Adrianzen Ramirez Jilwer Joel 2017

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UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO 
FACULTAD DE FARMACIA Y BIOQUIMICA 
ESCUELA ACADEMICO PROFESIONAL DE FARMACIA Y BIOQUIMICA 
 
EFECTO IN VITRO DEL ZUMO DE Vaccinium corymbosum L. SOBRE 
Escherichia coli 
TESIS I 
Autores: 
ADRIANZEN RAMIREZ JILWER JOEL 
CHIROQUE SANCHEZ JAIME ANDREE 
Asesor: 
Dr. Q.F. QUISPE DIAZ IVAN 
TRUJILLO- PERU 
2017 
 
 
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Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. 
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I 
 
 
PRESENTACION 
 
Señores Miembros del Jurado: 
Dando cumplimiento a las disposiciones establecidas en el reglamento de 
Grados y Títulos de la Facultad de Farmacia y Bioquímica de la Universidad 
Nacional de Trujillo, sometemos a consideración y elevado criterio científico el 
presente informe de trabajo de investigación: 
“EFECTO IN VITRO DEL ZUMO DE Vaccinium corymbosum L. SOBRE 
Escherichia coli” 
Es propicia la oportunidad para manifestar mi sincero agradecimiento a los 
docentes de la Facultad de Farmacia y Bioquímica, quienes en su labor de 
educadores nos han orientado durante mi formación profesional. 
En consecuencia, Señores Miembros del Jurado sometemos el presente 
trabajo para su respectiva evaluación y veredicto, esperando sea de interés y 
gran utilidad para la facultad y la sociedad. 
 
 
Trujillo, enero de 2017 
 
 
 
 ____________________________ ______________________________ 
Adrianzén Ramírez, Jilwer Joel Chiroque Sanchez, Jaime Andree 
 
 
 
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 iii 
 
 
JURADO EVALUADOR 
 
Dra. Mantilla Rodríguez Ana Elena 
 
 _________________ 
Presidente 
 
 
Mg. Ybañez Julca Roberto Osmundo 
 
_________________ 
Miembro 
 
 
Dr. Quispe Díaz Iván Miguel 
 
_________________ 
Miembro 
 
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DEDICATORIA 
 
Para mis padres por su apoyo, 
consejos, comprensión, amor, ayuda 
en los momentos difíciles, y por 
ayudarme con los recursos necesarios 
para estudiar. Me han dado todo lo que 
soy como persona, mis valores, mis 
principios, mi carácter, mi empeño, mi 
perseverancia para lograr mis sueños. 
 ADRIANZEN RAMIREZ JILWER JOEL 
 
 
 
 
 
 
Esta tesis se la dedico a Dios quién supo 
guiarme por el buen camino, darme 
fuerzas para seguir adelante y no 
desmayar en los problemas que se 
presentaban, enseñándome a encarar las 
adversidades sin perder nunca la 
dignidad ni desfallecer en el intento. 
 
 CHIROQUE SANCHEZ JAIME ANDRE 
 
 
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AGRADECIMIENTO 
 
Queremos agradecer al Dr. Iván 
Miguel Quispe Díaz, por habernos 
permitido trabajar en esta 
investigación y guiarnos con sus 
conocimientos en el desarrollo de la 
presente tesis. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
A los miembros del jurado Dr. Roberto 
Ibáñez Julca, Dra. Elena Mantilla 
Rodríguez, por los conocimientos 
impartidos durante la carrera profesional. 
 
 
 
 
 
 
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INDICE 
 
Página 
RESUMEN i 
ABSTRAC ii 
I. INTRODUCCIÒN 1 
II. OBJETIVOS 7 
III. MATERIAL Y METODO 8 
IV. RESULTADOS 17 
V. DISCUSIÒN 19 
VI. CONCLUSIONES 23 
VII. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 24 
ANEXOS 29 
 
 
 
 
 
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RESUMEN 
El presente estudio tuvo como objetivo evaluar el efecto del zumo de Vaccinium 
corymbosum L. sobre el crecimiento in vitro de la cepa de Escherichia coli. La 
cepa empleada fue reactivada en caldo Müller Hinton y se incubó durante 18 
horas a 37°C. Luego se tomó una asada de la bacteria y se ajustó con solución 
fisiológica al patrón de turbidez de Mac Farland N°0.5 (1.5x108 UFC/mL) para la 
realización del ensayo se procedió a determinar la concentración mínima 
bactericida (CMB) y la concentración mínima inhibitoria (CMI). Los resultados 
obtenidos muestran un efecto inhibitorio del zumo de Vaccinium corymbosum 
L. sobre Escherichia coli, por presentar una menor turbidez del medio que 
contuvo a Escherichia coli en 50uL al 100%v/v y para la concentración mínima 
bactericida (CMB) se pudo evidenciar que el zumo de Vaccinium corymbosum 
L. difunde sobre la cepa de Escherichia coli, a la concentración de 100% v/v, 
evidenciándose un halo de 4 mm de diámetro. 
Palabras claves: Vaccinium corymbosum L., Escherichia coli. 
 
 
 
 
 
 
 
 
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ABSTRACT 
This study aimed to evaluate the effect of juice Vaccinium corymbosum L. on 
the in vitro growth of Escherichia coli strain. The strain used was reactivated in 
Müller Hinton broth and incubated for 18 hours at 37 ° C. Then a roast of the 
bacteria was taken and adjusted with saline solution turbidity standard Mac 
Farland No. 0.5 (1.5x108CFU / mL) for the conduct of the trial proceeded to 
determine the minimum bactericidal concentration (MBC) and the concentration 
minimal inhibitory (MIC). The results show an inhibitory effect of juice Vaccinium 
corymbosum L. on Escherichia coli, have a lower turbidity medium containing 
Escherichia coli in 50uL 100% v / v for the minimum bactericidal concentration 
(MBC) was evident that the juice Vaccinium corymbosum L. spreads on the 
strain of Escherichia coli, at the concentration of 100% v / v, showing a halo of 
4 mm in diameter. 
Key words: Vaccinium corymbosum L., Escherichia coli. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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I. INTRODUCCION 
 
