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Autores: Trimarchi H., Canzonieri R., Schiel A., Costales-Collaguazo C., Politei J., Stern A., Paulero M., Rengel T., Andrews J., Forrester M., Lombi M., Pomeranz V., Iriarte R., Muryan A., Zotta E., Sanchez-Niño MD., Ortiz A. Podocituria y aumento de la excreción urinaria de CD80 y la en la enfermedad de Fabry Podocituria y aumento de la excreción urinaria de CD80 y la en la enfermedad de Fabry Trimarchi H1, Canzonieri R2, Schiel A2, Costales-Collaguazo C3, Politei J4, Stern A2, Paulero M1, Rengel T1, Andrews J1, Forrester M1, Lombi M1, Pomeranz V1, Iriarte R1, Muryan A2, Zotta E3, Sanchez-Niño MD5,6*, Ortiz A5,6* 1 Servicio de Nefrologia, Hospital Británico de Buenos Aires, Argentina 2 Laboratorio Central, Hospital Británico de Buenos Aires, Ar- gentina 3 IFIBIO Houssay, CONICET, Fisiopatología, Facultad de Far- macia y Bioquimica, Universidad de Buenos Aires, Argentina 4 Departamento de Neurologia, Laboratorio Neuroquímica Dr Néstor Chamoles, Buenos Aires, Argentina 5 IIS- Fundación Jimenez Diaz, Escuela de Medicina, UAM, Madrid, España. 6 REDINREN, Madrid, España Resumen Introducción Algunas glomerulopatías se encuentran asociadas a niveles elevados de CD80. Medimos la excreción urinaria de CD80, la podocituria y la proteinuria en un grupo control y en pacientes con enfermedad de Fabry sin o con terapia de reemplazo enzimático (TRE). Métodos Estudio transversal de 65 pacientes: controles (n = 20) y pacientes con Fabry (n = 45; 23 de ellos sin TRE y 22 con TRE. Variables incluidas: Edad, sexo, índice proteinuria/creatininuria (UPCR), filtrado glomerular estimado (eGFR), índice uCD80/creatininuria y podocituria. Se estudió la expresión de CD80 RNAm en podocitos humanos cultivados en respuesta a liso- globotriasosilceramida (liso-Gb3). Resultados Fabry vs control: No se encontraron diferencias significativas en relación a edad, eGFR y género. UPCR, uCD80 y la podocituria fueron significativamente mayores en pacientes Fabry. Los pacientes con enfermedad de Fabry sin TRE fueron más jóvenes y en mayor medida mujeres. Aquellos con enfermedad de Fabry sin TRE tenían enfermedad renal más avanzada: el UPCR fue menor en relación a un eGFR más alto, pero el uCD80 y la podocituria no difirió entre los pacientes con Fabry. Las concentraciones circulantes de Liso-Gb3 aumentó la expresión de uCD80 en los podocitos cultivados de pacientes con Fabry. Conclusiones La enfermedad de Fabry se caracteriza por la aparición temprana y el aumento en la excreción uCD80 como consecuencia a la acumulación de glicolípidos. El potencial diagnostico de la excreción uCD80 para reflejar el compromiso precoz y subclínico de la alteración renal en la Enfermedad de Fabry debería ser más estudiada. Introducción La enfermedad de Fabry es una enfermedad genética ligada al cromosoma X. Se debe a mutaciones en el gen GLA que codifica la α-galactosidasa A, llevando a la acumulación lisosomal de sustratos enzimáticos como la globotriaosilceramida (Gb3), liso-globotriaosilceramida (liso-Gb3) y la galabiosilceramida1. La sobrecarga intracelular patológica de estos glicoesfingolípidos altera la morfología celular y conduce a la disfunción celular2,4. Sin embargo, los mecanismos exactos por los que estos metabolitos conducen a la disfunción celular siguen sin conocerse. Se ha planteado como posible mecanismo la interacción de los glicoesfingolípidos con transportadores o canales iónicos, localizados principalmente en el retículo endoplasmíco, o la activación de vías inflamatorias celulares con el consiguiente daño tisular5,7. De manera similar a la nefropatía diabética, la nefropatía de Fabry es una