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REPLICACIÓN La molécula de DNA debe duplicarse para que al dividirse la célula, cada descendiente reciba la misma información genética; a este proceso se lo conoce como replicación. Las moléculas hijas se forman por una cadena de la molécula original y una recién sintetizada. Este mecanismo es semiconservativo y lo demostraron M. Meselson y F. Stahl en 1958. Para el inicio de la síntesis del DNA, las dos cadenas de una molécula deben separarse y cada cadena sirve como molde o templado. Las DNA polimerasas (DNA pol) sintetizan las cadenas complementarias mediante los cuatro desoxinucleósidos trifosfatados (dATP, dCTP, dGTP y dTTP) y con la energía producida por la liberación de pirofosfato forman los enlaces fosfodiéster de la molécula en crecimiento. La replicación del DNA se inicia en una secuencia específica llamada origen de replicación (oriC en E. coli), a partir de la cual avanza en forma bidireccional y constituye un replicón. Debido a la enorme cantidad de DNA en el genoma humano existen múltiples replicones. A partir de cada uno se forma una horquilla, en la cual la replicación prosigue en forma bidireccional y termina donde se encuentra con la horquilla del siguiente replicón. La replicación se realiza durante la fase S del ciclo celular y los replicones en la eucromatina (genes activos) inician antes que los replicones en la heterocromatina (regiones inactivas). Las secuencias de los orígenes de replicación en eucariontes no están bien definidas, con excepción de los de la levadura S. cerevisiae denominados ARS (autonomously replicating sequences). La distribución en el genoma humano de los orígenes de replicación se asocia con loci específicos localizados las más de las veces en genes de mantenimiento activos codificantes, como los de la globina β, MYC (v-myc avian myelocytomatosis viral oncogene homolog) o DNMT1 (DNA methyl-transferase 1), o no codificantes como los de rRNA. La expresión génica permite establecer dominios en la cromatina para que se establezcan las condiciones epigenéticas necesarias para determinar su empleo como orígenes de replicación. En general, todas las células eucariontes sintetizan una copia precisa de cada uno de sus cromosomas en cada vuelta del ciclo celular. Esto significa que cada origen de replicación debe activarse sólo una vez por ciclo y para ello se ensamblan complejos prerreplicativos o preRC en los orígenes de replicación, los cuales sólo pueden activarse in situ en la fase S. Estos complejos incluyen un heterohexámero formado por las proteínas ORC1-6 (origin replication complex 1-6) que se ensambla al final de la fase M y al que se incorporan las DNA helicasas replicativas al final de la fase G1. El complejo de helicasa es un heterohexámero formado por seis proteínas relacionadas, denominadas MCM2-7 (minichromosome maintenance 2-7), que requiere otras proteínas para poder unirse al DNA, como CDT1 (chromatin licensing and DNA replication factor 1) y CDC6 (cell division cycle 6) que forman parte de los preRC de G1. La activación de MCM2-7 exige, entre otras proteínas, la cinasa CDC7 (cell division cycle 7) e implica la incorporación de muchos otros factores en los orígenes de replicación. Se han descrito mutaciones en componentes de los preRC (ORC1, ORC4, ORC6, CDT1 y CDC6) relacionados con el síndrome de Meier- Gorlin (MIM 224690), un tipo de enanismo autosómico recesivo con rótula hipoplásica o nula y orejas muy pequeñas. La abertura inicial de la doble hélice del DNA hace posible establecer dos horquillas de replicación con direcciones opuestas en donde pueden actuar las DNA pol. Éstas catalizan la adición de nuevos nucleótidos al extremo 3’ OH de la cadena en crecimiento, por lo que en ambas cadenas la síntesis siempre avanza en dirección 5’→3’. La síntesis es continua en la cadena líder que utiliza como molde a la orientada en la dirección 3’→5’, mientras que la síntesis es discontinua en la cadena rezagada que usa como templado a la cadena complementaria 5’→3’. Como resultado de esto, la replicación es un proceso semidiscontinuo. Los segmentos de DNA sintetizados de forma progresiva durante la síntesis de la cadena rezagada se llaman fragmentos de Okazaki; en E. coli, éstos abarcan 2 000 a 3 000 nt y en los eucariontes de 100 a 200 nt (figura 2-5). FIGURA 2-5 Horquilla de replicación. Se muestran los complejos proteicos y actividades enzimáticas que actúan para replicar el DNA humano. El origen de la replicación de este replicón se encuentra a la derecha de la figura (no se muestra). Cuando los complejos prerreplicativos ORC1-6 atraen al complejo MCM2-7, su