Las infecciones urinarias (IU) se encuentran entre las enfermedades microbianas 
más prevalentes1.2. Se estima que globalmente ocurren al menos 150 millones 
de casos de infecciones al tracto urinario (ITU) por año3. En los Estados Unidos, 
las IU son responsables de más de 7 millones de visitas médicas al año4. En 
torno al 15% de todos los antimicrobianos de prescripción comunitaria en los 
Estados Unidos se dispensa por IU, con un coste anual calculado que supera los 
1 000 millones de dólares4. En el Perú se desconocen cifras exactas de su 
incidencia. 
Más de la mitad de todas las mujeres tiene al menos una ITU, durante su vida y 
su presentación más común es durante el embarazo. Afecta al 50% de las 
mujeres, siendo rara en los hombres de 20 a 50 años2. En el adulto mayor, la 
ITU, es la infección bacteriana más común.1 
Las ITU, son clasificadas de diversas formas: alta o baja, aguda o crónica, no 
complicada o complicada, sintomática o asintomática, nueva o recurrente y 
comunitaria o nosocomial. 1 
En cuanto a su etiología, más del 95% son monomicrobianas, siendo 
Escherichia coli el microorganismo implicado con mayor frecuencia (70-80% de 
los casos). Menos frecuente puede aparecer Enterococcus faecalis, Proteus 
mirabilis, Staphylococcus saprophyticus (casi exclusivo de mujer 
premenopáusica), Streptococcus agalactiae, Klebsiella pneumoniae y otros 
bacilos Gram negativos. 2 
En los últimos años se ha observado en muchos hospitales y clínicas privadas 
variaciones significativas en la susceptibilidad microbiana, observándose la 
aparición progresiva de resistencia a las cefalosporinas de primera, segunda y 
tercera generación, fluoroquinolonas y otros antimicrobianos comúnmente 
empleados en el tratamiento empírico de la ITU extra hospitalaria. 3 
1 
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La resistencia bacteriana en nuestro medio hospitalario peruano actualmente es 
un problema con una serie de bacterias, principalmente las Gram negativas. En 
un estudio previo, Escherichia coli tuvo una sensibilidad a ciprofloxacino en el 
26% de los casos y a ceftriaxona en el 43%, por lo que los autores no 
recomiendan su uso como terapia empírica1. Del mismo modo se encontró una 
resistencia menor al 10% para amikacina. 4 
En pacientes con ITU complicada (malformaciones, cateterización, falla renal 
crónica, inmunosupresión, trasplante renal, hemodiálisis y diálisis peritoneal) e 
ITU recurrente la resistencia antibacteriana a ampicilina fue 73%, ceftriaxona 
11,8%, cefalexina 41,1%, ciprofloxacino 3,8%, gentamicina 43,2%, meropenem 
2%, ácido nalidixico 29,3%, nitrofurantoína 13,3%, norfloxacino 11% y 
trimetoprima-sulfametoxazol 59,5%.5 
Las tasas de resistencia antibacteriana han sufrido importantes variaciones con 
los años, por lo que el tratamiento empírico de la ITU, requiere la constante 
actualización de la sensibilidad antibiótica de las principales bacterias causantes 
de la zona, país o institución donde se trabajen, en particular de Escherichia 
coli, el principal uropatógeno. 6 
Aunque los antibióticos son casi siempre efectivos para eliminar la infección de 
la vejiga, el tratamiento con antibióticos no necesariamente previene infecciones 
recurrentes en la misma persona a menos de que se eliminen las bacterias 
contaminantes del colon y del tracto vaginal. La terapia profiláctica con 
antibióticos puede ser utilizada también para prevenir recurrencias en mujeres 
con ITU. 1 
Las infecciones en pacientes hospitalizados son causadas mayoritariamente por 
bacterias multirresistentes a los antibacterianos adquiridos en el ambiente 
hospitalario. Las infecciones renales son más difíciles de tratar que las 
infecciones de la vejiga debido a que algunos antibióticos no llegan adecuadas 
concentraciones al tejido renal. 7 
 El antibacteriano de mayor prescripción para la cistitis aguda es la 
nitrofurantoina por vía oral, o una combinación de sulfonamida-trimetoprim, 
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asimismo, se pueden utilizar amoxicilina, cefalexina o ciprofloxacina. Cada uno 
de estos regímenes curaba del 90 al 95% de cistitis agudas en mujeres, sin 
embargo, esto ha cambiado debido a las resistencias desarrolladas por las 
bacterias ante estos y otros antimicrobianos. 7 
La capacidad de Escherichia coli para adquirir genes de resistencia hace 
impredecible determinar su sensibilidad a diferentes antimicrobianos, por tal 
motivo es muy recomendable realizar antibiogramas. 7 
Hoy en día la medicina natural tiene un auge sin precedentes en todo el mundo, 
estos conocimientos populares, son fuentes de estudio en busca de nuevos 
conocimientos y medicamentos más efectivos con menos efectos secundarios. 
Según la Organización Mundial de la Salud (OMS), el 80% de la población mundial 
recurre a la medicina natural para atender sus necesidades básicas de salud. 8,9 
En el Perú existen unas 20 000 especies de plantas a las que se les atribuyen 
propiedades medicinales, de las cuales 1 109 son plantas medicinales nativas, 
utilizadas por los grupos indígenas para cubrir sus necesidades de salud. 10 
En la actualidad, los medicamentos modernos presentan con más frecuencia, una 
serie de contraindicaciones y efectos indeseables, lo que no sucedía al usar los 
remedios en su forma natural2. Agregado a esto, gran parte de la población no 
pueden acceder a la medicina convencional. En gran parte por sus costos 
elevados por lo que recurren a la compra de plantas medicinales.11 
Se han utilizado diversas técnicas microbiológicas para demostrar la actividad 
antimicrobiana de plantas frente a microorganismos patógenos para el hombre. 
Entre ellas la utilización de extractos, por ejemplo: decoctos e infusiones. 12 
Estos antimicrobianos de origen vegetal tienen un potencial terapéutico enorme. 
Son eficaces en el tratamiento de enfermedades infecciosas y al mismo tiempo 
pueden mitigar muchos de los efectos secundarios que se asocian a menudo 
con antimicrobianos sintéticos13. 
Se han realizado diversos estudios de los extractos de plantas sobre los efectos 
antimicrobianos de muchas bacterias. 
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En un reporte sobre la evaluación de la actividad antimicrobiana de extractos 
