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Evaluación del crecimiento de alevinos de Bocachico (Prochilodus 
magdalenae) alimentados con Saccharomyces cerevisiae como potencial 
probiótico. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Autores 
 
Alexander Torres Castro 
Adriana Mogollón Zarate 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALDAS 
FACULTAD DE CIENCIAS Y EDUCACIÓN 
LICENCIATURA EN BIOLOGÍA 
Bogotá D.C. 
2018 
2 
 
 
 
Evaluación del crecimiento de alevinos de Bocachico (Prochilodus 
magdalenae) alimentados con Saccharomyces cerevisiae como potencial 
probiótico. 
 
 
 
 
 
Autores 
Alexander Torres C. 
Adriana Mogollon Z. 
 
 
 
 
Trabajo de Grado en Modalidad Investigación - Innovación para optar al título de 
Licenciado en Biología 
 
 
 
Directora 
 
Carmen Helena Moreno Duran 
Msc. Ciencias Biológicas 
 
 
Codirector 
Luis Gabriel Quintero Pinto 
Phd. Zootecnia 
 
 
 
Laboratorio Ictiología y Peces Ornamentales 
Universidad Nacional de Colombia 
 
 
 
 
 
 
 
 
Universidad Distrital Francisco José De Caldas 
Facultad De Ciencias Y Educación 
Licenciatura En Biología 
2018
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
La Universidad no será responsable de las ideas expuestas por los graduandos en el Trabajo 
de Grado, según el artículo 117 acuerdo 029, Consejo Superior de la Universidad Distrital 
Francisco José de Caldas expedido en junio de 1988. 
 
 
 
 
 
 
 
Dedicado a Isabella Mogollon, la razón de mi vida, quien me da 
fuerzas para continuar pese a las adversidades y me regala su amor, 
sonrisas y ocurrencias con las que crecemos juntas día a día. A mi Madre 
quien con su amor y entrega me enseño con su ejemplo de vida a afrontar 
los infortunios del camino con humildad y fortaleza formando la mujer y 
madre que soy. 
 
Adriana Mogollón 
 
A mi familia razón de mi ser, por la comprensión y apoyo 
incondicional, porque mis victorias son de ellos y para ellos. A mi 
madre, padre y hermano a quienes amo. Por último, a mis abuelas que 
con su sabiduría y amor me acompañaron siempre. 
 
Alexander Torres 
 
 
 
 
AGRADECIMIENTOS 
 
 
Expresamos nuestro más grande agradecimiento a Isabella Mogollón, quien nos acompañó e 
hizo parte de esta investigación. A todos nuestros amigos que crecieron a nuestro lado en estos 
semestres y nos dieron los mejores momentos. De la misma manera agradecemos a la 
Universidad Distrital Francisco José de Caldas por formarnos en este hermosa profesión, en 
donde encontramos grandes profesores como el docente Alexander García , quien nos apoyó y 
aportó valiosas enseñanzas; de igual forma agradecemos inmensamente al decano Luis Gabriel 
Quintero, que con su sabiduría y paciencia aporto a nuestros conocimientos, y a la Universidad 
Nacional de Colombia por abrirnos las puertas del laboratorio de Ictiología y Peces 
Ornamentales como espacio propicio para realizar esta gran investigación. A Amandita Reyes, 
técnica encargada del laboratorio por su calidad humana y quien se convirtió en nuestra segunda 
madre, además de, apoyarnos incondicionalmente en nuestro proyecto con su experiencia y 
consejos para la culminación de este. A nuestros compañeros de laboratorio con quienes 
compartimos grandes experiencias y aprendizajes. Por último y no menos importante, gratitudes 
por sus asesoramientos a las profesoras Judith Figueroa Ramírez, microbióloga de la 
Universidad de los Andes y a Carmen Helena Moreno, Bióloga de la Universidad Nacional. 
 
 
 
 
2 
 
 
 
ÍNDICE DE CONTENIDO 
 
 
 
Pág. 
ÍNDICE DE FIGURAS .................................................................................................................. 1 
ÍNDICE DE TABLAS .................................................................................................................... 2 
ÍNDICE DE ANEXOS ................................................................................................................... 3 
GLOSARIO .................................................................................................................................... 4 
INTRODUCCIÓN .......................................................................................................................... 6 
1. PLANTEAMIENTO PROBLEMA .......................................................................................... 10 
2. OBJETIVOS ............................................................................................................................. 14 
2.1. General ................................................................................................................................... 14 
2.2. Específicos ............................................................................................................................. 14 
3. MARCO REFERENCIAL ..................................................................................................... 15 
3.1. Conceptos .............................................................................................................................. 15 
3.1.1. Definición Probiótico. ........................................................................................................ 16 
3.1.2. Mecanismos de acción de los probióticos. ......................................................................... 17 
3.1.3. Colonización y adhesión del tracto intestinal. .................................................................... 17 
3.1.4. Producción de compuestos benéficos. ................................................................................ 18 
3.1.5. Funciones en el sistema inmune. ........................................................................................ 18 
3.1.6. Incidencia en la calidad de agua. ........................................................................................ 20 
3.2. Fundamentos generales del alimento vivo ............................................................................. 21 
3.2.1. Aspectos generales de la levadura. ..................................................................................... 22 
3 
 
 
 
3.2.2. Aspectos generales del Zooplancton. ................................................................................. 23 
3.2.3. Aspectos generales del Fitoplancton. ................................................................................ 24 
3.3. Biología del Bocachico .......................................................................................................... 25 
3.3.1. Clasificación taxonómica.................................................................................................... 25 
3.3.2. Identificación morfológica.................................................................................................. 26 
3.3.3. Parámetros ambientales. ..................................................................................................... 26 
3.3.4. Requerimientos nutricionales. ............................................................................................ 27 
3.4. Antecedentes .......................................................................................................................... 28 
4. METODOLOGÍA ..................................................................................................................... 40 
4.1. Locación ................................................................................................................................ 40 
4.2. Materiales, Equipos e Insumos .............................................................................................. 40 
4.2.1. Materiales. .......................................................................................................................... 41 
4.2.2. Equipos. .............................................................................................................................. 41 
4.2.3. Insumos............................................................................................................................... 42 
4.3. Procedimientos ...................................................................................................................... 43 
4.3.1. Cultivos de alimento vivo. .................................................................................................. 43 
4.3.2. Cultivo de la cepa probiótica. ............................................................................................. 45 
4.3.3. Protocolo de acopio de alevinos. ........................................................................................ 47 
4.3.4. Adecuación de instalaciones. .............................................................................................. 48 
5.3.5. Incorporación del probiótico a la dieta. .............................................................................. 49 
4.4. Alimentacion ......................................................................................................................... 49 
4.5. Muestreo y Monitoreo ........................................................................................................... 50 
4.5.1. Mediciones del tallaje. ........................................................................................................ 50 
4 
 
 
 
4.6. Diseño experimental. ............................................................................................................. 51 
4.7. Análisis estadístico ................................................................................................................ 52 
6. RESULTADOS ........................................................................................................................ 55 
6.1 Parámetros ambientales ......................................................................................................... 55 
6.1.1 Calidad de agua ................................................................................................................... 55 
6.1.2 Temperaturas ....................................................................................................................... 57 
6.2 Parámetros de crecimiento y sobrevivencia .......................................................................... 58 
6.2.1 Análisis de varianza para el peso promedio. ....................................................................... 59 
6.2.2 Análisis de varianza para longitud promedio. ..................................................................... 60 
6.2.3 Análisis descriptivo de sobrevivencia. ................................................................................ 62 
6.2.4 Factor de condición (K) ....................................................................................................... 62 
6.2.5 Tasas específicas de crecimiento. ........................................................................................ 63 
6.3 Prueba de comparaciones múltiples........................................................................................ 65 
6.4 Comportamiento animal ......................................................................................................... 68 
6. DISCUSIÓN ............................................................................................................................. 69 
6.1. Efectividad del probiotico para la sobrevivencia................................................................... 69 
6.2. Tratamiento efectivo en el crecimiento de Alevinos ............................................................. 69 
6.3. Probiotico como efecto biorremediador ................................................................................ 70 
7. CONCLUSIONES .................................................................................................................... 72 
8. RECOMENDACIONES .......................................................................................................... 73 
9. REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA ................................................................................................ 74 
10. ANEXOS ................................................................................................................................ 83 
1 
 
ÍNDICE DE FIGURAS 
 
 
 
Pág. 
 
Figura 1. Prochilodus magdalenae adulto. ................................................................................... 7 
Figura 2. Morfología externa de bocachico adulto. ..................................................................... 26 
Figura 3. Número de publicaciones relacionadas al uso de Saccharomyces cerevisiae como 
potencial probiótico, de las cuales 65 están asociadas a peces, .................................................... 29 
Figura 4. Diferencias comparadas entre los valores promedio obtenidos en Amonio (mg/l) y 
tratamientos los cuatro tratamientos en tres periodos. .................................................................. 56 
Figura 5. Diferencias comparadas entre los valores promedio obtenidos en Nitritos (mg/l) y 
tratamientos los cuatro tratamientos en tres periodos. .................................................................. 57 
Figura 6. Promedio de temperaturas registradas en las tres replicas (R) por los cuatro 
tratamientos evaluados en los 28 días que llevo tomo experimento. ............................................ 58 
Figura 7. Ganancia en peso por tratamientos (Box-Plot). ........................................................... 60 
Figura 9. Número de individuos sobrevivientes a tratamientos experimentales. ........................ 62 
Figura 10. Valores del factor de condición con porcentaje de erro 5% por tratamiento. ............ 62 
Figura 11. Tasas específicas de crecimiento del peso por tratamiento. ....................................... 64 
Figura 12. Tasas específicas de crecimiento de longitud por tratamiento. .................................. 65 
Figura 13. Interaccion Peso vs Longitud. .................................................................................... 67 
 
2 
 
ÍNDICE DE TABLAS 
 
 
Pág. 
 
