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evaluacion del feto y la placent de la yegua

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In: Recent Advances in Equine Reproduction, B. A. Ball (Ed.) 
Publisher: International Veterinary Information Service (www.ivis.org), Ithaca, New York, USA. 
Evaluación del feto y de la placenta en la yegua ( 17-May-2001 ) 
M. Troedsson and A. M. Sage 
Department of Clinical and Population Sciences, College of Veterinary Medicine, University of Minnesota, St Paul, 
Minnesota, USA. 
Traducido por: M. Marino, Facultad de Ciencias Veterinarias, Area de Teriogenologia, Universidad de Buenos Aires, 
Buenos Aires, Argentina (3-Dec-2001). 
Introducción 
El mejoramiento en las técnicas de diagnóstico y los avances en el conocimiento de la fisiología y patología reproductiva 
incrementaron las tasas de preñez en la yegua. En contraste con este logro, la incidencia de las pérdidas de gestaciones 
tempranas ha permanecido constante con tasas del 10 al 15% [1]. Las perdidas de preñeces de más de 5 meses aún 
representan un serio problema para la industria de la reproducción equina. Las yeguas afectadas no solamente fracasan en 
producir un potrillo, sino que además presentan disminución de las tasas de concepción en la próxima temporada de 
servicios. 
Las pérdidas gestacionales tardías pueden deberse a enfermedad del feto, a disfunción de la placenta o a enfermedad de la 
yegua. Durante décadas se ha realizado rutinariamente el control de la salud de la yegua y la implementación de tratamientos 
preventivos de las enfermedades abortivas. Sin embargo, la evaluación del feto y de la placenta en la preñez avanzada es un 
procedimiento utilizado recientemente en reproducción equina. 
Evaluación fetal 
La evaluación del feto está indicada en los casos en que la yegua presenta lactación prematura, flujo vaginal, enfermedades 
sistémicas, distensión excesiva de la cavidad abdominal, sospecha de mellizos, preñez prolongada o partos distócicos 
anteriores [2-5]. A partir de los 90 días de gestación se puede realizar en forma confiable la ecografía transabdominal del feto 
equino. A partir de ese momento el útero se desplaza sobre el borde de la pelvis pudiendo ser visualizado ecograficamente 
desde la zona ventral del abdomen. La evaluación de la viabilidad del feto se realiza observando el tamaño del corazón y la 
frecuencia cardíaca, también los movimientos y el tono muscular del feto. Puede evaluarse el feto, determinando el espesor 
de las membranas fetales, la cantidad y ecogenicidad del líquido amniótico y alantoideo y la presencia de mellizos. 
En los primeros estadios de la preñez el feto puede visualizarse en la zona inguinal y entre las glándulas mamarias [5]. A 
medida que la gestación avanza, el feto se va localizando progresivamente hacia craneal. Para obtener una imagen 
diagnóstica del feto se hace necesario rasurar la zona a ecografiar. Al final de la gestación el abdomen ventral de la yegua se 
debe rasurar desde la glándula mamaria hasta el xifoides, extendiéndose en las zonas laterales hasta una línea paralela al 
suelo que pasa por las patelas. La piel se lava para eliminar pelos sueltos y suciedad y luego se coloca gel apropiado para 
ultrasonografía. 
El periodo de gestación, la conformación y tamaño de la yegua así como también la posición del feto deberán tenerse en 
cuenta en el momento de decidir el tipo de transductor a utilizar. Se deberá elegir el transductor de más alta frecuencia 
adecuado para penetrar hasta la profundidad que se desea ecografiar. En general se requiere un transductor de 2,5 o de 3,5 
MHz para ecografiar el corazón fetal al final de la gestación, ya que se requiere penetrar a una profundidad aproximada de 30 
cm [5,6]. Para realizar la ecografía de la unidad uteroplacentaria se necesita un transductor de 7,5 a 10 MHz [6]. Se prefiere 
un transductor sectorial o convexo que produce una imagen triangular que permite un aumento del campo visual en la 
porción profunda de la imagen. 
Debe evitarse administrar sedantes a la yegua, ya que éstos alteran el ritmo cardíaco, el tono y el movimiento del feto. El 
abdomen ventral de la yegua es escaneado en los dos planos, sagital y transversal. La totalidad del útero debe ser evaluado 
ultrasonográficamente para determinar la posición del feto y la posibilidad de encontrar mellizos. Después del octavo mes de 
gestación el feto debería encontrarse yaciendo en el plano sagital en presentación anterior [5,6]. En la última parte de la 
gestación la cabeza del feto está cerca del borde de la pelvis. Solamente utilizando ecografía transrectal, se puede obtener el 
