HY.
38.  Shi  W,  Li  S,  Liu  M,  Jin  H,  Xie  L.  Quimioterapia  antimicótica  para  la  queratitis  fúngica  
guiada  por  microscopía  confocal  in  vivo.  Arco  de  Graefe  Clin  Exp  Ophthalmol.  
2008;246:581­586.
48.  Hong  J,  Le  Q,  Deng  SX,  Cao  W,  Xu  J.  Pseudomonas  aeruginosa
64.  Ledbetter  EC,  McDonough  SP,  Dong  L,  Liotta  JL,  Bowman  DD,  Kim  SG.  
Escleroqueratitis  por  Acanthamoeba  en  un  gato.  J  Am  Vet  Med
46.  Romano  V,  Steger  B,  Ahmad  M,  et  al.  Obtención  de  imágenes  de  las  anomalías  
vasculares  en  la  enfermedad  de  la  superficie  ocular.  Surv  Oftalmol.  2021.  https://
doi.org/10.1016/j.survophthal.2021.05.001
54.  Jullienne  R,  He  Z,  Manoli  P,  et  al.  Microscopía  confocal  in  vivo  de  la  queratitis  
inducida  por  el  cabello  de  la  oruga  procesionaria  del  pino.  Córnea.  2015;34:350­352.
70.  Beckwith­Cohen  B,  Gasper  DJ,  Bentley  E,  et  al.  Infecciones  protozoarias  de  la  
córnea  y  la  conjuntiva  en  perros  asociadas  con  enfermedad  crónica  de  la  superficie  
ocular  e  inmunosupresión  tópica.  Oftalmol  veterinario.  2016;19:206­213.
59.  Chopra  R,  Mulholland  PJ,  Hau  SC.  Micros  confocales  in  vivo  copian  características  
morfológicas  y  densidad  de  quistes  en  Acanthamoeba
61.  Vaddavalli  PK,  Garg  P,  Sharma  S,  Sangwan  VS,  Rao  GN,  Thomas  R.  Rol  de  la  
microscopía  confocal  en  el  diagnóstico  de  queratitis  fúngica  y  por  acanthamoeba.  
Oftalmología.  2011;118:29­35.
58.  Winchester  K,  Mathers  WD,  Sutphin  JE,  Daley  TE.  Diagnóstico  de  queratitis  por  
Acanthamoeba  in  vivo  con  microscopía  confocal.
|
Machine Translated by Google
https://doi.org/10.1016/j.survophthal.2021.05.001
85.  Nagasato  D,  Araki­Sasaki  K,  Kojima  T,  Ideta  R,  Dogru  M.
Inervación  corneal  alterada  y  homeostasis  de  la  superficie  ocular  en
75.  Ma  KK,  Kinde  B,  Doan  T,  Jacobs  DS,  Ong  TS.  Diagnóstico  molecular  dual  
de  Microsporidia  (Encephalitozoon  hellem)
Encefalitozoo  (Nosema)  infección  de  la  córnea  en  un  gato.  J  Am  Vet  Med  
Assoc.  1977;  171:355­357.
84.  Mocan  MC,  Irkec  M,  Mikropoulos  DG,  Bozkurt  B,  Orhan  M,  Konstas  AG.  
Evaluación  microscópica  confocal  in  vivo  de  la  respuesta  inflamatoria  
en  la  queratitis  por  herpes  simple  no  epitelial.
90.  Ledbetter  CE,  Marfurt  CF,  Dubielzig  RR.  Enfermedad  corneal  metaherpética  
en  un  perro  asociada  con  deficiencia  parcial  de  células  madre  limbares  
y  queratitis  neurotrófica.  Oftalmol  veterinario.  2013;16:282­288.
82.  Cottrell  P,  Ahmed  S,  James  C,  et  al.  Neuron  J  es  una  herramienta  de  
código  abierto  rápida  y  confiable  para  evaluar  la  densidad  del  nervio  
corneal  en  la  queratitis  por  herpes  simple.  Invertir  Ophthalmol  Vis  Sci.  
2014;55:7312­7320.
74.  Malhotra  C,  Jain  AK,  Kaur  S,  Dhingra  D,  Hemanth  V,  Sharma  SP.  
Características  microscópicas  confocales  in  vivo  de  la  queratoconjuntivitis  
microsporidial  en  adultos  inmunocompetentes.  Br  J  Ophthalmol.  
2017;101:1217­1222.
73.  Shah  GK,  Pfister  D,  Probst  LE,  Ferrieri  P,  Holland  E.  Diagnóstico  de  
queratitis  microsporidial  por  microscopía  confocal  y  tinción  cromatrópica.  
Soy  J  Ophthalmol.  1996;  121:89­91.
Langston  D,  Hamrah  P.  Regeneración  del  nervio  corneal  después  de  la  
queratitis  por  herpes  simple:  un  estudio  longitudinal  de  microscopía  
confocal  in  vivo.  Ocul  Surf.  2018;16:218­225.