Tabla I. Grupos de zooplancton preferidos por el Bocachico durante su transformación de 
larva a alevino en estanques en tierra. ............................................................................................ 6 
Tabla II. Parámetros Físico-Químicos óptimos del agua para el cultivo de Bocachico. ............ 27 
Tabla III. Requerimientos nutricionales para el Bocachico (Prochilodus magdalenae) en etapa 
de alevinaje. .................................................................................................................................. 28 
Tabla IV. Tratamientos experimentales en dietas para larvas de Prochiludus magdalenae. ..... 51 
Tabla V. Promedio de los parámetros fisicoquímicos obtenidos del análisis de calidad de agua.
 ...................................................................................................................................................... 55 
Tabla VII. Análisis de varianza para el peso promedio .............................................................. 59 
Tabla VIII. Análisis de varianza para longitud. .......................................................................... 61 
Tabla IV. Valores del cactor de condición por tratamiento ......................................................... 63 
Tabla X. Tasa especifica de crecimiento por acuario. ................................................................. 63 
Tabla XI. Tasa especifica de crecimiento por tratamiento. ........................................................ 64 
Tabla XII. ANOVA, prueba múltiple de Duncan’s para peso con MSE de 0.003 ................... 65 
Tabla XIII. Comparación de medios con la misma letra sin diferencias significativas. ............ 66 
Tabla XIV. ANOVA, prueba múltiple de Duncan’spara peso con MSE de 0.017 ................... 66 
Tabla XV. Comparación de medios con la misma letra sin diferencias significativas. .............. 67 
 
3 
 
 
 
ÍNDICE DE ANEXOS 
 
 
 
Pág. 
 
Anexo 1. Intervalos de Confianza ................................................................................................ 83 
Anexo 2. Análisis de supuestos de normalidad, homocedásticidad e independencia de los datos 
en el tiempo para peso. ................................................................................................................. 83 
Anexo 3. Identificación de datos atípicos para peso .................................................................... 86 
Anexo 4. Análisis de supuestos de normalidad, homocedásticidad e independencia de los datos 
en el tiempo para longitud. ........................................................................................................... 87 
Anexo 5. Identificación de datos atípicos para longitud .............................................................. 89 
Anexo 6. Tabla de temperaturas registradas durante la experimentación .................................... 89 
Anexo 7. Tablas de medición de peso inicial y final en gramos de alevinos. .............................. 90 
Anexo 8. Tablas de registro de Longitud inicial y final en centímetros de los alevinos. ............. 92 
Anexo 9. Tablas de observación de Altura inicial y final en centímetros de los alevinos. .......... 94 
Anexo 10.Tablas Analisis de variansas ........................................................................................ 97 
Anexo 11. Figuras preparación de los medios de cultivos de alimento vivo ............................... 98 
Anexo 12. Figuras caracterización del alimento vivo. ................................................................. 99 
Anexo 13. Figuras recepción de alevinos y mediciones............................................................. 100 
Anexo 14. Figuras preparatorio del alimento con el potencial probiótico. ................................ 101 
Anexo 15. Figuras equipos empleados en el análisis de calidad de agua................................... 101 
 
4 
 
GLOSARIO 
 
 
Acuicultura: Conjunto de técnicas y conocimientos relativos al cultivo de especies acuáticas, 
vegetales y animales. Abarca todas las actividades dirigidas a la producción y comercialización 
 
Alevino: Cría de peces que incluye la fase comprendida entre la postlarva y el juvenil que 
crecen en agua dulce y son utilizados para repoblar ríos, lagos o estanques. 
 
Barbasco: Bejuco usado en la pesca artesanal utilizando el macerado de las raíces se aplica 
en los ríos, lagos y ciénagas para captura de los peces. 
 
Biomasa: Cantidad total de materia viva presente en un organismo, población, comunidad o 
ecosistema, expresada en peso por unidad de área o de volumen. 
 
Biorremediador: Proceso por el cual microorganismos, hongos, plantas o las enzimas son 
utilizados para retornar a un medio ambiente alterado por contaminantes a su condición natural. 
 
Detrito: Es el resultado de la descomposición de una masa orgánica o inorgánica sólida en 
partículas. 
 
Fitoplancton: Conjunto de los organismos acuáticos errantes constituido predominantemente 
por microalgas, que tienen la capacidad fotosintética y que viven dispersos en el agua. 
 
Huésped: Organismo que alberga a otro en su interior o lo porta sobre sí, ya sea en una 
simbiosis de parasitismo, comensalismo o mutualismo. 
 
Lentico: Son ecosistemas de agua cerradas que permanecen en un mismo lugar sin correr y 
con poco fluido. 
 
5 
 
 
 
Lotico: Son cuerpos de agua presentes en el ecosistema de un río en el cual el movimiento 
del agua es predominantemente en una dirección impulsado por la fuerza de la gravedad. 
 
Microflora: Se refiere a la comunidad de microorganismos vivos residentes en el intestino de 
un organismo animal. 
 
Patógeno: Agente biológico capaz de generar una enfermedad a un huésped con el fin de 
replicarse así mismo dentro de otro organismo. 
 
Postlarva: Es un estadio del ciclo biológico de algunos animales como los peces entre los 
estadios de prelarva y alevino. 
 
Prebiótico: Son ingredientes alimenticios que contienen microrganismos no digeribles y que 
afectan benéficamente al hospedero mediante la estimulación selectiva del crecimiento. 
 
Probiótico: Microorganismos vivos, que al ser administrados en dosis adecuadas confieren 
beneficios en la salud del hospedero. 
 
Trasmallo: Arte de pesca formado por tres redes, una central más tupida, y dos exteriores 
superpuestas. 
 
Sinergia: Acción de dos o más causas cuyo efecto es superior a la suma de los efectos 
individuales. 
 
Sintropía: Medida del grado de organización interna de cualquier sistema formado por 
componentes que interactúan entre sí. 
 
Zooplancton: Conjunto de pequeños animales pelágicos que se encuentran en suspensión en 
el agua del mar o en las aguas dulces. 
6 
 
INTRODUCCIÓN 
 
 
El bocachico es un pez detritívoro que tiene un hábito alimenticio especial, pues su dieta está 
compuesta básicamente de detritos orgánicos principalmente en el fondo del estanque (Cortés, 
2003) los cuales están compuestos por hongos, levaduras y también organismos bentónicos, tales 
como larvas y huevos de insectos, moluscos, crustáceos, y otros. Entre las preferencias dietarias 
del bocachico, se encuentran los rotíferos y cladóceros en las primeras fases del desarrollo 
(TABLA I). 
 
Tabla I. 
Grupos de zooplancton preferidos por el Bocachico durante su transformación de larva a 
alevino en estanques en tierra. 
Días de 
alevinaje 
Protozoarios/ 
Rotíferos 
Cladóceros Copépodos Ostrácodos 
5 0.59 0.29 0.07 0.03 
10 0.70 0.21 0.01 0.07 
15 0.91 0.07 0.01 0 
20 0.39 0.16 0.08 0.30 
25 0.54 0.03 0.01 0.38 
30 0.64 0.11 0.03 0.17 
El número corresponde al valor promedio del índice de Chesson, el cual indica preferencia cuando es mayor de 
0.2 (Fuente: Prieto & Atencio, 2008). 
 
 
Sin embargo, estas especies tienen baja conversión alimenticia y necesitan mucho espacio 
7 
 
 
 
para un buen crecimiento; por esta razón como propósito de cultivo solo se recomienda en 
sistema de policultivos y en muy bajas densidades de siembra. (Vásquez, 2004). 
 
Este pez (Figura 1.) no se reproduce naturalmente en aguas quietas como ciénagas, represas o 
lagunas por lo tanto necesita realizar las migraciones (subienda, mitica y bajanza) en el río para 
completar su madurez sexual. El desove ocurre en la época de bajanza en los meses de abril a 
junio, este fenómeno coincide con las primeras lluvias cuando el río vuelve a crecer y retorna a 
sus zonas de inundación. En condiciones de cautiverio este pez no se reproduce, por lo tanto es 
necesario recurrir al proceso conocido como reproducción inducida para lograr su reproducción 
utilizando hormonas inyectadas en los reproductores. A los 25 días de haber nacido las 
postlarvas estas se transforman en alevinos, dependiendo de la temperatura (Cortés, 2003). 
 
 
Figura 1. Prochilodus magdalenae adulto. (Fuente: Libro rojo de peces dulceacuícolas de 
Colombia, 2012) 
 
Según Steindachner (1879) Prochilodus magdalenae, presenta dos periodos críticos de 
supervivencia durante su desarrollo larvario: en la primera alimentación, a los 15 días cuando se 
inicia el desarrollo de la curvatura del aparato digestivo (formación del estómago e inicio de la 
torsión del tubo digestivo), y al mes cuando ya es un alevino y empieza a alimentarse del detritus 
8 
 
 
 
del estanque (De Fex, 1996). 
 
En cuanto al estado de aprovechamiento y de conservación del bocachico en la industria 
colombiana este pez representa la principal especie de pesquería artesanal por lo cual el 
bocachico ha venido siendo capturado en estados juveniles o preadultos que no superan los 25 
cm de la talla mínima legal y estableciendoque la especie alcanza su madurez sexual entre los 
20 y 25 cm, se ha venido evidenciando una disminución progresiva de su biomasa desovante 
(Valderrama y Solano 2004, citados en Libro rojo de peces dulceacuícolas de Colombia, 2012). 
El uso generalizado de prácticas y artes de pesca destructivos como el taponamiento de las 
ciénagas durante los periodos de migración de la especie, los trasmallos, los barbascos, y la 
dinamita además de las hidroeléctricas y minería han contribuido a su declinación. En un sentido 
estrictamente biológico, la pesca de subienda y bajanza minimiza el potencial reproductivo 
de la especie y lo categoriza como una especie vulnerable (Libro rojo, et al. 2012). Vale la pena 
señalar que desde el 2014 al 2016 la AUNAP ha sembrado más 22 millones de alevinos de 
bocachico, labor que demandó una inversión cercana a los 4.000 millones de pesos, además 
viene trabajando de la mano de asociaciones de pescadores campañas por el respeto a las tallas 
mínimas, vedas y el desarrollado de buenas prácticas pesqueras amigables, sostenibles y 
responsables con el medio ambiente. 
 