diámetro de la órbita ocular. En la mayoría de los casos el feto se encuentra en decúbito dorsal con su columna vertebral en 
aposición a la pared abdominal ventral [6]. Para determinar la orientación del feto se debe examinar el útero sagitalmente y 
localizar el tórax del feto por la característica ultrasonográfica de la parrilla costal (Fig. 1). Esta característica está dada por la 
presencia de las apófisis vertebrales y las costillas. El corazón se localiza en la zona craneal del tórax. 
Figura 1. Imagen ecográfica transabdominal del torax fetal obtenida con un transductor sectorial de 2,5 
MHz. Las sombras son producidas por las vértebras y las costillas. El plano ventral es la parte superior 
de la imagen y el plano dorsal la inferior. - Para ver esta imagen en su tamaño completo, diríjase al sitio 
www.ivis.org . - 
La frecuencia cardíaca se utiliza como un indicador de la viabilidad fetal. Una disfunción en el parto está asociada con 
bradicardia o taquicardia fetal. La frecuencia cardíaca del feto se encuentra en su punto más elevado a los tres meses de 
gestación con un promedio de 196 latidos por minuto y se produce una disminución gradual durante el resto de la preñez [7]. 
La disminución de la frecuencia cardíaca fetal se produce como resultado de un incremento en el tono parasimpático a nivel 
cardíaco [2]. La frecuencia cardíaca normal del feto determinada por Reef y colaboradores en el último mes de preñez, fue de 
60 a 90 latidos por minuto [6]. El ritmo cardíaco puede ser obtenido utilizando un cronómetro mientras se ecografía la 
imagen en modo B o utilizando modo M, el cual muestra los movimientos cardiacos con el transductor en una posición fija. 
El cursor en modo M, se desplaza de manera que intercepte el corazón. Se activa la imagen modo M. La imagen desplegada 
muestra los movimientos cardiacos a través del tiempo (Fig. 2). La frecuencia cardiaca se calcula en forma automática 
midiendo el tiempo entre dos ciclos cardiacos. El análisis en modo M es mucho más exacto que el método cronometrado para 
realizar la evaluación del ritmo cardíaco fetal [7]. Los movimientos del feto o de la yegua dificultan la obtención de una 
imagen sostenida durante 10 segundos en la pantalla [7]. Las frecuencias cardiacas elevadas que se observan en los primeros 
meses de preñez dificultan la determinación con un cronómetro. La actividad fetal produce un incremento de 10 a 15 latidos 
por sobre la frecuencia cardiaca en reposo [5,6]. Es inapropiado medir la frecuencia cardiaca durante la actividad del feto, la 
misma deberá ser obtenida después que la actividad fetal ha cesado. 
Figura 2. Imagen ecográfica transabdominal del corazón fetal obtenida con un transductor sectorial de 
2,5 MHz. La imagen modo B se encuentra en la parte superior de la foto. Observe la ubicación del cursor 
a través del corazón (flecha). La imagen modo M se encuentra en la parte inferior de la foto. La marca 
del cursor (X) marca un ciclo cardíaco. La frecuencia cardíaca calculada se encuentra en la parte inferior 
izquierda de la foto. - Para ver esta imagen en su tamaño completo, diríjase al sitio www.ivis.org . - 
Se ha demostrado que el diámetro de la aorta se correlaciona con el peso materno y es un buen indicador del tamaño del feto 
[6]. La aorta se puede visualizar cuando sale del corazón y se ubica en dorsal del feto adyacente a los cuerpos vertebrales. El 
diámetro de la aorta se mide a nivel del borde caudal del corazón durante la sistole. El diámetro aórtico fetalobtenido en 32 
yeguas de razas livianas con gestaciones normales fue en el rango de 18,5 - 27 mm [6]. Un diámetro aórtico menor al normal 
fue asociado con potrillos anormales que presentan un bajo peso al nacimiento [8]. Un feto normal debe presentar un ritmo 
cardiaco normal y un tono muscular apropiado. Un feto fláccido que es visualizado flotando en los líquidos, es un feto débil o 
muerto. El feto debería mostrar movimientos activos durante el examen ecográfico. Los movimientos pueden ser de flexión o 
extensión de los miembros o de rotación del eje longitudinal [5,6]. A medida que el feto se desarrolla se pueden observar 
movimientos más complejos [3]. 
La membrana amniótica se observa como una estructura fina hiperecoica flotando en los líquidos fetales. En las preñeces 
normales es delgada, observándose en ocasiones formaciones quísticas [3]. En las zonas del útero en donde el feto se 
encuentra en contacto con la unidad fetoplacentaria, el amnios es muy difícil de visualizar. La cantidad de líquido fetal debe 
ser evaluada en 4 zonas dentro del útero (derecha, izquierda; craneal y caudal). En general, la mayor cantidad de líquido se 