patología proteinúrica, progresiva, de origen metabólico con una historia natural que se expande a través de las décadas. En este sentido, los glicolípidos que se acumulan en la enfermedad de Fabry, tales como liso-Gb3, pueden activar vías de inflamación en las células renales8. Tanto el factor de crecimiento tisular-β1 (TGF-β1) como el factor de crecimiento endotelial vascular (VEGF) y el factor de crecimiento fibroblástico-2 (FGF-2) -entre otros- están elevados en la nefropatía de Fabry. Como también la vía de señalización Notch-1, la apoptosis y las vías inflamatorias que se encuentran relacionadas con la autofagia9,12. Específicamente, las concentraciones circulantes de liso-G3 en pacientes con Fabry promueven por vía autocrina al TGF-β1 y a la vía Notch-1 señalizados en los podocitos, repitiendo lo que sucedeen la respuesta de los podocitos a altas concentraciones de glucosa.10,13 Asimismo, los niveles elevados de glucosa también aumentan la expresión del CD80 en podocitos humanos cultivados14. El antígeno CD80 se encuentra normalmente en las células presentadoras de antígeno como los neutrófilos, macrófagos y células dendríticas modulando la actividad de las células T CD8 + y CD4 + al interactuar con el ligando co-estimulador CD28, una glicoproteína localizada en las células T, o bien con los co-inhibidores de la proteína de los linfocitos T citotóxicos tipo 4 (CTLA-4)15. Sin embargo, en condiciones normales, los podocitos no expresan CD80. No obstante, en ciertas glomerulopatías, incluyendo la nefropatía diabética, el CD80 se expresa en los podocitos y en las células tubulares, así como también se encuentra aumentada su excreción renal.14,16 El aumento del CD80 en los podocitos y células tubulares en condiciones anormales sugiere que estas células pueden comportarse como células presentadoras de antígeno y participar en las vías inflamatorias17. Por último, el CD80 también se ha relacionado con la migración y desprendimiento de los podocitos a través de su interacción con las integrinas. De hecho, se ha observado podocituria en las glomerulopatías activas18,19. Recientemente hemos demostrado la existencia de podocituria en la enfermedad de Fabry, incluso en ausencia de nefropatía clínica20. En este estudio hemos explorado la excreción urinaria de CD80 en pacientes con enfermedad de Fabry y los potenciales efectos de la sobreexpresión de CD80. Materiales y Métodos Se trata de un estudio observacional tipo transversal, que incluyó a 65 pacientes. Un grupo de 20 pacientes sanos sin comorbilidades clínicas conocidas o tratamiento farmacológico fue reclutado de un grupo de potenciales donantes de riñón con historia clínica y resultados de laboratorio normales. Además, se estudiaron 45 pacientes con enfermedad de Fabry. De éstos, 23 no fueron tratados con terapia de reemplazo enzimático (TRE), mientras que 22 habían recibido TRE con Agalsidasa Beta 1 mg / kg administrada cada dos semanas (Fabrazyme, Genzyme Corp., Cambridge, MA, EE.UU.) durante al menos 12 meses. La enfermedad de Fabry se diagnosticó en todos los casos por una deficiencia enzimática de la actividad de alfa-galactosidasa A en muestras de sangre seca , leucocitos de sangre periférica y confirmado por la identificación de la mutación del gen GLA. Las características de los pacientes se resumen en la Tabla 1. Se estudiaron las siguientes variables: edad, sexo, índice de filtración glomerular (eGFR) estimada por la ecuación de Colaboración Epidemiológica para Enfermedad Renal Crónica (CKD-EPI), índice proteinuria-creatinuria (UPCR), podocituria ajustada a gramo de creatininuria y relación CD80/creatininuria (uCD80). Podocituria Hemos descripto