Microbiologia Medica (307)

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23Micobacterias
C A P Í T U L O 
Las micobacterias son bacterias aerobias de contornos cilíndri-
cos, que no forman esporas. No captan con facilidad los colo-
rantes, pero una vez teñidas resisten la decoloración por ácido 
o alcohol y por esa razón se les ha llamado bacilos “acidorre-
sistentes”. Mycobacterium tuberculosis causa tuberculosis y es 
un patógeno muy importante para los seres humanos. Myco-
bacterium leprae causa la lepra. Mycobacterium avium-intra-
cellulare (complejo de M. avium, o MAC [M. avium complex]) 
y otras micobacterias no tuberculosas (NTM, nontuberculus 
mycobacteria) suelen infectar a enfermos de sida; son patóge-
nos oportunistas en otros individuos inmunodefi cientes y a 
veces causan enfermedad en personas con sistemas inmunita-
rios sanos. Se conocen más de 200 especies de Mycobacterium, 
incluidas muchas formas saprófi tas. Las micobacterias que 
infectan seres humanos se enlistan en el cuadro 23-1.
MYCOBACTERIUM TUBERCULOSIS
Morfología e identifi cación
A. Microorganismos típicos
En los tejidos, los bacilos tuberculosos son fi nas estructu-
ras rectas cilíndricas que miden cerca de 0.4 × 3 μm (fi gura 
23-1). En medios artifi ciales, se les identifi ca por tener formas 
cocoides y fi lamentosas, cuya morfología varía con la especie. 
Es imposible clasifi car las micobacterias en grampositivas o 
gramnegativas. Una vez que captan los colorantes básicos, el 
alcohol no las decolora, independientemente del tratamiento 
con yodo. Los bacilos tuberculosos verdaderos se caracteri-
zan por su propiedad “acidorresistente”, es decir, la mezcla de 
alcohol etílico al 95% y ácido clorhídrico al 3% (ácido-alcohol), 
decolora rápidamente todas las bacterias, excepto las micobac-
terias. Tal resistencia depende de la integridad de la cubierta 
cerosa. La técnica de Ziehl-Neelsen se emplea para la tinción 
e identifi cación de las bacterias acidorresistentes; en el capítulo 
47 se explica dicho método a detalle. En extensiones de esputo 
o cortes de tejido se demuestra la presencia de micobacterias 
por la fl uorescencia amarillo-naranja después de aplicar los 
colorantes fl uorocrómicos (p. ej., auramina, rodamina). La 
facilidad con la que se visualizan los bacilos acidorresistentes, 
con los colorantes fl uorocrómicos los vuelve idóneos para este 
tipo de muestras clínicas (fi gura 23-1B). La disponibilidad de 
microscopios con diodos emisores de luz ultrabrillante, algu-
nos de los cuales no requieren electricidad, ha constituido un 
avance en la microscopia de fl uorescencia en países con recur-
sos limitados.
B. Cultivo
Los medios de cultivo primarios para micobacterias deben 
incluir medios no selectivos y medios selectivos. Estos últimos 
contienen antibióticos para evitar la proliferación de bacterias 
y hongos contaminantes. Existen tres preparaciones generales 
que pueden utilizarse para los medios selectivos o no selecti-
vos. Los medios con agar (sólidos) son útiles para observar la 
morfología de las colonias, para la detección de cultivos mix-
tos, para la realización de pruebas de susceptibilidad antimi-
crobiana; también proporcionan algunas indicaciones de la 
cantidad de microorganismos en una muestra en particular.
1. Medio de agar semisintético. Los medios de esta 
categoría (como Middlebrook 7H10 y 7H11) contienen sales 
defi nidas, vitaminas, cofactores, ácido oleico, albúmina, cata-
lasa y glicerol; el medio 7H11 contiene también hidrolizado de 
caseína. La albúmina neutraliza los efectos tóxicos e inhibido-
res de los ácidos grasos en la muestra o el medio de cultivo. Los 
grandes inóculos permiten la proliferación en los medios men-
cionados, en el curso de semanas; dado que se necesitan tales 
inóculos, los medios mencionados pueden ser menos sensibles 
que otros para el aislamiento primario de micobacterias.
2. Medios de huevo espesado. Los medios en cuestión 
(p. ej., Löwenstein-Jensen) contienen sales defi nidas, glicerol y 
sustancias orgánicas complejas (p. ej., huevos frescos o yemas 
de huevo, harina de papa y otros ingredientes en combinacio-
nes). Se incluye el verde de malaquita para inhibir la prolife-
ración de otras bacterias. Los inóculos pequeños en muestras 
teñidas de los pacientes proliferarán en dichos medios en un 
lapso de tres a seis semanas.
Los medios en cuestión, con la adición de antibióticos, se 
utilizan como medios selectivos.
3. Caldos (como medios). Los caldos señalados (Midd-
lebrook 7H9 y 7H12) permiten la proliferación de inócu-
los pequeños. Por lo común, las micobacterias proliferan en 
cúmulos o masas, dado el carácter hidrófobo de la superfi cie 
celular. Si se agregan ésteres hidrosolubles de ácidos grasos, 
humedecen la superfi cie y permiten la proliferación dispersa 
en el medio líquido. En ellos es más rápida la proliferación de 
los microorganismos que en medios complejos. Existen varios 
medios comerciales utilizados en muchos laboratorios clínicos 
y especializados.
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	MICROBIOLOGÍA MÉDICA
	SECCIÓN III BACTERIOLOGÍA
	CAPÍTULO 23. MICOBACTERIAS
	MYCOBACTERIUM TUBERCULOSIS