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Espermatogénesis y Espermiogénesis

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CORHUILA – Corporación Universitaria del Huila
Departamento de Medicina Veterinaria y Zootecnia
Embriología
Espermatogénesis y Espermiogénesis
	 2019-1
	
	
	
ESPERMATOGENESIS Y ESPERMIOGENESIS
EMBRIOLOGÍA
MARIA VALENTINA MOLINA CERTUCHE
Docente: Heliana Andrea Pinto Salinas
CORHUILA – Corporación Universitaria del Huila
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y CIENCIAS AFINES
DEPARTAMENTO DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
PREGRADO EN MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
NEIVA - HUILA
2019
ESPERMIOGENESIS
La espermiogenesis o metamorfosis es la fase final de la espermatogénesis, que fue inducida a partir de moléculas señalizadoras; es un proceso de conversión de espermátides haploides (célula redonda, contiene 23 cromosomas) a espermatozoides maduros. En esta fase no hay división celular, solo diferenciación celular y ocurre que cada espermátide pasa a convertirse en un espermatozoide con estructura alargada y delgada (Tortora & Derrickson, 2013). La espermiogenesis se divide en 4 fases importantes: 
La fase de Golgi
En la primera fase de la espermiogenesis, el aparato de Golgi se transforma en acrosoma localizada en la parte apical del núcleo (Simon, 2003). Los centriolos que están situados en forma de T, van migrando hacia lo que más adelante será la base del núcleo. El centriolo proximal se sitúa en la parte basal de núcleo y a partir del centriolo distal crece el axonema que está conformado por 2 microtúbulos centrales y 9 pares de microtúbulos periféricos. (Olivera, Ruiz, Tarazona, & Giraldo, 2006)
La fase del capuchón acrosómico
En esta fase la vesícula acrosomal se aplana formando una capucha, de donde viene su nombre. El núcleo que esta sobre la capucha, se compacta provocando que no pueda haber ni replicaciones ni transcripciones. Esto hace que el espermatozoide sea dependiente de modificaciones postranscripcionales como la fosforilación de proteínas para que puedan ser adaptadas a la función. Las fosforilaciones de proteínas suceden desde las células germinales, en los residuos de tirosina y treonina. (Olivera, Ruiz, Tarazona, & Giraldo, 2006)
La fase acrosomal
La espermátide da un giro quedando el acrosoma en dirección con la membrana basal, allí se depositan gránulos, el citoplasma se desplaza y se localiza por debajo de la unión del núcleo axonema. Igualmente, el flagelo aumenta su longitud y los microtúbulos citoplasmáticos se organizan formando una vaina cilíndrica llamada manguito. Es en esta fase donde el espermatozoide ya está en su morfología definitiva. (Olivera, Ruiz, Tarazona, & Giraldo, 2006)
Fase de maduración
En esta fase final es donde se pueden observar las ultimas formaciones de los espermatozoides, como la forma de la cabeza (oval y plana), la cubierta de sus dos terceras partes por el acrosoma y la cola determinada por las piezas media (se encuentran las mitocondrias en forma de hélice), principal y terminal. Se reduce el citoplasma por desplazamiento formando la gota citoplasmática. Este proceso finaliza con la espermiación y libera los espermatozoides a la luz del túbulo seminífero. En la eyaculación, los espermatozoides con el plasma seminal (secretado por las células de Sertoli) pasan por la uretra a través de movimientos peristálticos. (Olivera, Ruiz, Tarazona, & Giraldo, 2006) Los espermatozoides recién liberados son inmóviles; el líquido donde se transportan a lo largo de los túbulos seminíferos entran en los túbulos rectos. En el mediastino testicular entran en la rete testis, que es un sistema de conductos anastomosados revestidos por el epitelio simple cúbico, y desde allí se desplazan hacia los conductillos eferentes y luego hacia el conducto del epidídimo. Los espermatozoides pueden vivir varias semanas en la vía espermática del macho, pero sobreviven sólo 2 o 3 días dentro del aparato genital femenino. (Ross & Pawlina, 2007)
ALTEraciones de la espermatogenesis
Es importante saber que para saber acerca de las alteraciones que puede o no tener una muestra de semen, se debe realizar un espermograma el cual evalúa la apariencia, licuefacción, viscosidad, volumen de la muestra y pH. Esto con el fin de determinar la motilidad de los espermatozoides, la cual se evalúa mediante una muestra de 10 μL entre lamina y laminilla; también se valora la vitalidad de los espermatozoides, mediante la coloración con eosina, el recuento de espermatozoides mediante la cámara de Neubauer y la morfología de los espermatozoides que consiste en el examen detallado de 200 espermatozoides en una placa coloreada con coloración de Papanicolaou o coloración de Gram. (Toro, 2009) Se debe tener en cuenta que un espermatozoide normal es de la siguiente manera:
Las células espermatogénicas pueden sufrir una serie de afectaciones, que pueden ser adquiridas o congénitas. Se pueden clasificar en factores como:
· Deficiencias alimentarias: Es comprobado que las vitaminas, coenzimas y oligoelementos afectan la formación de los espermatozoides. 
· Factores ambientales o estilo de vida: En un estudio se comprobó que los jóvenes de poblaciones rurales tenían un recuento promedio de espermatozoides mayor que el grupo urbano.