actividad de helicasa abre la doble hélice y la replicación tiene lugar en forma bidireccional en cada horquilla y avanza en dirección opuesta. FEN1, endonucleasa flap 1; MCM, complejo de mantenimiento de minicromosomas (helicasa); PCNA, antígeno nuclear de proliferación celular (abrazadera); RFC, factor C de replicación (ancla de la abrazadera); RPA, proteína A de replicación (proteína de unión a cadena sencilla). Existen más de 20 tipos diferentes de DNA pol en las células de mamíferos, la mayoría utiliza DNA como molde para sintetizar DNA y pertenecen a cuatro familias. La replicación del DNA nuclear requiere las DNA pol α, δ y ε, en tanto que la DNA pol γ replica al mtDNA; el resto de estas enzimas participa en procesos de reparación del DNA (cuadro 2-4). La DNA pol α es la única que posee la capacidad de iniciar una nueva cadena de DNA, tanto en la cadena líder como en la rezagada; el resto requiere una región de doble cadena con un extremo 3’-OH libre. La DNA pol α forma parte del complejo primasa/DNA pol α que se integra con cuatro subunidades: la subunidad B, necesaria para el ensamblado, dos subunidades pequeñas que confieren la actividad de primasa (RNA pol), y la subunidad catalítica de DNA pol. El complejo primasa/DNA pol α sintetiza el cebador, una cadena pequeña de RNA-DNA (20 a 30 nt y 10 nt, respectivamente), que es necesario para iniciar la replicación de la cadena líder y de cada uno de los fragmentos de Okazaki de la cadena rezagada. Al complejo primasa/DNA pol α lo preceden el complejo de helicasa y las proteínas de unión a cadena sencilla o RPA (replicating proteína A) que mantienen las cadenas del DNA abiertas y forman el primosoma. La acción de las topoisomerasas facilita el desenrollamiento de la doble hélice para permitir el avance de la horquilla de replicación. Estas enzimas pueden cortar una sola cadena del DNA (topoisomerasas I) o doble cadena (topoisomerasas II) para liberar la tensión generada y evitar el superenrollamiento. Asimismo, las topoisomerasas pueden aumentar los giros de la doble hélice para crear superenrollamiento. Una vez formados los cebadores, al primosoma lo reemplazan las enzimas que extienden la cadena, en la cadena líder actúa la DNA pol ε y en la rezagada la DNA pol δ. Las DNA pol de la familia B, excepto la alfa y la zeta, pueden remover nucleótidos del extremo 3’, por lo que además poseen actividad de exonucleasas 3’ →5’, lo que les confiere la capacidad de edición para eliminar bases mal apareadas y aumentar la fidelidad de la replicación (cuadro 2-4). CUADRO 2–4. Características de las DNA polimerasas humanas DNA polimerasas dependientes de DNA DNA polimerasa/gen subunidad catalítica Familia Función Otras características Replicativas α (alfa)/POLA1 B Inicia la síntesis en los orígenes de replicación y de los fragmentos de Okazaki en la cadena rezagada Forma parte del primosoma δ (delta)/POLD1 B Síntesis de la cadena rezagada, funciones múltiples en reparación; actúa en reparación por escisión de nucleótidos Capacidad de edición, actividad de exonucleasa 3’→5’ ɛ (épsilon)/POLE B Síntesis de la cadena líder; funciones múltiples en reparación; actúa en reparación por escisión de nucleótidos y bases Capacidad de edición, actividad de exonucleasa 3’→5’ γ (gamma)/POLG A Síntesis y reparación del DNA mitocondrial Capacidad de edición, actividad de exonucleasa 3’→5’ De reparación ν (ni)/POLN A Reparaciónde enlaces cruzados entre las cadenas del DNA Propensa a error θ (teta)/POLQ A Reparación por escisión de bases y reparación de enlaces cruzados intracatenarios en el DNA Hipermutación somática ξ (zeta)/REV3L B Síntesis sobre lesión Propensa a error β (beta)/POLB X Síntesis en reparación por escisión de bases de parche corto Alta fidelidad en la reparación λ (lambda)/POLL X Reparación por escisión de base, roturas de doble cadena y recombinación de VDJ Propensas a error µ (mi)/POLM X TDT/DNTT X Recombinación de VDJ Transferasa terminal de desoxinucleótidos ƞ (eta)/POLH Y Síntesis sobre lesión Libre de error en dímeros TT ι (iota)/POLI Y Síntesis sobre lesión, probable en reparación por escisión de bases y de bases mal apareadas Propensa a error; se requiere en meiosis κ (kappa)/POLK Y Síntesis sobre lesión, reparación por escisión de nucleótidos Propensa a error REV1/REV1 Y Síntesis sobre lesión Propensa a error Primpol/CCD111 AEP Síntesis sobre lesión, resíntesis de cebador después de la lesión Salta la lesión y reinicia la síntesis con un cebador nuevo DNA polimerasas dependientes de RNA (transcriptasas inversas) Retrotranscriptasas de elementos LINE-1 o elementos retrovirales endógenos De modo ocasional convierten mRNA y