Biologia-celula-81

Vista previa del material en texto

CAPÍTULO 2: MEMBRANA PLASMÁTICA Y MEMBRANAS CITOPLÁSMICAS 67
croscopio electrónico pudo comprobarse que son micro-
vellosidades más largas y delgadas que las del intestino
o el riñón (Fig. 2.25.E). Similares, pero estrechándose con-
forme se acercan a la base, son los pelos sensoriales de
las máculas del utrículo y del sáculo en el oído. Estos pe-
los no guardan relación con el transporte, sino con la
transformación del estímulo mecánico en impulso ner-
vioso.
PLIEGUES E INTERDIGITACIONES
Son numerosos los ejemplos de epitelios cuyas células
presentan repliegues de la membrana plasmática en
una o varias caras. Cuando estos repliegues se estable-
cen en las caras de contacto con las células adyacentes
(caras laterales en las células epiteliales), dan lugar a in-
terdigitaciones. 
El caso más llamativo es el de los pliegues laterales
basales que se observan en algunos epitelios, como el
de los túbulos contorneados distales del riñón y en con-
ductos excretores de glándulas salivales. En estas célu-
las, las interdigitaciones se establecen entre las regio-
nes de las caras laterales próximas a la base de la célula
y son muy profundas y numerosas; además, el citoplas-
ma que queda comprendido entre ellas contiene largas
mitocondrias dispuestas en el sentido base-ápice de la
célula (Fig. 2.26.A). En algunos epitelios con pliegues
basales no se observan mitocondrias entre los replie-
gues de la membrana plasmática (Fig. 2.26.B). Menos
frecuentes son los pliegues apicales, que no necesaria-
mente representan interdigitaciones de caras laterales y
pueden estar en la superficie en contacto con la luz. Se
observan en epitelios tan diferentes como el de la veji-
ga urinaria (Fig. 2.26.C) y en el intestino posterior de la
hormiga negra (Figs. 2.26.D y 2.26.E).
La función de los pliegues o interdigitaciones posible-
mente difiere según el tipo de epitelio. Las funciones
más evidentes son: 1) reforzar la cohesión entre las célu-
las, 2) proporcionar una reserva de membrana que facili-
te cambios rápidos en la forma celular, y 3) aumentar la
superficie de intercambio y, por tanto, la velocidad del
transporte. 
Así pues, los pliegues laterales basales con mitocon-
drias probablemente guarden relación con la regulación
osmótica del líquido transportado (por ejemplo, envian-
do Na+ y agua al exterior), ya que este proceso se reali-
za a través de la membrana y requiere un gran aporte
de energía. Los pliegues apicales de la vejiga urinaria
tienen más que ver con la reserva de membrana, ya que
estas células deben expandir y contraer rápidamente su
superficie. En cambio, los del intestino de la hormiga
mencionada parecen responder a un aumento de la su-
perficie de absorción, ya que la cutícula impide el desa-
rrollo de microvellosidades y, en la base de estos plie-
gues, se pueden ver vesículas de endocitosis. 
Al margen de estas funciones, los pliegues forman
parte de la membrana plasmática y, por tanto, pueden
desarrollar algunos tipos de uniones intercelulares. En
algunas interdigitaciones se han descrito áreas de an-
claje con filamentos de actina.
UNIONES DE LAS CÉLULAS ENTRE SÍ 
Y CON LA MATRIZ EXTRACELULAR
De estas uniones se tratará al estudiar las relaciones de
la célula con su entorno (véase página 308).
ESTRUCTURA DE LA MEMBRANA PLASMÁTICA
Benedetti EL. Ultrastructure and molecular organization of bio-
logical membranes. Biol Cell, 1994; 80: 111-114.
Boesz-Battaglia K, Schimmel RJ. Cell membrane lipid compo-
sition and distribution: Implications for cell function and
lessons learned from photoreceptors and platelets. J Exp
Biol, 1997; 200: 2927-2936. 
Bretscher MS. Moléculas de la membrana celular. Investiga-
ción y Ciencia, 1985; 111: 66-75.
Caplan MJ. Membrane polarity in epithelial cells: Protein sor-
ting and establishment of polarized domains. Am J Physiol
Renal Physiol, 1997; 41: F425-F429. 
Davson H, Danielli JP. The Permeability of Natural Membranes.
Cambridge, Cambridge University Press, 1943.
Devaux PF. Protein involvement in transmembrane lipid
asymmetry. Annu Rev Biophys Biomol Struct, 1992; 21:
417-439.
Engel A. Robert Feulgen Lecture. Microscopic assessment of
membrane protein structure and function. Histochem Cell
Biol, 2003; 120: 93-102.
Gómez-Hernández JC, Goñi FH. Fluidez de membranas celula-
res. Investigación y Ciencia, 1983; 79: 14-24.
Gomperts BD. The Plasma Membrane: Models for its Structure
and Function. New York, Academic Press, 1976.
Grzybek M, Kozubek A, Dubielecka P, Sikorski AF. Rafts—the
current picture. Folia Histochem Cytobiol, 2005; 43: 3-10. 
Hakomori S. Glucoesfingolípidos. Investigación y Ciencia, 1986;
118: 14-24.
Luna EJ, Hitt AL. Cytoskeleton-plasma membrane interactions.
Science, 1992; 258: 955-964.
Mouritsen OG, Bloom M. Models of lipid-protein interactions
in membranes. Annu Rev Biophys Biomol Struct, 1993; 22:
145-171.
Palsdottir H, Hunte C. Lipids in membrane protein structures.
Biochim Biophys Acta, 2004; 1666: 2-18.
Sheetz MP. Glycoprotein motility and dynamic domains in fluid
plasma membranes. Annu Rev Biophys Biomol Struct,
1993; 22: 417-431.
Simons K, Vaz WL. Model systems, lipid rafts, and cell membra-
nes. Annu Rev Biophys Biomol Struct, 2004; 33: 269-295.
Singer SJ, Nicholson GL. The fluid mosaic model of the struc-
ture of cell membrane. Science, 1972; 175: 720-731.
BIBLIOGRAFÍA RECOMENDADA
02 PANIAGUA BIOLOGIA 3 02 29/11/06 12:43 Página 67