77.  Scurrell  E,  Manning  S,  Malho  P,  et  al.  Queratopatia  microsporidial  en  dos  
perros.  Oftalmol  veterinario.  2020;23:402­408.
93.  Martone  G,  Alegente  M,  Balestrazzi  A,  et  al.  Microscopía  confocal  in  vivo  
en  queratitis  herpética  bilateral:  Reporte  de  un  caso.  Eur  J  Ophthalmol.  
2008;18:994­997.
Gatos  expuestos  a  FHV­1:  un  estudio  preliminar  que  sugiere  una  enfermedad  
metaherpética.  Ciencia  veterinaria  frontal.  2021;7:580414.
Cambios  morfológicos  del  plexo  nervioso  subepitelial  corneal  en  
diferentes  tipos  de  queratitis  herpética.  Jpn  J  Ophthalmol.  2011;55:444­450.
89.  Hamrah  P,  Cruzat  A,  Dastjerdi  MH,  et  al.  El  herpes  zoster  oftálmico  
unilateral  produce  una  alteración  del  nervio  corneal  bilateral:  un  estudio  
de  microscopía  confocal  in  vivo.  Oftalmología.  2013;120:40­47.
Queratoconjuntivitis  en  un  adulto  inmunocompetente.  Córnea.  
2021;40:242­244.
91.  Sebbag  L,  Thomasy  SM,  Leland  A,  Mukai  M,  KimS,  Maggs  DJ.
Curr  Ojo  Res.  2012;37:1099­1106.
83.  Hamrah  P,  Sahin  A,  Dastjerdi  MH,  et  al.  Cambios  celulares  del  epitelio  
corneal  y  el  estroma  en  la  queratitis  por  herpes  simple:  un  estudio  de  
microscopía  confocal  in  vivo.  Oftalmología.  2012;119:1791­1797.
87.  Rosenberg  ME,  Tervo  TM,  Muller  LJ,  Moilanen  JA,  Vesaluoma  MH.  
Microscopía  confocal  in  vivo  después  de  la  queratitis  por  herpes.  Córnea.  
2002;  21:265­269.
79.  Buyukmihci  N,  Bellhorn  RW,  Hunziker  J,  Clinton  J.
86.  Hamrah  P,  Cruzat  A,  Dastjerdi  MH,  et  al.  Sensación  corneal  y  alteraciones  
del  nervio  subbasal  en  pacientes  con  queratitis  por  herpes  simple:  un  
estudio  de  microscopía  confocal  in  vivo.  Oftalmología.  2010;117:1930­1936.
81.  Muller  RT,  Pourmirzaie  R,  Pavan­Langston  D,  et  al.  La  microscopía  
confocal  in  vivo  demuestra  la  pérdida  bilateral  de  células  endoteliales  en  
la  queratitis  unilateral  por  herpes  simple.  Invertir  Ophthalmol  Vis  Sci.  
2015;56:4899­4906.
78.  Caruso  KA,  Koch  S,  Reynolds  BD,  et  al.  Queratitis  estromal  microsporidial  
en  un  gato.  Informe  de  caso  Med  Mycol.  2020;27:44­47.
94.  Ledbetter  EC,  Joslin  AR,  Spertus  CB,  Badanes  A,  Mohammed  HO.  
Características  microscópicas  confocales  in  vivo  de  la  queratitis  ulcerativa  
punteada  y  dendrítica  adquirida  naturalmente  por  el  herpesvirus  canino­1  
y  el  herpesvirus  felino­1.  Soy  J  Vet  Res.  2021.  En  Prensa.
92.  Yokogawa  H,  Kobayashi  A,  Mori  N,  Sugiyama  K.  Mapeo  de  lesiones  
dendríticas  en  pacientes  con  queratitis  por  herpes  simple  usando  
microscopía  confocal  in  vivo.  Clin  Oftalmol.  2015;9:1771­1777.
76.  Sagoo  MS,  Mehta  JS,  Hau  S,  et  al.  Queratitis  estromal  por  Microsporidium :  
hallazgos  confocales  in  vivo.  Córnea.  2007;26:870­873.
80.  Moein  HR,  Kheirkhah  A,  Muller  RT,  Cruzat  AC,  Pavan
88.  Liu  X,  Xu  S,  Wang  Y,  Jin  X,  Shi  Y,  Zhang  H.  Alteraciones  bilaterales  de  
células  madre  del  limbo  en  pacientes  con  queratitis  unilateral  por  herpes  
simple  y  herpes  zoster  oftálmico,  como  se  muestra  mediante  microscopía  
confocal  in  vivo.  Invertir  Ophthalmol  Vis  Sci.  2021;62:12.
Aplicaciones  de  la  microscopía  confocal  in  vivo  en  
el  manejo  de  la  queratitis  infecciosa  en  
oftalmología  veterinaria.  Oftalmol  veterinario.  
2021;00:1–12.  https://doi.org/10.1111/vop.12928
Cómo  citar  este  artículo:  Ledbetter  EC.
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https://doi.org/10.1111/vop.12928