en otra publicación en forma detallada la metodología de estudio de la podocituria 20. Brevemente, se recogió la muestra de orina recién emitida después de un mínimo de 3 horas de retención; se centrifugaron 20 ml de orina a 700g durante 5 min usando una centrífuga; se descartó el sobrenadante y el sedimento obtenido se almacenó en compartimientos de 100 μl a temperatura ambiente mezclados con 1,5 ml de solución de formaldehído al 40% diluido en solución de fosfato con base de sodio (PBS) (pH 7.2 a 7.4) alcanzando una concentración finalal 10%. Los núcleos de los podocitos se tiñeron con 40,6-diamino-2-fenilindol (DAPI). Los podocitos se identificaron mediante inmunofluorescencia utilizando anti-sinaptopodina como anticuerpo primario (1: 100, Abcam, Cambridge, MA, EE.UU.) y IgG anti-conejo de Alexa Fluor® 488 (1: 100, Abcam, Cambridge, MA, EE.UU.) como el anticuerpo secundario. Las muestras se analizaron empleando un microscopio epifluorescente. Siguiendo nuestra técnica estandarizada, los podocitos se contaron en 10 campos elegidos al azar a 20x y el promedio de los podocitos contados en los campos microscópicos se consideraron como el conteo final para cada paciente. Los resultados fueron corregidos en función a los niveles de creatinina basales en orina que se encontraron en cada muestra 20,21. Para ello, el valor de creatinina urinaria se calculó para el volumen de orina inicial de 20 ml empleadas para el recuento de podocitos. CD80 y otras determinaciones. Los valores de creatinina en suero se obtuvieron en la misma semana en que se recolectó la muestra de orina para el recuento podocitario. UPCR se midió de la muestra empleada para la evaluación de podocitos. La concentración urinaria de CD80 se determinó empleando un CD80 Humano instantáneo por ELISA (ELISA® instantánea, Affymetrix eBioscience, San Diego, CA, EE.UU.). Ética El presente protocolo fue aprobado por el Comité de Revisión Institucional del Hospital Británico de Buenos Aires, Buenos Aires, Argentina. Se Obtuvo el consentimiento informado de cada participante en el estudio. En España, las muestras de riñón se obtuvieron a partir de tejido de muestras de nefrectomías de riñones donados al banco biológico del IIS-Fundación Jiménez Díaz. luego de haberse realizado una evaluación diagnóstica. El Comité de Ética local aprobó el protocolo del estudio y se obtuvo el consentimiento informado. Cultivo de células y reactivos Los podocitos humanos son una línea celular inmortalizada transfectada a un gen SV40 termosensible y un gen que codifica el dominio catalítico de la telomerasa humana10, 13. A una temperatura permisiva de 33ºC, las células se mantienen en un estado proliferativo indiferenciado y de división. Elevando la temperatura a 37 ° C dio como resultado un detenimiento en el crecimiento y diferenciación fenotípica de los podocitos. Los cultivos de podocitos indiferenciados se mantuvieron a 33ºC en medio RPMI 1640 con penicilina, estreptomicina, ITS (insulina, transferrina, selenita), y 10% de FCS. Una vez que las células alcanzaron el 70 a 80% de confluencia, fueron completamente diferenciadas en un cultivo a 37 ° C durante al menos 14 días10,13. Las células fueron cultivadas en medio libre de suero 24 horas antes del estímulo y durante todo el experimento. Liso-Gb3 (Sigma, St. Louis, MO) se utilizó a una concentración de 100 nM con testeo negativo para lipopolisacáridos. Esta concentración es clínicamente relevante, ya que desde la circulación de liso-Gb3 ha sido reportado como presente en un rango de 10-50 nM para mujeres heterocigóticas y por encima de 100 nM en los hombres 22. Por otra parte, esta concentración ya se había demostrado en estudios de respuesta a la dosis de bioactividad en podocitos humanos cultivados. 