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Clase 1 Técnicas Histológicas Microscopía Técnicas histológicas • Histología: Estudio del tejido, análisis de la composición microscópica y las funciones de los organismos pluricelulares. • Técnicas histológicas: Pasos necesarios para obtener las muestras aptas para su observación. -Células y tejidos vivos (cultivos) - Material muerto o inanimado. Un poco de Historia… • Antonie Van Leewenhoek (1632-1723): inventor del microscopio. • Marcello Malpighi (1628- 1694) Fundador de la histología • Hooke (1635-1702): Descubrió que el tejido vegetal está formado por pequeñas cámara o celdas a las que llamo células. • 1838: Teoria celular ( reino vegetal) • 1839: Teoria celular ( reino animal) Célula: Elemento fundamental del organismo, los cuales están formados por agrupaciones de las mismas. Técnicas Histológicas • Tejido: Agrupación de células (de distinto tipo),que llevan a cabo determinadas funciones. Células + matriz extracelular 4 tejidos básicos: - Epitelial - Conectivo - Muscular - Nervioso • Organos: Unidades funcionales mayores compuestos por distintos tipos de tejidos. TOMA DE MUESTRA FIJACIÓN INCLUSIÓN CORTE COLORACIÓN OBSERVACIÓN MONTAJE Técnica histológica para MOC TOMA DE MUESTRA •Tamaño 1x1x1 cm •Instrumental en buenas condiciones •Evitar desgarros del material •Incluir tejido sano y alterado (lesiones circunscriptas) FIJADORES QUÍMICOS: •Formol 10% •Formol bufferado, •Bouin, •Alcoholes (etanol, metanol) CONSIDERAR: •Tamaño del frasco, cierre hermético •Proporción volumen fijador/muestra (20:1 a 40/1) •Tamaño de la muestra •Características de la muestra ¿pulmón? •Tiempo de fijado (mín. 24hs) •Rotular, breve reseña INCLUSIÓN EN PARAFINA OJO!! Congelación para lípidos DESHIDRATACIÓN PARAFINA Técnicas histológicas Técnica por congelación • Se usa para biopsias intraoperatorias. • Rápida • Menor variación estructural • Conserva la actividad enzimática • Se congela un trozo de tejido en nitrógeno líquido, anhídrido carbónico o se sumerge en un liquido frió (- 50ºC). • Se corta en un criostato a bajas temperaturas. • Se seca por evaporación. CORTE CON MICRÓTOMO •Cortes delgados (5 - 15Mc) •Cuchillas de acero •Recogidos en portaobjetos y se adhiere por calor en estufa Crióstatos: micrótomos de congelación para muestras congeladas COLORACIÓN Y MONTAJE Tinción de rutina: hematoxilina/ eosina TINCIÓN MONTAJE Técnicas histológicas - Artificios • Estructuras del preparado que no existen en el tejido vivo, aparecen durante el proceso de preparación. Retracciones Precipitados Técnicas histológicas - Artificios Cuchillas defectuosas Fijación inadecuada Normal Plegamientos Técnicas histológicas Métodos histoquímicos Permite obtener información sobre la localización de las estructuras celulares y tisulares. Se utilizan distintos métodos con diferentes propiedades químicas y físicas que interaccionan con los componentes tisulares y celulares. Los colorantes de rutina son Hematoxilina y Eosina EOSINA (rosa) HEMATOXILINA +mordiente (violeta) Colorante ácido (aniónico) Colorante básico (catiónico) Tiñe por afinidad sustancias básicas grupos amino de las proteínas Tiñe por afinidad sustancias ácidas •grupos fosfato de los ácidos nucleicos, •grupos sulfato de los glucosaminoglicanos, •grupos carboxilo de proteínas ACIDOFILIA BASOFILIA ACIDÓFILO BASÓFILO Ej proteínas citoplasmáticas, fibras extracelulares