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SICOMORO, GREVILLEA, ROBLE ROJO AMERICANO, PINO PIÑONERO, CASTAÑO, RUIL Y CEREZO AMERICANO, NUEVAS ALTERNATIVAS PARA PRODUCIR MADERA DE ALTO VALOR Verónica Loewe M.1 Marta González O.2 Editoras Noviembre 2003 1 Ing. Forestal (U. de Chile); Especialización en producción de maderas nobles (U. de Bolonia, Italia); MPA (U. de Harvard, EE.UU.). Profesora Pontificia Universidad Católica de Chile. Jefe de Proyectos, Instituto Forestal, Sede Centro Norte. Huérfanos 554. Santiago, Chile. vloewe@infor.cl 2 Ing. Forestal (U. de Chile); Ingeniero de Proyectos. Instituto Forestal, Sede Bío-Bío. Camino a Coronel Km 7,5. San Pedro de la Paz. Concepción. mgonzale@infor.cl 2 I.S.B.N.: 956-8274-18-9 Registro de Propiedad: Nº 136.244 Diseño y Diagramación: Impresión: Noviembre 2003 La información que entrega el presente documento es resultado del proyecto “Silvicultura de especies no tradicionales: una mayor diversidad productiva” Fase I, ejecutado por el Instituto Forestal (INFOR) entre los años 1995 y 1998, y actualizado parcialmente por la Fase II de dicho proyecto, ejecutado entre los años 1998 y 2003, ambos financiados por la Fundación para la Innovación Agraria (FIA). 3 ÍNDICE GENERAL CAPÍTULO I: Sicomoro (Acer pseudoplatanus) 1. ANTECEDENTES GENERALES ................................................................................ 7 2. REQUERIMIENTOS ECOLÓGICOS ......................................................................... 14 3. PLAGAS Y ENFERMEDADES .................................................................................. 19 4. SILVICULTURA Y MANEJO .................................................................................... 25 5. PRODUCCIÓN ......................................................................................................... 45 6. BIBLIOGRAFÍA.......................................................................................................... 51 CAPÍTULO II: Grevillea (Grevillea robusta) 1. ANTECEDENTES GENERALES .............................................................................. 57 2. REQUERIMIENTOS ECOLÓGICOS ......................................................................... 60 3. PLAGAS Y ENFERMEDADES .................................................................................. 64 4. SILVICULTURA Y MANEJO ..................................................................................... 67 5. PRODUCCIÓN .......................................................................................................... 96 6. BIBLIOGRAFÍA........................................................................................................ 106 CAPÍTULO III: Roble rojo americano (Quercus falcata) 1. ANTECEDENTES GENERALES ............................................................................ 114 2. REQUERIMIENTOS ECOLÓGICOS ....................................................................... 121 3. PLAGAS Y ENFERMEDADES ................................................................................ 123 4. SILVICULTURA Y MANEJO ................................................................................... 125 5. PRODUCCIÓN ........................................................................................................ 137 6. BIBLIOGRAFÍA........................................................................................................ 145 CAPÍTULO IV: Pino piñonero (Pinus pinea) 1. ANTECEDENTES GENERALES ............................................................................ 151 2. REQUERIMIENTOS ECOLÓGICOS ....................................................................... 158 3. PLAGAS Y ENFERMEDADES ................................................................................ 160 4. SILVICULTURA Y MANEJO ................................................................................... 165 5. PRODUCCIÓN ........................................................................................................ 184 6. BIBLIOGRAFÍA........................................................................................................ 187 CAPÍTULO V: Castaño (Castanea sativa) 4 1. ANTECEDENTES GENERALES ............................................................................ 194 2. REQUERIMIENTOS ECOLÓGICOS ....................................................................... 198 3. PLAGAS Y ENFERMEDADES ................................................................................ 202 4. SILVICULTURA Y MANEJO ................................................................................... 203 5. PRODUCCIÓN ........................................................................................................ 221 6. BIBLIOGRAFÍA........................................................................................................ 239 CAPÍTULO VI: Ruil (Nothofagus alessandrii) 1. ANTECEDENTES GENERALES ............................................................................ 244 2. REQUERIMIENTOS ECOLÓGICOS ....................................................................... 250 3. PLAGAS Y ENFERMEDADES ................................................................................ 250 4. SILVICULTURA Y MANEJO ................................................................................... 251 5. CARACTERÍSTICAS Y USOS DE LA MADERA ..................................................... 255 6. BIBLIOGRAFÍA........................................................................................................ 255 CAPÍTULO VII: Cerezo americano (Prunus serotina) 1. ANTECEDENTES GENERALES ............................................................................ 261 2. REQUERIMIENTOS ECOLÓGICOS ....................................................................... 271 3. PLAGAS Y ENFERMEDADES ................................................................................ 273 4. SILVICULTURA Y MANEJO ................................................................................... 280 5. PRODUCCIÓN ........................................................................................................ 299 6. BIBLIOGRAFÍA........................................................................................................ 308 5 CAPÍTULO I SICOMORO (Acer pseudoplatanus), UNA ALTERNATIVA PARA PRODUCIR MADERA DE ALTO VALOR Verónica Loewe M3. Mónica Subiri P4. Claudia Delard R5. 3 Ing. Forestal (U. de Chile); Especialización en producción de maderas nobles (U. de Bolonia, Italia); MPA (U. de Harvard, ESTADOS UNIDOS). Profesora Pontificia Universidad Católica de Chile. Jefe de Proyectos. Instituto Forestal, Sede Centro Norte. Huérfanos 554. Santiago. vloewe@infor.cl 4 Ing. Forestal (U. de Chile); Master en Gestión de la Innovación y de la Tecnología (Escuela Superior de Comercio de Toulouse, Francia). Consultora. Monica.subiri@iterra.cl 5 Ing. Forestal (E) (U. de Chile); Ingeniero de Proyectos. Instituto Forestal, Sede Centro Norte. Huérfanos 554. Santiago. cdelard@infor.cl mailto:Monica.subiri@iterra.cl 6 INDICE 1. ANTECEDENTES GENERALES ................................................................................ 7 1.1 DESCRIPCIÓN DEL ÁRBOL .................................................................................... 7 1.2 DISTRIBUCIÓN ......................................................................................................... 8 1.3 TIPOS FORESTALES ............................................................................................. 10 1.4 ASPECTOS REPRODUCTIVOS ............................................................................. 122. REQUERIMIENTOS ECOLÓGICOS ......................................................................... 14 2.1 CLIMA ..................................................................................................................... 14 2.2 SUELO .................................................................................................................... 15 2.3 ALTITUD ................................................................................................................. 19 3. PLAGAS Y ENFERMEDADES.................................................................................. 19 3.1 HONGOS................................................................................................................. 20 3.2 INSECTOS .............................................................................................................. 21 3.3 ANIMALES .............................................................................................................. 23 3.4 DAÑOS ABIÓTICOS ............................................................................................... 23 3.5 EXIGENCIAS PARA INTERNACIÓN DE SEMILLAS ......................................... 24 4. SILVICULTURA Y MANEJO .................................................................................... 25 4.1 PROPAGACIÓN ...................................................................................................... 25 4.1.1 Regeneración natural .................................................................................... 25 4.1.2 Propagación artificial ..................................................................................... 26 4.1.2.1 Viverización ............................................................................................ 26 4.1.2.2 Propagación vegetativa .......................................................................... 