encuentra rodeando al tórax fetal en la región del codo (Fig. 3) [6]. 
Figura 3. Imagen ecográfica transabdominal de las cavidades con líquido alantoideano y amniótico 
obtenida con un transductor convexo de 5,0 MHz. Las dos cavidades se encuentran divididas por la 
membrana amniótica (flecha). - Para ver esta imagen en su tamaño completo, diríjase al sitio 
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El volumen total de los líquidos fetales se evalúa considerando la profundidad del líquido amniótico y alantoideo. El 
promedio normal máximo es 13,4+4 cm para el líquido alantoideo y de 7,9+3,5 cm para el líquido amniótico. Estos líquidos 
contienen una cantidad moderada de partículas ecogénicas normales en suspensión a partir del cuarto mes de gestación [6,9]. 
Dentro del líquido alantoideo puede verse flotando el hipomán, que presenta una forma oblonga con un centro más ecogénico 
rodeado de capas como una cebolla. 
Evaluación de la placenta 
La placenta equina está constituida por el alantocorion, el alantoamnios y el cordón umbilical. La parte coriónica del 
alantocorion se encuentra adherida al endometrio por medio de los microcotiledones que contactan con el útero con 
excepción de una zona que corresponde al orificio cervical interno, denominada estrella cervical. El alantocorion es quien 
abastece al feto in útero. Permite el intercambio respiratorio y de nutrientes entre la madre y el feto y es un órgano 
endocrinológicamente activo que sintetiza y metaboliza hormonas importantes para el mantenimiento y desarrollo fetal. El 
alantoamnios al flotar libremente permite al feto moverse con libertad dentro del útero y sólo se encuentra adherido al 
alantocorion en una pequeña área del cordón umbilical. El único contacto entre el feto y el alantoamnios está a nivel del 
ombligo. El cordón umbilical posee una porción amniótica y una porción alantoidea. El cordón umbilical posee 2 arterias 
umbilicales, una vena umbilical y el uraco. La longitud del cordón es variable, pero normalmente, se encuentra entre 50 y 100 
cm. 
La evaluación de la placenta se realiza rutinariamente después del parto y provee información importante sobre procesos de 
enfermedades o disfunciones que puedan haber afectado la viabilidad de un feto abortado o, las enfermedades potenciales en 
el potrillo neonato. Sin embargo este tipo de examen no es de utilidad para tomar decisiones que permitan prevenir futuros 
abortos o para evitar que el potrillo presente enfermedades neonatales. La evaluación de la placenta puede ser realizada por 
medio de la ultrasonografía y por test endocrinológicos. 
Evaluación ultrasonográfica de la placenta 
Ultrasonografía transabdominal - El examen ultrasonográfico de la placenta en yeguas consideradas en riesgo de abortar 
durante la última etapa de la gestación, se realiza utilizando la vía transabdominal [8,10,11]. Los valores normales para el 
espesor conjunto de útero y placenta (ECUP), han sido determinados utilizando transductores de 5 ó 7,5 MHz (Fig. 4) [8,10]. 
Figura 4. Imagen ecográfica transabdominal de la unidad útero-placentaria en una yegua con gestación 
normal de 320 días. La imagen fue obtenida con un transductor convexo de 7.5 MHz. La "X" marca el 
espesor de la unidad feto-placentaria. - Para ver esta imagen en su tamaño completo, diríjase al sitio 
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Reef y colaboradores [6], recomiendan realizar el examen ecográfico de la placenta en 4 cuadrantes: craneal derecho, caudal 
derecho, craneal izquierdo y caudal izquierdo. Se sugiere que, usando esta técnica las yeguas con preñeces normales deben 
tener un mínimo ECUP de 7,1+1,6 mm, y un máximo ECUP de 11,5+2,4 mm En estudios posteriores se observó que las 
yeguas con ECUP aumentado, frecuentemente paren potrillos anormales [8]. Un ECUP >17,5 mm es representativo de 
placentitis [12]. Renaudin y colaboradores [9], examinaron las variaciones mensuales en el ECUP, en yeguas con gestaciones 
normales. Los estudios confirmaron los resultados previos, pero encontraron una diferencia significativa en la medición del 
ECUP entre los meses de preñez. Sin embargo el ECUP no aumentó en forma constante y se cuestionó la confiabilidad de la 
medición del ECUP por la vía transabdominal. No obstante el engrosamiento de la placenta y la separación parcial del 
alantocorion del endometrio, puede ser observada con ésta técnica en yeguas con placentitis originada por una infección 
hematógena (Fig. 5). Además, se puede ver una cavidad con líquido hiperecoico en la base del área ventral del útero en 
yeguas que presentan placentitis producida por Nocardia. 
 