etanólicos y/o aceites esenciales de las especies vegetales, Hesperomeles 
ferruginea “pujin”, Myrciantes rhopaloides “arrayán negro” y Passiflora 
manicata “flor de la pasión” frente a microorganismos patógenos y 
fitopatógenos; al analizar los resultados de los diferentes ensayos señalaron que 
el extracto etanólico de Passiflora manicata presentó mayor actividad 
antimicrobiana frente a Escherichia Coli, Candida albicans y 
bacillus subtilis. 14 
En otro estudio, donde se analiza los principios activos de especies mexicanas 
de Pimpinella anisum “anís” y evaluación de su actividad biológica sobre 
microorganismos patógenos, se reportó que la extracción metanólica de 
Pimpinella anisum, presenta una inhibición porcentual del 75 % sobre 
Escherichia coli a una concentración mínima inhibitoria (CMI) de 45.5 mg. 15 
En el siguiente estudio sobre la actividad antibacteriana in vitro del extracto 
etanólico de propolis de Apis mellífera en bacterias aisladas, de pacientes 
del centro referencial de la libertad, se reportó que el extracto posee buena 
actividad antibacteriana contra Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, 
Pseudomona aeruginosa y Serratia marcescens. En este estudio se 
evidenció que para el caso de la Escherichia coli, a una concentración de 23% 
presentó un efecto bactericida. 16 
El arándano o mora azul (Vaccinium corymbosum L.) es un frutal menor nacido 
nativo de Norteamérica, que pertenece a la familia de las Ericáceas, subfamilia 
Vacciniaceae, subgénero Cynacoccus y es considerado dentro del grupo de las 
frutillas. 17 
Es un arbusto pequeño de 0.2 – 0.4 metros de altura, aunque existen variedades 
que llegan a medir 2.5 metros. Tanto los tallos como las hojas están cubiertas 
por un polvo blanquecino llamado pruina cenicienta, las hojas son persistentes, 
con espinas en el pecíolo y nervio medio, verde oscuro en el haz y blancuzco en 
el envés. Es un arbusto longevo, de hoja caduca y de madera leñosa. Las flores, 
miden de 2 – 3 cm de diámetro y son de color blanco o rosado. 17 
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El fruto es una baya casi esférica, que dependiendo de la especie y cultivar 
puede variar en tamaño de 0,7-1,8 cm de diámetro y posee un color azul 
metálico18. En la base de la planta se encuentra la corona, de donde se forman 
los tallos, la cual está conformada por una gran cantidad de raíces superficiales. 
El sistema radicular es profundo, puede llegar a profundizar más de un metro 
dependiendo del suelo y el subsuelo. 17 
 El arándano azul, es la cuarta frutilla de interés económico en el mundo, debido 
al contenido de antioxidantes y a la resistencia del cultivo a diversas condiciones 
ambientales adversas. Sus propiedades antioxidantes se atribuyen al contenido 
de flavonoides, antocianinas, polifenoles y ácido ascórbico. 19 
El jugo de arándano es una opción para prevenir la infección de vías urinarias, 
cualidad demostrada en diferentes publicaciones recientes, en las que se 
destaca que su mecanismo de acción radica en el efecto que ejercen las 
proantocianidinas, especialmente las de tipo A, en el urotelio, que evitan que 
Escherichia coli se adhiera a éste; es así como ejerce su acción 
antibacteriana20. 
Experimentos in vitro han demostrado reducción de la adhesión de Escherichia 
coli a las células endoteliales cuando las bacterias son preincubadas con 5 a 75 
mg de proantocianidinas tipo A. También se ha demostrado in vitro que estas 
proantocianidinas modifican la superficie celular de las bacterias al capturar los 
lipopolisacáridos de la pared celular y modificar los patrones de unión a las 
células epiteliales. 20 
Las investigaciones recientes sugieren que el consumo de arándano previene la 
adhesión bacteriana de uropatógenos, especialmente Escherichia coli, que es 
la causante de 90% de las infecciones de vías urinarias. 20 
Existe una creencia generalizada de que el jugo de arándano puede tratar las 
infecciones del tracto urinario. No hay evidencia concluyente de ya sea in vitro o 
en estudios in vivo para confirmar esto. Sin embargo, hay una fuerte evidencia 
in vitro e in vivo que confirma la hipótesis de que las infecciones urinarias se 
puede prevenir por la disminución de la adherencia bacteriana a las células 
uroepiteliales. 21 
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El mecanismo beneficioso históricamente se creía que se debe a los ácidos de 
frutas que causan un efecto bacteriostático en la orina. Sin embargo, 
recientemente, investigadores reportan que los metabolitos que participan en la 
actividad antiadhesiva bacteriana contra cepas susceptibles y resistentes a los 
antimicrobianos de Escherichia coli; se debe a las proantocianidinas (PACs) 
tipo A.22 
En el mundo, los principales países productores son Estados Unidos y Canadá. 
Perú se considera como una región no tradicional en la producción de arándanos 
junto con otras regiones subtropicales como el norte de Argentina, Chile y 
España; En nuestro país la producción de arándanos se desarrollan en: Mala, 
Cañete, Arequipa, La Libertad, Caraz, Pisco, Cajamarca, Cusco y Lima. 23 
Cada día se hace más difícil el tratamiento antimicrobiano por la capacidad de 
dichos microorganismos de crear resistencia, tal fenómeno ha sido considerado 
emergente en todo el mundo, especialmente en los hospitales mostrando cifras 
anuales en aumento del 25% en el manejo de pacientes. 
Los fármacos disponibles actualmente, tienen una toxicidad importante, 
producen recurrencia o causan resistencia, razón por la cual se está procurando 
descubrir nuevos agentes antimicrobianos más potentes, pero sobre todo 
seguros. 
Los consumos de frutas y/o zumo de Vaccinium corymbosum L. es de interés 
en este contexto porque comprenden alternativas más seguras y eficaces que 
los agentes antimicrobianos producidos sintéticamente, lo cual motiva a que 
estos compuestos naturales sirvan como base para el desarrollo de nuevos 
agentes antimicrobianos que sean más eficaces que los sintéticos. 
En base a los antecedentes se formula el siguiente problema: 
¿Cuál es el efecto In Vitro del zumo de Vaccinium corymbosum L. sobre 
Escherichia coli? 
 