Po otro lado, según Mosquera (2001), esta especie ha sido considerada como alternativa para 
la piscicultura extensiva y semintensiva por las ventajas que representa su régimen alimentario 
detritívoro. Su cultivo se realiza a densidades menores de 1 pez/m
2
, siendo común en 
policultivos con especies omnívoras. En la Estación Piscícola de Repelón de la AUNAP en el 
9 
 
 
 
2013 se produjeron 7.000.000 alevinos/año (Dorado, com pers, 2014) y se avanza en el 
desarrollo de tecnologías que permitan duplicar esa producción para atender los compromisos de 
fomento y repoblamiento en el Bajo Magdalena; mientras que en Córdoba se produjeron 
8.000.000 alevinos/años entre las estaciones estatales y privadas, la mayor parte de esta 
producción (80%) es destinada a repoblamiento en la cuenca del río Sinú (Atencio, 2015). 
 
Sin embargo, esta industria aún se tiene desconocimiento de innumerables variables 
tecnológicas, lo que afecta negativamente su consolidación en el país. Para la FAO la 
problemática en la industria acuícola de Colombia requiere la implementación de planes de 
investigación en nutrición a corto y mediano plazo, y de aplicación rápida en granjas 
comerciales, estaciones de fomento, laboratorios de investigación y servicio (Ocampo et al., 
2010). Una de esas nuevas tecnologías poco explorada en la industria colombiana es la que tiene 
que ver con la utilización de probióticos como alimento suplementario en la dieta de los peces 
criados en estanques. 
 
Es así que considerando que son pocos los estudios que se tienen en Colombia acerca del 
uso de probióticos en la alimentación de Prochilodus magdalenae, el presente trabajo 
pretende evaluar si la levadura, Saccharomyces cerevisiae, es funcional para promover el 
desempeño productivo y la sobrevivencia de los alevinos de la especie. Para dicho 
propósito se evaluó su influencia sobre el crecimiento, en términos de ganancia en peso 
y tasa de crecimiento específico, la eficiencia de utilización de proteína más su 
sobrevivencia. Para ello contamos con el apoyo del laboratorio de Ictiología de la Facultad 
de Medicina Veterinaria y de Zootecnia de la Universidad Nacional de Colombia, sede Bogotá. 
10 
 
1. PLANTEAMIENTO PROBLEMA 
 
 
Pensando en el papel ecológico del bocachico como organismo detritívoro en los diferentes 
sistemas acuáticos, loticos y lenticos, presentes en la cuenca del rio Magdalena , donde en 
numerosas ocasiones la producción heterotrófica constituye un suministro de energía mayor de 
lo que supone la producción primaria, debido a que frecuentemente en las cabeceras de los cauce 
de los ríos existe un bosque de ribera que limita la entrada de luz o en los tramos bajos, donde la 
turbidez del agua limita, igualmente, la producción primaria (Vidal y Suarez, 2008). La ausencia 
de esta especie puede llegar a causar el decremento de la materia orgánica transportada río 
abajo, provocando el estancamiento de la producción primaria desfavoreciendo el flujo de 
nutrientes hacia los otros sistemas y las oscilaciones de oxígeno y temperatura asociadas a 
crecimientos de productores primarios, así como lo han mostrado ya algunos estudios. 
 
El descenso en el número de individuos recolectados en la pesca del bocachico es 
preocupante; se ha establecido que la sobrepesca es el principal factor que ha incidido en la 
drástica disminución de sus volúmenes de captura y consecuente reducción continua en las tallas 
medias de captura (Valderrama et al. 2011c). El uso generalizado de prácticas y artes de pesca 
destructivos como el taponamiento de las ciénagas durante los periodos de migración de la 
especie, los trasmallos, los barbascos y la dinamita han contribuido a su declinación (Mojica et 
al., 2012). 
 
Otro factor que aún no se ha evaluado pero con una fuerte incidencia negativa sobre esta y 
11 
 
 
 
otras especies dependientes de los planos de inundación, es la práctica extendida por los 
ganaderos y agricultores de desecar las ciénagas mediante la construcción de canales y diques. 
De esta manera se han transformado en pastizales y humedales, restando importantes hábitats 
disponibles a los peces. Igualmente la fuerte alteración de hábitat y deforestación a que ha sido 
sometida toda la cuenca Magdalena, ha repercutido en el colapso de las pesquerías de la cuenca 
(Galvis y Mojica 2007). Esto indica una importante disminución de esta especie debido a la 
sobreexplotación y a la alteración de los ecosistemas donde habita el bocachico. 
 
Si bien hace unas décadas atrás un grupo de acuicultores, la autoridad acuícola del país, 
centros de investigación y la alcaldía, en el departamento del Huila, Meta, Antioquia, Córdoba y 
Atlántico principalmente, comenzaron a experimentar el cultivo de especies nativas de agua 
dulce; esfuerzo importantes se han hecho en el Bocachico (Prochilodus magdalenae), el capaz 
(Pimelodus grosskopfii) y el blanquillo (Sorubim cuspicaudus) del magdalena entre otras. Sin 
embargo, cerca del 90% de la acuicultura continental se encuentra en la Tilapia, Trucha y 
Cachama, siento la Tilapia la mayor exponente con un 63% de la producción total piscícola 
(Merino et al., 2014). 
 
Por la expansión del cultivo de bocachico, la creciente demanda de alevinos y por la 
ejecución de programas de repoblamiento en las principales cuencas hidrográficas del país se 
requiere optimizar la tecnología de producción de alevinos de esta especie, con énfasis en el 
manejo de la primera alimentación, la calidad del agua y los alimentos usados en esta fase 
como zooplancton y artemia (Prieto & Atencio, 2008). Para esto es importante la 
investigación e implementación de nuevas tecnología como lo son el uso de probióticos, que 
12 
 
 
 
permita al acuicultor aumentar la producción y que a su vez facilite el repoblamiento de las 
especies ícticas colombianas. 
 
En la mayoría de las estaciones piscícolas colombianas la producción de alevinos de 
bocachico se caracteriza por la siembra de las postlarvas, una vez inician la alimentación 
exógena, directamente en los estanques en tierra donde se transforman en alevinos. Este manejo 
ofrece bajas e inestables tasas de sobrevivencias finales. Pero en otras estaciones se práctica el 
manejo de la primera alimentación con zooplancton silvestre o con nauplios de Artemia sp 
recién eclosionados y luego de dos a cuatros días de alimentación las postlarvas son sembradas 
en los estanques de alevinaje (Atencio, 2003). 
 
En los últimos 20 años el nivel de aprovechamiento aumentó de 41% a 63%, pasando a un 
estado de plena sobreexplotación entre 2006-2007. La grave situación de esta especie indica que 
si la tendencia no se revierte a través de la implementación de medidasurgentes de ordenación, 
las pesquerías del bocachico podrían colapsar en los próximos 15 años (Valderrama, et al., 
2015). 
 
Por último cabe mencionar que en Colombia, a pesar de que actualmente se usan probióticos 
comerciales en el cultivo de organismos acuáticos, no se han realizado estudios en los que se 
evalúe a profundidad los beneficios de su aplicación, así como resolver otras preguntas cómo 
comparar el efecto de los probióticos vivos con las células inactivas, como lo proponen Villamil 
et al. (2003b) y Gatesoupe (2008), o probar otros compuestos como bacteriocinas. Cabe 
mencionar que los productos de probióticos que se comercializan en el país son importados, por 
13 
 
 
 
lo cual la realización de proyectos encaminados a obtener una formulación de probióticos con 
aislados bacterianos y micóticos nativos a escala comercial que pueda ser probado con las 
características propias de nuestros cultivos, sería un importante avance en la prevención de las 
enfermedades que afectan dramáticamente el sector acuicultor (Villamil & Martinez, 2009). 
 
Ya que en Bocachico es limitado lo que se ha realizado con probióticos debe ser de vital 
importancia, por su hábito alimenticio detritívoro, investigar en nuevas forma de alimentarlos 
con microorganismos que faciliten la degradación de la materia orgánica y aumenten su 
respuesta inmune reflejada en su sobrevivencia. En este sentido es necesario implementar 
probióticos en el cultivo de esta especie de tal manera que en los alevinos se fijen esos 
microorganismos en el sistema digestivo permitiéndoles un mejor desarrollo en las diversas 
etapas de cría. 
14 
 
2. OBJETIVOS 
 
 
2.1. GENERAL 
 
 
Evaluar el crecimiento de alevinos de Bocachico alimentados a través de una dieta que 
contiene Saccharomyces cerevisiae como potencial probiótico. 
 
 
2.2. ESPECÍFICOS 
 
 
Estudiar la efectividad del probiótico en la sobrevivencia de los alevinos en el segundo 
periodo crítico del crecimiento. 
 
Determinar cuál de los tratamientos utilizados es el más efectivo en el crecimiento y 
sobrevivencia de alevinos. 
 