Figura 5. Ultrasonografía transabdominal y transrectal de la placenta en una yegua durante el noveno 
mes de gestación. La flecha señala la zona de separación placentaria. - Para ver esta imagen en su tamaño 
completo, diríjase al sitio www.ivis.org . - 
 
Las yeguas que pastorean festuca infectada por endofitos, con frecuencia presentan una separación prematura del 
alantocorion, aumento en el peso y espesor del mismo y retención placentaria. En las yeguas infectadas con el endofito puede 
observarse por ecografía transabdominal un aumento importante del espesor útero-placentario y la separación prematura del 
alantocorion, sin embargo el aumento de espesor del alantocorion no fue observado hasta un promedio de 8 horas antes del 
comienzo del parto [13]. 
Ultrasonografía transrectal - Aunque la ultrasonografía transabdominal suministra una excelente imagen del feto y la mayor 
parte del útero y la placenta, la porción caudal del alantocorion no puede ser observada por esta vía, haciendo difícil el 
diagnostico de placentitis ascendente en los estadios iniciales. La ultrasonografía transrectal de la porción caudal del 
alantocorion al final de la gestación proporciona una excelente imagen a nivel de la estrella cervical (Fig. 6). Renaudin y 
colaboradores [9], examinaron preñeces normales mensualmente, comenzando desde el cuarto mes de gestación hasta el 
parto. 
 
Figura 6. Ultrasonografía transrectal en una yegua al final de la gestación. A = membrana amniótica; 
B = rama media de la arteria uterina; x---x = espesor conjunto útero-placentario (ECUP). - Para ver esta 
imagen en su tamaño completo, diríjase al sitio www.ivis.org . - 
 
 
 
Se estableció el rango normal del ECUP. Se ubicó al transductor lineal 1 a 2 pulgadas en craneal de la unión placenta-cérvix 
y después se desplazó lateralmente hasta que la rama media de la arteria uterina se hizo visible en la parte ventral del cuerpo 
uterino. El ECUP debe ser medido entre la rama media de la arteria uterina y el líquido alantoideo (Fig. 6, Fig. 7). 
 
Figura 7. Ecografía transrectal en una yegua al final de la gestación. A = membrana amniótica; x---
x = espesor conjunto útero-placentario (ECUP). El ECUP se mide entre la rama media de la arteria 
uterina y el alantoides. - Paraver esta imagen en su tamaño completo, diríjase al sitio www.ivis.org . - 
 
 
 
 
El examinador debe asegurarse de que la membrana amniótica no se encuentra adyacente al alantocorion, porque puede 
producir un aumento erróneo del ECUP (Fig. 8). El ECUP debe ser medido en la parte ventral del cuerpo uterino, porque en 
la parte dorsal del útero es frecuentemente más ancho que en la parte ventral. Además, la porción dorsal del útero se 
encuentra frecuentemente edematizada durante el último mes de gestación en preñeces normales. 
 