Postulándose la siguiente hipótesis. 
El zumo de Vaccinium corymbosum L. tiene efecto antibacteriano in vitro 
sobre Escherichia coli; debido a la presencia de antocianinas. 
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II. OBJETIVOS 
 
2.1. Objetivo general: 
 
Evaluar el efecto In Vitro del zumo de Vaccinium corymbosum L. sobre 
Escherichia coli2.2. Objetivos específicos: 
 
Determinar la concentración mínima inhibitoria (CMI) del zumo de Vaccinium 
corymbosum L. sobre Escherichia coli. 
 
Determinar la concentración mínima bactericida (CMB) del zumo de Vaccinium 
corymbosum L. sobre Escherichia coli. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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III. MATERIAL Y MÉTODO 
 
3.1. MATERIAL 
 
 3. 1.1. Material de estudio 
 1.5 Kg de frutos de Vaccinium corymbosum L. 
 
 
 3.1.2. Material de vidrio 
 Placas Petri 100x15mm 
 Frasco de vidrio ámbar con tapa de plástico de 100ml 
Tubos de ensayo 150x15mm 
 
 
 3.1.3. Equipos 
 Balanza triple brazo OHAUS 700/800 series 
 Liofilizador LABCONCO 195 (A65412906) 
 Incubadora Memmert 
 Congeladora Coldex 271lt 
Extractor de fruta Imaco. 
 
 
 3.1.4. Reactivos 
 Tricloruro férrico al 3%, Sigma 
 Ácido clorhídrico concentrado 37% de pureza Sigma 
 Magnesio metálico Sigma 
 Anhídrido acético 98% pureza Sigma 
 Ácido Acético glacial 99.8% de pureza Sigma 
 Ácido Sulfúrico 98% de pureza Sigma 
 Acido benzoico 99.5% de pureza Sigma 
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 Tolueno 99.5% de pureza Sigma 
 Diclorometano 98% de pureza Sigma 
 Hidróxido de sodio al 10% Sigma 
 Metanol 99.5% pureza Sigma 
 Etanol de 96°GL Alkofarma 
 Agua destilada 
 Agua bidestilada Medifarma 
 
 
 3.1.5. Material Microbiológico 
 Escherichia coli ATCC 25992 
 
 
 3.1.6. Material Farmacológico. 
Ciproquin (Ciprofloxacino) 200mg/100ml solución inyectable para 
inyección LT 2F51675 Claris Lifesciences Limited. 
 
 
 3.1.7 Medios de cultivo. 
Agar Müller Hinton LT 35124 Britania 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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3.2. MÉTODOS 
 
 3.2.1. Identificación taxonómica. 
La especie de Vaccinium fue llevada al Herbariun Trujillense de la 
Universidad Nacional de Trujillo, para su identificación taxonómica, esta fue 
determinada mediante el código 58493, para su identificación se 
registraron los siguientes datos; familia, nombre científico, hábito, 
procedencia y altitud. 
 
3.2.2. Método farmacognóstico 
3.2.2.1. Obtención de la muestra 
Los frutos maduros y frescos de Vaccinium corymbosum L. de entre 12 y 
15 mm de diámetro fueron obtenidos del valle de Virú (50 msnm), distrito 
de Virú provincia de Virú, departamento La Libertad, latitud sur 08°24' 34", 
longitud oeste 78°45' 05" en el mes de abril, del 2016. 
 
3.2.2.2. Preparación de la muestra 
Las muestras Vaccinium corymbosum L. fueron lavadas con agua 
destilada, se cortó por la mitad retirándose las pepas y se realizó cortes del 
pericarpio en rajas de 5 cm de largo y 0,5 cm de ancho. Las muestras fueron 
depositadas en bandejas de aluminio en finas capas y se congelaron a -
40°C durante 24 horas antes de su liofilización, a 0,026 bars y a -58°C 
durante 48 h. El Vaccinium corymbosum L. liofilizado se trituró para la 
obtención de un producto en polvo. La liofilización se realizó en la Escuela 
de Ingeniería Industrial, Facultad de Ciencias Agropecuarias de la 
Universidad Nacional de Trujillo. 
 
 
 
 
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3.2.3. IDENTIFICACION DE METABOLITOS 
3.2.3.1. MARCHA FITOQUÍMICA24 
Basada en la separación por disolventes de diferente polaridad y la identificación 
 
 
 
 
 
 
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3.2.3.1. 1. Extracto acuoso 
 
3.2.3.1. 1.1. Identificación de Flavonoides: 
Reacción de Shinoda: Se midió X gotas del zumo de Vaccinium 
corymbosum L., lo llevamos a sequedad, después se redisolvió en 1 ml 
de metanol y trasvasamos a un tubo de ensayo agregamos limadura de 
magnesio metálico más II gotas de HClcc. 
 
3.2.3.1. 1.2. Identificación de Fenoles: 
Reacción con Tricloruro férrico: Se midió X gotas del zumo de 
Vaccinium corymbosum L., en un tubo de ensayo, luego lo llevamos a 
sequedad, después se redisolvió en 1ml de metanol y se añadió II gotas de 
tricloruro férrico al 5% en etanol. 
 3.2.3.1. 1. 3. Identificación de Saponinas: 
Ensayo de espuma: Se midió XX gotas del zumo de Vaccinium 
corymbosum L. Agitamos vigorosamente por 30 segundos y, esperamos 
15 en reposo. 
 3.2.3.1. 1. 4. Identificación de Antocianinas 
Ensayo de Rosenhein: Se midió XX gotas del extracto y lo llevamos a 
sequedad; se redisolvió el residuo en X gotas de solución de ácido 
clorhídrico 2N/1-propanolol, transvasamos a un tubo de ensayo y lo 
llevamos a ebullición de 15-30 minutos en baño maría. 
 
3.2.3.1. 2. Extracto diclorometánico. 
 3.2.3.1. 2.1. Identificación de Quinonas: 
Reacción de Borntranger: Se midió X gotas del zumo de Vaccinium 
corymbosum en una capsula, luego lo llevamos a sequedad y después se 
redisolvió en XX gotas de tolueno, transvasamos a un tubo de ensayo y 
agregamos XX gotas de NaOH 10%. Agitamos mezclando las fases y se 
dejó en reposo hasta su recuperación. 
 