Analizar el posible efecto biorremediador que tiene el probiótico en la calidad del agua del 
cultivo de peces. 
15 
 
3. MARCO REFERENCIAL 
 
 
La importancia de evaluar la implementación de probióticos en la nutrición del pez 
bocachico, permite establecer parámetros para la inclusión y mejoramiento en la dieta en fases 
de alevinaje para la sobrevivencia y un desempeño productivo de estos en su fase adulta. A 
continuación se presenta un marco conceptual y de antecedentes de una selección trabajos e 
investigaciones relacionados al uso de probióticos, con el fin de ampliar el panorama de este 
estudio para evidenciar sus diferentes modelos teóricos y los resultados emanados de estos. 
 
 
3.1. CONCEPTOS 
 
 
Los peces y en si los animales y seres humanos están expuestos constantemente a toda una 
gama de microorganismos presente en su medio, lo que ha suscitado diferentes debates acerca de 
su presencia, si son hospederos o transeúntes de la microbiota intestinal. Los estudios en el tema 
han facilitado el entendimiento de mecanismos acción de los probióticos en el hospedero, entre 
ellos por nombrar algunos, la competencia por nutrientes, la modulación de la respuesta 
inmunitaria no específica, la producción de compuestos antimicrobianos, la competencia por el 
sitio de fijación en el tracto gastrointestinal, entre otros que se han evidenciado en experimentos 
in vitro e in vivo. 
 
16 
 
 
 
3.1.1. Definición Probiótico. 
 
 
Los probióticos han sido modificados en su significado a través de los años. Es así como en 
1968, se definió como un suplemento microbiano que se administra a animales y humanos. Para 
1989 Fuller lo redefinió como un microorganismo vivo que se administra al hospedero 
suplementado en el alimento para beneficiar el balance microbiano intestinal. Posteriormente, el 
término fue usado para referirse a un adyuvante dietario microbiano administrado de tal manera 
que se mantenga vivo dentro del tracto gastrointestinal, y que beneficie la fisiología del 
hospedero modulando el sistema inmune, así como mejorando el balance microbiano mediante 
la prevención de la colonización de bacterias indeseables en el tracto intestinal (Gatesoupe, 
1999; Naidu et al., 1999). 
 
Verschuere et al. (2000) dieron una definición más amplia de los probióticos como 
microorganismos vivos que tienen efectos benéficos en el hospedero mediante la modificación 
de la microbiota asociada, al incremento del aprovechamiento de la comida, el mejoramiento de 
la respuesta a enfermedades y de la calidad del ambiente. Sin embargo, en este punto es 
importante señalar que las bacterias que simplemente cumplen alguno de estos roles, tales como 
la producción de nutrientes esenciales para el aprovechamiento de las especies cultivadas, o 
bacterias que solamente ejercen una función específica de bioremediación en el medio ambiente, 
no deben considerarse como probióticos. 
 
 
17 
 
 
 
3.1.2. Mecanismos de acción de los probióticos. 
 
 
Las bacterias que han sido reconocidas por la mayoría de científicos para la inclusión en la 
lista de probióticos son principalmente las bacterias lácticas (bifidobacterias, lactobacillus, 
steptococcus), que se utilizan para la fabricación de yogurt y productos lácteos fermentados y 
algunas levaduras tales como: Saccharomyces boulardii y Saccharomyces cerevisiae. (Gibson, 
1995; Pérez, 2004) 
 
 
3.1.3. Colonización y adhesión del tracto intestinal. 
 
 
En acuicultura, la información disponible indica que las bacterias aisladas de animales 
cultivados o de su entorno tienen mayor capacidad de adhesión al mucus gastrointestinal y a los 
tejidos, que las de otras bacterias foráneas que suelen ser transitorias, por lo que surge la 
necesidad de que los probióticos sean continuamente administrados, ya sea como suplemento en 
el alimento o a través del agua de cultivo (Ringø y Gatesoupe, 1998; Villamil et al., 2009). 
Además, se ha documentado que aislados microbianos de un organismo pueden colonizar otras 
especies cultivadas, indicando así la falta de especificidad para la colonización del tracto 
digestivo (Ringø, 1999; Villamil et al., 2009). 
 
 
18 
 
 
 
3.1.4. Producción de compuestos benéficos. 
 
 
Las levaduras y bacterias marinas pueden llegar a ser un recurso de proteína importante en el 
mejoramiento del aporte nutricional de algunas especies cultivadas, gracias a su aporte de 
aminoácidos que contienen (Brown et al., 1996). Por otro lado se ha demostrado la alta 
producción de ácidos grasos de cadena corta a partir de ciertos aislados de bacterias intestinales 
(Yazawa, 1996). De igual manera, los lípidos producidos por microorganismos marinos se han 
descrito como de sustancias de gran importancia para la nutrición de especies acuáticas 
específicamente tilapia y rodaballo (Kiha y Sakata, 1997; Villamil et al., 2009). 
 
 
3.1.5. Funciones en el sistema inmune. 
 
 
Sólo trabajos recientes han demostrado la incidencia de los probióticos en las funciones del 
sistema inmune. Irianto y Austin (2002) describieron un incremento en parámetros celulares, 
como el número de eritrocitos, linfocitos y macrófagos y un aumento de la actividad lisozímica 
de Salmo salar, Oncorhynchus mykiss y Scophthalmus maximus alimentados con probióticos 
seleccionados, tanto Gram-positivos como Gram negativos. Villamil et al. (2002) evaluaron los 
efectos inmunomoduladores de varias cepas de LAB de origen terrestre, encontrando que L. 
lactis viable e inactivado por calor incrementa funciones inmunitarias de rodaballo (S. 
maximus), como quimioluminiscencia de macrófagos de riñón anterior y concentración de 
lisozima en suero (Villamil et al., 2009). 
19 
 
 
 
 
Al igual que en estudio del género Saccharomyces han encontrado que contienegrandes 
cantidades de ß-glucanos en su pared celular, que actúan como promotores de la activación 
inespecífica del sistema inmune. Estos compuestos, son polímeros de glucosa con uniones 
beta-(1-3) que se pueden encontrar en forma de partículas o en forma soluble y tienen capacidad 
inmunoestimulante, mediante la estimulación de macrófagos y neutrófilos y de esta manera 
protegiendo al huésped de infecciones, ya que en situaciones de estrés se producen y 
liberan corticoides endógenos, que deprimen la respuesta inmune y se genera un 
desequilibrio en la flora intestinal, situación propicia para la colonización por patógenos 
(Pelizon et al, 2003). 
 
Tambien en el trabajo experimental “Evaluación del crecimiento de un cultivo de Daphnia 
magna alimentado con Saccharomyces cereviseae y un enriquecimiento con avena soya” 
realizado por Ocampo y colaboradores en el 2010, emplearon una dieta de Saccharomyces 
cereviseae y un medio de enriquecimiento con ácidos grasos (n-6) proveniente de harina avena-
soya, donde hallaron diferencias altamente significativas (p<0.01) para el efecto del tratamiento 
con una concentración de 25 ppm Saccharomyces cereviseae + harina de avenasoya a una 
concentración de 25 ppm. De igual forma observaron una diferencia significativa (p<0.05) en el 
tratamiento con Saccharomyces cereviseae a 12.5 ppm + harina de avena-soya 25 ppm sobre el 
crecimiento poblacional de los cladóceros. En el resto de los tratamientos no se observaron 
diferencias significativas (p>0.05). Se evidenció que la combinación de estos componentes en 
sus concentraciones más altas potenció el crecimiento de la Daphnia magna, alcanzando un 
número de microcrustáceos de 826ª Daphnias/L ± 9.57. Se puede concluir que los cladóceros por 
20 
 
 
 
sus características de crecimiento en cultivo, presentan adaptación inmunológica favorable a las 
condiciones de manejo para la producción de biomasa útil como alimento vivo en acuicultura. 
 
3.1.6. Incidencia en la calidad de agua. 
 
 
Resientes estudios asociados al uso de probióticos han venido mostrado como estos inciden 
en el mejoramiento de la calidad de las aguas tratadas en la industria acuícola. En el estudio 
realizado por Melgar y otros (2012), llamado “Efecto de microorganismos con potencial 
probiótico en la calidad del agua y el crecimiento de camarón Litopenaeus vannamei en cultivo 
intensivo”, analizaron el efecto de una mezcla comercial de microorganismos con potencial 
probiótico (Rhodopseudomonas palustris, Lactobacillus plantarum, Lactobacillus caseicon y 
Saccharomyces cerevisiae), en la calidad del agua y sedimento, así como en el crecimiento de 
postlarvas de L. vannamei en un sistema de cultivo intensivo. Tratamiento 1 (C), estaques sin 
dosificación del producto (control), tratamiento 2 (EM1), estanques adicionados con una dosis 
de 4L/ha, y tratamiento 3 (EM2), estanques adicionados con dosis de 10L/ha. Los 
resultados arrojaron una diferencia significativa en las mediciones ambientales de calidad de 
agua entre el tratamiento control y los tratamientos dosificados con la mezcla probiótica. Los 
tratamientos EM1 y EM2 mantuvieron significativamente regulados los valores del pH 
(EM1, 8.03±0.33; EM2, 7.77±0.22) y redujeron las concentraciones de nitrato (EM1, 
0.64±0.25mg/L; EM2, 0.39±0.26mg/L). El tratamiento EM2 presentó la mayor remoción de 
materia orgánica (1.77±0.45%). El tratamiento EM1 mejoró la TCE (2.69±0.35%/d) y FCA 
(1.46±0.20). Los tratamientos EM1 y EM2 presentaron mayor supervivencia con 61±8.76% y 
21 
 
 
 
60±10.5%, respectivamente. 
 