29 4.1.2.3 Micorrización ........................................................................................... 32 4.2 ESTABLECIMIENTO ............................................................................................... 33 4.2.1 Plantación...................................................................................................... 33 4.2.2 Plantaciones Mixtas ...................................................................................... 34 4.2.3 Densidad ....................................................................................................... 36 4.2.4 Control de malezas ....................................................................................... 36 4.3 MANEJO.................................................................................................................. 36 4.3.1 Crecimiento y Productividad .......................................................................... 36 4.3.2 Tratamientos Silviculturales .......................................................................... 40 4.3.2.1 Raleos ..................................................................................................... 41 4.3.2.2 Podas...................................................................................................... 42 4.3.3 Cosecha ........................................................................................................ 45 5. PRODUCCIÓN ......................................................................................................... 45 5.1 MADERA ................................................................................................................. 45 5.1.1 Características tecnológicas .......................................................................... 45 5.1.2 Secado .......................................................................................................... 47 5.1.3 Usos .............................................................................................................. 48 5.2 PRODUCCIÓN MUNDIAL ....................................................................................... 49 5.3 PRECIOS Y MERCADOS ....................................................................................... 49 6. BIBLIOGRAFÍA ......................................................................................................... 51 7 1. ANTECEDENTES GENERALES Se conocen alrededor de 150 especies de arce, de las cuales la mayoría crece en el este de Asia, 13 son nativas de Norteamérica y 10 de Canadá (Hosie, 1969). Acer pseudoplatanus es conocida como sicomoro (Edlin, 1985), en Estados Unidos como “planetree” (Collingwood y Brush, 1964) y en Inglaterra como Great Maple (Bennett et al., 1956). También se le denomina arce blanco, debido a que presenta una tonalidad más clara que los demás (López, 1984). 1.1 DESCRIPCIÓN DEL ÁRBOL Sicomoro es un árbol que alcanza entre 18 y 30 m de altura (IDF, 1981; Gordon y Rowe, 1982; Calvo et al., s.f; Vieceli, 1989). El Ente Nazionale per la Celulosa e per la Carta (1990) señala que la especie alcanza 60 a 70 cm de diámetro, aunque se mencionan de hasta 1,5 m (Evans, 1984). Las hojas son simples, opuestas y dentadas (Ente Nazionale per la Celulosa e per la Carta, 1990), formadas por cinco lóbulos grandes puntiagudos, de 8 a 16 cm de largo; de color verde oscuro, y envés verde claro con pubescencia sobre las nervaduras principales; presentan un pecíolo largo (Suszka et al., 1994). En otoño se tornan amarillo-anaranjadas (Bernetti y Padula, s.f; Suszka et al., 1994). El crecimiento de sicomoro es bastante rápido, y habitualmente se explota entre los 120 y 150 años (Suszka et al., 1994), pudiendo llegar a vivir 300 a 400 años (Calvo et al., s.f; IDF, 1981; Vieceli, 1989). López (1984) señala que la especie es una de las de mayor tamaño dentro de su género; alcanza la mayor altura alrededor de los 60 años. Es un árbol deciduo, de fuste recto y grueso, con ramificaciones verticales, de copa larga y redondeada (Calvo et al., s.f; Vieceli, 1989). Las ramas son vigorosas y con brotes dispuestos en pares opuestos, fuertes, de varios tonos de verde (Edlin, 1985). Al crecer en áreas abiertas desarrolla un amplio follaje, presentando un aspecto similar a Acer platanoides, con fuste corto, ramas abiertas y copa redondeada, con el extremo superior no demasiado compacto (Collingwood y Brush, 1964). La corteza es de color gris con manchas rosáceas (Buresti et al., s.f), al principio lisa; gradualmente desarrolla segmentos rugosos en la superficie, los que caen continuamente, exponiendo el xilema joven (Edlin, 1985). En general la madera es de color gris metálico, pero en los árboles viejos toma una coloración naranjo-café pálido (op. cit.). Armand (1995) señala que en los estados juveniles sicomoro presenta un desarrollo monopódico, para posteriormente tornarse simpódico (Figura 1). FIGURA 1 8 ARQUITECTURA DE SICOMORO Fuente: Modificado de Armand (1995). La especie en estado juvenil soporta bien la sombra, pero en estado adulto se torna más intolerante. A pesar de ello el tronco no debe ser expuesto bruscamente al sol (Calvo et al., s.f; Vieceli, 1989). En el sur de Italia existen dos variedades de Acer pseudoplatanus; la variedad villosum ubicada en Calabria y Sicilia, y la variedad truncatum en Nápoles y Sicilia, con pequeñas diferenciaciones morfológicas de hojas y frutos (Bernetti y Padula, s.f). 1.2 DISTRIBUCIÓN 9 Sicomoro es nativo del centro de Europa y oeste de Asia (Bennett et al., 1956). Suszka et al. (1994), señalan que se distribuye principalmente en el centro y oeste de Europa; por el norte limita con la península báltica en el norte de España; el límite este lo compone el nor-este de Polonia y desciende hasta el centro de Ucrania, al sur de Rumania y Bulgaria. Limita por el sur con el extremo norte del Mediterráneo, al oeste con los Pirineos y al este con el centro de Grecia. Al sur de su distribuciónla especie se desarrolla en las montañas; al norte desciende a los valles hasta la península báltica. En Inglaterra ha resultado ser una de las pocas especies introducidas que se han asilvestrado, distribuyéndose principalmente en las áreas bajas, especialmente en valles de suelos calcáreos donde habitan fresno y haya (Savill, 1991). Actualmente existen alrededor de 540.000 ha de sicomoro en Inglaterra, alcanzando el 3% del total del área forestada (Locke, 1987 cit. por Savill, 1991). Es frecuentemente utilizado como árbol de protección, siendo muy resistente al viento. Se desarrolla bien tanto en el interior como en la costa (Edlin, 1985); sin embargo no es común encontrar regeneración natural de sicomoro en áreas abiertas de pastizales, debido a que presenta baja resistencia a la competencia de pastos (Savill, 1991). En Chile, la especie ha sido plantada con fines ornamentales y existen algunos ensayos experimentales en la VIII región. Considerando lo anterior, es que INFOR realizó un estudio aplicando una metodología que utiliza Sistema de Información Geográfico (SIG), para determinar la superficie potencial desde la VI a X región del país donde sicomoro podría crecer. Dicha metodología considera los requerimientos ecológicos de la especie (edáficos, climáticos y altitudinales) y las características de la zona de estudio; entre estos últimos, antecedentes climáticos (precipitación anual, humedad relativa, evapotranspiración potencial, temperaturas y meses secos entre otras), de suelo (drenaje, textura, profundidad, otras) y topográficos, los que son integrados y analizados con la asistencia de un Sistema de Información Geográfica y de Bases de Datos Relacionales (INFOR – FIA – FONSIP, 1998). En el Cuadro 1 se indica las superficies totales por región potencialmente aptas para el cultivo del sicomoro en Chile. CUADRO 1 SUPERFICIE POTENCIAL SIN RIEGO PARA SICOMORO EN CHILE 10 Región Superficie potencial total (ha) Superficie potencial sobre plantaciones forestales (ha) Superficie potencial sobre bosque nativo (ha) Superficie potencial sobre ASP* (ha) Superficie potencial sobre otros usos (ha) VI Región del Libertador General Bernardo O’Higgins 291.009 17.638 S.I. 2.979 270.392 VII Región del Maule 1.489.181 205.861 183.479 6.380 1.093.461 VIII Región del Bío - Bío 1.323.135 278.197 133.695 - 911.243 IX Región de La Araucanía 990.953 110.084 116.584 9.111 755.174 X Región de Los Lagos 1.833.192 89.444 643.646 13.606 1.086.496 TOTAL 5.927.470 701.224 1.077.404 32.076 4.116.766 Fuente: INFOR – FIA – FONSIP (1998). ASP*: Áreas Silvestres Protegidas del Estado Las superficies que se indican han sido corregidas considerando la presencia de plantaciones forestales, bosque nativo y áreas silvestres protegidas, incorporándose al Sistema de Información Geográfica. Sin embargo, se debe hacer la salvedad que estas zonas no incluyen restricciones como uso de la tierra, capacidad de uso del suelo e infraestructura, entre otras, lo que unido a la escala de trabajo sólo permite obtener superficies indicativas de la distribución potencial de la especie basándose en clima y suelo, por lo que los datos no se pueden traducir directamente en superficie útil para plantación. Debido a ello el usuario debe adoptar esta información sólo como una guía en la distribución potencial de la especie y validarla según su realidad local. 