10,13 Reacción en cadena de la polimerasa en tiempo real El ARN se aisló utilizando el reactivo Trizol (Invitrogen, Paisley, UK). Un μg de ARN fue transcrito de forma inversa con el Kit cDNA de alta capacidad (Applied Biosystems, Foster City, CA). Las reacciones de PCR a tiempo real se realizaron con el sistema de detección de secuencia PCR ABI Prism 7500 (Applied Biosystems) de acuerdo con el protocolo de la marca fabricante usando el método DeltaDelta Ct 10,13 . Los niveles de expresión se dan como relaciones al GAPDH. Los primers pre-desarrolados y pruebas de ensayo fueron de Applied Biosystems. La inmunohistoquímica Las muestras de riñón se obtuvieron a partir de tejido de muestras de nefrectomías de riñones donados al banco biológico del IIS-Fundación Jiménez Díaz. Se tomaron muestras humanas de riñón de controles a partir de porciones de tejidos renales normales de pacientes que se sometieron a cirugía debido a tumores renales localizados. Se estudió una biopsia renal de un paciente sexo masculino de 69 años de edad con enfermedad de Fabry, con creatinina sérica de 4.2 mg / dl, proteinuria de 0.7 g / 24 h. La inmunohistoquímica se llevó a cabo en secciones de tejido de 5 µm de espesor incluidas en parafina. El anticuerpo primario era un anti-CD80 monoclonal de ratón (1: 100, Abcam). Las secciones fueron contrastadas con hematoxilina de Carazzi. Los controles negativos incluyeron la incubación con una inmunoglobulina no específica del mismo isotipo que el anticuerpo primario. Análisis estadístico Los resultados se expresan como mediana y rangos. Las variables se analizaron mediante el test de Wilcoxon Mann-Whitney. Las correlaciones entre las variables se obtuvieron con el coeficiente de correlación de Spearman. Los resultados se consideraron significativos con una p <0.05. El programa estadístico empleado fue InfoStat 2016, Córdoba, Argentina. Resultados Estudios de pacientes con Fabry El grupo control y aquellos con enfermedad de Fabry no fueron diferentes en cuanto a edad, eGFR y género. Sin embargo, el UPCR, uCD80 y la podocituria fueron significativamente mayores en pacientes con Fabry (Tabla 1). Los pacientes con Fabry sin TRE eran más jóvenes y había una mayor proporción de mujeres. Esto podría ser debido a que tanto los pacientes más jóvenes y las mujeres suelen tener una enfermedad más leve y esto puede llevar a la decisión de no iniciar TRE todavía. En este sentido, el eGFR fue mayor y el UPCR menor en los pacientes que no están recibiendo TRE, probablemente reflejando una enfermedad renal mucho más leve. Sin embargo, no hubo diferencias en la excreción uCD80 o la podocituria en los pacientes con enfermedad de Fabry con o sin TRE (Tabla 2). Hubo una correlación significativa entre uCD80 y UPCR en toda la población (r 0,44, p 0,0005) y en pacientes con Fabry (r 0,42, p 0,0046). Sin embargo, no hubo correlación entre el uCD80 y la podocituria. Desde que el uCD80 aumentó en la orina de pacientes con Fabry, nosotros exploramos a continuación la expresión de CD80 en tejido humano con enfermedad de Fabry. No se observó ninguna expresión de CD80 en los riñones de control. Sin embargo, la inmunohistoquímica confirmó la expresión de CD80 en los podocitos en una biopsia de riñón de un paciente con enfermedad de Fabry (Figura 1). Liso-Gb-3 aumenta la expresión de CD80 en los podocitos cultivadas A partir que el uCD80 aumentó de forma temprana en la nefropatía de Fabry, incluso en el grupo de pacientes con un mejor eGFR y una menor albuminuria, hemos explorado si los glicolípidos acumulados en la enfermedad de Fabry pueden