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3.2.4. MÉTODO ANTIBACTERIANO 25 
Se utilizó cultivos de Escherichia Coli, los cuales fueron reactivados 
inicialmente en agar Müller Hinton e incubadas a 37º C por 24 horas. Estos 
cultivos fueron proporcionados por el Centro Referencial de Salud-Minsa- 
Trujillo. 
3.2.4.1. DISTRIBUCIÒN DE LOS GRUPOS DE ESTUDIO. 
Para determinar la concentración mínima bactericida (CMB), del zumo 
Vacciniun corymbosun L. se trabajó por triplicado, mediante el método 
de Agar en placa, a la concentración de 5%v/v, 25%v/v, 50%v/v y 100%v/v, 
utilizando agua bidestilada como solvente y blanco y, al al ciprofloxacino 
como control. 
La concentración mínima inhibitoria (CMI), del zumo Vacciniun 
Corymbosun L. se trabajó por triplicado, mediante el método de dilución en 
caldo Müller Hinton, a la concentración de 5%v/v, 25%v/v, 50%v/v y100%v/v, utilizando agua bidestilada como solvente y blanco y, al 
ciprofloxacino como control. 
3.2.4.2. Preparación de ciprofloxacino. 
Se utilizó 200ul de ciprofloxacino, a la concentración de 2mg/ml como control 
positivo para determinar la concentración mínima bactericida y 10ul para la 
concentración mínima inhibitoria a la misma concentración. 
 
3.2.4.3. DETERMINACION DE LA CONCENTRACION MINIMA 
BACTERICIDA (CMB). 
 
La concentración mínima bactericida (CMB). Es la menor concentración 
capaz de destruir o matar 105 bacterias en 1 ml de medio de cultivo, tras 
18-24 horas de incubación. 
 
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3.2.4.3.1. Método de difusión de agar en placa 
 
3.2.4.3.1.1. Preparación de la muestra 
Para la preparación de la muestra se pesó 50 g de Vaccinium 
corymbosum L. fresco, para posteriormente extraer el zumo (2-3 mL) por 
medio de un extractor de frutas. 
3.2.4.3.1.2. Reactivación del cultivo 
La bacteria fue reactivada en caldo de Müller Hinton y se incubó durante 24 
horas a 37°C. Luego se tomó una asada de la bacteria y se ajustó con 
solución fisiológica al patrón turbidez de Mac Farland N°0.5 (1.5x108 
UFC/mL). 
3.2.4.3.1.3. Sembrado 
 
Se colocó en 6 placas petri, 20 mL de Agar Müller Hinton, luego se sembró 
Escherichia coli mediante siembra en superficie. Se tomó un hisopo y se 
distribuyó uniformemente girando cada placa 30 grados por 10 veces 
aproximadamente. Sobre una de las placas sembradas se realizó 2 
perforaciones en las cuales se colocó 200 µL del zumo Vaccinium 
corymbosum L. a las diferentes concentraciones de 5% v/v, 25%v/v, 50% 
v/v y 100% v/v y en otra placa se realizó 2 perforaciones en las cuales se 
colocó como blanco 200µL de agua bidestilada y control al ciprofloxacino 
200mg/100 mL en cada perforación. Luego las placas petri se incubaron a 
37°C por 24 horas. 
 
Se determinó los diámetros de halo de inhibición del zumo de Vaccinium 
corymbosum L. a las concentraciones de 5% v/v, 25% v/v y 50%v/v frente 
a Escherichia coli. 
 
Finalmente, se midió el halo de inhibición utilizando una regla milimetrada. 
 
 
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3.2.4.3.2. DETERMINACION DE LA CONCENTRACION MINIMA INHIBITORIA 
(CMI). 
La concentración mínima inhibitoria (CMI). Es la menor concentración de 
antibiótico capaz de inhibir el crecimiento de 105 bacterias en 1 ml de 
medio de cultivo, tras 18-24 horas de incubación. 
 
3.2.4.3.2. Método de Dilución en caldo Muller Hinton 
3.2.4.3.2. 1. Preparación de la muestra 
A partir del zumo de Vaccinium corymbosum L. se prepararon diluciones 
a concentraciones de 10µL, 20 µL, 30 µL, 40 µL y 50 µL disueltos en agua 
bidestilada. 
3.2.4.3.2. 2. Reactivaciones de las cepas 
Las cepas de Escherichia coli fueron reactivadas en caldo Müller Hinton y 
se incubó durante 18 horas a 37°C. Luego se tomó una asada de la bacteria 
y se ajustó con solución fisiológica al patrón de turbidez de Mac Farland 
N°0.5 (1.5x108 UFC/mL). 
 
3.2.4.3.2. 3. Enfrentamiento con el microorganismo 
Se utilizaron tubos de ensayo, en los cuales se colocó 1mL de agar de Müller 
Hinton (AMH) y cuando el medio aún estuvo líquido se añadió 10 µL de cada 
una de las concentraciones de las diluciones del zumo preparadas 
anteriormente, luego en cada tubo de ensayo se colocó 2 µL de la 
suspensión de la bacteria y se incubó a 37°C por 24 horas. 
Se empleó como control al ciprofloxacino 50µl a una concentración de 
2mg/mL y se trabajó bajo las condiciones anteriormente descritas. 
Después de 24 horas de incubadas a 37°C, los tubos de ensayo se 
examinaron visualmente. Se consideró la concentración mínima inhibitoria a 
la menor concentración de la dilución del zumo a la cual el microorganismo 
ensayo no presentó desarrollo visible. 
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3.3. LECTURA E INTERPRETACIÒN DE RESULTADOS. 
 
La lectura de los resultados del CMB se realizó en aquellas placas donde el 
antimicrobiano fue capaz de eliminar completamente el desarrollo bacteriano 
o que eliminó al 99,9% de bacterias, comparándolo con el control positivo. 
 Para la lectura del CMI, se utilizó como criterio la turbidez, para esto se 
colocó cruces de acuerdo a la intensidad de turbidez en los diferentes tubos 
de ensayo, máximo de cruces fueron 3, este es que presenta mayor turbidez 
y cero (0), al que presenta la CMI. 
 
La CMI fue interpretada como la concentración de antimicrobiano, contenida 
en el tubo de la serie que inhibió el crecimiento visible de la bacteria, para lo 
cual fue necesario comparar cada uno de los tubos con los controles positivo 
y negativo. 
 
3.4. EVALUACIÓN ESTADÍSTICA 26 
 
Se realizó la prueba estadística de ANOVA para hallar la diferencia 
significativa de la concentración de mínima bactericida a diferentes 
concentraciones del zumo de Vaccinium corymbosum L. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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IV. RESULTADOS 
 
Tabla 1. ANOVA de la concentración mínima bactericida del zumo de 
Vaccinium corymbosum L. frente a Escherichia coli. 
 