Se ha propuesto que las bacterias del género Bacillus seleccionadas como probióticos pueden 
convertir la materia orgánica en CO2, en contraste con las bacterias Gram-negativas que se 
caracterizan por convertir materia orgánica en biomasa bacteriana o limo (Dalmin et al., 2001). 
Laloo et al. (2007) comprobaron la capacidad de tres aislados del genero Bacillus para disminuir 
las concentraciones de nitritos, nitratos y amonios en el agua de cultivo de peces ornamentales. 
Este mismo fenómeno también fue observado por Kim et al. (2005) en B. subtilus, B. cereus y 
B. licheniformis, quienes atribuyen estos efectos a mecanismos tales como bioacumulación, bio-
asimilación y nitrificación (Villamil et al., 2009). 
 
 
3.2. FUNDAMENTOS GENERALES DEL ALIMENTO VIVO 
 
 
Varias investigaciones de especies neotropicales de agua dulce han demostrado la necesidad 
de uso de alimento vivo. La composición bioquímica del zooplancton para los peces es 
importante, siendo considerado el alimento que contiene la mayoría de las sustancias 
nutritivas y que sirve como base para las dietas experimentales. Principalmente, el valor 
nutritivo se basa en el contenido de aminoácidos y ácidos grasos esenciales, entre otros 
elementos que favorecen el crecimiento y la sobrevivencia de las postlarvas (Prieto & Atencio, 
2008). 
 
22 
 
 
 
Un ejemplo de ello es el trabajo presentado por Romo (2014), denominado “Efecto del 
alimento vivo daphnia magna y enchytraeus buchholzi en juveniles de apistogramma 
cacatuoides en condiciones de cautiverio, en la ciudad de palmira, valle del cauca”. Cuyos 
resultados mostraron que el tratamiento con el gusano grindal (T2) fue estadísticamente superior 
a los otros tratamientos, donde la tasa de crecimiento simple fue del 2.25%, seguido de la dieta 
con pulga de agua (T1) con 2.17% y finalmente el alimento balanceado (T0) con 1.86%, en el 
cual el incremento de talla y sobrevivencia fue mayor en los tratamientos con alimento vivo. 
 
3.2.1. Aspectos generales de la levadura. 
 
 
La Saccharomyces cerevisiae, es un hongo cuya pared celular contiene de 6 a 8 % de 
proteína, un promedio de 8.5 - 13.5 % de lípidos y un gran porcentaje de vitamina B (tiamina, 
riboflavina, ácido fólico, etc.), empleado como dieta en tilapia nilotica (Oreochromis niloticus 
(L.)), por su capacidad de potenciar la respuesta inmune y el crecimiento, debido a que posee 
inmunoestimulantes como: los β-glucanos y manano oligosacáridos (MOS) (Abdel-Tawwab et 
al., 2008; Ocampo et al., 2010), Además S. cerevisiae es una microorganismo anaerobio 
facultativo: transformando azúcar a la misma velocidad, la levadura aeróbica produce dióxido 
de carbono, agua y una producción relativamente alta de nueva levadura, mientras que crecida 
anaeróbicamente tiene una velocidad relativamente lenta de crecimiento, que se acopla a una 
alta conversión de azúcar en alcohol y dióxido de carbono. Dentro de sus requerimientos 
nutricionales se encuentra el carbono, como el mayor compuesto encontrado en la célula, 
utilizando para su metabolismo glúcidos como hexosas, disacáridos y trisacáridos. El nitrógeno, 
23 
 
 
 
es utilizado en forma de ión amonio y es utilizado en aminoácidos, vitaminas y nucleótidos. 
Otros elementos como fósforo, azufre, potasio, magnesio, calcio, zinc y manganeso son 
importantes dentro de su metabolismo (Bouix, 2000). 
 
Al encontrarse activa o viable con un conteo de 10 mil a 20 mil millones de células vivas por 
gramo, esta levadura se utiliza principalmente como probiótico, algunas de sus funciones 
reportas por Agarwal et al (2000), son: 
 
 Promotor de crecimiento 
 Aumenta la producción de vitamina B. 
 Mayor ganancia de peso. 
 Rápida digestión de algunos alimentos. 
 Acción estimulante de la inmunidad. 
 Mejora la asimilación de nutrientes. 
 Corrige el balance de la población microbiana 
 
3.2.2. Aspectos generales del Zooplancton. 
 
 
EL rotífero Philodina sp. es un género filtrador de partículas orgánicas en suspensión 
(bacterias, detritus, algas, levaduras, protozoos), tiene una longevidad de 48 días promedio, la 
hembra pone 45 huevos y el intervalo de una generación a otra es de cuatrodías. La 
composición nutricional varia de 6.0% a 7.9% de proteína cruda, 1.4% a 3.7% de lípidos, 
24 
 
 
 
0.16mg/g de calcio y 1.1 a 1.5gm/g de fosforo (Watanabe et al., 1983; Corral et al. 2000). Su 
tamaño varía entre 320-540µm. 
 
El perfil de aminoácidos reportado para Daphnia sp. es tirosina (4.27%), triptófano (3.62%), 
arginina (10.92%), histidina (2.69%), cistina (1.17%), metionina (3.45%) (Torrentera y Tacón, 
1989; Ocampo, Botero & Restrepo, 2010). Su valor nutricional en cuanto a proteína y grase en 
base seca es de 70% de proteína y 13% de grasa (Díaz, et al,. 1996; Ocampo et al. 2010). Su 
tamaño varía según su sexo entre las 2000µm y 6000µm. 
 
 
3.2.3. Aspectos generales del Fitoplancton. 
 
 
La Chlorella sp. es una microalga redonda, con membrana muy fina y cloroplastos 
acampanados, gran vacuola excéntrica. Su tamaño esta entre 5 y 10µm. El valor nutricional 
representa 42-58% de proteína de su biomasa. En condiciones óptimas de crecimiento, esta 
puede alcanzar 5-40% lípidos por peso seco de biomasa y de carbohidratos oscila entre 12-55% 
(Safi., et al, 2014). 
 
El Chlorogonium sp. se caracteriza por tener dos vacuolas contractiles en forma de halterios y 
dos flagelos de la misma proporción, su tamaño oscila entre 20µm y 45µm. se reporta un valor 
nutricional de 52-60% de proteína peso seco de la biomasa, el contenido de ácidos grasos 
representa el 3.5-5% del peso y de carbohidratos oscila entre 10.4-25% (Kreuzberg., et al, 1990). 
25 
 
 
 
 
3.3. BIOLOGÍA DEL BOCACHICO 
 
 
El bocachico es un pez detritívoro endémico de Colombia. Habita en toda las zonas bajas de 
los sistemas del Magdalena, Sinú y Atrato, hasta aproximadamente los 1000 m s.n.m. Por el río 
Cauca alcanza a remontar a la cuenca alta hasta los 1500 m s.n.m. debido a la pendiente suave 
(Mojica, et al. 2012). 
 
 
3.3.1. Clasificación taxonómica. 
 
 
La clasificación taxonómica del Bocachico del rio magdalena fue descrita por el especialista 
Steindachner (1879). La posición taxonómica del pez se define como: 
 
Filo: Chordata 
Clase: Actinopterygii 
Subclase: Neopterygii 
Infraclase: Teleostei 
Superorden: Ostariophysi 
Orden: Characiformes 
Familia: Prochilodontidae 
Género: Prochilodus 
Especie: P. magdalenae 
 
26 
 
 
 
 
Figura 2. Morfología externa de bocachico adulto. 
 
 
3.3.2. Identificación morfológica. 
 
 
Así como se muestra en la (Figura 2.) el pez es de cuerpo alargado, grueso, boca muy 
pequeña subterminal en forma de embudo con dientes viliformes en los labios, ojos grandes, 
presentan escamas grandes y ásperas, con una espina eréctil delante de la aleta dorsal. El dorso 
es grisáceo oscuro, los lados plateados y el vientre rosado; la cola es oscura en la mitad y rojiza 
en los extremos, los extremos de las aletas pectorales, pélvica y anal también son rojizos; la aleta 
dorsal tiene pequeñas manchas (Cortez, 2003). 
 
3.3.3. Parámetros ambientales. 
 
 
Las características fisicoquímicas ideales del medio natural en el que suele habitar el 
bocachico y que debe presentar el agua según Cortés (2003) son: 
27 
 
 
 
 
Tabla II. 
Parámetros Físico-Químicos óptimos del agua para el cultivo de Bocachico. 
Parámetros Rangos Óptimos 
pH 6.5 a 8.5 
Alcalinidad 30ppm a 50ppm 
Oxígeno Disuelto 2ppm a 4 ppm 
Amoniaco 1ppm a 2 ppm 
Temperatura 28 a 30 °C 
Dureza 20ppm a 40ppm 
 
 
3.3.4. Requerimientos nutricionales. 
 
 
Esta especie tiene baja conversión alimenticia y necesitan de mucho espacio para un buen 
crecimiento. Por ello los laboratorios de investigación han elaborado dietas que sirven como 
base para el desarrollo y prueba de nuevos alimentos, los cuales se basan en ingredientes 
comunes disponibles y que han presentado buenos resultados bajo condiciones de laboratorio y 
de producción (Gonzales y Wills, 2003). Uno de esos trabajos realizados en condiciones en 
laboratorio se presenta a continuación en la tabla 2 como una composición calculada de 
nutrientes de la dieta utilizada para alimentar a los alevines de bocachico. 
 
 
28 
 
 
 
Tabla III. 
Requerimientos nutricionales para el Bocachico (Prochilodus magdalenae) en etapa de 
alevinaje. 
NUTRIENTES 
Dieta convencional 
(%) 
Dieta semipurificada 
(%) 
Proteína 36 36 
Energía 3100 3100 
Lisina 2.46 2.50 
Metionina 1.37 1 
Cistina 1.37 1 
Treonina 1.50 1.36 
Triptófano 0.40 0.40 
Arginina 2.23 1.64 
Isoleucina 1.61 1.71 
Leucina 2.55 2.92 
Fenilalanina 1.45 1.60 
Vitamina 1.78 2.31 
Calcio 2.1 2.1 
Fosforo disponible 1 1 
Sodio 0.36 0.36 
 Determinados por Gonzales y Wills (2003) 
 
 
3.4. ANTECEDENTES 
 
 
Las publicaciones e investigaciones que se han realizado en el manejo de probióticos han sido 
múltiples los estudios es animales (Figura 3.), confirmando la necesidad estudiar 
microorganismos que puedan favorecer su crecimiento, además de las ventajas que traen estos 
29 
 
 
 
sobre la calidad del agua de los sistemas empleados en el cultivo de peces, especialmente en los 
estanques en la industria acuícola (Balcazar et al., 2006). 
 