aumentar la expresión de CD80 en células de riñón. Habíamos demostrado anteriormente que liso-Gb3, en concentraciones que se encuentran circulantes en pacientes con enfermedad de Fabry, aumenta la expresión de diversos mediadores de la lesión renal en un tiempo y manera dependiente de la dosis, con una respuesta pico observada a 100 nM en 24 h 10; 13. El Liso-Gb3 en concentración de 100 nM indujo un aumento en la expresión de ARNm del CD80 que alcanzó su punto máximo a las 24 horas en los podocitos (Figura 2). Discusión En el presente estudio hemos confirmado que en la enfermedad de Fabry los podocitos se pierden a través de la orina en cantidades mayores en comparación al grupo control y que ésta es una característica temprana presente en los pacientes con enfermedad renal subclínica. Si ésto se mantiene en el tiempo puede conducir a una pérdida de podocitos y a la lesión glomerular clásica de la nefropatía de Fabry: glomeruloesclerosis focal y segmentaria. Un nuevo hallazgo es que la excreción de uCD80también se incrementa de manera temprana en la nefropatía de Fabry. Si bien hubo una correlación entre uCD80 y la proteinuria, la falta de correlación entre uCD80 y podocituria sugiere que la podocituria no parece estar ligada a la activación de vías de señalización del CD80 y que el uCD80 y la podocituria reflejan diferentes aspectos de la lesión renal en la nefropatía de Fabry. Por otra parte, hemos identificado a la liso-Gb3 como un posible promotor de la expresión de CD80 en los podocitos. Se ha demostrado previamente que liso-Gb3 aumenta la expresión o la secreción de TGFß1, CD74, Notch1 y MCP-1 en los podocitos 10,13. Por otro lado, el liso-Gb-3 parece promover una reacción generalizada de stress celular. Nosotros hemos demostrado que esta incluye al CD80 evocando una respuesta de los podocitos a los altos valores de glucosa suscitados 14,23,24. Con respecto a esto, otros glicolipidos, lipopolisacáridos bacterianos, también aumentan la expresión de CD80 en los podocitos 25. La enfermedad de Fabry silente y con podocituria severa se presentó en individuos más jóvenes cuando el promedio de eGFR y proteinuria todavía era normal. Más aún, el uCD80 ya estaba elevado en los pacientes más jóvenes y en mujeres que no estaban con TRE, sugiriendo que puede ser un marcador precoz de lesión renal. Además, el CD80 se mantuvo elevado en los pacientes con TRE. Al tratarse de un estudio transversal, se desconoce si el uCD80 había sido mayor al inicio de la TRE y había disminuido, pero no normalizado con TRE. Se requiere de más estudios para poder afirmar si las intervenciones terapéuticas tempranas llegaran a normalizar los niveles de uCD80. La literatura actual señala que el inicio temprano de TRE en la enfermedad de Fabry se asocia a mejores resultados a largo plazo 26,27. Sin embargo, nuestros datos de cultivos de células son consistentes con la observación obtenida de la excreción urnaria del CD80, ya que el liso-Gb3 disminuye, pero usualmente no se normaliza, con la TRE. 22. La nefropatía por enfermedad de Fabry es una glomerulopatía. Por lo tanto, no es sorprendente que el defecto metabólico llegue a desencadenar la expresión de moléculas inflamatorias y fibróticas así como factores de crecimiento y citocinas , como es el caso de otras glomerulopatías 28,29. Además, una característica de la nefropatía de Fabry es la acumulación de glicolípidos entre los podocitos, células endoteliales y tubulares. Estas células son todas, fuentes potenciales de mediadores inflamatorios. Sin embargo, no fuimos capaces de medir simultáneamente CD80 en la sangre y en la orina y, por lo tanto, no se puede determinar si uCD80 es de