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UNIVERSIDAD NACIONAL DE CHIMBORAZO Histología I Emily Morocho David Núñez Jennyfer Pastor Cristhian Patín PREPARACIÓN DE MUESTRAS BORCELLE 2030 INTRODUCCIÓN Para conocer su estructura morfológica microscópica y sus funciones, deberíamos primero examinarlas a través de los instrumentos a través del miscroscópico, al intentar hacerlo se presentan serias dificultades . Por lo tanto, es necesario utilizar una serie de procedimientos, porque nos permite describir, comprender y analizar la estructura microscópica de las células, tejidos y órganos. Permiten la observación y el estudio de protozoarios, células sanguíneas y entre otros más. Para una observación óptima suele utilizarse tipos especiales de microscopios fotónicos como el de campo oscuro: observación al estado fresco. Cuando se requiera destacar alguna estructura celular o tisular se pueden emplear colorantes inocuos y a este proceso se conoce como coloración vital. PROCEDIMIENTOS INMEDIATOS O VITALES COLORACIÓN VITAL Coloración intravital: A través de las vías digestiva o intratraqueal; mediante inyecciones sanguíneas. Las soluciones más utilizadas son: tinta china, carmín de litio, azul tripan Coloración supravital: Aplican a células o tejidos provenientes de organismos vivos. Mitocondrias verde de Jano Los gránulos de las células rojo neutro La sustancia granulofilamentosa del reticulocitos azul brillante de cresyl Ramificaciones nerviosas con el azul de metileno ADN y el ARN de las células con naranja de acridina Ejemplo: tejido conectivo laxo PROCEDIMIENTOS MEDIATOS O POSTVITALES Este procedimiento prepara muestras de seres cuyos procesos vitales se han detenido Para alcanzar este objetivo es necesario realizar los siguientes pasos: TOMA DE MUESTRAS La calidad y la fidelidad con que una célula o un tejido muestren una imagen al microscopio, con las características morfológicas que poseían cuando estaban con vida, dependen esencialmente de la prontitud y el cuidado que se aplicó para obtener la muestra a ser procesada Mediante la biopsia consiste en la toma de un fragmento de tejido u órgano de un ser vivo. realiza a través de una operación quirúrgica incisional excisional por sacabocados por punción y absorción por raspado por trepanación mediante la necropsia las muestras se obtienen de seres muertos: En este caso es recomendable que los tejidos y órganos se obtengan inmediatamente después de producida la muerte. Recomendaciones para la toma de las muestras. Los tejidos y los órganos provenientes de biopsias y necropsias se seccionar empleando bisturís o navajas de afeitar nuevos, sin hacer presión sobre ellos. B) FIJACIÓN Detener la vida de las células e impedir las modificaciones post morten que pueda sufrir la célula (procesos autolíticos), manteniendo la estructura morfológica de células y tejidos sin que ocurran cambios notables en ellos CLASIFICACIÓN DE LOS FIJADORES el tetraóxido de osmio (ácido ósmico), el bicromato de potasio, ácido crómico, bicloruro de mercurio o “sublimado corrosivo”, ácido pícrico, ácido acético. ACCIÓN REDUCTORES el formaldehído, el glutaraldehído, el alcohol etílico, el alcohol metílico. OXIDANTES el alcohol etílico absoluto conserva el glucógeno el bicloruro de mercurio provoca que las anilinas coloreen de manera más brillante a las fibras colágenas el bicromato de potasio facilita la coloración de las mitocondrias ácido acético permite una mejor tinción de los núcleos, TAMBIEN PUEDEN SER: Como el Formalaldehído. SÓLIDOSLÍQUIDOS Como el ácido acético AlcoholmEtílico La acetona GASEOSOS Bicloruri¿o de Mercurio Bicromato de Potasio CONDICIONES DE UN BUEN FIJADOR Matar inmediatamente a las células: Impidiensdo la aparición de los procesos autolíticos, debe tener poder de penetración y poder de difusión. Producir cierta dureza a los tejidos: Sin hacerlos quebradizoz y friables. Debe tener fácil manipulación No debe disolver componentes celulares Que sea fácil de conseguir y que sea barato Formol o formalina: Solución acuosa del gas formaldehído al 39 - 40% es liquido claro, incoloro y con vapores tóxicos a la mucosa respiratoria, tiene buen poder de penetración y de difusión Se le emplea en una solución al 10% (10 del formol comercial y 90 partes de agua). FIJADOR SIMPLE Propiedades