1.3 TIPOS FORESTALES Generalmente se encuentra como árbol aislado o en pequeños grupos en el bosque mesófilo caducifolio de Italia y en bosques mixtos de castaño, carpino, Fagus sp. y abeto blanco (Calvo et al., s.f; Vieceli, 1989; Bernetti y Padula (s.f)). Evans (1984) señala que la especie generalmente se asocia con haya (Fagus sp), fresno (Fraxinus excelsior) y cerezo (Prunus sp), requiriendo plena luz después del establecimiento. En Inglaterra sicomoro participa como especie dominante en un 9% en los bosques altos de latifoliadas (Kerr y Evans, 1993), pero podría ser reemplazado por otras especies. Además se ha observado que en áreas donde crece junto a fresno la regeneración de ambas especies es pobre bajo sus doseles. La proporción de regeneración de sicomoro decrece en la medida que ésta aumenta en el dosel superior, por lo tanto es posible que se alterne con otras especies (Savill, 1991). Según Taylor (cit. por Savill, 1991), en áreas abandonadas, la presencia de sicomoro es escasa y poco invasora, mientras que en áreas intervenidas la invasión generalmente es rápida y agresiva; en la fase inicial es una especie dominante, y posteriormente declina hasta un punto de equilibrio. En áreas en que sicomoro no es 11 totalmente dominante, no causa la extinción de las especies del sotobosque sino que, por el contrario, aumenta la diversidad de éstas, ya que permite el paso de la luz. En formaciones boscosas prealpinas ubicadas en Taipana, Italia, se han encontrado asociaciones vegetales compuestas por fresno, sicomoro y aliso negro, siendo fresno la especie dominante; sicomoro participa con un 26% del área basal en el dosel superior. Este tipo de formación se ubica entre los 350 y 900 msnm (Salbitano, 1988). En el Cuadro 2 se presentan las principales asociaciones vegetales con presencia de sicomoro en la región de Taipana. En formaciones de arce y fresno con densidades superiores a 18 m 2 de área basal, la semillación de fresno corresponde al 90%; sin embargo la regeneración natural de sicomoro con plántulas de una altura superior a 15 a 20 cm corresponde al 32% (op. cit.). CUADRO 2 ASOCIACIONES VEGETALES EN BOSQUES PREALPINOS DE ITALIA Especies % AB del plano superior por especie AB plano superior /AB total Ambiente climático Suelo Exp. Altitud AB Altura dominante Especie principal plano intermedio e inferior Superf. por especie Fagus sylvatica 68-90 70-90 Fresco Calcár eo N-E (O) 950- 1.550 17- 36 7-23 Fagus silvática 17% Sicomoro 5-10 Sorbus sp 5-8 Picea sp. 40-80 50-90 Fresno - N-E 600-800 1-29 1-13 Fraxinus excelsior 4% Abies alba 5 Sicomoro Fraxinus excelsior < 5 Sicomoro < 5 Fraxinus excelsior 16-60 70-90 “Mesico” a fresco Calcár eo 0-N- E 400-850 18- 38 12-25 Corylus avellana 22% Alnus glutinosa Sicomoro Sicomoro Fraxinus excelsior Prunus sp. Fraxinus ornus Castanea sativa Alnus glutinosa Carpinus betulus Alnus incana Tilia sp Juglans sp Fraxinus ornus Fraxinus excelsior 12-29 70-80 Moderada mente fresco “flysch ” N-E 500-750 21- 26 12-19 Corylus avellano 5% 12 Especies % AB del plano superior por especie AB plano superior /AB total Ambiente climático Suelo Exp. Altitud AB Altura dominante Especie principal plano intermedio e inferior Superf. por especie Fagus sylvatica 23-38 Fraxinus excelsior Sicomoro 9 Alnus glutinosa 13 Prunus sp. 25 Carpinus betulus 13 Ulmus sp 7 Fraxinus excelsior 0-45 55-70 Intermedio Calcár eo (N)- E-S 400-900 8-29 12-14 Corylus avellano 9% Sicomoro 18 Fraxinus ornus Ostrya carpinifolia 14 Sicomoro Fraxinus ornus 0-19 Fraxinus excelsior Prunus sp. 0-20 Corylus avellano 0-11 AB: Area basal Fuente: Modificado de Salbitano (1988). 1.4 ASPECTOS REPRODUCTIVOS La floración ocurre a mediados de abril en el hemisferio norte (Gordon y Rowe, 1982; Savill, 1991). Suszka et al. (1994) señalan que puede ocurrir entre abril y mayo, antes, durante o después de la foliación, y que en las montañas puede tener lugar en junio.Las inflorescencias son de color verde-amarillo, bastante pequeñas y poco llamativas, siendo buenas productoras de néctar; en mayo y junio del hemisferio norte atraen a muchos insectos, incluyendo abejas (Evans, 1984; Savill, 1991). Las flores pueden ser hermafroditas, pero principalmente por la reducción de estambres o pistilos pueden ser funcionalmente masculinas o femeninas (Suszka et al., 1994). Sin embargo en la base de las inflorescencias se encuentran flores principalmente femeninas, en la mitad masculinas y hacia la punta estériles (Savill, 1991). No hay evidencia sobre la existencia de flores de distintos sexos en la copa de un mismo árbol (Barker et al., 1982 cit. por Owens y Blake, 1985); sin embargo Hibbs y Fischer (cit. por Owens y Blake, 1985) señalan que cambios en la intensidad de luz producen cambios de sexo en sus flores. Es así como en copas abiertas la mayoría de las flores son masculinas, pero en doseles cerrados decrece la formación de flores masculinas y se incrementa la de flores femeninas, siendo mayor la producción de semillas. 13 Las flores se desarrollan como apéndices laterales a lo largo de cada eje de una inflorescencia (Anderson y Guard,1964 cit. por Owens y Blake, 1985). El racimo puede alcanzar al final de la floración 13 a 20 cm de largo; la floración completa de una inflorescencia dura de 7 a 15 días (Suszka et al., 1994). El fruto está compuesto por dos sámaras, de 36 a 55 mm que se separan al momento de la dispersión (op. cit.). La sámara es gruesa y alada, angosta en la base, ensanchándose rápidamente hacia el exterior. Una de las sámaras se dispone en ángulo agudo con respecto a la otra (Edlin, 1985; Suszka et al., 1994); cada una contiene una semilla pequeña, que se forma en primavera y se dispersa en otoño (Suszka et al, 1994). Gordon y Rowe (1982) señalan que en el hemisferio norte la dispersión ocurre entre septiembre y octubre cuando las semillas están de color café, fecha en que se debe realizar la colecta. Es recomendable colectar las semillas desde los árboles, con escaleras o escalándolos. Tanto arce como haya y abedul producen semillas casi todos los años (Owens y Blake, 1985; Kerr y Evans, 1993); sin embargo semillaciones abundantes se presentan cada dos o tres años (Gordon y Rowe, 1982; Savill, 1991; Suszka el al., 1994). Las semillas maduran y se dispersan entre septiembre y octubre (hemisferio norte); se tienen buenas semillaciones a los 25 - 30 años en condiciones soleadas (Gordon y Rowe, 1982; Savill, 1991; Kerr y Evans, 1993), y a partir de los 40 años en condiciones sombrías (Suszka et al., 1994), siendo el mejor período entre los 40 y 60 años (Savill, 1991), y declinando a partir de los 70 años (Kerr y Evans, 1993). De mil sámaras se pueden obtener 66 a 180 g de semillas, con una media de 120 g, presentando de 6.500 a 16.000 semillas por kilogramo, con una media de 11.000 (Suszka el al., 1994). El porcentaje de pureza es de 90 a 95% y el contenido de humedad al momento de la colecta es de 42 a 55%. Contrariamente, Gordon y Rowe (1982) determinaron para sicomoro que el número de semillas por kilogramo es de 20.000 a 120.000, con un promedio de 66.000, con un porcentaje de pureza del 60% y viabilidad del 60%; el número de semillas viables por kilogramo es de 5.000. La producción de semillas y la regeneración natural es buena en áreas moderadamente sombrías (Savill, 1991); incluso en hábitats naturales puede llegar a ser invasora (IDF, 1981). Su tolerancia a la sombra se mantiene hasta el final de la juventud (Savill, 1991). Las semillas germinan en la primavera siguiente, emergiendo dos cotiledones verdes (Edlin, 1985). La especie también regenera de tocón vigorosamente (IDF, 1981). La regeneración abundante generalmente está asociada a sitios con altos contenidos de mercurio (Savill 1991). 14 2. REQUERIMIENTOS ECOLÓGICOS Sicomoro es considerado como tolerante a la sombra (Flore Forestier Française cit. por Armand, 1995), o de semi-luz (IDF, 1981). Resiste bien la polución ambiental (Savill, 1991; Kerr y Evans, 1993); sin embargo, no soporta gran cantidad de fauna invertebrada, a diferencia de la mayoría de las especies nativas de Europa (Savill, 1991). 2.1 CLIMA TEMPERAMENTO Armand (1995) define a sicomoro como una especie de temperamento húmedo-tropical. El Ente Nazionale per la Celulosa e per la Carta (s.f) la considera mesofila. Se desarrolla en aquellas zonas donde crece el castaño, prefiriendo lugares frescos y sombríos; también ocupa el área de distribución de las Fagaceas. TEMPERATURA Calvo et al. (s.f) señalan que la especie crece en climas lluviosos y frescos, pero por tratarse de una especie robusta resiste bien la estación cálida y seca, como también el frío. Requiere una temperatura media anual de 6 a 14ºC, con una mínima media anual de -20ºC. La temperatura media anual generalmente no baja de 7 a 8ºC, con un valor medio del mes más frío de -4ºC (Ente Nazionale per la Celulosa e per la Carta, s.f). PRECIPITACIÓN La especie se desarrolla en climas montañosos y submontañosos, con una precipitación anual superior a 800 - 900 mm, concentrada en primavera y otoño; la duración del período seco no supera uno o dos meses (Ente Nazionale per la Celulosa e per la Carta, s.f). Según Calvo et al. (s.f) necesita precipitaciones bien distribuidas durante el período de crecimiento vegetativo, con una media anual de 700 mm. 15 Las variaciones en precipitación y temperatura media parecen no tener gran influencia en sicomoro (Kerr y Evans, 1993). HELADAS Savill (1991) señala que sicomoro es mucho menos sensible a las heladas tardías de primavera que la mayoría de las especies deciduas. Kerr y Evans (1993) la clasifican como moderadamente susceptible a las heladas. VIENTO Y SALINIDAD Se considera como muy tolerante al viento en suelos húmedos y fértiles, como también a la brisa salada (Kerr y Evans, 1993). Resiste la exposición al viento y a la brisa salina mejor que la mayoría de las latifoliadas de los bosques de Inglaterra (Evans, 1984). Es una de las especies de hoja ancha que habita a mayor altitud; el límite superior está dado principalmente por los requerimientos de suelo, y no de clima (Kerr y Evans, 1993). 