origen renal. A pesar de estas observaciones, nuestro hallazgo hace énfasis en el concepto de que las moléculas inflamatorias de la nefropatía de Fabry son excretadas en la orina y esto no parece ser normalizado con la TRE. El CD80 no es exclusivo de los linfocitos, como en biopsias humanas, podocitos en glomeruloesclerosis focal y segmentaria primaria30 y diabetes14 y los podocitos y células tubulares en la nefropatía por IgA expresan CD8016. Aunque algunos autores han señalado el potencial papel del CD80 en ciertas glomerulopatías, tales como la nefropatía por IgA, la glomerulonefritis focal y segmentaria primaria y las glomerulopatías con semilunas16,17,30,31, otros han cuestionado seriamente estos hallazgos, particularmente en la enfermedad de cambios mínimos y la glomeruloesclerosis focal y segmentaria primaria32. Recientes datos señalan a la glucógeno sintasa quinasa (GSK) 3 como un actor clave en la patogénesis de podocitopatía y la proteinuria. En ratones knockout GSK3 la expresión de novo en los podocitos de mediadores de lesión podocitaria dependientes de factor nuclear kappa B (NFKB), incluyendo al CD80, la catepsina L, y la MCP-1, se redujo33. Estas moléculas podrían contribuir a la fisiopatología de la enfermedad de Fabry10,11,34. En la enfermedad de Fabry, la expresión de CD80 de células de riñón puede ser impulsado por glicolípidos acumulados, como se muestra en nuestros experimentos de cultivos celulares, y por lo tanto, puede proporcionar información sobre la persistencia de la lesión renal por glicolípidos a pesar de TRE. Citoquinas adicionales en el microambiente local también pueden contribuir al daño renal. Aún no se sabe si la expresión de los CD80 en los podocitos contribuye a la patogénesis de la nefropatía de Fabry mediante la alteración de la forma, la reorganización de la actina y la alteración de la permeabilidad glomerular promoviendo así la proteinuria17,31. De hecho, el CD80 ha sido implicado en la contracción podocitaria, la migración y la eventual pérdida de podocitos17,31. Sin embargo, no hemos encontrado una correlación entre el uCD80 y la podocituria. Esto podría estar relacionado con el reducido tamaño de la muestra. Alternativamente, el uCD80 y la podocituria pueden representar diferentes aspectos de la nefropatía de Fabry. Un aumento anormal del CD80 en los podocitos se ha relacionado con anomalías en la subunidad de la integrina beta117,31,35. En este sentido, se reportó un aumento de la excreción urinaria de integrina β3 en los pacientes con Fabry35. Existen varias limitaciones en nuestro estudio: En términos absolutos, el número de pacientes es pequeño y el estudio es transversal. Sin embargo, pocos estudios en enfermedades renales raras son capaces de reclutar un mayor número de pacientes, y un estudio prospectivo requeriría de varios años de seguimiento, dada la historia natural de 40 años de la nefropatía de Fabry. No hemos abordado directamente la fuente celular de CD80 in vivo en los pacientes estudiados. Si el uCD80 se origina a partir de linfocitos, neutrófilos y/o células dendríticas, o de la expresión anormal de CD80 en los podocitos, a nivel tubular o de las células endoteliales es desconocido. Nuestros resultados se basan en un estudio de ELISA humano altamente sensible y específico, pero se limitan a la orina, y no podemos discernir si existen diferencias en el comportamiento de los niveles circulantes y urinarios de CD80. Sin embargo, datos relacionados a biopsias renales con Fabry y cultivos celulares sugieren que los podocitos podría ser una de las fuentes de uCD80. En resumen, hemos confirmado el desarrollo temprano de podocituria en pacientes con