· Trastornos del desarrollo embrionario: La criptorquidia, hipospadias y bajo peso al nacer son un riesgo para padecer cáncer testicular que está asociado en una diminución de calidad del semen y reducción de la fertilidad. 
· Enfermedades sistémicas o infecciones locales: Como HIV, infecciones virales o trastornos metabólicos.
· Temperatura testicular elevada: Puede provocarse por estilo de vida sedentario
· Hormonas esteroides y fármacos relacionados: La exposición a estrógenos sintéticos pueden ejercer un retrocontrol negativo sobre la secreción de FSH. 
· Agentes tóxicos: Agentes mutágenos, antimetabolitos y pesticidas afectan la espermatogenesis y la producción de espermatozoides.
· Radiación ionizantes y agentes alquilantes: Comprobado que con gas mostaza nitrogenada y procarbazina causan efectos tóxicos sobre los espermatogonios, afectan la cantidad y motilidad de ellos. (Ross & Pawlina, 2007)
Estos factores pueden causar las siguientes alteraciones o anormalidades de los espermatozoides:
Anormalidades morfológicas (Teratozoospermia)
Respecto a las anormalidades morfológicas se pueden presentar defectos de la cabeza, los cuales pueden ser acintado, periforme, redonda, (que se puede clasificar en sin acrosoma o pequeña) amorfa, vacuolada o pequeña con un área acrosomal. ( Editorial Medica Panamericana, S.A., 2001)
También pueden ser respecto a los defectos del cuello y la pieza media los cuales se clasifican en cuello doblado, inserción asimétrica, grueso o delgado. ( Editorial Medica Panamericana, S.A., 2001)
Igualmente hay defectos de la cola como corta o doblada. La gota citoplásmica también sufre anormalidades como enrollada o >1/3 de la cabeza (gota mayor que un tercio del área de una cabeza de espermatozoide normal). ( Editorial Medica Panamericana, S.A., 2001)
Alteraciones de la espermatogénesis
· Normozoospermia: Eyaculado normal
· Oligozoospermia: (Concentración < 20 × 106 espermatozoides/mL) Es una de las alteraciones más frecuentes en pacientes infértiles y hace referencia al semen que tiene baja cantidad de espermatozoides. (Tapia & Rojas, 2003)Se divide en leve, moderada y severa; esta última se define cuando hay menos de 5 millones de espermatozoides por mL. (Sanchez, Hernandez, Ávila, López, & Sánchez, 2014) 
· Astenozoospermia: Se refiere a la baja movilidad espermática en una muestra seminal, y causa esterilidad ya que los espermatozoides no son lo suficientemente capaces para llegar hasta el oocito y fecundarlo. (Sanchez, Hernandez, Ávila, López, & Sánchez, 2014)
· Teratozoospermia: Es una de las alteraciones más frecuentes y se refiere a que la morfología del espermatozoide está afectada. (Sanchez, Hernandez, Ávila, López, & Sánchez, 2014)
· Criptozoospermia: Es una alteración de la concentración de espermatozoides (muy bajo número). La criptozoospermia es un caso muy grave de oligozoospermia (Tapia& Rojas, 2003)
· Azoospermia: Es la ausencia de espermatozoides en una muestra de semen centrifugada. (Tapia & Rojas, 2003)
· Oligoastenoteratozoospermia (OAT): Afecta los espermatozoides por 3 parámetros, que son baja concentración de espermatozoides, baja motilidad y afectación de la morfología. (Sanchez, Hernandez, Ávila, López, & Sánchez, 2014)
· Astenoteratozoospermia: Afecta los espermatozoides por 2 parámetros, que son baja motilidad y afectación de la morfología de los espermatozoides. (Sanchez, Hernandez, Ávila, López, & Sánchez, 2014)
· Oligoteratozoospermia: Afecta los espermatozoides por 2 parámetros, baja cantidad de espermatozoides y afectación de la morfología. (Sanchez, Hernandez, Ávila, López, & Sánchez, 2014)
· Oligoastenozoospermia: Afecta los espermatozoides por 2 parámetros, que son baja concentración de espermatozoides y baja motilidad. (Sanchez, Hernandez, Ávila, López, & Sánchez, 2014)
· Globozoospermia: Es una infertilidad masculina causada por la presencia de espermatozoides con cabeza redonda que carecen de acrosoma y la membrana nuclear aberrante. (Sanchez, Hernandez, Ávila, López, & Sánchez, 2014)
Referencias
Editorial Medica Panamericana, S.A. (2001). OMS MANUAL DE LABORATORIO para el examen del semen humano (4 ed.). Madrid, España: Editorial Médica Panamericana.
Olivera, M., Ruiz, T., Tarazona, A., & Giraldo, C. (2006). El espermatozoide, desde la eyaculación. Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias, 19, 426-435.
Ross, M., & Pawlina, W. (2007). Histología. Madrid: Editorial Médica Panamericana.
Sanchez, E., Hernandez, J., Ávila, A., López, L., & Sánchez, S. (2014). Alteraciones en el semen de pacientes con problemas de infertilidad. ARCHIVOS DE MEDICINA, 1-17.
Simon, M. (2003). Avances en el conocimiento de la espermatogénesis. Implicaciones clínicas. REVISTA IBEROAMERICANA DE FERTILIDAD, 20, 213-223. Obtenido de http://www.revistafertilidad.org/RecursosWEB/fertilidad/Fert-Jul-Agost03-Trabajo1.pdf
Tapia, R., & Rojas, J. (2003). Semiología del análisis de semen. Colegio Mexicano de Urologia, 48-52.
Toro, A. (2009). Espermograma. Medicina & Laboratorio: Programa de Educación Médica Continua Certificada, 15, 145-167.
Tortora, G., & Derrickson, B. (2013). Principios de Anatomía y Fisiología (13a ed.). México D.F: Editorial Médica Panamericana.
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