 
Figura 3. Número de publicaciones relacionadas al uso de Saccharomyces cerevisiae como 
potencial probiótico, de las cuales 65 están asociadas a peces, realizadas entre los años 2004 y 
2017 (Fuente: Web of Science, 2018) 
 
 
Cabe resaltar varias de estas investigaciones, por ejemplo, Villamil y Martínez (2009) 
reseñan en su trabajo llamado “Probióticos como herramienta biotecnológica en el cultivo de 
camarón” las publicaciones más destacadas en el uso de probióticos en acuicultura, enfocándose 
en el cultivo de camarón, ya que se perfila como una de las alternativas con mejores perspectivas 
al uso indiscriminado de antibióticos que causan diversos problemas tales como la aparición de 
cepas bacterianas multiresistentes que pueden alterar los ecosistemas próximos al cultivo e 
incluso afectar la salud del consumidor y destacan su contribución al establecimiento de la 
microbiota intestinal, incremento en el peso por la mejora en la asimilación del alimento efecto 
benéfico el incremento de la conversión alimentaria, aumenta la supervivencia, la resistencia a 
30 
 
 
 
infecciones y la respuesta inmune de los organismos cultivados, así como la mejora de la calidad 
de agua. 
 
En el proyecto experimental “Efecto de la inclusión de probióticos y prebióticos sobre el 
desempeño productivo y la sobrevivencia de alevinos de tilapia nilotica (Oreochromis 
nilocticus) variedad chitralada” que Mahecha realizaría en el 2006 bajo la dirección del profesor 
Miguel Landines Ph.D., se utilizaron 240 alevinos, distribuidos aleatoriamente en 24 acuarios, 
asignados al azar para 6 tratamientos. Se alimentaron con un concentrado comercial con 24% de 
proteína cruda, más una dieta comercial de probióticos y prebióticos e la siguiente manera; Para 
el T1: Dieta comercial + mezcla comercial de probióticos (Streptococcus thermophilus, 
Bifidobacterium bifidus y Saccharomyces cerevisiae), T2: Dieta comercial + levadura 
(Saccharomyces boulardi), T3: Dieta comercial + bacterias ácido lácticas (Lactobacillus 
acidophilus y Bifidobacterium bifidus), T4: Dieta comercial + mezcla de levadura y bacterias 
ácido lácticas. T5: Dieta comercial + prebióticos (lactosa y glucosa). T6: (Control). Se 
encontró diferencia significativa (p<0,05) entre el tratamiento 5 (prebióticos) y el tratamiento 
6 (control), siendo evidente una superioridad en el primero; por otro lado, no se 
observaron diferencias significativas (p>0,05) entre los demás tratamientos analizados, 
situación que se repitió en todos los tratamientos para el tercer muestreo (42 días). Por 
último, a los 56 días, se observaron diferencias significativas (p<0,05) entre los 
tratamientos 5, donde se obtuvo la mejor ganancia, y el tratamiento 3 (bacteriaslácticas), en 
el cual se encontró la menor de los tratamientos con probióticos, entre los cuales, la dieta 4 
(mezcla de bacterias lácticas y levadura), superó a la 2 (levadura). Por otro lado, no se 
encontraron diferencias significativas (P>0,05) entre los tratamientos 1 (mezcla comercial 
31 
 
 
 
de probióticos) y 6 (control). 
 
En otro trabajo se reconoce la capacidad sinérgica, sintrópica y metabiotica que tienen las 
bacterias y levaduras para disminuir de la capacidad contaminante de las aguas servidas en 
donde los microorganismos pueden servir de alimento a los peces y disminuir tanto los 
vertimientos a los cuerpos de agua como el consumo de alimento concentrado. Este trabajo fue 
realizado por Ladino y Rodriguez (2008) nombrado, “Efecto de Lactobacillus casei, 
Saccharomyces cerevisiae, Rhodopseudomona palustris (microorganismos eficientes em) y 
melaza en la ganancia de peso de tilapias (Oreochromis sp) en condiciones de laboratorio”. 
Donde, se evalúo el efecto de un cultivo comercial de EM en la ganancia de peso de alevinos de 
tilapia Oreochromis sp. Alevinos (n=10) con un peso promedio de 0,604 ± 0,059 g, fueron 
ubicados durante un periodo de 2 semanas en 10 contenedores plásticos de 25 litros, en 
condiciones de laboratorio. Se utilizaron cinco contenedores como control (T1), los cinco 
restantes (T2) recibieron 2ml diarios de un producto comercial compuesto por Lactobacillus 
casei; Saccharomyces cerevisiae, Rhodopseudomona palustris, cada uno con 10
6
 unidades 
formadoras de colonias suspendidas en una mezcla de melaza y agua. El alimento proporcionado 
consistió en un producto comercial con 40% de proteína, la ración alimenticia fue igual al 6% 
del peso inicial de los peces. El pH de los contenedores, se mantuvo estable en 6,7, la 
temperatura en 27 grados y el oxígeno en 7 ppm. La ganancia de peso con T1 mostró una 
ganancia de peso de 0.7321g ± 0.2126 con un coeficiente de variación de 29.05. Para T2 se 
evidenció una ganancia de peso de 0.8034gm ± 0.095 con un coeficiente de variación de 11.87. 
No hubo diferencia estadística significativa (P>0.05). 
 
32 
 
 
 
Por otro lado Díaz y colaboradores (2014) en su investigación “Efecto de un suplemento 
líquido a base de Saccharomyces cerevisiae y Lactobacillus casei para la alimentación de 
mojarra roja (Oreochromis sp) en etapa de alevinaje y precria”, en el que se obtuvieron 
fermentativamente los probióticos determinando así su composición bromatológica, y donde se 
evaluó la ganancia de peso, supervivencia y talla de las especies en las etapas de alevinaje y 
precría durante 7 semanas de suministro, respecto al tratamiento control. Los resultados 
mostraron que el mejor peso promedio y talla se alcanzó con el tratamiento T2 (50% suplemento 
proteico liquido), seguido por el tratamiento con 75% de suplemento (T3), siendo éste 
estadísticamente similar al tratamiento con 100% de suplemento proteico (T4), quedando 
rezagados los tratamientos T0 y T1 correspondientes al alimento comercial (control) y 25% de 
suplemento, respectivamente. Se consiguió una reducción del tiempo para pasar de la etapa de 
alevinaje a precría en 10 días (de 45 a 35 días), lo que se traduce en mayores ganancias para el 
piscicultor. 
 
También los probióticos pueden ser considerados como una opción viable para sustituir a los 
antibióticos como promotores de crecimiento. Tal como lo proponen Flores y colaboradores 
(2002) en su trabajo titulado “Nivel óptimo de inclusión de una levadura probiótica 
(Saccharomyces cerevisiae, sc 47) como promotor de crecimiento para tilapia nilótica 
(Oreochromis niloticus)”. En el que probaron cinco concentraciones de levadura 
(Saccharomyces cerevisiae): 0.03% (3x10
7 
Unidades Formadoras de Colonias, UFC g –1 
alimento), 0.07% (7 x10
7
 UFC g-1), 0.1% (1 x10
8
 UFC g-1), 0.15% (1.5 x 10
8
 UFC g-1) y 0.2% 
(2 x 10
8
 UFC g-1). Para cada concentración se incluyeron dietas con levadura activada (LA) por 
treinta minutos en agua destilada y levadura no activada (LNA), teniendo, por lo tanto, un total 
33 
 
 
 
de 10 dietas experimentales y un control sin levadura (11 tratamientos). A todas las dietas se les 
agregó el 0.5% de óxido de cromo como marcador para determinar los niveles de digestibilidad 
del alimento y de la proteína. En cada una de las 44 tinas se sembraron 20 tilapias con un peso 
promedio de 900 mg ±10mg y se acondicionaron al sistema experimental por un periodo de siete 
días durante el cual se les suministró alimento balanceado con 40% de proteína. Después de este 
lapso, se les asignó de manera aleatoria el tratamiento correspondiente con cuatro réplicas para 
cada uno. El alimento se proporcionó manualmente a razón del 8% de la biomasa total, dividido 
en tres raciones durante el día. El peso final de los organismos fue estadísticamente semejante 
entre los tratamientos (p>0.05), sin embargo, las dietas LNA07 y LNA1.5 dieron lugar a mejores 
resultados con respecto al control. Los peces que recibieron las dietas LA03 y LA07 presentaron 
el menor peso final con respecto a todos los tratamientos. Esta tendencia se observó en los 
cálculos de peso ganado en porcentaje y en la tasa específica de crecimiento con resultados 
estadísticamente iguales (p>0.05). Aun cuando los resultados en las dietas con levadura no 
activada fueron mayores, no hubo diferencias estadísticas entre el tipo de levadura. Los 
resultados de peso ganado individual (mg/día) fueron estadísticamente semejantes (p>0.05) entre 
los diferentes tratamientos, pero las dietas que contenían, 0.07% (LNA07), 0.1% (LNA1), 0.15% 
(LNA1.5) de levadura no activada y 0.15% (dieta LA1.5) de levadura activada, dieron lugar a 
valores más elevados que el control. El aprovechamiento del alimento fue mejor en las dietas 
que contenían levadura, lo que indica que los peces tienen mayor disponibilidad de nutrientes 
para el crecimiento y para la obtención de energía. Esto a largo plazo se refleja en lograr 
animales más sanos y con tallas más adecuadas para la comercialización en un menor tiempo. 
 