FIJADORES COMPUESTOS Suele emplearse como un fijador de rutina. Propiedades FIJADORES COMPUESTOS Es recomendable usarlo para fijar tejidos hematopoyético y linfáticoreticular. Facilita la tinción de fibras colágenas y células conjuntivas Propiedades FIJADORES COMPUESTOS Preservar lípidos, especialmete fosfolípidos Propiedades FIJADORES COMPUESTOS Fijador de uso rutinario Mejor resultados con el Tricrómico de Masson Para fijación de embriones y fetos pequelos pues ejerce cierto poder descalcificante. Propiedades FIJADORES COMPUESTOS preserva muy bien a los eritrocitos y a los gránulos de las células de glándulas endocrinas Propiedades FIJADORES COMPUESTOS un excelente poder de penetración y de difusión. Las muestras delgadas de tejidos y órganos se fijan en dos o tres horas. Produce lisis de los eritrocitos CRITERIOS PARA OBTENER UNA BUENA FIJACIÓN Depende del estudio a realizar, para tejidos y órganos se necesitan fijadores con buen o¿poder de pentración y difusión como el Zenker, Boüin o Helly, caso contrario se deberá colocar formol al 10 o 15%. VOLUMEN DEL FIJADORTAMAÑO DE MUESTRAS Tamaño y grosor deben ser pequeñas y delgadas , de 1cm2 a 2 cm2 y con un espesor de 2 mm a 5 mm ELECCIÓN DEL FIJADOR Una proporción que es necesario emplear será de 1 a 20 (muestra – fijador). Tiempo de fijación Temperatura 1. El intervalo que media entre la interrupción del aporte sanguíneo y la inmersión de las muestras en la solución fijadora 2. Debe tenerse en cuenta el tiempo que permanecerán las muestras sumergidas en los fijadores Es recomendable efectuar la fijación a bajas temperaturas ( 4o C.) dentro de un refrigerador retardará el tiempo de fijación pero disminuirá de manera notable la autólisis de los tejidos., CRITERIOS PARA OBTENER UNA BUENA FIJACIÓN Almacenamiento de muestras Lavado de las muestras fijadases conveniente almacenar y conservar los tejidos fijados para un uso posterior. Después de eliminar el fijador mediante un “lavado”, se guardan en una solución de alcohol al 70% Al concluir la fijación, el fijador debe ser eliminado de las muestras. Para tal fin se procede al lavado de los tejidos mediante agua o alcohol CRITERIOS PARA OBTENER UNA BUENA FIJACIÓN MICROTOMIA (OBTENCIÓN DE LOS CORTES) En esta etapa, los tejidos y la parafina integran un solo bloque que, posee la dureza y la consistencia suficientes para obtener secciones delgadas y transparentes. Los microtomos se clasifican de acuerdo a la manera como se desplaza el bloque que contiene el tejido incluido Microtomo de rotación tipo Minot Mediante una manivela circular denominada volante, el mecanismo que sujeta al bloque de parafina se desplaza frente al filo de la navaja, de arriba hacia abajo y viceversa en un movimiento vertical El movimiento que se realiza para obtener los cortes es horizontal, es decir de atrás hacia adelante y viceversa. Generalmente el mecanismo que sujeta al bloque de parafina es el que se desplaza y a la navaja permanece estática Microtomo de deslizamiento INCLUSIÓN Tejidos fijados cierta consistencia y dureza Las sustancias de inclusión tienen la propiedad de incorporarse e infiltrarse al interior de las células Tejidos y la sustancia de inclusión forman un bloque homogéneo en dureza-consistencia Sustancias de inclusión Son solubles en agua (gelatina, carbowax, glicol metacrilato) Solubles en solventes orgánicos (parafina, celoidina, resinas epóxicas). INCLUSIÓN EN PARAFINA Después de la fijación y el “lavado” de las muestras Embebidas en agua o en alcohol Se requiere deshidratarlos e infiltrarlos con el solvente de la sustancia de inclusión.PASOS PARA SEGUIR Significa extraer o remover el agua de los tejidos fijados Debe ser completa porque, de lo contrario, el solvente no actúa de forma adecuada Más usados son el alcohol etílico, el alcohol isopropílico, el dioxano y el cloroformo. Deshidratación: Diafanización: Reemplazarlo por sustancias que sean capaces, simultáneamente, de mezclarse con el alcohol y disolver la parafina Ejemplos: xilol Inclusión y formación del bloque de parafina Las parafinas son hidrocarburos saturados provenientes de la destilación del petróleo Sólidas a temperatura ambiente Oscilan entre 40o y 60o C. La parafina hierve a 300o C. Existen diferentes tipos de parafina Blandas: punto de fusión de 45o C - 52o C. Detectarán