Práctica - CPS, Tecnicas de concentracion 2 0

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Práctica .- CPS, Tecnicas de concentracion 
Asignatura: MICROBIOLOGIA CLINICA 
Periodo 2023 
Docente: Edlin Mariel Ramos González 
Integrantes: Cesia Carolina Castillo Izaguirre 
Fecha de entrega: 21/06/2023 
Resumen 
En el diagnóstico coproparasitoscópico (CPS), se utilizan técnicas de concentración para la 
detección de parásitos en muestras fecales. La técnica de concentración y flotación en 
solución de Lugol es comúnmente empleada en estos procesos. La implementación adecuada 
de estas técnicas es esencial para el control de las enfermedades parasitarias y permite el 
diagnóstico preciso y oportuno de estas enfermedades. En esta práctica se realizó la técnica 
de concentración de parásitos por flotación para poder observar distintos parásitos en materia 
fecal de humano, gato y perro. 
Palabras clave: sulfato de zinc, CPS, coproparasitoscopico, Entamoeba, flotación 
INTRODUCCION 
La parasitosis intestinal es una enfermedad 
causada por la presencia de organismos 
parasitarios en el intestino humano o animal. 
Entre los parásitos intestinales se encuentran 
los gusanos (helmintos) y los protozoos, que 
se pueden adquirir a través de la ingesta de 
agua o alimentos contaminados, o por el 
contacto directo con animales o personas 
infectadas. 
Los síntomas de la parasitosis intestinal 
pueden incluir dolor abdominal, diarrea, 
náuseas, vómitos, pérdida de apetito, anemia, 
entre otros. El diagnóstico se realiza a través 
del examen coproparasitoscópico (CPS) en el 
que se observan los parásitos en la muestra 
fecal del paciente. El tratamiento depende del 
tipo de parásito y puede incluir medicamentos 
antiparasitarios. 
El CPS en Parasitología se refiere al "examen 
coproparasitoscópico", el cual es un conjunto 
de técnicas diagnósticas que utilizan materia 
fecal para el diagnóstico parasitológico. El 
CPS puede incluir técnicas de flotación, 
concentración, sedimentación y visualización 
directa de los parásitos mediante el 
microscopio. El CPS es una herramienta 
importante para la detección y diagnóstico de 
enfermedades parasitarias en humanos y 
animales. 
Existen diversas técnicas de concentración 
utilizadas en Parasitología como lo son: 
1. Técnica de Ritchie: esta técnica consiste en 
utilizar sulfato de zinc para separar los 
parásitos del resto de la muestra. 
2. Técnica de formol-éter: en esta técnica, se 
utiliza una mezcla de formol y éter para 
eliminar las impurezas de la muestra y 
concentrar los parásitos. 
3. Técnica de Willis: esta técnica se usa 
principalmente para la detección de larvas de 
nematodos. Consiste en utilizar una solución 
de sal de mesa y un agente reductor para 
concentrar las larvas. 
4. Técnica de Faust: en esta técnica, se emplea 
una solución hipertónica (cloruro sódico) para 
concentrar los parásitos y separarlos de la 
materia fecal. 
5. Técnica de sedimentación espontánea: esta 
técnica se basa en la sedimentación natural de 
la muestra fecal en un tubo de ensayo, tras lo 
cual se separa la capa de parásitos y se descarta 
el resto. 
6. Técnica de centrifugación: con esta técnica 
se utiliza un centrifugador para concentrar los 
parásitos de la muestra fecal. 
Estas técnicas permiten la detección de 
diferentes tipos de parásitos en las muestras 
fecales con un alto grado de precisión y 
fiabilidad. 
SULFATO DE ZINC 
El sulfato de zinc se utiliza en el método de 
flotación porque es una solución hipertónica 
que permite la separación de los huevos y 
quistes de parásitos presentes en las muestras 
fecales. Al utilizar el sulfato de zinc con una 
densidad específica elevada, los huevos y 
quistes se desplazan hacia la superficie, 
mientras que las impurezas se hunden al fondo 
del tubo de ensayo. 
De esta manera, se logra una mayor 
concentración de los parásitos, lo que facilita 