Ej. Núcleo, ribosomas, matriz cartilaginosa Técnicas histológicas - Tinción Técnicas histológicas - tinción Metacromasia Si se tiñe un corte con una solución de un colorante básico ( azul de toluidina), el mismo forma enlaces electrostáticos con los componentes aniónicos y las moléculas del colorante se acumulan donde estos grupos están mas cercanos, en consecuencia el color se modifica ( Vira al rojo-purpura) EXCEPCIONES A LA TÉCNICA DE RUTINA: •Hueso •Citología •Sangre •Microscopía electrónica TINCIONES ESPECIALES •PAS (hidratos de carbono) •Sudán (lípidos) •Impregnación argéntica (fibras reticulares) •Romanovsky-May Grünwald-Giemsa (sangre) •Orceína/ Resorcina- fucsina (fibras elásticas) •Tricrómico (diferenciar tejidos) •Inmunocistoquímica (identifica proteínas- antígenos en células o tejidos) PAS+ Sudán Orceína Tricrómico Inmunocito química I. argéntica Giemsa Técnicas histológicas - tinción Reacción de PAS (Acido peryódico reactivo de shiff) Tiñe carbohidratos y macromoléculas con abundancia de los mismos. Color rojo-purpura. Se usa para detectar: - Glucógeno en las células. - Membrana Basal. - Fibras reticulares Técnicas histológicas - tinción • Sudan: - Rojo Sudan ------- Adipocitos. (Triglicéridos). - Negro Sudan----- Vainas de mielina ( Lipoproteínas). H-E Sudan Rojo Sudan negro Técnicas histológicas - tinción • Feulgen: Tiñe ADN • Tricrómico de Mallory: Azul de anilina ( colageno) , Fuscina acida (núcleos) , Naranja G ( eritrocitos). Microscopía • Microscopio: instrumento que aumenta el tamaño de una imagen y permite ver detalles que no son posibles ver a simple vista. • El poder de resolución es la distancia que debe haber entre 2 puntos del objetos para verse separados. Ojo humano: 0.2mm 1mm 10-3 mts MO: 0.2 µm 1µm 10-6 mts ME: 0.05 nm/1 nm 1nm 10-9 mts 1Å 10-10 mts PARTE MECÁNICA Microscopio óptico Tubo Platina Subplatina Columna Pie Revolver Tornillos macrométrico y micrométrico. PARTE ÓPTICA Ocular Objetivos Diafragma Condensador Fuente de luz Microscopio Optico La imagen que se forma es… • Virtual • Invertida • Aumentada Ocular Aumenta la imagen de 7x a 12x ( 10x) Ocular Revolver Sostiene a los objetivos y permite el cambio Existen secos y de inmersión … Objetivos Cuando se aleja del preparado aumenta el contraste de la imagen Condensador Puede ser natural o artificial Fuente de luz Le da soporte y movilidad al preparado Platina Charriot Se utiliza para poder regular la distancia Macrométrico Micrométrico Microscopio Optico • Limite de resolución: 0,2 µm ( pero con los preparados de rutina rara vez es > 0,5 µm). • Las lentes del objetivo tienen distintos aumentos ( 4, 10, 20 y 40 X). • El lente ocular tiene un aumento de 10 X. • Aumento total resultante: producto entre los aumentos del objetivo y el ocular Microscopia electrónica MET MEB DIFERENCIAS MOC vs MET Pasos diferenciables Microscopio Óptico Común Microscopio Electrónico de Transmisión MUESTRAS 1 cm 1,5 mm o menores FIJACIÓN Formol 10% Glutaraldehido 2-2,5% y Tetróxido de osmio 1% INCLUSIÓN Parafina, intermediario xilol Resinas epoxi, intermediario óxido de propileno CORTE Micrótomo , cuchillas de acero 5- 15 Mc Ultramicrótomo , cuchillas de vidrio o diamante 50-150 nm TINCIÓN de rutina: H/E X contraste, depósito de sales metálicas OBSERVAMOS Células, estructuras y tejidos ultraestructura MET MEB MUCHAS GRACIAS
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