antígenos mediante inmunohistoquímica. Semiduras: Puntos de fusión son de 54 o C - 58o C Emplea en los laboratorios donde se realiza técnica histológica Duras: Tienen un punto de fusión de 60o C - 65o C. Deben usarse en ambientes con climas de temperaturas altas. TEORÍA DE LA COLORACIÓN FÍSICA QUÍMICA Teoría física. Considera que la coloración es un proceso físico de adsorción. Teoría química. El colorante se une a la sustancia coloreable combinándose con ella íntimamente debido a la presencia de agrupaciones moleculares ácidas o básicas a) Por su origen. Naturales 1) Animales. Como el carmín 2) Vegetales. Como la hematoxilina, la safranina CLASIFICACION DE LOS COLORANTES a) Por su origen. Sintéticos 1) Ácidos Tienen carga eléctrica negativa, tiñen al grupo químico, cargado eléctricamente, por ejemplo, la eosina, safranina, el azul de anilina. CLASIFICACION DE LOS COLORANTES a) Por su origen. Sintéticos 2) Básicos Poseen una carga eléctrica positiva, Se les denomina también colorantes nucleares, pues tienen afinidad por los ácidos nucleicos (ADN y ARN) por ejemplo la hematoxilina. CLASIFICACION DE LOS COLORANTES a) Por su origen. Sintéticos 3) Neutros Poseen una parte ácida y una parte básica, tienen la propiedad de teñir de manera simultánea, a los componentes nucleares y a los citoplasmáticos. CLASIFICACION DE LOS COLORANTES CLASIFICACIÓN DE COLORACIONES a) Coloración directa o sustantiva. Tinción que se ejerce sobre células y tejidos cuando éstos se ponen en contacto con la solución colorante, el resultado indica una verdadera afinidad entre el tejido y el colorante. CLASIFICACIÓN DE COLORACIONES b) Coloración indirecta o adjetiva. Es indispensable recurrir al empleo de sustancias intermediarias que faciliten la adhesión del colorante “mordiente”. La combinación que se efectúa entre el mordiente y el colorante se denomina “laca”. CLASIFICACIÓN DE COLORACIONES c) Coloración progresiva. Los tejidos se ponen en contacto con la solución colorante para que, conforme transcurre el tiempo de coloración, el tejido, de manera progresiva, alcance la intensidad de tinción deseada. CLASIFICACIÓN DE COLORACIONES d) Coloración regresiva. En este caso los tejidos se sobrecolorean con el colorante para someterlos después a la acción de una sustancia denominada diferenciador, éste extrae parte del colorante y, se detiene el proceso de diferenciación cuando los componentes alcanzan la tinción deseada. CLASIFICACIÓN DE COLORACIONES e) Coloración simple. Es el procedimiento en el que se utiliza un solo colorante para teñir algún componente celular o tisular. CLASIFICACIÓN DE COLORACIONES f) Coloración compuesta o combinada. Consiste en la aplicación, de varios colorantes con la finalidad de destacar, mediante colores diferentes, estructuras específicas. CLASIFICACIÓN DE COLORACIONES g) Coloración metacromática. Un colorante además de ceder su propio color a una estructura celular o tisular también tiñe de color distinto a otras estructuras. La tionina y el azul de toluidina colorean de azul a los núcleos pero, al mismo tiempo la matriz cartilaginosa o el ácido hialurónico se tiñen de violeta o rosado. Colocar encima del corte coloreado una gota de una sustancia adherente, diluida, generalmente en xilol y encima de ellos, una laminilla cubreobjetos, cuidando que no queden burbujas de aire entre la resina. A continuación se deja que el xilol se evapore, y la resina adquiera solidez suficiente; para ello las láminas se colocan en una platina caliente ( 45 o 50 C) durante 24 a 48 horas y estarán listas para ser observadas. 1.- ¿Cuáles son los procedimientos mediatos o postvitales? 2.- En la clasificación de la parafinas las duras cual era el punto de fusión 3.-¿Cuáles son los dos tipos de coloración vital? 4. ¿Cuáles son los dos tipos de procedimeinto para la toma de muestra? 5. ¿Cómo se clasifican los microtomos? 6. ¿Que es la microtomia? 7.-.- En qué se clasifican los fijadores y cite dos ejemplos de cada una 8.- Cuál es el otro nombre de la solución madre? 9.- ¿Cuáles son las condiciones de un buen fijador? 10. El resultado entre un mordiente y un colorante se denomina: ........... 11. ¿Cual es la caracterítica específica de la tinción metacromática? 12. Explique qué es el "montaje" PREGUNTAS
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