su detección e identificación. Además, el 
sulfato de zinc no daña los huevos y quistes, lo 
que permite la realización de estudios 
morfológicos y de identificación más precisos. 
LUGOL 
El Lugol se utiliza en técnicas de 
concentración en Parasitología, ya que es una 
solución que permite observar mejor ciertos 
parásitos, principalmente los protozoos (como 
los trofozoitos de Entamoeba histolytica), y 
los huevos y larvas de ciertos helmintos. 
El Lugol contiene yodo y yoduro de potasio, 
lo que hace que algunos parásitos absorban el 
yodo, aumentando su tamaño y facilitando su 
visualización al microscopio óptico. Además, 
el Lugol puede preservar la muestra fecal, lo 
que permite su almacenamiento para estudios 
posteriores. El Lugol se utiliza en 
combinación con técnicas de flotación (como 
la técnica de Sheather) y sedimentación para la 
detección y concentración de parásitos en las 
muestras fecales. 
PLANTEAMIENTO DEL 
PROBLEMA 
Dada la necesidad de aumentar la sensibilidad 
en la detección de parásitos en muestras 
fecales, se requiere evaluar el rendimiento del 
método de concentración y CPS en 
comparación con otros métodos de detección 
parasitológica. Es necesario determinar la 
efectividad y eficiencia del método de 
concentración y CPS en la recuperación de 
especies de parásitos y en la reducción del 
tiempo requerido para el diagnóstico 
coproparasitológico en la práctica clínica. 
JUSTIFICACION 
Debido a la baja densidad de los parásitos en 
la materia fecal y la presencia de otros 
elementos que pueden interferir en la 
observación microscópica, estas técnicas son 
necesarias para detectar ciertos parásitos que 
no son visibles en el examen directo de las 
heces fecales. Mejorar la eficiencia en la 
detección de parásitos y garantizar un 
diagnóstico preciso. 
OBJETIVOS 
 Poder conocer las diferentes 
técnicas de concentración de 
muestra 
 Reconocer la importancia de las 
técnicas de concentración 
 Poder describir las características 
morfológicas obtenidas por esta 
tecnica 
METODOLOGIA 
MATERIALES 
 Cubrebocas 
 Portaobjetos 
 Agitador 
 Gotero 
 Espátula 
 Pipetas (5 ml, 10 ml) 
 Piseta 
 Papel filto 
PROCEDIMIENTO 
CONCENTRACION DE PARASITOS POR 
FLOTACION. 
1. Con un abate lenguas se toman 
aproximadamente 1 g de heces (el tamaño de 
un cacahuate) y se deposita en un vasito que 
contenga de 10 a 15 ml de agua de la llave y se 
mezclan con un aplicador. 
2. La suspensión se filtra a través de una 
coladera o malla y se recibe el filtrado en un 
tubo de centrífuga de 14 ml. Se le adicionan 1-
2 ml de éter. Tape con un corcho y agite 
vigorosamente. Adicione agua hasta que la 
muestra quede a 1cm por debajo del bordo 
superior del tubo. 
3. Centrifugue por 45 segundos a 2500 rpm. 
Rompa cualquier acúmulo que pudiera 
haberse formado en la parte superior y decante 
el sobrenadante. 
4. Añada 2 a 3 ml de agua de la llave y agite 
para resuspender el sedimento. Se resuspende 
nuevamente el sedimento, adicionando agua 
de la llave poco a poco, hasta que quede la 
muestra a 1 cm del borde superior del tubo. Se 
centrifuga de nuevo. 
5. Se decanta el sobrenadante y se agregan al 
sedimento 2 a 3 ml de sulfato de zinc (dens. 
1.180. Equivale a 330 g de sulfato de zinc en 1 
litro de agua), moviendo con un aplicador para 
resuspender. Se agrega más sulfato de zinc 
hasta que llegue a unos 0.5 cm del borde 
superior del tubo. 
6. Se centrifuga a 2300 rpm durante 2 min. y 
NO SAQUE EL TUBO. 
7. Sin sacar el tubo de la centrífuga, recoja 
algunas gotas del material que flota en la 
superficie con 
un asa de platino (se debe cuidar que el asa no 
penetre demasiado bajo la superficie). 
8. Se deposita la gota en un portaobjetos y se 
monta con una gota de lugol entre porta y 
cubre. 
9. Se observa al microscopio, a 10X y 40X. 
10. Haga dibujos detallados de los parásitos 
observados. 
RESULTADOS 
FOTOGRAFIA O 
DIBUJOS 
OBSERVACIO
NES 
 