Figura 8. Ultrasonografía transabdominal y transrectal de la placenta de una yegua durante el noveno 
mes de gestación. La flecha señala el área de separación placentaria. - Para ver esta imagen en su tamaño 
completo, diríjase al sitio www.ivis.org . - 
 
 
 
A través de la ultrasonografía transrectal, se ha encontrado espesor anormal y separación parcial del alantocorion con el 
endometrio en yeguas que presentaban signos clínicos de placentitis ascendente (Fig. 9). En estadios avanzados el espacio 
entre el útero y la placenta estaba ocupado por líquido hiperecoico. En un estudio llevado a cabo en yeguas SPC en haras, se 
concluyó que un aumento en el ECUP en la mitad y última parte de la gestación indicaba insuficiencia placentaria y aborto 
inminente [14]. Ninguna de las yeguas con espesor normal de la placenta perdió la preñez y todas las yeguas que abortaron 
presentaron un aumento en el ECUP o separación placentaria. En condiciones prácticas se sugiere que un ECUP de más de 8 
mm entre los días 271 y 300, más de 10 mm entre los días 301 y 330 y más de 12 mm después del día 330, indican falla 
placentaria y aborto inminente. 
Figura 9. Ultrasonografía transabdominal y transrectal de la placenta de una yegua durante el noveno 
mes de gestación. El espesor conjunto útero-placentario (A) es anormal (11 mm) y la placenta se 
encuentra separada en la proximidad del cérvix. El borde externo del útero está delimitado por puntos 
negros y el líquido alantoideo (B), marca el borde interno de la placenta. - Para ver esta imagen en su 
tamaño completo, diríjase al sitio www.ivis.org . - 
While transrectal and transabdominal ultrasonographic examination of the placenta is useful to detect early signs of some 
placental pathology, it is important to keep in mind that placental changes resulting in periparturient problems can be subtle 
and may not readily be detected on ultrasonographic examination. For example, a correlation between both endometrial 
fibrosis and angiosis, and poor chorionic villous development has been reported [15,16]. These changes can of course not be 
evaluated by the use of ultrasonography, but would require other techniques. 
Mientras que la ultrasonografía transrectal y transabdominal de la placenta son de utilidad para detectar algunas patologías, es 
importante tener en mente que los cambios placentarios que producen alteraciones alrededor del parto, pueden ser sutiles y no 
fácilmente detectables por el examen ultrasonográfico. Por ejemplo, una correlación entre fibrosis endometrial y angiosis y 
un deficiente desarrollo de las vellosidades coriónicas ha sido reportada. Por supuesto que estos cambios no pueden no ser 
detectado por ultrasonografía y requiren de otras técnicas diagnósticas [15,16]. 
Evaluación endócrina de la placenta 
Progesterona - Se observó un aumento en las concentraciones plasmáticas de progesterona en yeguas que presentan un estado 
avanzado de placentitis. Aunque el aumento de las concentraciones de la progesterona plasmática durante la mitad y la última 
parte de la gestación, son sugestivas de placentitis, la decisión terapéutica no debe realizarse sobre la base de una sola 
muestra. Para detectar la concentración de progesterona de utilidad clínica, es necesario el estudio de muestras seriadas. Las 
muestras mensuales de progesterona de yeguas con riesgo de aborto inminente no mostraron diferencias con las 
concentraciones de yeguas con preñez normal [14]. 
Estrógeno - 
El sulfato de estrona en sangre materna ha sido utilizado para monitorear la viabilidad fetal [17]. Sin embargo, esta 
determinación no ha sido de utilidad para diagnosticar signos tempranos de placentitis [18]. 
Relaxina - 
La relaxina es producida por la placenta equina y puede ser detectada en sangre periférica a partir del día 80 de gestación 
hasta el parto [19]. El papel de la relaxina durante la preñez no esta totalmente determinado, aunque existe alguna evidencia 
de que la producción de relaxina placentaria se encuentra disminuída en yeguas con riesgo de aborto [20]. Ryan y 
colaboradores [21] observaron una concentración subnormal de relaxina plasmática en yeguas con preñeces anormales. Las 
yeguas con signos clínicos de placentitis y las que experimentaron signos de festucosis, tenían disminuidas las 
concentraciones de relaxina plasmática. Actualmente no existe una prueba comercial para la determinación de la relaxina 
equina, se necesitaría investigar más para poder evaluar la utilidad de la relaxina plasmática, como herramienta clínica para 
diagnosticar placentitis y monitorear la eficacia de la estrategia de los tratamientos. 
Bibliographía 
1. Roberts SJ. Veterinary Obstetrics and Genital Diseases (Theriogenology). In: Roberts S.J. ed., North Pomfret, Vt, 3rd ed., 
1986; 162:38-50. 
 