2.2 SUELO TEXTURA Y PROFUNDIDAD Prefiere terrenos sueltos, profundos, fértiles y moderadamente soleados; tolera suelos medianamente arcillosos y se puede desarrollar en los graníticos. Crece bien en suelos calcáreos y en algunos pobres tales como arenas oceánicas o arcillosos descalcificados (Calvo et al., s.f). Sin embargo, el IDF (1990) señala que la especie necesita suelos frescos durante todo el año, con profundidades de 60 a 70 cm. Se desarrolla bien solamente en suelos fértiles especialmente ricos en limo pero con bajo contenido de humus (Edlin, 1985). La compactación y la pedregosidad parecen tener un efecto significativo en las tasas de crecimiento de la raíz y en su forma (Wairu et al., 1993). COMPOSICIÓN QUÍMICA Y PH Se adapta a cualquier composición química que no sea demasiado ácida (Calvo et al., s.f); y soporta bien los calcáreos (IDF, 1981). El Ente Nazionale per la Celulosa e per la Carta (s.f) concuerda con lo señalado, destacando que soporta porcentajes de arcillas bastante elevados. Plantas de sicomoro no se han desarrollado bien en suelos deficientes en fosfatos (Helliwell, 1965; 1973 cit. por Helliwell y Harrison, 1979). 16 Sicomoro crece y se desarrolla bien en suelos neutros o en lomas calcáreas, arcillas con piedras sobre yeso y siempre en suelos arenosos ácidos, profundos y bien drenados, pero que retienen algo de agua. IDF (1990) señala que la especie se desarrolla bien en suelos limosos, con pH de 5 a 8, siendo el óptimo 6,5; incluso puede soportar un pH inferior a 5. Evans (1984)define un rango menor: 5,5 a 7,5, considerando a la especie como moderadamente exigente. Kerr y Evans (1993) aconsejan evitar los suelos con pH menor a 4,5; Plantas de sicomoro no se han desarrollado bien en suelos ácidos (Helliwell, 1965 y 1973 cit. por Helliwell y Harrison, 1979). Los árboles jóvenes se desarrollan bien en suelos con pH entre 6 y 7 (Helliwell, 1965 cit. por Savill 1991); sin embargo esto no implica que sea una especie demandante de suelos muy buenos. DRENAJE Kerr y Evans (1993) señalan que las condiciones óptimas de suelo para sicomoro son lomas bien drenadas y fértiles así como suelos ricos en nitrógeno y fósforo, tolerando variaciones de suelos y sitios. No son aptos los suelos secos o delgados, pastizales, cauces de ríos, zonas mal drenadas y suelos con arcillas pesadas. No se desarrolla en suelos de condiciones extremas de humedad, aunque requiere suelos húmedos y bien drenados (Helliwell, 1965 cit. por Savill 1991). Regenera bien en forma natural en suelos de rápida descomposición de materia orgánica y de libre nitrificación. No regenera donde el pH del suelo es menor a 4, en podsoles ni en arcillas pesadas, y tampoco donde el agua acumulada en el invierno supera los 30 cm sobre la superficie del suelo. Cooper (1986) señala que en el norte de Irlanda se regenera tanto en suelos básicos como ácidos, pero en cuanto a cantidad, calidad y frecuencia es más pobre en estos últimos. A modo de síntesis, las condiciones en que puede producir madera de buena calidad son las siguientes (Kerr y Evans, 1993): Suelos ácidos en la superficie, pero ricos en bases a medida que se incrementa la profundidad, con pH mayor a 5 a una profundidad de 60 cm. Suelos que no presenten inundaciones, fértiles, ricos en nitrógeno, como también bajos en fertilidad. Suelos con inundaciones temporales, arcillosos. 17 Suelos de superficies calcáreas de profundidades mayores a 60 cm, con zonas de piedra caliza y yeso. Suelos de superficies calcáreas con profundidades menores a 60 cm, formados por laderas calcáreas y algunas áreas de piedra caliza. Para evaluar el efecto de las condiciones del sitio en el desarrollo de la especie, Wairiu et al. (1993) realizaron un estudio en el nordeste de Escocia, estudiando dos parcelas de cuatro años de edad, espaciadas a 5 y 10 m respectivamente (400 y 100 árboles por hectárea respectivamente). El ensayo se ubicó entre los 140 a 205 msnm, en suelos bien drenados formados por cuarzo, micas y esquistos; en algunas áreas de la parcela de espaciamiento de 5 m se observó una capa de subsuelo compactada entre los 34 a 46 cm. El suelo es pobre en nutrientes y moderadamente pedregoso (15% de pedregosidad superficial). El perfil mostró un rango de agua disponible de entre 54 a 67 mm y 113 a 135 mm en las parcelas de espaciamiento 5 y 10 m, respectivamente. La plantación se realizó a principios de abril con plantas de un año de edad, dispuestas en pares. Los árboles fueron protegidos con shelters de 1,2 m de altura junto a un tutor de madera de 1,5 m de altura. La pradera se mantuvo con una carga animal promedio de 12,5 ovejas por hectárea. Se mantuvo un radio de 50 cm alrededor de cada árbol libre de malezas. Cada parcela fue fertilizada uniformemente con 160 kg/ hectárea al año de N:P:K (20:6:6). En el Cuadro 3 se observa que los árboles a 5 m presentaron mayor altura que los a 10 m, aunque éste último presentó árboles de mejor forma que la parcela de mayor densidad. La menor altura se obtuvo en la parcela menos densa, lo que se puede deber a que el 27% presentó daños en la yema apical, por lo que una rama lateral tomó la dominancia. La parcela de espaciamiento 5 m solamente mostró un 12% de yemas apicales dañadas, lo que se puede deber a la frecuencia en que las ovejas dañaron los shelters, siendo más severo el daño en la parcela de menor densidad. CUADRO 3 CRECIMIENTO DE SICOMORO SEGÚN DOS ESPACIAMIENTOS EN ESCOCIA Año Espaciamiento (m) Altura media (m) 1 5 10 0,377 0,342 2 5 10 0,780 0,654 3 5 10 1,574 1,254 Incremento en altura año 1 a 3 5 10 1,196 0,926 Fuente: Modificado de Wairiu et al. (1993). 18 La resistencia a la penetración del suelo fue significativamente mayor en la base de los árboles que entre las hileras en ambas parcelas, debido a que el suelo en esa zona permaneció generalmente más húmedo que en la pradera, lo que conduce a una mayor resistencia a la penetración. El espaciamiento 5 m mostró una menor compactación. Helliwell y Harrison (1979) estudiaron el crecimiento de plantas de sicomoro y otras especies durante dos temporadas en cinco tipos de suelo (Cuadro 4). Las especies se trasplantaron a maceta cuando presentaban cotiledones. Se desarrolló bien en los suelos tipo 2 y 4 (Cuadro 5). CUADRO 4 CARACTERIZACIÓN DE TIPOS DE SUELOS Nº de suelo pH Mg/100g extraído en 2,5% de ácido acético K Ca P 1 5,2 6 50 0,41 2 8,0 24 910 0,73 3 4,9 10 65 0,12 4 4,0 14 24 0,28 5 3,9 17 39 0,13 Fuente: Modificado de Helliwell y Harrison (1979). CUADRO 5 PESO SECO DE PLANTAS DE SICOMORO DESARROLLADAS EN DIFERENTES SUELOS DESPUÉS DE UNA TEMPORADA Tipo de suelo 1 2 3 4 5 Peso seco (g) 5,8 7,0 3,8 5,3 2,9 Fuente: Modificado de Helliwell y Harrison (1979). Debido a que sicomoro es una de las especies preferidas para sistemas silvopastorales en Inglaterra, Eason (1991) estudió la influencia de la hojarasca de la especie sobre la composición botánica de la pradera. De esta forma determinó que sustratos completamente cubiertos por humus de sicomoro reducen significativamente el porcentaje de centeno presente; además incrementa la existencia de suelos descubiertos; el porcentaje de trébol también se ve disminuido, pero en invierno se recupera a niveles normales al no existir caída de hojas de sicomoro. 19 2.3 ALTITUD IDF (1981) señala que la especie se encuentra en las montañas hasta los 1500 msnm, como también en sectores planos. En el sur de Europa habita entre los 200 y 900 msnm; en Córcega se encuentra entre los 1.800 y 2.000 msnm dentro de los Alpes, en Macedonia, Grecia, Albania, y en las montañas de Polonia. En Francia se distribuye en la montaña hasta 1.800 msnm y desciende a las colinas por el noreste (Suszka et al., 1994). En Italia crece en los Alpes y en los Apeninos alcanzando los 1.900 msnm (Montagna y Lassini, 1983). En Inglaterra se desarrolla por sobre los 500 msnm. Altitudes superiores a los 300 msnm pueden tener efectos negativos sobre la forma de los fustes (Kerr y Evans, 1993). 3. PLAGAS Y ENFERMEDADES Buresti et al. (s.fa) señalan que los daños que producen los agentes bióticos y abióticos no impiden el uso de la especie. En el cuadro 6 se resumen las principales enfermedades de sicomoro. CUADRO 6 RESUMEN DE ENFERMEDADES DE SICOMORO Agente causante del daño Tipo de daño Síntomas Época de ataque HONGOS Rhytisma acerinum Reduce en bajo grado el área fotosintética. Caída prematura de las hojas. Manchas negras en hojas Melasmia acerinum Caída prematura de las hojas. Manchas negras en hojas Nectria cinnabarina Marchitez de los brotes nuevos y necrosis de la corteza de ramas y fustes de árboles jóvenes Fructificación sexual parecida a alfileres rojos sobre fragmentos de corteza muerta. Fructificación asexual de color naranjo como almohadillas entre las grietas de los árboles. Cryptostroma corticale Muerte apical, y ocasionalmente del Forma una capa de tejido fungoso que cae Verano a principios de 20 Agente causante del daño Tipo de daño Síntomas Época de ataque árbol. Mancha de la madera. junto a la corteza exterior como escamas. Marchitez de hojas Otoño. INSECTOS Drepanosiphum platanoidis Rocío de miel Hylobius abietisMuerte de ramas o del árbol completo. Raíces muertas; el suelo adyacente al árbol toma un color azul negruzco. Anthonomus retirostris Infestación y muerte del fruto Formación de una cubierta sobre el fruto con una perforación central de 1,3 a 1,5 mm. Eupulvinaria hidrangea Tettigella viridis Resecamiento parcial del tronco Corteza disecada en bandas e incisiones ANIMALES Ardilla gris Descortezado del fuste de árboles de 10 a 40 años Mayo a mediados de agosto (hemisferio norte) Conejos Daño a raíces y parte baja del fuste Invierno a principios de Primavera Fuente: Elaboración propia. 