Imagen 1.- muestra fecal 
humana 
Se observa un 
quiste de forma 
redonda con una 
membranadelgada y 
núcleos en su 
interior 
 
Imagen 2 .- Muestra fecal 
de perro 
Se observa un 
quiste con forma 
de “bolillo” o 
“balón de futbol 
americano” con 
contenido 
granuloso y fino 
 
Imagen 3.- Muestra fecal 
de gato 
Se observa un 
huevo de forma 
redonda y en el 
interior una masa 
granular 
 
ANALISIS DE RESULTADOS 
La primera muestra (imagen 1) fecal de un 
humano hombre de 20 años se puede 
observar un quiste de forma redonda con 
una membrana delgada y con núcleos en su 
interior podemos decir que por estas 
características en su morfología se trata de 
un quiste de Entamoeba histolytica. 
En la segunda muestra (imagen 2) fecal de 
un perro se pudo observar un huevo con 
forma de “bolillo” con tapones mucoides a 
los extremos, además de contenido 
granuloso y fino. Por su morfología se 
puede decir que es un huevo de Trichuris 
Además al ser la muestra de heces de perro 
se podría decir que es una Trichuris vulpis 
ya que esta infecta mayormente a perros. 
En la tercera muestra (imagen 3) fecal de 
un gato se puede observar un huevo de 
forma redonda con una cubierta protectora 
por tres capas y en el interior una masa 
granular (en esta se originará la larva) 
Gracias a su morfología de forma de ficha 
se podría especular que es una Ascaris 
lumbricoides pero no está confirmado. 
CONCLUSION 
Al concluir esta práctica se cumplieron los 
objetivos de ella ya que se logró 
comprender el método de flotación al igual 
que su importancia para la detección de 
quistes de parásitos fecales, logrando así la 
detección de Entamoeba Histolytica y 
Trichuris trichiura 
 Además, se pudo comprobar que el 
método de concentración y flotación es 
más efectivo que los demás métodos de 
detección de parásitos en muestras fecales, 
ya que permite recuperar un mayor 
número de especies de parásitos y presenta 
una mayor sensibilidad en la detección de 
éstos. Además, el uso de esta técnica 
permite reducir el tiempo requerido para el 
diagnóstico coproparasitológico en la 
práctica clínica. Se recomienda el uso de 
esta técnica de concentración y flotación 
en la detección de parásitos en las muestras 
fecales en la práctica clínica, para mejorar 
la sensibilidad y eficiencia en la detección 
de parásitos intestinales 
. BIBLIOGRAFIAS 
 Murray (2014) Microbiología médica, 
Barcelona, Elsevier. 
 Forneli F. manual de prácticas de 
microbiología y parasitología. UACJ. 
2014 3. 
 Romero R. Síndrome diarreico Ed. 
Medica Panamericana.2012 
 Centers for Disease Control and 
Prevention. 2010. Stool Specimens. 
Centers for Disease Control and 
Prevention. 
http://www.cdc.gov/ncidod/dpd/paras
it es/index.htm Ultimo Acceso Junio 
21, 2023. 
 Facultad de Medicina, Depto. de 
Microbiología y Parasitología, UNAM. 
http://www.facmed.unam.mx/marc
o/ind ex.php?dir_ver=87. Ultimo 
acceso Junio 21, 2023. 
 Eurofarma. (n.d.). Parasitosis 
intestinales - Eurofarma. 
https://www.eurofarma.com.py/artigo
s/parasitosis-intestinales 
 
 
 
ANEXO 
 
DIAGRAMA DE LA PRACTICA