 
 
 
 
A=5% de zumo de Vaccinium corymbosum L., B=25% de zumo de Vaccinium 
corymbosum L., C=50% de zumo de Vaccinium corymbosum L., D=100% de 
zumo de Vaccinium corymbosum L. 
Fuente: Investigadores 
 
Gràfico 1. Diámetro promedios de los halos de inhibición de crecimiento 
bacteriano de Escherichia coli por acción del zumo de Vaccinium 
corymbosum L. y Ciprofloxacino. 
0
10
20
30
40
50
1
0 0 2
4
45
D
ia
m
et
ro
 d
e 
H
al
o
s 
(m
m
)
Concentraciòn Vs diámetro de los halos
A B C D Ciprofloxacino 2mg/ml
Origen de 
las 
variaciones 
Suma de 
cuadrados 
Grados 
de 
libertad 
Promedio 
de los 
cuadrados 
F Probabilidad Valor crítico 
para F 
Entre 
grupos 
20,16944444 5 4,033888889 0,969231796 0,474148863 3,105875239 
Dentro de 
los grupos 
49,94333333 12 4,161944444 
 
Total 70,11277778 17 
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Tabla 2. Evaluación de la concentración mínima inhibitoria de Vaccinium 
corymbosum L., ciprofloxacino y agua bidestilada frente a Escherichia coli 
por dilución en agar. 
Muestra Concentración Número de muestra Turbidez 
 
 
 
 Tubo 1 +++ 
10 µl Tubo2 +++ 
 Tubo 3 +++ 
 Tubo 4 +++ 
20 µl Tubo 5 +++ 
 Tubo 6 +++ 
Zumo de 
Vaccinium 
corymbosum L. 
 Tubo 7 +++ 
30 µl Tubo 8 +++ 
 Tubo 9 +++ 
 
 
 
 Tubo 10 +++ 
40 µl Tubo 11 +++ 
 Tubo 12 +++ 
 Tubo 13 + 
50 µl Tubo 14 + 
 Tubo 15 + 
 
Ciprofloxacino 
2mg/ml 
 Tubo 16 0 
50µl Tubo 17 0 
 Tubo 18 0 
 
Agua bidestilada 
 Tubo 19 +++ 
50µl Tubo 20 +++ 
 Tubo 21 +++ 
Fuente: Investigadores. 
Leyenda: 
0: Sin turbidez 
+: Menor turbidez 
++: Mediana turbidez 
+++: Mayor turbidez
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V. DISCUSION 
 
En la Tabla 1, el análisis estadístico de ANOVA de los promedios de los halos 
de inhibición del zumo de Vaccinium corymbosum L. sobre Escherichia coli 
se determinó que el valor crítico es 3.1 se acepta la hipótesis nula (Ho: µ= µo 
con α = 0.05) con un nivel de confianza de 0.95 y se concluye que existe 
diferencia significativa entre las concentraciones evaluadas, y que la 
concentración al 100% es más eficiente en relación a las concentraciones de 
50%, 25% y 5%. 
 
En la Gráfico 1, se observa que el zumo de Vaccinium corymbosum L. a la 
concentración de 100%v/v, presentó efecto mínima bactericida (4mm) sobre las 
cepas de Escherichia coli. Su efecto mínima bactericida se debe a una menor 
concentración proantocianidinas presentes en el zumo Vaccinium 
corymbosum L., estos metabolitos se encuentran en mayor proporción en su 
piel.24 
 Las proantocianidinas, son compuestos fenólicos estables que bloquean la 
expresión de las fimbrias P de Escherichia coli 22. Estudios realizados en la 
Universidad estatal de New Jersey, USA; determinaron que la actividad 
antibacteriana de proantocianidinas incluye, la posible inhibición de las enzimas 
bacterianas extracelulares, la privación de los sustratos necesarios para el 
crecimiento bacteriano o la acción directa sobre su metabolismo mediante la 
inhibición de la fosforilación oxidativa. 25 
 