2. McGladdery AJ. Ultrasonographic diagnosis and management of fetal abnormality in the mare in late pregnancy. 
Pferdeheilkunde 1999; 15:618-621. 
 
3. Reef VB. Fetal Ultrasonography. In: Reef VB, ed. Equine Diagnostic Ultrasound. Philadelphia: WB Saunders Co, 1998; 
425-445. 
 
4. Sertich PL, Reef VB, Oristaglio-Turner RM, et al. Hydrops Amnii in a mare. J Amer Vet Med Assoc 1994; 204:1481-
1482. 
 
5. Pipers FS and Adams-Brendemuehl CS. Techniques and applications of transabdominal ultrasonography in the pregnant 
mare. J Amer Vet Med Assoc 1984; 185:766-771. 
 
6. Reef VB, Vaala WE, Worth et al. Ultrasonographic evaluation of the fetus and intrauterine environment in healthy mares 
during late gestation. Vet Rad and Ultrasound 1995; 36:533-541. 
 
7. Curran S and Ginther OJ. M-mode ultrasonic assessment of equine fetal heart rate. Theriogenology 1995; 44:609-617. 
 
8. Reef VB, Vaala WE, Worth LT, et al. Ultrasonographic assessment of fetal well being during late gestation: development 
of an equine biophysical profile. Equine Vet J 1996; 28:200-208. 
 
9. Renaudin C, Troedsson MHT, Gillis C, King VL, Bodena A. Ultrasonographic evaluation of the equine placenta by 
transrectal and transabdominal approach in pregnant mares. Theriogenology 1997;47:559-573. 
 
10. Adams-Brendemuehl C, Pipers FS. Antepartum evaluations of the equine fetus. J Reprod Fert Suppl 1987; 35:565-573. 
 
11. Vaala WE, Sertich PL. Management strategies for mares at risk for periparturient complications. Vet Clin North Am 
Equine Pract 1994; 10:237-265. 
 
12. Schott II HC, Assessment of Fetal Well-Being. In: McKinnon AO & Voss JL. Equine Reproduction, Philadelphia: Lea & 
Febiger, 1991; 964-975. 
 
13. Brendemuehl JP, Boosinger TR, Bransby DI, et al. Effects of short-term exposure to and removal from the fescue 
endophyte Acremonium coenophialum at 300 days of gestation on pregnant mares and foal viability. Biol Reprod Monograph 
Series 1: Equine Reprod VI, 1995; 61-67. 
 
14. Troedsson MHT, Renaudin CD, Zent WW, Steiner JV. Transrectal ultrasonography of the placenta in normal mares and 
in mares with pending abortion: A field study. In: Proceedings of the Am Assoc Eq Pract 1997;43:256-258. 
 
15. Bracher V, Mathias S, and Allen WR. Influence of chorionic degenerative endometritis (endometrosis) on placental 
development in the mare. Eq Vet J 1996; 28:180-188. 
 
16. Schoon D, Schoon H-A, and Klug E. Angiosis in the equine endometrium: Pathogenesis and clinical correlations. 
Pferdeheilkunde 1999; 15:541-546. 
 
17. Stabenfeldt GH, Daels PF, Munro CJ, Hughes JP, and Lasley BL. An oestrogen conjugate enzyme immunoassay formonitoring pregnancy in the mare: Limitation of the assay between Days 40 and 70 of gestation. J Reprod Fert Suppl 1991: 
44;37-43. 
 
18. Santschi EM, LeBlanc MM. Fetal and placental conditions that cause high-risk pregnancy in mares. Comp Cont Educ 
Pract Vet 1995; 17:710-720. 
 
19. Stewart DR, Stabenfeldt GH, Hughes JP, Meagher DM. Determination of the source of equine relaxin. Biol Reprod 
1982; 27:17-24. 
 
20. Stewart DR, Addiego LA, Pascoe DR., Haluska GJ, Pashen R. Breed differences in circulating equine relaxin. Biol 
Reprod 1992; 46:648-652. 
 
21. Ryan P, Bennet-Wimbush K, Vaala WE, Bagnell CA. Relaxin as a biochemical marker of placental insufficiency in the 
horse: A review. Pferdeheilkunde 1999; 15:622-626. 
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