3.1 HONGOS Rhytisma acerinum: las hojas de sicomoro comúnmente presentan manchas negras producidas por este hongo. En primavera dichas manchas presentes en las hojas caídas producen esporas que infectan las hojas nuevas (Forestry Commission, 1995). Se desarrolla menos en ciudades porque no resiste el dióxido sulfúrico, que es común en el aire contaminado (Savill, 1991; Forestry Commission, 1995). No produce daños importantes al árbol, sino que reduce en bajo grado el área fotosintética (Savill, 1991). Melasmia acerinum: Armand (1995) indica que produce el mismo daño que Rhytisma acerinum; ambos hongos al atacar plantas de vivero causan la caída prematura de las hojas. Nectria cinnabarina: produce la marchitez de los brotes nuevos y necrosis de la corteza de ramas y fustes en árboles jóvenes. Sobre los fragmentos de la corteza muerta se pueden ver las fructificaciones sexuales que parecen 21 alfileres rojos. Las fructificaciones asexuales son de color naranjo formando pequeñas almohadillas, y se desarrollan en las grietas de los árboles, produciendo su debilitamiento (Armand, 1995). Cryptostroma corticale: se conoce como “enfermedad de la mancha de la corteza”, que puede causar la muerte apical y ocasionalmente la muerte del árbol; se han observado ataques violentos sólo en Londres (Savill, 1991). Cryptostroma corticale se desarrolla como saprófito en sicomoro y en individuos de otras especies del género Acer muertos o dañados por otros agentes, encontrándose en muchos sectores sin causar daño (Young, 1978). El hongo es de un color olivaceo-negruzco y forma una capa de diminutas esporas sobre la corteza; esta fácilmente se quiebra y cae junto a la corteza exterior como escamas; una vez que las esporas han sido gradualmente diseminadas por el viento, queda a la vista una capa fungosa de color gris- azuloso; posteriormente esta capa cae, dejando expuesta una costra negra de estromas. Otra capa de tejido fungoso (estroma cambial) se forma ocasionalmente entre la corteza y la madera, quedando restos adheridos a la madera aun cuando la corteza ha caído (op. cit.). La infección se puede originar por la entrada del hongo a través de pequeñas heridas. Generalmente el primer signo es la muerte de ramas pequeñas; posteriormente puede ocurrir la muerte del árbol. En la etapa más activa del ataque crecen hifas microscópicas desde la parte inicial donde se produjo el ataque, expandiéndose internamente a través de la madera, avanzando rápidamente a lo largo del árbol y relativamente lento en sentido transversal, formando manchas de colores verdes, amarillas o café, generalmente con un borde oscuro; al extenderse hacia el exterior de la corteza ésta se decolora; el primer signo externo de la enfermedad en esta etapa crítica es la marchitez de las hojas en verano o a principios de otoño. El período entre la marchitez y la aparición de los síntomas en la corteza puede variar entre dos a tres semanas y varios meses. Es recomendable podar los sectores con infección activa (op. cit.). 3.2 INSECTOS Evans (1984) señala que en Inglaterra la especie no presenta daños por insectos de importancia económica, es decir provee un hábitat pobre para éstos, comparado con la mayoría de las latifoliadas nativas. Drepanosiphum platanoidis: conocido como pulgón del sicomoro, es muy común de encontrar en las hojas, donde puede producir grandes cantidades de “rocío de miel” (Savill, 1991). 22 Hylobius abietis: Kerr y Evans (1993) señalan que el ataque de este insecto puede causar la muerte del árbol o de ramas. Las raíces muertas y el suelo adyacente al árbol toman un color azul negruzco. El daño usualmente se produce en suelos húmedos, por lo que puede aminorarse al mejorar el drenaje. Este ataque, generalmente letal, se puede prevenir aplicando insecticidas antes o después de la plantación; de esta forma se protege la plantación en los primeros años, que son los más susceptibles al ataque. Anthonomus rectirostris: es un coleóptero que se alimenta principalmente de los ovarios de flores y frutos jóvenes. La larva del insecto se alimenta del endocarpio de los frutos y forma una cubierta con un orificio central de 1,3 a 1,5 mm de diámetro, por el cual el insecto entra al carozo. Perforaciones precoces pueden causar la deshidratación del fruto, y la infestación del carozo puede producir su muerte (Armand, 1995). Eupulvinaria hydrangea y Tettigella viridis: atacan ramas jóvenes y troncos de sicomoro. Realizan grietas en forma de media luna de aproximadamente 1 cm donde la hembra deposita los huevos. Los principales diagnósticos para detectar este ataque son la corteza disecada en bandas y las incisiones. Un fuerte ataque de estos insectos en árboles jóvenes puede causar una deshidratación parcial del tronco. Las larvas y adultos viven principalmente en las gramíneas, por lo que su eliminación es una eficaz medida preventiva. En el Cuadro 7 se presentan los principales insectos que atacan al género Acer (Nageleisen, 1992; Armand, 1995). CUADRO 7 PRINCIPALES INSECTOS QUE ATACAN AL GENERO ACER Localización Especie Orden Tipo Hojas Operophtera brumata Malacosoma neustria Phalera buceohala Lymantria dispar Noctua aceris Eryophies spp. Chaitophorides Lytta vesicatoria Acronycta aceris Lepidóptero Lepidóptero Lepidóptero Lepidóptero Lepidóptero Acaro Homóptero Coleóptero Lepidóptero Fitófago Fitófago Fitófago Fitófago Fitófago Agallífero Picador-chupador Fitófago Fitófago Troncos y ramas Tettigella viridis Scolytus aceris Agrilus sinuatus Homóptero Coleóptero Coleóptero Agente de necrosis cortical Subcortical Subcortical Interior de la madera Xyleborus dispar Xyleborus saxeseni Trypodendron signatum Trypodendrum domesticum Zeuzera pyrina Coleóptero Coleóptero Coleóptero Coleóptero Lepidóptero Xilófago Xilófago Xilófago Xilófago Xilófago 23 Rhopalopus insubricus Coleóptero Xilófago Raíces Melolontha melolontha Otiorrhynchus niger Pediaspis aceris Coleóptero Coleóptero Himenóptero Fitófago Fitófago Agallífero Fuente: Modificado de Nageleisen (1992). 3.3 ANIMALES La ardilla gris ataca a sicomoro mas que otras especies, siendo los árboles de más de 25 años los más fuertemente dañados (Savill, 1991). Kerr y Evans (1993) señalan que el mayor ataque se produce entre los 10 y 40 años, en los meses de mayo a mediados de agosto en el hemisferio norte. El daño consiste principalmente en un descortezado del fuste. Sicomoro es muy susceptible al daño por conejos, los que atacan árboles de cualquier edad, en las raíces o en la parte baja del fuste, principalmente entre invierno y principios de primavera. Por el contrario, Savill (1991) señala que esta especie no sufre importantes daños por lagomorfos. En el hemisferio norte es atacado por ciervos desde enero hasta principios de primavera (Kerr y Evans, 1993); árboles jóvenes con diámetros sobre los 5 cm también son atacados por ratones de campo. En la Figura 2 se muestran las principales enfermedades que presenta sicomoro. 3.4 DAÑOS ABIÓTICOS Sicomoro es moderadamente susceptible al daño por heladas y generalmente resistente al viento. Troncos expuestosal sol pueden sufrir quemaduras en la orientación sur (Evans, 1984). FIGURA 2 PRINCIPALES ENFERMEDADES DE SICOMORO 24 Fuente: Armand (1995). 3.5 EXIGENCIAS PARA INTERNACIÓN DE SEMILLAS El Servicio Agrícola y Ganadero (SAG) de Chile exige para la internación de especies forestales en forma de semillas desde Europa, el Certificado Fitosanitario Oficial del país de origen, en el cual deberán constar las declaraciones adicionales y/o tratamientos cuarentenarios exigidos. A su vez, las semillas deberán venir limpias, libres de restos de frutos, hojas, ramillas u otro material susceptible de transportar plagas. A su arribo al país, las semillas deberán ser sometidas a inspección fitosanitaria por parte de los inspectores del SAG habilitados en el puerto de ingreso, quienes determinarán la internación de ellas. Para el caso específico de esta especie deben proceder de zonas libres de Endothia parasitica y venir fumigadas con Bromuro de Metilo en dosis de 32 g/m 3 de cámara, durante 2,5 horas si la temperatura fluctúa entre 26,7 y 35,6ºC en condiciones de presión atmosférica (SAG, Complemento a Resolución Nº 1.144). 