enfermedad de Fabry. Por otra parte, se observó un aumento temprano en uCD80. El hecho de que la expresión de CD80 se incremente por la liso-Gb-3 en los podocitos sugiere que uCD80 puede ser un marcador precoz de lesión renal en la enfermedad de Fabry y además un marcador de lesión renal continua por glicolípidos . Futuros estudios acerca de la potencial participación de uCD80 para reflejar de forma temprana, el compromiso renal subclínico en la enfermedad de Fabry están justificados. Palabras clave: Terapia de reemplazo enzimático, enfermedad de Fabry, liso-Gb3, podocituria, CD80, proteinuria. Bibliografía 1. Desnick RJ, Ioannou Y, Eng CM. Galactosidase A deficiency: Fabry disease., C. R. Scriver, A. L. Beaudet,W. S. Sly, and D. Valle, Editors. In The Metabolic and Molecular Basesof Inherited Disease. New York: McGraw-Hill; 2001. p 3733-74. 2. Askari H, Kaneski CR, Semino-Mora C et al. Cellular and tissue localization of globotriaosylceramide in Fabry disease. Virchows Arch. 2007; 451: 823-834 3. Merscher S, Fornoni A. Podocyte pathology and nephropathy - sphingolipids in glomerular diseases. Front Endocrinol (Lausanne). 2014; 5: 127 4. Swiatecka-Urban A. Membrane trafficking in podocyte health and disease. Pediatr Nephrol. 2013; 28: 1723-37 5. Altarescu G, Moore DF, Pursley R et al. Enhanced endothelium-dependent vasodilation in Fabry disease. Stroke. 2001; 32: 1559-62 6. Lloyd-Evans E, Pelled D, Riebeling C et al. Glucosylceramide and glucosylsphingosine modulate calcium mobilization frombrain microsomes via different mechanisms. J Biol Chem 2003; 278: 23594-23599 7. Pelled D, Lloyd-Evans E, Riebeling C, Jeyakumar M, Platt FM, Futerman AH. Inhibition of calcium uptake via the sarco/endoplasmic reticulum Ca2+-ATPase in a mouse model of Sandhoff disease and prevention by treatment with N-butyldeoxynojirimycin. J Biol Chem 2003; 278: 29496-29501 8. Trimarchi H.The kidney in Fabry disease. More than meresphyngolipids overload. J Inborn Errors of Metabolism and Screening 2016; 4: 1-5. 9. Lee MH, Choi EN, Jeon YJ, Jung SC. Possible role of transforming growth factor-beta1 and vascular endothelial growth factor in Fabry disease nephropathy. Int J Mol Med 2012; 30: 1275-1280 10. Sanchez-Nino MD, Carpio D, Sanz AB, Ruiz-Ortega M, Mezzano S, Ortiz A. Lyso-Gb3 activates Notch1 in human podocytes. Hum Mol Genet 2015; 24: 5720-5732 11. Trimarchi H, Karl A, Rana MS et al. Initially Nondiagnosed Fabry's Disease when Electron Microscopy Is Lacking: The Continuing Story of Focal and Segmental Glomerulosclerosis. Case Rep Nephrol Urol 2013; 3: 51-57 12. Liebau MC, Braun F, Hopker K et al. Dysregulated autophagy contributes to podocyte damage in Fabry's disease. PLoS One 2013; 8: e63506 13. Sanchez-Nino MD, Sanz AB, Carrasco S et al. Globotriaosylsphingosine actions on human glomerular podocytes: implications for Fabry nephropathy. Nephrol Dial Transplant 2011; 26: 1797-1802 14. Fiorina P, Vergani A, Bassi R et al. Role of podocyte B7-1 in diabetic nephropathy. J Am Soc Nephrol 2014; 25: 1415-1429 15. Linsley PS, Ledbetter JA. The role of the CD28 receptor during T cell responses to antigen. Annu Rev Immunol 1993; 11: 191-212 16. Wu Q, Jinde K, Endoh M, Sakai H. Clinical significance of costimulatory molecules CD80/ CD86 expression in IgA nephropathy. Kidney Int 2004; 65: 888-896 17. Trimarchi H. Abatacept and Glomerular Diseases: The Open Road for the Second Signal as a New Target is Settled Down. Recent Pat Endocr Metab Immune Drug Discov 2015; 9: 2-14 18. Hara M, Yanagihara T, Kihara I. Cumulative excretion of urinary podocytes reflects disease progression in IgA nephropathy and Schonlein-Henoch purpura nephritis. Clin J Am Soc Nephrol 2007; 2: 231-238 19. Yu D, Petermann A, Kunter U, Rong S, Shankland SJ, Floege J. Urinary podocyte loss is a more specific marker of ongoing glomerular damage than proteinuria. J Am Soc Nephrol 2005; 16: 1733- 1741 20. Trimarchi H, Canzonieri R, Schiel A, Politei J, Stern A, Andrews J, Paulero M, Rengel T, Aráoz A, Forrester M, Lombi F, Pomeranz V, Iriarte R, Young P, Muryan A, Zotta E. Podocyturia is significantly elevated in untreated vs treated Fabry adults patients. J Nephrol. 