PRACTICA 1

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Universidad Veracruzana 
Facultad de Bioanálisis – Xalapa 
 
Bioquímica Básica 
Ricardo Vázquez Ballona 
 
Alicia de los Ángeles Zamudio Sánchez 
 
PRACTICA 1. Fragilidad osmótica de los eritrocitos. 
1 de septiembre de 2021 
 
PRACTICA 1. Fragilidad osmótica de los eritrocitos 
Objetivos: 
- Establecer los efectos producidos por los factores osmóticos sobre los eritrocitos a 
diferentes concentraciones de solución salina (NaCl). 
- Demostrar el comportamiento de la membrana celular en diferentes 
concentraciones de soluciones salinas. 
 
Generalidades: 
La membrana celular de los eritrocitos es flexible, pero prácticamente carece de elasticidad, 
lo que significa que la célula se rompe si le entra agua hasta exceder un volumen crítico. 
La susceptibilidad de los eritrocitos a hemólisis en solución hipotónica guarda una relación 
inversa con su tamaño, por lo que es interesante notar que los glóbulos rojos de carnero 
están entre los más pequeños encontrados entre los mamíferos. 
Por otra parte, como la resistencia de los eritrocitos a la hemólisis puede aumentar o 
disminuir en estados de enfermedad, se debe considerar la importancia que tiene controlar 
las condiciones de mantenimiento de los animales de laboratorio y el manejo de los 
reactivos biológicos que se producen a partir de ellos, para mantener su calidad, tomando 
en cuenta que cada especie animal tiene sus propias características fisiológicas. Por 
ejemplo, se ha indicado que, respecto a la sangre, entre distintas especies varía el tiempo 
de coagulación, la fragilidad celular, la composición del suero, el pH y otras características. 
En un paciente normal, el glóbulo rojo presenta una forma bicóncava que permite que, al 
ser expuesto a osmolaridades diferentes a la del plasma, experimente cambios en su forma 
incorporando o eliminando agua de su interior, pudiendo llegar finalmente a lisarse en 
medios de baja osmolaridad. 
 
Procedimiento: 
1. Verter 10 mL de agua destilada en el matraz de 25 mL. 
2. Preparar 9 tubos de ensayo como se indica en la tabla. 
 
 
3. Mezclar suavemente y dejar reposar un tiempo considerado alrededor de 30 min. 
4. Centrifugar a 2000 r.p.m. durante 5 min. 
5. Aspirar el sobrenadante con pipeta Pasteur y pasarlo a una celda, usar una pipeta 
por muestra, (no decantar). 
6. Leer la absorbancia de los sobrenadantes en el colorímetro o espectrofotómetro, 
calibrando a 0 de absorbancia y 100% transmitancia con blanco de agua. 
7. Reportar resultados. 
 
Materiales y equipo: 
Material por equipo: 
- 1 gradilla 
- 9 tubos de ensayo de 13 x 1oo mm 
- Pipetas automáticas de 100-1000 
uL 
- Puntas azules nuevas 
- 1 piseta con agua destilada 
- 1 matraz Erlenmeyer de 25 Ml 
 
 
Material traído por los alumnos por grupo: 
- Material para toma de muestra de 
sangre 
- 1 tubo con anticoagulante EDTA 
- 1 marcador para tubo de vidrio 
 
 
 
 
TUBO 1 2 3 4 5 6 7 8 9 
Agua destilada mL 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0 1.2 1.4 1.6 
Suero Fisiológico 1.8 1.6 1.4 1.2 1.0 0.8 0.6 0.4 0.2 
Concentración 
obtenida en g/L 
9 8 7 6 5 4 3 2 1 
Sangre total con 
EDTA 
2 gtas. 2 gtas. 2 gtas. 2 gtas. 2 gtas. 2 gtas. 2 gtas. 2 gtas. 2 gtas. 
Material por grupo: 
- Un espectrofotómetro con filtro verde a 540 nm, ajustado a 0 de absorbancia y 100% 
transmitancia con blanco de agua. 
- Centrífuga clínica 
- Contenedor de agujas 
- Bolsa roja para RPBI 
 
Reactivos por equipo: 
- 50 mL de agua destilada 
 
Sustancias traídas por los alumnos por grupo: 
- Suero fisiológico tamponado, 100 mL 
 
Precauciones: 
- Colocarse la respectiva bata de laboratorio, abotonada. 
- Colocarse los accesorios de protección individual (cubrebocas, lentes de protección, 
guantes). 
- Tener bien tapados los tubos de ensayo. 
- Mantener los tubos de ensayo en la gradilla. 
- Cambiar las puntillas de las pipetas automáticas al momento que se deban cambiar. 
 
 RESULTADOS: 
TUBO 1 2 3 4 5 6 7 8 9 
Lectura 0.004 0.011 0.010 0.20 0.301 2.454 2.454 2.425 2.485 
Coloración 
observada 
No hay No hay Poca Media 
Rojo 
claro 
Rojo 
intenso 
Rojo 
intenso 
Rojo 
intenso 
Rojo 
intenso 
% de Hemólisis 0.16% 0.44% 0.40% 0.80% 12.11% 97.75% 98.75% 97.58% 100% 
 
 
 
Materiales que utilizar. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Agregando la 
solución salina a los 
tubos. 
 
 
 
 
 
Agregando la 
muestra a los tubos. 
 
 
 
 
 
 
Conclusiones. 
Se llevó a cabo esta práctica para ver la resistencia osmótica de los eritrocitos. El 
resultado que se obtiene o lo que se espera de la práctica es comprobar a que 
cantidad es más resistente cada tubo dependiendo de la cantidad de agua destilada 
y suero agregado. 
Observamos que a los tubos que se les agregó mayor cantidad de suero fisiológico 
tamponado y cantidad menor de agua destilada no llegan a alcanzar la hemólisis 
porque sus eritrocitos no están dispersos en líquido. 
 
¿Qué factores son condicionantes para predecir la hemólisis? 
Hemólisis más frecuente mientras se efectúa la recogida de muestras en sangre: 
• Aspiración intensa, particularmente durante la punción superficial de las 
venas. La aspiración por medio de agujas finas suele causar menos 
hemólisis que con agujas gruesas. Sin embargo, el flujo de corriente es 
más bajo y la velocidad de fluido, turbulencia y hemólisis se supone que 
son menores. 
• La obstrucción parcial de un catéter venoso o arterial. La consecuencia es 
una aspiración más intensa si la muestra es extraída con una jeringa. 
• Extracción con una jeringa y después repartir alícuotas en varios tubos de 
ensayo. 
 
Causas de hemólisis después de la recogida de muestras de sangre 
• Agitación de la sangre vigorosamente 
• Centrifugación de la sangre antes de la completa coagulación 
• Centrifugación de muestras parcialmente coaguladas procedentes de 
pacientes con medicación de anticoagulantes 
• Presión positiva o negativa en los tubos de muestra 
• Dilución de la sangre con solución hipotónica 
• Congelación y descongelación de la sangre 
• Almacenamiento o transporte de sangre durante varios días a 
temperatura ambiente. 
 
¿Qué enfermedades pueden producir hemólisis? 
• Reacciones inmunitarias. 
• Infecciones. 
• Medicamentos. 
• Toxinas y venenos. 
• Tratamientos como la hemodiálisis o el uso del sistema de circulación 
extracorporal. 
 
 
 
 
 
 
 
 
https://medlineplus.gov/spanish/ency/article/002331.htm
Referencias. 
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