25 4. SILVICULTURA Y MANEJO 4.1 PROPAGACIÓN 4.1.1 Regeneración natural Sicomoro presenta muy buena regeneración natural, pudiendo llegar a ser invasora; se ha visto que ha llegado a reemplazar a fresno, haya y Quercus sp. (Kerr y Evans, 1993). Si junto con la regeneración aparece algún tipo de zarza, no demasiado densa, ésta puede proteger las plantas contra el ramoneo de animales y de las heladas (op. cit.). Los autores señalan que se pueden utilizar shelters en regeneración joven; se deben instalar a principios de la primavera; recomiendan proteger 1.100 plantas por hectárea. Fröhlich y Quednau (1995) estudiaron patrones de crecimiento en regeneración natural realizando ensayos en suelos calcáreos de Babaria del este (Alemania), en bosques multiespecíficos compuestos por Picea abies, Abies alba, Fagus sylvatica y Acer pseudoplatanus, con coberturas de copa entre el 70 a 80% y el 0 a 5% del suelo cubierto por vegetación. Se instalaron tres parcelas, con los siguientes tratamientos: 0: Testigo 1: Corta suave del dosel protector (reducción del 30% del volumen existente) 2: Corta fuerte del dosel superior (reducción del 50% del volumen existente) 3: Clareo En el interior de cada parcela se aplicaron los siguientes subtratamientos: Sub-parcela 1: Sin cerco, sin preparación de suelos Sub-parcela 2: Con cerco, sin preparación de suelos Sub-parcela 3: Con cerco y con preparación de suelo Diez años más tarde, la regeneración mayor a 10 años representaba el 1% (Cuadro 8). CUADRO 8 DENSIDAD Y ALTURA DE REGENERACIÓN EN BOSQUE MIXTO Parámetro Testigo Tratamiento 1 Tratamiento 2 Tratamiento 3 Densidad plantas (M pl/ha) Altura máxima (cm) Densidad plantas (M pl/ha) Altura máxima (cm) Densidad plantas (M pl/ha) Altura máxima (cm) Densidad plantas (M pl/ha) Altura máxima (cm) 26 Sub-parcela 1 Picea abies 19,4 6,7 75,0 10,1 43,4 11,1 2,8 51,9 Abies alba 41,6 8,9 35,6 9,2 66,6 12,1 1,6 53,3 Fagus sylvatica 11,3 13,9 9,4 12,3 37,2 13,5 0,0 - Acer pseudoplatanus 163,4 11,8 66,6 33,3 125,3 21,2 35,3 93,3 Sub-parcela 2 Picea abies 8,1 6,7 49,4 10,0 26,3 11,0 0,9 35,2 Abies alba 35,6 8,5 40,3 9,8 51,3 10,9 5,0 50,5 Fagus sylvatica 27,2 15,3 15,9 14,3 6,9 15,9 1,6 183,0 Acer pseudoplatanus 83,4 11,3 92,2 24,7 80,6 20,1 67,8 249,4 Sub-parcela 3 Picea abies 0,9 8,2 37,5 9,8 17,8 9,7 3,1 42,0 Abies alba 15,6 7,5 29,7 7,9 33,1 11,6 3,1 31,4 Fagus sylvatica 4,1 13,7 20,6 14,3 32,8 21,9 0,6 198,0 Acer pseudoplatanus 74,7 11,7 166,2 16,8 91,9 22,4 40,9 64,0 Fuente: Modificado de Fröhlich y Quednau (1995). De lo anterior se deduce que al realizar una corta suave del dosel superior se obtiene una mayor densidad de plantas, a excepción de la subparcela 1. Además se observó que las mayores alturas se obtuvieron con el clareo, tratamiento con el cual no se lograron las mayores densidades. 4.1.2 Propagación artificial El número de semillas por kilogramo promedio es de alrededor de 9.400 variando de 5.400 a 15.800, con un 80% de germinación; son de tipo recalcitrante (Savill, 1991). The International Rules for Seed Testing (1976) cit. por Gordon y Rowe (1982) recomiendan para la germinación en laboratorio temperaturas de germinación alternadas de 10ºC por 16 horas y 30ºC por 8 horas con luz. 4.1.2.1 Viverización Buresti et al. (s.fa) señalan que plantas de uno a dos años producidas a raíz desnuda resultan bien conformadas, con alturas de 30 a 50 o 70 a 90 cm, y con un sistema radicular bien desarrollado y robusto. 27 Colecta de semillas: Se recomienda colectar las semillas entre septiembre y mediados de octubre (hemisferio norte), cuando las sámaras pasan de color verde a dorado; se pueden sembrar inmediatamente o estratificar (Suszka et al., 1994). Las semillas se pueden colectar directamente del suelo, o sacudiendo el árbol cuando los frutos están maduros; éstos deben ser transportados preferentemente en sacos de arpillera para evitar su pudrición (op. cit.). Almacenamiento de semillas: Savill (1991) señala que las semillas se pueden almacenar por no más de 12 a 16 semanas; no es recomendable secarlas a menos de un 35% de contenido de humedad. Se recomienda sembrar inmediatamente después de la colecta. Después de la colecta se debe realizar una limpia manual para eliminar hojas y residuos. Además, si es necesario, se deben separar las sámaras del racimo (Suszka et al., 1994). El Instituto Forestal propagó en invernadero semillas de Acer pseudoplatanus colectadas en Aysen, que posteriormente se almacenaron en bolsas plásticas a temperatura entre 2 y 3ºC; fueron estratificadas durante 48 días. El sustrato utilizado fue piedra volcánica proveniente del volcán Hudson previamente tamizado con una malla de 0,5 cm de diámetro y esterilizado. La producción de plantas se realizó utilizando contenedores plásticos individuales con un volumen de 80 cm 3 . La temperatura dentro del invernadero se controló para que no superara los 21ºC. Se realizaron fertilizaciones periódicas y se aplicaron fungicidas e insecticidas; las semillas germinaron en siete días (Morales et al., 1996a). Las semillas de sicomoro, a diferencia de otras especies del mismo género, son recalcitrantes, por lo que las sámaras no se deben mantener bajo 24% de contenido de humedad (Suszka et al., 1994). Suszka et al. (1994) definen metodologías de almacenamiento: − Almacenamiento breve (un invierno): se pueden conservar a 3ºC ligeramente secas, mantenidas en turba con contenido de humedad de 40 a 50%. De esta forma la latencia se elimina progresivamente durante el invierno, por lo que se pueden sembrar directamente en primavera, o continuar el almacenamiento con la mezcla de turba a -3ºC. − Almacenamiento prolongado clásico: es necesario secar las sámaras a 24-32% de contenido de humedad (30-42% de contenido de humedad de las semillas). Se deben mantener en recipientes herméticamente cerrados a -3 a –5 ºC y contenido de humedad de 24 a 32%; de esta forma se pueden conservar dos o 28 tres inviernos. Previo a la siembra no es necesario someter a las semillas a pretratamiento frío. − Almacenamiento y levante de la latencia: después del levante de la latencia con pretratamiento frío a 3ºC, las sámaras se deben secar a temperatura ambiente mediante ventilación, hasta 24 a 32% de contenido de humedad. Se pueden almacenar por dos o tres años si se mantienen a -5ºC. Posteriormente las semillas pueden ser sembradas en vivero bajotúnel plástico, directamente o con una humidificación previa sobre turba húmeda a 3ºC. Con este método queda plena libertad para elegir la fecha de siembra en función de las condiciones climáticas. Tratamientos pregerminativos: Gordon y Rowe (1982) recomiendan estratificar las semillas desnudas por 6 a 12 semanas. Suszka et al. (1994) señalan que las semillas de sicomoro presentan latencia del embrión acompañada de una ligera inhibición del tegumento; para levantar la latencia se necesitan tratamientos prolongados a 1 a 3ºC, que se pueden realizar con y sin medio: − Pretratamiento con medio: las semillas se deben tratar previamente con un fungicida (oxiquinolato de cobre a 0,5 g por kilogramo de semillas o thirame 3 a 4 g por kg). Las sámaras se vuelven a hidratar completamente en contacto con un medio húmedo, turba, arena o mezcla de ambas en proporción de 1:1; posteriormente se mantienen a 3ºC hasta que el 10% de las semillas comienza a germinar. Desde un punto de vista práctico se recomienda continuar el tratamiento durante 14 semanas a -3ºC; de esta manera se obtiene una mayor velocidad de germinación. La duración de la estratificación puede durar entre 5 y 14 semanas y excepcionalmente 20, antes de que comience la germinación. − Pretratamiento sin medio: las sámaras son rehidratadas o deshidratadas progresivamente hasta alcanzar un contenido de humedad del 44 a 50% (50 a 58% para las semillas), con lo que se levanta la latencia pero no se inicia la germinación; después de aplicar fungicida, las sámaras se mantienen en recipientes plásticos de aproximadamente 10 cm con una cubierta de polietileno no hermético. Se debe controlar la humedad y temperatura y ajustarlas si es necesario. El tratamiento debe durar dos semanas mas desde el momento en que se ha alcanzado entre el 10 y 20% de germinación de las semillas viables. Contrariamente al tratamiento con medio, en este caso no ocurre pregerminación, por lo que la germinación ocurre completa y en grupo. Este pretratamiento se puede realizar inmediatamente después de la recolección, antes o después del almacenamiento, y antes de la siembra. 29 Si el pretratamiento sin medio se aplica antes del almacenamiento, el contenido de humedad de las sámaras debe ser del 24 a 32% y ser almacenadas a - 5ºC en recipientes herméticamente cerrados, durante dos inviernos; en este caso las semillas se almacenan sin latencia. El autor obtuvo un 95% de germinación a 3ºC, con semillas recién colectadas. Al almacenarlas por dos años a 25% de contenido de humedad y directamente puestas a germinar a 3ºC se obtuvo un 64% de germinación. Semillas tratadas sin medio a 3ºC durante 8 semanas con 50% de contenido de humedad de las sámaras se obtuvo un 85% de germinación. Con el mismo tratamiento después de un año de almacenamiento se obtuvo un 75% de germinación, y con dos años un 67%. Por lo tanto el tratamiento antes del almacenamiento favorece la germinación. Muller (1986) concuerda en que la semilla de sicomoro presenta una latencia embrionaria sensible al frío, por lo que recomiendan 8 a 20 semanas de pretratamiento frío húmedo a 3ºC para eliminar esta latencia. Siembra: Las semillas latentes se pueden sembrar directamente en otoño, ocurriendo la germinación en la primavera siguiente. Si la siembra se realiza en primavera después de ser almacenadas durante uno o más inviernos una parte de ellas no germina hasta la primavera siguiente, por lo tanto previamente se debe levantar la latencia (Suszka et al., 1994). Las semillas se deben cubrir por dos o tres centímetros de tierra. Densidades de 160 a 300 sámaras por m 2 son recomendables para la producción de plantas vigorosas. En esta etapa las semillas se deben proteger de aves y roedores, siendo también recomendable la sombra (op. cit.). En viveros de producción a raíz desnuda, se siembran 40 a 60 semillas viables y se obtienen 30 a 50 plantas, de dos años. En Francia, en viveros con túneles plásticos y con sustrato de turba fértil se obtienen 80 plantas de un año por m 2 , con una densidad de siembra de 160 sámaras por m 2 (rendimiento del 50%); es común también sembrar 300 semillas viables por m 2 y obtener 150 plantas al final de la temporada (op. cit.). Helliwell y Harrison (1979) señalan que las plantas de sicomoro son relativamente tolerantes a la sombra, debido a que al aumentar la intensidad de la luz no se obtienen importantes incrementos en biomasa después de una temporada de vivero. 