2016 Feb 3. 21. Sabino AR, Teixeira VP, Nishida SK, Sass N, Mansur JB, Kirsztajn GM. Detection of podocyturia in patients with lupus nephritis. J Bras Nefrol 2013; 35: 252-258 22. Aerts JM, Groener JE, Kuiper S et al. Elevated globotriaosylsphingosine is a hallmark of Fabry disease. Proc Natl Acad Sci U S A 2008; 105: 2812-2817 23. Sanchez-Nino MD, Bozic M, Cordoba-Lanus E et al. Beyond proteinuria: VDR activation reduces renal inflammation in experimental diabetic nephropathy. Am J Physiol Renal Physiol 2012; 302: F647-F657 24. Sanchez-Nino MD, Sanz AB, Ihalmo P et al. The MIF receptor CD74 in diabetic podocyte injury. J Am Soc Nephrol 2009; 20: 353-362 25. Reiser J, von GG, Loos M et al. Induction of B7-1 in podocytes is associated with nephrotic syndrome. J Clin Invest 2004; 113: 1390-1397 26. Ito S, Ogura M, Kamei K, Matsuoka K, Warnock DG. Significant improvement in Fabry disease podocytopathy after 3 years of treatment with agalsidase beta. Pediatr Nephrol 2016; 31: 1369-1373 27. Tondel C, Bostad L, Larsen KK et al. Agalsidase benefits renal histology in young patients with Fabry disease. J Am Soc Nephrol 2013; 24: 137-148 28. Suzuki H, Kiryluk K, Novak J et al. The pathophysiology of IgA nephropathy. J Am Soc Nephrol 2011; 22: 1795-1803 29. Trimarchi H. Primary focal and segmental glomerulosclerosis. Why are there pieces still hidden in this puzzle?. European Med J Nephrol 2015;3: 104-110. 30. Yu CC, Fornoni A, Weins A et al. Abatacept in B7-1-positive proteinuric kidney disease. N Engl J Med 2013; 369: 2416-2423 31. Reiser J, Alachkar N. Proteinuria: abate or applaud abatacept in proteinuric kidney disease? Nat Rev Nephrol 2014; 10: 128-130 32. Novelli R, Gagliardini E, Ruggiero B, Benigni A, Remuzzi G. Any value of podocyte B7-1 as a biomarker in human MCD and FSGS? Am J Physiol Renal Physiol 2016; 310: F335-F341 33. Li C, Ge Y, Dworkin L, Peng A, Gong R. The beta isoform of GSK3 mediates podocyte autonomous injury in proteinuric glomerulopathy. J Pathol 2016; 239: 23-35 34. Chen KH, Chien Y, Wang KL et al. Evaluation of Proinflammatory Prognostic Biomarkers for Fabry Cardiomyopathy With Enzyme Replacement Therapy. Can J Cardiol 2015; 35. Utsumi K, Itoh K, Kase R et al. Urinary excretion of the vitronectin receptor (integrin alpha V beta 3) in patients with Fabry disease. Clin Chim Acta 1999; 279: 55-68. Tablas Tabla 1. Características generales del grupo control y pacientes Fabry Tabla 2. Comparación intragrupal de pacientes Fabry FIGURA 1 FIGURA 2 Leyenda de las figuras Figura 1. Expresión de CD80 en la enfermedad de Fabry. La inmunohistoquímica de una muestra de biopsia humana con nefropatía de Fabry mostro aumentó de la expresión de CD80 en los podocitos. La tinción no se encontró en las biopsias control. Aumento original a 20X y 40X. Figura 2. liso-Gb3 aumenta la expresión de ARNm de CD80 en los podocitos. Podocitos humanos cultivados se estimularon con 100 nM liso-Gb3. Curso de tiempo de la inducción de CD80 mRNA. * P <0,004 vs control. La expresión de ARNm se evaluó por el tiempo real de RT-PCR. La media ± SEM de tres experimentos independientes.
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