Al igual que el trabajo anterior donde se muestra una favorabilidad en el uso de levadura en la 
34 
 
 
 
ganancia de talla en los peces Rodríguez (2013) en su investigación denominada “Efecto de la 
inclusión de la levadura de cerveza (Saccharomyces cerevisiae) en el alimento, sobre la 
respuesta biológica de la gamitana (Colossoma macropomum, Cuvier 1816) en la fase de 
crecimiento”. Donde se usó 300 peces con peso promedio inicial de 70.8 ± 2.3 g y 15.3 ± 0.18 
cm de talla; en un diseño completamente al azar, con 2 tratamientos (T1: sin Saccharomyces 
cerevisiae y T2: dieta con 1% de Saccharomyces cerevisiae) y 1O repeticiones cada uno. Estos 
se cultivaron en un estanque de tierra, con densidad de siembra de 30 peces/m3, la tasa de 
alimentación fue de 5,3 y 2.5% para el primer, segundo y tercer mes de evaluación 
respectivamente, con una frecuencia alimentaria de 3 veces al día, a las 9, 13 y 17 horas. Se 
registró el peso y talla cada 15 días, al final del ensayo se calculó la ganancia de peso (GP), 
ganancia de talla (GT), conversión alimenticia aparente (CAA), factor de condición (K), 
consumo de alimento (CA), sobrevivencia (S) y rendimiento productivo (Rp); también, se hizo 
el recuento de unidades formadoras de colonia (UFC) de Saccharomyces cerevisiae en las dietas 
e intestinos. Se demostró y se encontró diferencia estadística (P<0.05) para GP, GT, CAA y K, 
a excepción del CA, S y Rp (P>0.05). La colonización en las dietas fueron diferentes 
estadísticamente (P<0.05), pero en el intestino de gamitanas no se registró diferencias (P>0.05) 
al igual que en los índices económicos. La adición de 1% de Saccharomyces cerevisiae en la 
ración mejoró la GP, GT y CAA; además, sólo incrementó la colonización de Saccharomyces 
cerevisiae en la ración del T2. 
 
En otro proyecto investigativollamado “Efecto de inclusión de dos probióticos y un 
prebiótico en la dietas para alimentación de alevinos de cachama blanca (Piaractus 
brachypomus)”, Pérez (2004) determino el efecto de la inclusión de dos probióticos (Probiótico 
35 
 
 
 
A: Lactobasillus acidophyllus 10
8
 UFC/g, Bacillus subtilis 10
8
 UFC/g y Saccharomyces 
cerevisiae 10
6
 UFC/g – Probiótico B: Lactobacillus casei 10
8
 UFC/g, Bacillus cuagulans 10
8
 
UFC/g, y Rodotorula sp. 10
6
 UFC/g), un prebiótico (paredes fosforilada de levadura 
Saccharomyces cerevisiae) y un tratamiento control en una dieta basal (3650Kcal ED y 45% PC 
con una relación energía proteína de 8.11). se alimentaron 80 alevines de cachama blanca 
(Piaractus brachypomus) con un peso inicial de 0.81g distribuidos en 16 acuarios (cuatro 
repeticiones por tratamiento) en ambiente controlado. No se observó efecto significativo de 
ninguno de los tratamientos aplicados en los animales experimentales, sin embargo, los 
individuos alimentados con la dieta base y suplementados con el prebiótico presentaron los 
mejores rendimientos (P<0.05) para las variables evaluadas: Guanacia de peso (41.22g), peso 
final (43.03g), tasa especifica de crecimiento (8.96) y conversión alimenticia (0.72). La variable 
sobrevivencia fue del 100% en todos los tratamientos. 
 
Por otro lado Hualinga (2013) no presenta un resultado significativamente favorable para 
crecimiento de los peces, en su estudio “Efecto del probiótico EM® agua en el crecimiento y 
composición corporal de alevinos de Piaractus brachypomus “paco” (Cuvier, 1818) (pisces, 
serrasalmidae), cultivados en corrales”. La población experimental fue de 1224 alevinos de paco 
de 13.29 ± 1.29 de peso promedio inicial y 8.66±0.77 de longitud promedio inicial, distribuidos 
en 12 unidades experimentales de 51 m2 cada unidad; a razón de 2 peces/m2. El experimento 
se realizó con un Diseño Completamente al Azar con cuatro tratamientos y tres réplicas por 
tratamiento. Los tratamientos fueron los niveles de dosificación del probiótico EM – Agua 
en el alimento balanceado T1 (6ml/kg), T2 (10ml/kg), T3 (14ml/kg) y T4 (0ml/kg). 
La alimentación de los alevinos fue con piensos de marca comercial Nicovita 28%PB 
36 
 
 
 
durante 120 días, la frecuencia de alimentación fue de 2 veces al día (08:30 y 17:00 
hrs.) a razón de 5% de la biomasa. El estudio evaluó el crecimiento de los peces 
mediante indicadores de crecimiento cada 20 días. Para el análisis de datos se utilizó el 
programa ANOVA (P<0.05). Los resultados muestran que estadísticamente todos los 
tratamientos son iguales no existiendo diferencias significativas; pero el T1 dio a lugar a valores 
más alentadores con un peso y longitud final de 304,33 ± 43,85 g y 23,10 ± 1,38 cm; 
ganancia de peso de 290,5 ± 43,9; en cuanto al ICAA fue de 1,5 ± 0,2; TCE Fue de 2,6 ± 0,2 y 
la sobrevivencia de 100 ± 0,0. 
 
En bocachico el estudio del uso de probióticos es escaso, sin embargo, Atencio y 
colaboradores en 2015 en su investigación “Evaluación del desempeño de la larvicultura de 
bocachico Prochilodus magdalenae utilizando macroagregados de floc como primera 
alimentación”, lograron mejorar la sobrevivencia de alevines y la calidad de agua tratada. Para 
ello se evaluó el desempeño en la larvicultura de bocachico utilizando macroagregados de floc 
para el manejo de primera alimentación de larvas de bocachico. Larvas de bocachico fueron 
obtenidas por reproducción artificial, a inicio de la alimentación exógena, se instalaron en 
unidades experimentales con aireación, volumen útil de 30L, a densidad de 25 larvas/L. Se 
preparó y estabilizó el inóculo inicial de bacterias nitrificantes (BN) a partir de una 
muestra del fondo de un estanque de la EPR; luego de 14 días de maduración se realizó la 
caracterización de los macroagregados y se determinó la abundancia de organismos. La 
ganancia en longitud y peso, sobrevivencia y resistencia al estrés fueron evaluados como 
respuesta de desempeño frente a cuatro tratamientos basados en diferentes concentraciones 
de macroagregados: 1ml/L (T1), 2.5ml/L (T2); 5 ml/L (T3),5 nauplios de artemia/ml T4 
37 
 
 
 
(control). Se caracterizó la calidad de agua midiendo parámetros como dureza, alcalinidad, pH, 
temperatura, oxígeno disuelto; la cual resultó con valores adecuados para la larvicultura de 
bocachico. Los resultados fueron analizados mediante análisis de varianza, seguida de una 
prueba de rango múltiple a los datos registrados con una significancia de P>0.05. El mayor 
crecimiento se registró en el grupo de larvas alimentadas con naúplios de artemia (T4); 
mientras que la mejor sobrevivencia (74.2±13.4%) se obtuvo cuando se alimentó a 5 ml de 
macroagregados/L (T3). 
 
Al igual que el estudio anterior demostró los beneficios que tiene el uso de probióticos en la 
producción de alevinaje Prochilodus magdalenae en la “Evaluación de la aplicabilidad de 
probiótico en las fases larvarias de Bocachico y Tilapia para optimizar rendimiento productivo” 
hecho por Hernández (2015), se utilizó el probiótico Ecobacter AQ, el cual se comercializa para 
ser usado en la biorremediación de aguas. Se realizó un diseño experimental de cuatro 
tratamientos con tres replicas cada uno (4*3), que tuvo una duración de 15 días, utilizando larvas 
que acaban de absorber el saco vitelino, en donde el tratamiento (T)1 fue alimento concentrado 
con probiótico Ecobacter AQ al 10%, el tratamiento (T)2 fue alimento concentrado sin 
probiótico, el tratamiento (T)3 fue alimento vivo con probiótico Ecobacter AQ al 10% y el 
tratamiento (T)4 fue alimento vivo sin probiótico. Para el caso de la Tilapia en donde se 
utilizaron para los bioensayos larvas de 0,010 gramos y 8 mm en promedio, encontrando que 
efectivamente hubieron diferencias significativas entre los tratamientos y los valores más 
favorables en cuanto al peso fueron para el tratamiento de alimento concentrado + probiótico 
con un valor promedio de 0.056 gramos/larva y de 14,76mm/larva. En cuanto al Bocachico en 
donde se utilizaron para los bioensayos larvas de 0,009gramos y 5.8mm en promedio, se registró 
38 
 
 
 
que efectivamente hubieron diferencias significativas entre los tratamientos y los valores más 
favorables en cuanto al peso fueron para el tratamiento de alimento vivo+ probiótico con un 
valor promedio de 0,11 gramos/larva; y de 18.2mm/larva, demostrado un resultado favorable 
parara la tilapia y el bocachico. 
 