otros RNA en cDNA, los cuales pueden integrarse en cualquier sitio del genoma La mayor parte se encuentra silenciada Telomerasa/TERT Replica el DNA de los extremos de los cromosomas lineales para evitar su acortamiento Utiliza un templado interno de RNA/TERC *Recombinación; VDJ, reordenamientos en genes de inmunoglobulinas; AEP, familia de primasas (archae-eukaryotic primases). La DNA pol ε es una enzima con alta eficacia en el proceso de incorporación de nucleótidos, para lo cual requiere la interacción con otras dos proteína, PCNA (proliferating cell nuclear antigen, por razones históricas) que forma una abrazadera deslizante para la polimerasa y RFC (replication factor C) que la fija a la horquilla de replicación. De manera similar, la DNA pol δ forma también un complejo de elongación con PCNA y RFC para continuar la síntesis en la cadena rezagada. Cuando el complejo de elongación encuentra el extremo 5’ de un fragmento de Okazaki (RNA), la síntesis de la cadena lo desplaza y crea una estructura de tipo alerón (flap) en 5’, sobre la cual actúa la enzima FEN1 (flap endonuclease-1) y libera la porción de RNA del cebador. La DNA ligasa I (LIG1), con energía tomada de ATP, forma el enlace fosfodiéster entre el extremo 3’-OH recién sintetizado y el 5’-P generado por el corte (cuadro 2-5). CUADRO 2–5. Funciones requeridas en las horquillas de replicación de E. coli y mamíferos Función E. coli Mamíferos Complejos prerreplicativos - ORC1-6 Fijación de la helicasa/primasa DnaC CDT1/CDC6 DNA helicasa DnaB Complejo MCM2-7 Mantenimiento cadena sencilla SSBP RPA Síntesis del cebador DnaG DNA primasa/pol α Abrazadera deslizante de la polimerasa β PCNA Fijación de la abrazadera (ATPasa) Complejo γδ RFC Síntesis de DNA Núcleo de la DNA pol III DNA pol δ + DNA pol ɛ Dimerización de la holoenzima τ ? Remoción del cebador DNA pol I FEN1 Unión de fragmentos DNA ligasa DNA ligasa 1 Otras helicasas, que pertenecen a la familia RECQ, hacen posible abrir estructuras complejas que se generan durante la replicación, en particular en la cadena rezagada, como la helicasa BLM (mutada en el síndrome de Bloom, MIM 210900) y la helicasa WRN (mutada en el síndrome de Werner, MIM 277700), entre otras. Esta última también participa en la apertura de los cuartetos de guanina presentes en los telómeros. Las horquillas de replicación avanzan a lo largo de los cromosomas lineales, por lo general sin ningún impedimento, y al final la replicación alcanza el extremo de la molécula o encuentra a una segunda horquilla de replicación que se mueve en dirección opuesta. En eucariontes no existen secuencias terminadoras homólogas a las de las bacterias, y la terminación implica el ligamiento de los extremos cuando una horquilla se encuentra con la siguiente en posiciones al azar. Una consecuencia de que las DNA pol sólo puedan extender los cebadores en dirección 5’→3’ es que son incapaces de copiar los extremos 5’ de los cromosomas lineales. Este problema lo resuelve la enzima telomerasa, que extiende la síntesis de la cadena líder. Esta enzima tiene actividad de transcriptasa reversa y está formada por dos componentes principales: uno de naturaleza proteica llamado TERT con la actividad de transcriptasa reversa y otro una molécula de ncRNA denominado TERC, que sirve como plantilla para la síntesis de novo del hexanucleótido TTAGGG repetido en la secuencia minisatélite telomérica. En ausencia de actividad de telomerasa, los telómeros se acortan después de cada ciclo de replicación. Es importante recordar que en las células eucariontes, el DNA se encuentra en forma de cromatina, por lo que en realidad la replicación implica la duplicación de esta estructura durante la fase S del ciclo celular. Los nucleosomas se desplazan al azar hacia una u otra molécula de DNA durante el avance de la horquilla de replicación y rápidamente se incorporan histonas recién sintetizadas. Éstas llegan a las moléculas de DNA por la acción de chaperonas como CAF1 (chromatine assembly 1) y ASF1 (antisilencing function 1), las cuales interactúan con PCNA y permiten la incorporación de los dímeros de H3 y H4; por último, la relación con dos dímeros de H2A y H2B mediada por NAP1 (nucleosome assembly protein 1) completa el ensamblado de los nucleosomas nuevos. Las modificaciones presentes en las histonas de los nucleosomas de la molécula progenitora se conservan en las moléculas hijas por acción de las enzimas que generan las modificaciones postraduccionales en las histonas canónicas recién incoporadas, con lo que se mantiene el estado epigenético a través de la replicación de la cromatina.
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