4.1.2.2 Propagación vegetativa 30 Rohr y Hanus (1987) definen a sicomoro como muy difícil de propagar vegetativamente, debido a que pierde la capacidad de formar raíces en la madurez. Se puede clasificar como una especie con una moderada dificultad para ser propagada in vitro (Mccown y Mccown, 1987). Chalupa (1987) cultivó trozos de tallos (1 a 2 cm) de plantas de sicomoro y pequeños segmentos de nudos (dejando 1 a 3 yemas axilares por cada nudo) en el medio modificado de “Murashige y Skoog”, y sobre sustrato de aserrín, enriquecidos con citoquininas. Para estimular la proliferación de los tallos se utilizaron bajas concentraciones de BAP (0,2 a 1,0 mg/l -1 de kinetina, benzylaminopurina, que es la citoquinina más efectiva) e AIB (1,0 mg/l -1 ). También propagó ramitas de 1,5 a 3,0 cm de largo que se cultivaron en el medio “Gressholff y Doy” y en aserrín. Los cultivos se mantuvieron en la oscuridad a 23ºC durante la primera semana y posteriormente con luz durante 16 horas a la misma temperatura. Las raíces se desarrollaron en 6 semanas. Rohr (cit. por Chalupa, 1987) propagó árboles maduros de sicomoro con trozos de raíces brotadas de los tocones. Garbaye y Le Tacon (1979), señalan que las mejores condiciones para la producción de plantas producidas sobre turba fertilizada son: pH: no afecta significativamente el crecimiento en altura de plantas producidas por semilla; sin embargo, para la producción por estacas se asegura un buen crecimiento con pH sobre 5,5. NPK: es suficiente la dosis 1 para plantas producidas por estacas; sin embargo para la producción por semilla el crecimiento es ligeramente superior en la medida que aumentan las concentraciones (Cuadro 9). Oligoelementos: las plantas producidas por estaca no necesitan aplicación de oligoelementos al sustrato, mientras que las de semilla presentan un crecimiento óptimo a partir de 80 g/m 3 de la mezcla 18 a 22% de MgO, 40 g de sulfato férrico, 20 g de sulfato de cobre, 10 g de molibdato de amonio, 1 g de sulfato de zinc, 7 g de sulfato de manganeso y 2 g de ácido bórico. Se recomienda una profundidad de turba de 25 a 30 cm y una densidad final de 100 plantas por m 2 . Con estas condiciones se pueden tener plantas de buena forma, vigorosas y con una altura de más de 50 cm después de un año de viverización (op. cit.). CUADRO 9 DOSIS DE NPK ENSAYADAS EN PRODUCCIÓN DE PLANTAS DE SICOMORO DOSIS Contenido 1 75 g de N; 75 g de P2O5; 75 g de K2O 31 2 150 g de N; 150 g de P2O5; 150 g de K2O 3 225 g de N; 225 g de P2O5; 225 g de K2O 4 300 g de N; 300 g de P2O5; 300 g de K2O Fuente: Modificado de Garbaye y Le Tacon (1979). Rohr y Hanus (1987) señalan que el cultivo in vitro del cambium o de yemas no da buenos resultados cuando se sacan directamente de árboles adultos; los autores han propagado sicomoro usando partes de plantas. Se obtuvieron brotes de tocón de tres árboles adultos; uno de ellos poseía “madera estándar” y los dos restantes, madera ondulada; como se observa en el Cuadro 10, los árboles fueron talados varios años antes a la realización del ensayo. Los brotes regenerados de esa cosecha fueron removidos del tocón en marzo de manera de estimular la regeneración de brotes más suculentos. Finalmente estos últimos se cosecharon entre mayo y octubre del mismo año (hemisferio norte); inmediatamente,se obtuvieron estacas de los brotes de 15 a 30 cm de longitud en tierra, con previa aplicación de enraizantes (op. cit.). Al mismo tiempo los autores cultivaron in vitro secciones de tallo de 1 a 3 cm de longitud, incluyendo el ápice. Estas fueron defoliadas a excepción de las dos hojas más jóvenes junto al ápice; se esterilizaron y sumergieron en agua destilada. El medio utilizado fue el de Murashige y Skoog (MS) con adición de macro y microelementos y componentes orgánicos, con un pH de 5,5. Las estacas se plantaron verticalmente en tubos de 2 cm de diámetro y 20 cm de longitud. Los cultivos se mantuvieron inicialmente en oscuridad a 23ºC por una semana; posteriormente se aplicó luz por 16 horas diariamente a la misma temperatura (op. cit.). Las estacas plantadas en tierra enraizaron después de tres semanas a un mes, obteniéndose porcentajes de enraizamiento del 15 al 20%. CUADRO 10 CARACTERÍSTICAS DE LOS ÁRBOLES ESTUDIADOS Nº de árbol Edad Diámetro a 1,3 m de altura Longitud del grano ondulado (mm) Fecha de tala Obtención del brote Localización 1 > 50 ? - Antes de 1980 1983 - 1984 Bosque a orilla de camino 2 90 80 8 1983 1984 Bosque con sotobosque 3 106 90 5 1984 1984 Bosque claro Fuente: Modificado de Rohr y Hanus (1987). En cuanto al cultivo in vitro los autores tuvieron problemas de contaminación; casi el 100% de las secciones de tallo no apicales presentaron 32 contaminación de bacterias u hongos, y el resto se mostró necrótico en poco tiempo. Entre un 25 y un 40% de las secciones apicales no presentaron contaminación (Cuadro 11). No fue necesaria la aplicación de estimuladores de crecimiento para el enraizamiento. CUADRO 11 REGENERACIÓN EN CULTIVO IN VITRO Árbol nº Nº de secciones Plantas regeneradas Total Apicales Otras Apicales Otras 1 122 68 54 4 0 2 92 59 33 6 0 3 420 276 144 5 0 Fuente: Modificado de Rohr y Hanus (1987). Se puede concluir que la micropropagación in vitro no ha dado buenos resultados en la especie, y se trata de un método caro, por lo que no es recomendable a menos que se aplique en gran escala. 4.1.2.3 Micorrización La micorrización artificial en vivero es particularmente eficaz, asegurando a la plantación un mejor crecimiento inicial; los hongos introducidos deben ser capaces de mantener la simbiosis durante varios años después de la plantación. La transición del vivero a la plantación representa muchos cambios en el medio radicular, tales como estrés mecánico en el transplante y transporte, cambios en las propiedades físico- químicas del suelo, del régimen hídrico y de la población microbiana, aumentando la competencia para las micorrizas (Garbaye y Le Tacon, 1986). Al probar los efectos de la inoculación en vivero con Glomus mosseae, la simbiosis fue positiva sobre el crecimiento en vivero. Un año después de la plantación, las plantas no micorrizadas presentaron un crecimiento inferior respecto a las micorrizadas. La crisis por plantación no se mantuvo durante los tres años siguientes (Figura 3). FIGURA 3 33 CRECIMIENTO EN ALTURA DE SICOMORO EN VIVERO Y DESPUÉS DEL TRANSPLANTE Fuente: Modificado de Garbaye y Le Tacon (1986). 4.2 ESTABLECIMIENTO 4.2.1 Plantación Evans (1984) considera a sicomoro como una especie de fácil establecimiento si se cumple con las condiciones de humedad y concentración de nitrógeno requeridas; se desarrolla bien con pastos densos, por lo que necesita control de malezas intenso para asegurar un buen crecimiento inicial. Buresti y Aiello (1989) señalan que para el establecimiento se deben utilizar plantas de 1 a 2 años, que sean de la procedencia más adecuada, sanas, bien lignificadas y proporcionadas, con alturas de 50 a 100 cm, y un buen equilibrio de la parte aérea y radicular. El IDF (1990) recomienda plantas de dos años con alturas de 60 a 120 cm. Kerr y Evans (1993) consideran que las dimensiones adecuadas para plantas de sicomoro producidas a raíz desnuda son: − Altura mínima: 30 cm. − Diámetro mínimo del cuello: 4,5 mm. − Altura máxima recomendada: 50 cm. − Diámetro máximo del cuello de la raíz: 6,0 mm Armand (1995) recomienda utilizar dos tipos de plantas (Cuadro 12). Si la plantación se realiza en forma manual, el tamaño del hoyo debe ser de 20 cm de ancho y 30 de profundidad si la planta es pequeña, y de 40 x 50 cm si la planta es grande. 0 10 20 30 40 50 60 70 0 1 2 3 4 Edad (Años) A lt u ra ( c m ) Inoculadas No inoculadas Plantación 34 CUADRO 12 DIMENSIONES DESEABLES DE PLANTAS DE SICOMORO Tipo de planta Altura (cm) Diámetro del cuello (cm) Pequeña 55 – 80 0,9 - 1,3 (1+0) Grande (1 + 1) o (1 + 2) 125 – 150 o 150 y más 2 - 2,5 o 2,5 y más Fuente: Modificado de Armand (1995). Calvo et al., (s.f) recomiendan utilizar en Europa plantas de dos años de edad con dimensiones de 50 a 100 cm de altura, bien lignificadas, sin presencia de defectos ni malformaciones, y con un buen equilibrio entre la parte aérea y radicular. Para un buen establecimiento es esencial utilizar shelters (tubos protectores) tempranamente, que se ponen alrededor del árbol para proporcionar estabilidad, aumentando la sobrevivencia durante el establecimiento e incrementando el crecimiento en altura (Kerr y Evans, 1993). Morales et al. (1996b) establecieron cortinas cortaviento de Acer pseudoplatanus y Pinus ponderosa en el predio Escuela Agrícola de la Patagonia (XI Región), en una superficie cultivada con alfalfa de 1.300 m 2 . Previo al establecimiento el terreno se limpió con desbrozadora, posteriormente se plantó en casillas de 40x40x40, con pala neozelandesa. Las dimensiones de la cortina fueron de 520 m de largo por 2,5 de ancho, a un distanciamiento entre hilera de 1,5 m y sobre la hilera de 1 m. Los resultados no han sido evaluados a la fecha, pero serían interesantes de obtener para evaluar el efecto de la alfalfa, que normalmente presenta efectos negativos en el crecimiento de especies latifoliadas de alto valor. Armand (1995) señala que la plantación se debe realizar a fines del invierno. Kerr y Evans (1993) proponen plantar entre octubre y mediados de diciembre (hemisferio norte), una vez que las hojas hayan caído; esto da tiempo al sistema radicular de desarrollarse antes de la floración y foliación en primavera. En general todas las plantaciones deberían cesar a fines de marzo (hemisferio norte). Calvo et al. (s.f) recomiendan plantar en otoño, utilizando plantas de distintas procedencias, sobre todo si son clones, para evitar una excesiva simplificación del ecosistema; Además considera más adecuado utilizar plantas con pan de tierra. 