Adicional a los resultados citados con anterioridad encontramos que estudios con levaduras, 
concretamente Saccharomyces cerevisiae, los resultados obtenidos por Muhsen et al. (2008), 
entre otros trabajos, vienen indicando que el suplemento de levadura de panadería es prometedor 
como un método alternativo a los antibióticos, la prevención de enfermedades en la acuicultura, 
la ganancia de peso y sobrevivencia. El trabajo al que hacemos referencia es “Evaluación de la 
levadura comercial de panadería, Saccharomyces cerevisiae como promotor de crecimiento e 
inmunidad para la tilapia del Nilo, Oreochromis niloticus (L.) desafiada in situ con Aeromonas 
hydrophila”. En este estudio se evaluó el uso de levadura comercial de panadería. Los peces 
(0,33 g) se distribuyeron aleatoriamente 25 peces por acuario de 140L y se alimentaron con una 
dieta que contenía 0.0, 0.25, 0.50, 1.0, 2.0 y 5.0g de levadura/kg durante 12 semanas. Después 
del período experimental, los peces de cada tratamiento fueron desafiados por Aeromonas 
hydrophila patógena, que se administró por inyección interperitoneal (IP) y se mantuvo en 
observación durante 10 días para registrar los signos clínicos y la tasa de mortalidad diaria. Las 
influencias promotoras del crecimientode la levadura de panadería se observaron con los peces 
y el crecimiento óptimo, la utilización de alimento y el cambio de proteína se obtuvieron con 
1.0-5.0 g de levadura/kg de dieta. Además, la suplementación con levadura aumentó la 
deposición de proteínas en el cuerpo de los peces. Los parámetros bioquímicos se mejoraron en 
los peces alimentados con levadura hasta 1,0g/kg de dieta. La mortalidad total de peces 10 días 
39 
 
 
 
después de la inyección de IP con A. hydrophila y su recuento después de la incubación con 
suero de pescado disminuyó con el aumento del nivel de levadura en las dietas de peces. Sin 
embargo, la mortalidad más baja de peces y los recuentos bacterianos se obtuvieron en peces 
alimentados con 5,0g de levadura/kg. El nivel óptimo de levadura de panadería viva fue de 
aproximadamente 1,0 g por kg de dieta. 
40 
 
 
4. METODOLOGÍA 
 
 
4.1. LOCACIÓN 
 
 
El presente trabajo se realizó en las instalaciones del Laboratorio de Ictiología y Peces 
Ornamentales de la Facultad de Medicina Veterinaria y de Zootecnia en la Universidad Nacional 
de Colombia, sede Bogotá. También se contó con el apoyo del Laboratorio de Microbiología 
Veterinaria, donde se llevó acabo el cultivo de la cepa probiótica. La temperatura promedio del 
laboratorio de ictiología fue de 24 °C con una humedad relativa de 85%. 
 
 
4.2. MATERIALES, EQUIPOS E INSUMOS 
 
 
A continuación se presentara una lista de los elementos empleados para la ejecución del 
experimento. 
 
 
 
41 
 
 
 
4.2.1. Materiales. 
 
 
 Acuarios de 70 L 
 Tanque de 1000L 
 Manguera de aireación 
 Piedras difusoras 
 Nasas 
 Papel Plástico 
 Baldes plásticos 10L 
 Recipientes de almacenamiento. 
 Vidriería 
 Atomizador 
 Sifoneador 
 Tamices 
 Tubos falcon 15ml 
 
 
4.2.2. Equipos. 
 
 
 Balanza digital 
 Balanza analítica 
 Termómetro digital 
 Termostatos 
 Cabina de flujo laminar 
 Microscopio electrónico 
 Camara Neubauer 
42 
 
 
 
 Blower 
 Incubadora 
 Horno de secado 
 Autoclave 
 Computador portátil 
 Cámara fotográfica digital 
 Multiparametro portátil 
 
4.2.3. Insumos. 
 
 
 Concentrado 36% de proteína 
 Sal marina 
 Fertilizante triple 15 
 Urea 
 Alcohol 90% 
 Probiótico (Saccharomyces cerevisiae) 
 Agua declorada 
 Agua desionizada 
 Agua destilada 
 Eugenol 
 Agar Sabouraud 
 Formol 10% 
 
 
 
 
43 
 
 
 
4.3. PROCEDIMIENTOS 
 
 
Los siguientes procedimientos se desarrollaron el laboratorio de Ictiología y Peces 
Ornamentales y el Laboratorio de Microbiología Veterinaria para ello contamos con asistencia 
profesional. 
 
 
4.3.1. Cultivos de alimento vivo. 
 
 
En esta fase del proyecto se siguieron protocolos propios del laboratorio donde se utilizó dos 
cepas de microalgas (Chlorella sp. y Chorogonium sp.) obtenidas por el Laboratorio de Cultivo 
de Algas del Departamento de Biología de la Universidad Nacional. Este medios nos sirvió 
como base alimenticia para los cultivos de zooplancton; la primera para alimentar el cultivo de 
Daphnias sp. y la segunda para alimentar el cultivo de Phillodinia Sp. La obtención de las cepas 
de estos animales fue suministrada por el Laboratorio de Ictiología. El zooplancton cultivado en 
el laboratorio se empleó en la dieta de los alevinos de Bocachico a un volumen del 10% para 
cada tratamiento. 
 
4.3.1.1. Protocolo del fitoplancton. 
 
El cultivo de microalgas se realizó en cuatro recipientes de vidrio (4L); dos para el cultivo de 
44 
 
 
 
Chlorella sp y dos para el cultivo de Chorogonium sp. En cada uno de estos recipientes se 
adiciono 3L de agua desionizada con un pH de 7 y una temperatura de 23 °C, adicionalmente a 
ello se agregó una piedra difusora con el propósito de mantener el medio en constante 
recirculación para obtener la mayor absorción de luz natural evitando la sedimentación, luego se 
sembró en cada frasco 500ml de las cepas. 
 
Para los cultivo se empleó una dieta de urea (20ml/L) y un fertilizante foliar comercial 
(20ml/L). Una vez establecidos los cultivos se esperó una semana a que la tasa poblacional 
aumentara. En el mantenimiento de los cultivos de microalgas, se renovaba el 70% del agua 
cada dos semanas y se alimentaba con las mismas concentraciones empleadas en la dieta en las 
mismas condiciones ambientales. 
 
4.3.1.2. Protocolos del zooplancton. 
 
Para el cultivo de Daphnias sp. se sembró a razón de 10 individuos por cada 3L de agua de 
acuario en 5 frascos de vidrio (4L), con una temperatura de 22 °C y con un pH de 6,7. En cada 
recipiente se adiciono una piedra difusora con el propósito de mantener el medio oxigenado. 
Posteriormente se agregó 10ml del cultivo con Chlorella sp. cada 3 días durante dos semanas y, 
donde se realizó un recambio de agua del 50% en una semana. 
 
Pasada las dos semanas de siembra se trasladaron todos los individuos, (dejando solo 10 
individuos por frasco y realizando un recambio de agua del 100%) a un acuario con 120L, bajo 
condición ideales para su reproducción por partenogénesis (temperatura 28 °C; pH de 6,7), 
45 
 
 
 
además de la piedra difusora, se alimentan cada tres días. El mantenimiento se realizó cada 15 
días, en el que, se vuelve a transferir al acuario los individuos de los frascos. 
 
En el cultivo de Philodinia Sp. se sembró a razón de 10 individuos/ml por cada 3L de agua 
desionizada en 5 recipientes de vidrio (4L) a una temperatura de 22 °C y un pH de 7. Después se 
adiciono inicialmente a la dieta del rotífero 20ml del medio que contiene Chorogonium sp. En 
estos medios el uso de piedra difusora no fue necesario ya que el rotífero suele crecer mejor en 
el sedimento. El suministro de la alimentación fue cada semana con 10ml del cultivo de 
Chorogonium sp. El mantenimiento de este medio se realizó cada dos semanas donde se hizo un 
recambio de agua del 50% sin deshacerse del sedimento ya establecido en los recipientes. 
 
 
4.3.2. Cultivo de la cepa probiótica. 
 
 
La levadura utilizada fue obtenida en DISTRINES Distribuidores en Colombia de 
insumos para cerveza artesanal. La cepa se caracteriza por su rápida capacidad 
fermentativa en una temperatura de fermentación entre los 12-25°C, condiciones idóneas 
que nos permitió mantenerla en el laboratorio dispuesta para este experimento. 
 
 
 
 
46 
 
 
 
4.3.2.1. Activación. 
 
 
En 5ml de agua destilada a una temperatura de 27+3 °C se rehidrato 1g de la levadura seca en 
un Beaker 50ml, una vez que la levadura se constituyó en forma de crema se mantuvo en 
agitación por alrededor de 15 min. 
 
 
4.3.2.2. Inoculación. 
 
 
Para la inoculación se preparó un cultivo sólido. Se tomó 19.5gr de polvo Sabouraud y se 
diluyo en 300ml de agua destilada calentándolo y agitando frecuentemente hasta el punto de 
ebullición durante 1 minuto para homogeneizar la mezcla. Luego se esterilizado en autoclave a 
121° C durante 15 minutos. Posteriormente se le adiciono a 15 cajas de Petri (25ml). 
 
El método de siembra utilizado fue en estrías cruzadas por superficie en el medio de cultivo 
solido con agar Sabouraud. Este procedimiento se llevó a cabo en una cámara de flujo, con la 
ayuda de una asa bacteriológica en L previamente esterilizada una muestra del inoculo. 
 
4.3.2.3. Incubación. 
 
La levadura viable se mantuvo en una incubadora a una temperatura de 22°C, 24 horas con 
47 
 
 
 
el fin de obtener colonias para suministrarlas a las dientas con sus respectivas 
concentraciones. 
 
 
4.3.2.4. Unidades formadoras de colonias. 
 
 
Finalizado el tiempo de incubación se realizó el conteo de las Unidades Formadoras de 
Colonia (UFC), con la técnica de la Cámara de Neubauer. Se basó en contar las “unidades 
formadoras de colonias” o UFC presentes en un gramo (probiótico activado)