Asimismo en el misma Gráfico 1, se observa que el zumo de Vaccinium 
corymbosum L. a la concentración de 25%v/v, no presentó efecto bactericida 
sobre las cepas de Escherichia coli A este porcentaje no hay suficiente 
concentración de proantocinidinas que alcancen el sitio de activo o bien, la 
estructura de las porinas impida el paso del principio activo al interior de la célula 
bacteriana. 25 
En una revisión sistemática de ensayos clínicos aleatorizados de la base de 
Cochrane, que incluyó a 24 estudios con un total de 4473, reportó en 14 estudios 
que el zumo de Vaccinium corymbosum L., es poco eficaz frente a 
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Escherichia coli aunque en algunos de los estudios demostraron un pequeño 
beneficio para las mujeres con infecciones urinarias recurrentes, pero no hubo 
diferencias estadísticamente significativas cuando se incluyeron los resultados 
de un estudio mucho más grande. 26 
Según el estudio realizado en la Universidad de Cartagena, Colombia; 
demuestra que el criprofloxacino presenta actividad bactericida en un 63,9% 
sobre las cepas de Escherichia coli 28. En otro estudio realizado en la 
Universidad Privada Cayetano Heredia, Perú; demuestra que estas bacterias 
Gram negativas, presentaban sensibilidad a ciprofloxacino en un 44,5% 29. Por 
otro lado, en el estudio realizado en la Universidad de Salamanca, España; 
determinaron que las cepas Escherichia coli eran susceptibles a ciprofloxacino 
en 77,2%. 30 
En el Gráfico 1, se observa que el zumo de Vaccinium corymbosum L. a la 
concentración de 5%v/v y 50%v/v, en la primera observamos que las cepas de 
Escherichia coli, no presentaron sensibilidad. En la segunda concentración 
dichas cepas presentaron efecto mínima bactericida (2mm). 
La explicación de esto, responde a que las cepas de Echerichia coli, bacteria 
Gram negativa, presenta dos membranas lipídicas una interna y otra externa, 
entre las que se localiza una fina pared celular de peptidoglucano. La membrana 
externa protege a las bacterias de varios antibióticos, colorantes y detergentes 
que normalmente dañarían la membrana interna o la pared celular de 
peptidoglucano, por esto se necesita una mayor concentración de 
proantocianidinas en el zumo de Vaccinium corymbosum L. para inhibir dicha 
cepa. 30 
En la Tabla 2, se observa que en el tubo de ensayo que contenía 50uL de zumo 
de Vaccinium corymbosum L. al 100%v/v, se evidenció un mayor efecto 
inhibitorio (CMI) por presentar una menor turbidez del medio que contenía la 
cepa de Escherichia coli. 
En la Tabla 2, se observa que en el tubo de ensayo que contenía 40 uL de zumo 
de Vaccinium corymbosun al 100%v/v, se pudo evidenciar un menor efecto 
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inhibitorio (CMI) por presentar una mayor turbidez del medio que contenía la 
cepa de Escherichia coli. 
En la Tabla 2, se observa que en los tubos de ensayo que contenía 30 uL y 20uL 
respectivamente del zumo de Vaccinium corymbosun L. al 100%v/v, se pudo 
evidenciar que no presentó efecto inhibitorio (CMI) alguno, por presentar una 
mayor turbidez del medio que contenía a la cepa Escherichia coli. 
Estudios revelaron que de 240-300 mL de zumo de Vaccinium corymbosun L. 
podría prevenir la recurrencia de ITU, lo que sugiere que una dosis de <240 mL/ 
día no proporcionó protección suficiente. La ingesta de zumo Vaccinium 
corymbosun L. inhibe la adherencia de cepas independientemente de si 
producen P-fimbrias y fimbrias tipo 1, así como tanto resistente a los antibióticos 
y las cepas susceptibles31. 
Durante el paso inicial en el desarrollo de una infección urinaria, Escherichia 
Coli produce fimbrias-pelo así sobresalen de la superficie bacteriana. Estas 
fimbrias llevan adhesinas que se unen a receptores en las células 
uroepiteliales31. 
El zumo de Vaccinium corymbosun L. contiene las proantocianidinas, que 
inhiben las cepas de Escherichia coli adhesinas y muestran una fuerte 
actividad inhibidora frente a fimbrias-P. El índice de adherencia (es decir, el 
número de bacterias adheridas a cada celda) representa la actividad de una 
fracción oligomérica de las proantocianidinas pertenezcan al tipo A, lo que 
sugiere que el zumo de Vaccinium corymbosun L. afecta a varios fimbrias, pero 
particularmente P-fimbrias. Los presentes resultados confirman la existencia de 
un efecto dependiente de la dosis sobre la adherencia in-vitro de Escherichia 
Coli a las células epiteliales de la vejiga.31 
Al ser dosis dependiente, cuando se aumentó el volumen, se evidencio un mayor 
efecto inhibitorio, esto nos hace inferir que si aumentáramos el volumen el efecto 
podría ser mejor, también se debe tener en cuenta que el tiempo de tratamiento 
es importante para producir el efecto antibacteriano y como profilaxis para tratar 
problemas de ITU recurrentes. 31 
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Según el estudio del Grupo Cochrane de Riñón Registro Especializado, sugiere 
que zumo de Vaccinium corymbosun L. es menos eficaz para la prevención 
de ITU recurrente, Aunque algunos estudios pequeños han demostrado un 
beneficio menor para las mujeres con IU recurrentes, hubo diferencias 
estadísticamente significativas en los resultados, el zumo de Vaccinium 
corymbosun L. no se recomienda para la prevención de la ITU. 26 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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VI. CONCLUSIONES 
 
Se determinó que la concentración de 50uL al 100%v/v del zumo de Vaccinium 
corymbosum L. sobre Escherichia coli, fue el que presentó mayor efecto 
inhibitorio. 
Se determinó que el zumo de Vaccinium corymbosum L. tiene efecto mínima 
bactericida sobre Escherichia coli, a la concentración 100%v/v. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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VII. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS 
 
1. Echevarría J.; Sarmiento E.; Osores F. Infección del tracto urinario y 
manejo antibiótico. Acta Med Per. 23(1) 2006. 
2. INFAC. Información Farmacoterapéutica de la Comarca. Infección 
Urinaria en el adulto: Actualización. 19 LIBURUKIA. 9 Zk. 
2011.VOLUMEN 19 .Nº 9. 2011. España: INFAC, 2011 [Citado 27 enero 
de 2015]. Disponible en: 
http://www.osakidetza.euskadi.eus/contenidos/informacion/cevime_infac/
eu_miez/adjuntos/Infac_v19_n9.pdf 
3. Polanco F.; Loza R.; Resistencia antibiótica en infecciones urinarias en 
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ANEXOS 
 
TABLA 1. Identificación cualitativa de los fitoconstituyentes del extracto acuoso 
del fruto liofilizado de Vacciniun corymbosum L. 
 
METABOLITO 
REACCION/ 
PRUEBA 
COLORACION PRECIPITADO RESUTADO 
Saponinas Espuma - - Negativo (-) 
Flavonoides Shinoda Rojo - Positivo (+++) 
Antocianinas Rosenhein Marrón - Positivo (+++) 
Fenoles 
Tricloruro 
férrico 
 Verde oscuro - Positivo (+++) 
 Fuente: Investigadores. 
 
 
 
TABLA 2. Identificación cualitativa de los fitoconstituyentes del extracto acuoso 
del fruto liofilizado de Vacciniun corymbosum L. 
 
METABOLITO 
REACCION/ 
PRUEBA 
COLORACION PRECIPITADO RESUTADO 
Quinonas Bortranger - - Negativo (-) 
 Fuente: Investigadores. 
 
 
 
 
 
 
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DETERMINACIÓN DE LA CONCENTRACIÓN MÍNIMA BACTERICIDA (CMB) 
 
FIGURA1: Determinación de la concentración mínima bactericida de cepas 
de Echerichia coli frente al Ciprofloxacino como patrón y agua como 
blanco. 
 
Se observa que el ciprofloxacino a la concentración de 2mg/ml (200ul), 
presentó efecto bactericida (50mm) sobre las cepas de Escherichia coli y 
no se observó efecto alguno con el blanco (agua) 
 
FIGURA 1 
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FIGURA 2: Determinación de la concentración mínima bactericida (CMB) de 
Cepas de Echerichia coli frente al zumo de Vaccinium corymbosum L. a la 
concentración de 100%v/v y al 25% v/v. 
 
 
 
 Se puede evidenciar que el zumo de Vaccinium corymbosum L. difunde sobre 
las cepas de Escherichia coli, a la concentración de 25% v/v no se evidencio 
efecto bactericida pero a la concentración de 100% v/v se pudo evidenciar un 
halo de 4 mm de diámetro. 
 