4.2.2 Plantaciones Mixtas En Europa existen asociaciones naturales de arce con fresno que constituyen biocenocis del punto de vista fitosociológico y ecológico (CEMAGREF, s.f.). 35 Evans (1984), señala que la especie se puede establecer en plantaciones puras, pero crece bien en asociación con Larix sp, Picea abies y otras latifoliadas, incluidas las hayas (Fagus sp) En áreas bajas arcillosas el crecimiento de la especie puede mejorarse con aliso, pero en general no necesita protección (op. cit.). Buresti y Aiello (1989) señalan que las especies de maderas valiosas, entre ellas sicomoro, es conveniente asociarlas con Alnus sp, Elaeagnus sp, Robinia sp, Corylus avellano y Sambucus sp; debido a que son fijadoras de nitrógeno y producen un efecto positivo sobre el crecimiento en altura y diámetro, y en la calidad de la madera. Se pueden realizar plantaciones mixtas de sicomoro junto a fresno, nogal y cerezo; para esto se debe considerar una preparación intensiva del suelo; aradura profunda (60 cm) o subsolado (80 cm), seguida de aradura superficial (20 - 30 cm) y abundante fertilización. Se deben preparar casillas de al menos 50x50 cm (Calvoet al., s.f). Sicomoro y Larix eurolepis son las especies más preciadas para sistemas silvopastorales en Inglaterra (Eason, 1991). Una experiencia realizada en Sala Bolognese (Italia), a 22 msnm, sobre 4 ha en planicie con grupos de arce (Acer spp.), cerezo, fresno, bagolaro (Celtis australis), fresno austral (Fraxinus ornus) y álamo blanco, con cuidados intensivos y muy pocas podas presenta al tercer año una situación satisfactoria. De estas y otras exeriencias similares realizadas en Italia el CBRP (1995), indica que la presencia de especies rústicas de rápido crecimiento, a nivel de árbol individual, en hileras o en grupos, mejora el crecimiento de las especies en 40-50% respecto a la situación pura; además, resulta determinante en los resultados positivos obtenidos la ejecución regular de los cuidados culturales por al menos 3-4 años Minotta (1994), señala que arce y carpino blanco (Carpinus betulus), es conveniente establecerlos en grupos de 8-10 plantas/especie. Por otra parte, Buresti et al. (s.fb), indican que en general la mayoría de las latifoliadas (nogal, cerezo, Quercus robur, fresno y arce, entre otras) pueden ser asociadas utilizando diversos diseños (distancia de plantación y disposición), por árbol individual, por grupos y por hileras, acompañadas generalmente por especies arbóreas fijadoras de nitrógeno. Sin embargo, otras como el cerro (Quercus cerris) generalmente se plantan puras, pero si se encuentran en sitios más fértiles pueden asociarse a grupos de arces, fresnos, cerezos y otros encinos (Quercus spp.). 36 4.2.3 Densidad El IDF (1990) considera que la densidad inicial en plantaciones de sicomoro debe ser de al menos 1.100 árboles por hectárea. Buresti y Aiello (1989) consideran distanciamientos adecuados para plantaciones con especies de maderas nobles de 3x3 a 7x7 m. Kerr y Evans (1993) recomiendan una densidad mínima de plantación de 2.500 árboles por hectárea (2x2 m), mientras que para un enriquecimiento la densidad mínima debe ser de 1.600 árboles por hectárea; La diferencia se debe a que en este último caso se produce regeneración natural por la protección lateral existente. Calvo et al. (s.f) recomiendan distanciamientos de 3x3 y 6x7 m, dejando una densidad final de 200 a 220 arboles/ha en una rotación de 40 a 50 años. La mayor densidad generalmente es utilizada en cultivos mixtos. Armand (1995) señala que la separación entre hileras debe ser de más de cuatro metros para permitir la poda mecánica, empleada en Europa debido al elevado costo de la mano de obra. 4.2.4 Control de malezas Las plantas jóvenes de sicomoro son intolerantes a la competencia de malezas (Savill, 1991), por lo que es esencial efectuar un control de malezas efectivo en el establecimiento (Kerr y Evans, 1993). Sicomoro no compite exitosamente con cubiertas herbáceas densas (Richardson, 1953; Chinner, 1948 cit. por Helliwell y Harrison, 1979), sin embargo Helliwell y Harrison (1979) determinaron que su peso seco se ve menos afectado por la competencia de malezas que Betula pendula, Fraxinus excelsior y Larix kaempferi, aunque resultaron negativas las elevadas intensidades de luz (82% de luz día). 4.3 MANEJO 4.3.1 Crecimiento y Productividad Ente Nazionale per la Celulosa e per la Carta (1990) señala que la especie no presenta un crecimiento muy rápido, y recomiendan rotaciones superiores a los 50 años, con incrementos medios de entre 3 a 8 m 3 /ha/año. Calvo et al. (s.f) establecen un rango más estrecho para la capacidad productiva, entre 5 y 8 m 3 /ha/año. 37 Evans (1984) considera que la especie puede alcanzar 10 a 12 m de altura en 25 años en sitios regulares; con un régimen normal de raleos se pueden obtener diámetros medios de 45 cm en 50 a 90 años, dependiendo del sitio. Si se realizan raleos intensivos dejando 150 árboles por hectárea, el diámetro antes mencionado se puede alcanzar a los 50 años en sitios buenos a moderados (Stern, 1982 cit. por Evans, 1984). Bennett et al. (1956) indican que creciendo en condiciones de bosque se pueden obtener trozas cilíndricas de 15 a 18 m de largo. Según Savill (1991) las rotaciones de sicomoro fluctúan entre 65 y 70 años en Europa. Por otra parte, Buresti et al. (s.fa) coinciden en que el ciclo cultural podría ser de 60 a 80 años; sin embargo, tradicionalmente las mejores condiciones de comercialización se han presentado en troncos con grandes diámetros, derivados de bosques maduros con rotaciones de 100 a 120 años, como el caso de la haya. Kerr y Evans (1993) determinan rotaciones para sicomoro según producto a obtener y fertilidad del suelo (Cuadro 13). CUADRO 13 ROTACIÓN PARA SICOMORO (Años) Objetivo Tipo de suelo Fértil Promedio Pobre Madera 45 60 75 Chapa 55 70 - Fuente: Kerr y Evans (1993). Pope y Dawson (1989) consideran que las rotaciones cortas presentan muchas ventajas sobre las largas si se eligen buenos sitios y especies de rápido crecimiento juvenil; la producción de madera y fibra se puede maximizar mediante tratamientos culturales intensivos en lugares próximos a los centros productivos, para minimizar los costos de transporte; sin embargo para este tipo de plantaciones los costos de establecimiento son elevados debido a la preparación intensiva del sitio. Los autores indican que los productos que se pueden obtener según la rotación son: 5 a 10 años: rotación corta y manejo intensivo (biomasa) 10 a 20 años: rotación corta (pulpa) 20 a 40 años: rotación corta (madera aserrada) 38 En sitios con drenaje algo excesivo, sicomoro crece 6,2 a 11,1 ton/ha/año; en los bien drenados 11,1 a 29,6 ton/ha/año, y en aquellos con drenaje algo pobre 11,1 a 29,6 ton/ha/año (op. cit.). Los sitios más adecuados para rotaciones cortas son aquellos fértiles, húmedos pero bien drenados, con rangos de pH entre 5,2 y 7,0 y con profundidad adecuada, siendo necesario el control de malezas durante los dos primeros años. También recomiendan proteger las plantas de las malezas con leguminosas, aumentando la fijación de nitrógeno (op. cit.). En el Cuadro 14 se presentan algunos rendimientos de sicomoro obtenidos en plantaciones de corta rotación en Estados Unidos. CUADRO 14 RENDIMIENTOS DE SICOMORO EN PLANTACIONES DE CORTA ROTACIÓN Localización Espaciamiento Rotación Crecimiento anual (ton/ha) Kentucky Oeste 2 x 3 4 9,4 Delta Mississippi 6 x 4 4 26,4 Illinois del Sur 0,7 x 0,7 a 1,8 a 2,3 2 8,9 Illinois del Sur 0,7 x 0,7 a 1,8 a 2,3 4 11,1 Mississippi 3,8 x 4,5 4 15,8 Fuente: Modificado de Pope y Dawson (1989). La Universidad Austral de Chile posee en sus fundos en Valdivia dos rodales de sicomoro que no han sido manejados, con características que se señalan en el Cuadro 15 (Unión, 1998 6 ). CUADRO 15 CARACTERÍSTICAS DASOMETRICAS DE RODALES DE SICOMORO DE VALDIVIA Rodal Año de plantación Superficie (ha) Densidad (arb/ha) Dap medio (cm) Altura media (m) Altura dominante (m) Area basal (m 2 /ha) 1 1974 0,25 2200 13,2 13,4 14,1 30,1 2 1975 0,13 1370 16,3 11,2 14,4 28,6 Fuente: Elaboración propia. Durante el año 1998, en la comuna de San Ignacio, provincia de Ñuble, VIII región, el Instituto Forestal en el ámbito del proyecto “Silvicultura de especies no tradicionales, una mayor diversidad productiva”, financiado por FIA, estableció un 6 Comunicación personal 39 ensayo con arce (Acer pseudoplatanus), con el objetivo de comparar distintos orígenes chilenos de la especie y evaluar su comportamiento; se utilizó un distanciamiento de 3 x 3 m. En las Figuras 4, 5 y 6 es posible observar la evolución del crecimiento para las variables altura (m), diámetro al cuello (Dac, cm) y Dap (diámetro a 1,3 m; cm). En general el crecimiento de la especie en sus primeros años es lento,
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