 
FIGURA 2 
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FIGURA 3: Determinación de la concentración mínima bactericida de cepas de 
Echerichia coli frente al zumo de Vaccinium corymbosum L. a la 
concentración de 50%v/v y al 5% v/v 
 
 
 
Se puede evidenciar que el zumo de Vaccinium corymbosum L. difunde sobre 
las cepas de Escherichia coli, a la concentración de 5% v/v no se evidencio 
efecto bactericida pero a la concentración de 50% v/v se pudo evidenciar un halo 
de 2 mm de diámetro. 
 
 
 
FIGURA 3 
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DETERMINACIÓN DE LA CONCENTRACIÓN MÍNIMA INHIBITORIA (CMI) 
 
FIGURA 4: Determinación de la concentración mínima inhibitoria de caldo 
Müller Hinton con cepas de Echerichia coli frente a 50uL de zumo de 
Vaccinium corymbosum L. a la concentración de 100%v/v 
 
 
 
Mayor efecto inhibitorio (CMI) del zumo de Vaccinium corymbosum L. por 
presentar una menor turbidez del medio que contenía la cepa de Escherichia 
coli. 
 
 
 
FIGURA 4 
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FIGURA 5: Determinación de la concentración mínima inhibitoria de caldo 
Müller Hinton con cepas de Echerichia coli frente a 40uL de zumo de 
Vaccinium corymbosum L. a la concentración de 100%v/v 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Menor efecto inhibitorio (CMI) del zumo de Vaccinium corymbosum por 
presentar una mayor turbidez del medio que contenía la cepa de Escherichia 
coli. 
 
 
 
FIGURA 5 
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FIGURA 6: Determinación de la concentración mínima inhibitoria de caldo 
Müller Hinton con cepas de Echerichia coli frente a 30uL de zumo de 
Vaccinium corymbosum L. a la concentración de 100%v/v 
 
 
 
Efecto inhibitorio mínimo (CMI) del zumo de Vaccinium corymbosum por 
presentar una mayor turbidez del medio que contenía la cepa de Escherichia 
coli. 
 
 
 
FIGURA 6 
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FIGURA 7: Determinación de la concentración mínima inhibitoria de Caldo 
Müller Hinton con cepas de Echerichia coli frente a 20uL de zumo de 
Vaccinium corymbosum L. a la concentración de 100%v/v 
 
 
 
No se presencia efecto inhibitorio (CMI) del zumo de Vaccinium corymbosum 
L. sobre la cepa de Escherichia coli por presentar un alto grado de turbidez del 
medio que contiene la cepa de Escherichia coli. 
 
 
 
 
 
FIGURA 7 
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MARCHA FITOQUÍMICA DE VACCINIUM CORYMBOSUM L. 
 
 Flavonoides: Shinoda 
 
Saponinas: Ensayo de la espuma 
 
Quinonas: Borntrager: Extracción diclorometánico. 
 
Ensayo: (+) 
Color: rojo 
Ensayo: (-) 
No se formó espuma. 
Ensayo: (-) 
No se evidencio el color rojo 
 
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 Fenoles: Tricloruro Férrico 
 
 
 
Antocianinas: Rosenhein 
 
 
 
 
 
Ensayo: (+++) 
Color: Verde oscuro 
Ensayo: (+++) 
Color: Rojo 
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Comparación de antocianidinas presentes en el fruto sin piel, y en la piel 
de Vaccinium corymbosum L. “Arándano azul” 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Bilberry 
(Vaccinium 
Corymbosum) 
Figura 1. Total antocyanins content in bilberry and blueberry cultivarse, Berry and Berry skins 
Tabla 1. Antocyanins content in bilberry and blueberry cultivars berry skins 
Tabla 2. Antocyanins content in bilberry and blueberry cultivars berry 
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Obtención del zumo de Vaccinium Corymbosum L. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Muestras de Vaccinium 
corymbosum L. aptas 
para realizar el trabajo 
de investigación 
Extracción del zumo de 
Vaccinium corymbosum 
 Zumo de Vaccinium corymbosum al 
25%v/v 50%v/v y 100%v/v 
 
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Materiales y equipos microbiológicos 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Estandarización de la cepa aislada de Eschericia coli 
Escala de Mc Farland 0.5 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Patrón: Ciproquin 
(Ciprofloxacino) Asa bacteriológica 
Placas petri 
Mechero de 
alcohol 
Ajuste con solución fisiológica al patrón turbidez de 
Mac Farland N°0.5 (1.5x108 UFC/mL). 
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Prueba de la Acción antibacteriana del zumo de Vaccinium corymbosum 
L. “arándano azul” 
 
Sembrado. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Enfrentamiento. 
 
 
 
Concentración mínima inhibitoria (CMI) Concentración mínima bactericida (CMB) 
Asada de Echerichia coli 
Extracción de ul de zumo de 
Vaccinium corymbosum L. Enfrentamiento del zumo de 
Vaccinium corymbosum L. 
frente a Echerichia coli, para 
determinar la CMB 
Enfrentamiento del zumo de 
Vaccinium corymbosum L. 
frente a Echerichia coli, para 
determinar la CMI 
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 Incubación. 
 
 
 
 
Lectura de las medidas de los halos de inhibición y de la turbidez de las 
cepas 
 
 
 
 
 
 
Incubación de las placas petri (CMB) y tubos de ensayo (CMI) se incubaron a 37°C por 24 horas. 
Lectura de la capacidad antibacteriana (CMB) de Zumo de 
Vaccinium corymbosum L. Halos de inhibición 
Lectura de la capacidad 
antibacteriana (CMI) de Zumo de 
Vaccinium corymbosum L. Turbidez 
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Liofilización de Vaccinium corymbosum L. “Arándano azul” 
 
 
 
 
 Lectura de la capacidad antibacteriana (CMB y CMI) de Zumo de Vaccinium 
Corymbosum L. 
 
Liofilizando el Vaccnium 
corymbosum L. 
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Conservación de Vaccinium corymbosum L. liofilizado. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Conservando el liofilizado de Vaccnium corymbosum L. en bolsas de polietlieno. 
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Identificación taxonómica de la planta de Vacciniun corymbosum L. en el 
herbario truxillenses de la universidad nacional de Trujillo. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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