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ESCUELA SUPERIOR POLITÉCNICA DE CHIMBORAZO VICERRECTORADO ACADÉMICO DIRECCIÓN DE DESARROLLO ACADÉMICO FACULTAD: CIENCIAS CARRERA: INGENIERÍA AMBIENTAL GUÍA DE PRÁCTICAS DE LABORATORIOS MICROBIOLOGÍA (AMBIP18) MICROBIOLOGÍA AGRÍCOLA (AGRTP20) MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA (ZOOTP20) DOCENTE RESPONSABLE: SANDRA PAOLA POZO GARCÍA LUGAR: LABORATORIO DE CIENCIAS BÁSICAS Y ESPECIALIZACIÓN (EX SEPAC) SEDE ORELLANA Integrantes : Yessenia Torres Jessenia Elizalde Kerly Rivas PRÁCTICA No. 02 TÉCNICAS DE OBSERVACIÓN: TINCIONES, RECUENTOS Y MEDICIONES. LUGAR: Laboratorio de la Sede Orellana (Ex – CECAP) FECHA INICO: 2021-12-22 FECHA FIN: 2021-12-23 HORA: 07H00 A 12H00 OBJETIVOS: 1. Identificar los tipos de tinciones para observaciones microscópicas 2. Identificar las etapas comparativas de tinción GAM 3. Realizar un recuento y medición de la muestra más adecuada para la observación. MÉTODOS Modalidad: Trabajo grupal Materiales y equipos MATERIALES QUE APORTAN LOS ESTUDIANTES · Papel de Sticker pequeños · Tijeras · Hisopos de algodón esterilizado · Alcohol y gel de manos · Papel toalla pequeño VESTIMENTA ADECUADA · Mandil blanco · Gorro de bioseguridad · Guantes quirúrgicos · Zapatos cerrados · Camisa manga larga algodón · Pantalones basta larga · Mujeres con el cabello recogido MATERIALES Y EQUIPOS DEL LABORATORIO Equipos Materiales Reactivos y muestras Bombona a gas Porta y cubre objetos Agua esterilizada Microscopio Asa metálica Aceite de inmersión Estufa para baño María Pinzas Placa AN (Bacterias; Basillus sp.; Klebsiella sp.; Azobacter sp.) Cubeta para recoger Colorantes Placas de King B (Pseudomonas fluorescens) Frasco de desechar de colorantes Placas con colonias de actinomycetes (Streptomycetes sp.) Vaso de precipitación Baterías de GRAM Cámara de recuento Petroff Hauser Baterías de ZIEHL- NEELSEN Cámara de recuento Neubaver Baterías de SHAEFFER Y FULTON Colorante: Cristal violeta Colorante: Solución de yodo ESCUELA SUPERIOR POLITÉCNICA DE CHIMBORAZO GUÍA DE PRÁCTICAS DE LABORATORIOS, TALLERES Y CENTROS DE SIMULACIÓN ASIGNATURA MICROBIOLOGÍA Decolorante: alcohol – acetona Colorante: Safrina PROCEDIMIENTO: PASOS GENERALES 1. Preparación del montaje de la muestra de microorganismos para la tinción. 2. Aplicación de tinción GRAM en muestras de bacterias 3. Observación en el microscopio con una amplificación de 10X y 100X 4. Elaboración de las gráficas de las observaciones. 5. Selección de la muestra para el recuento directo (concentración de células/ml) 6. Observaciones de recuento con las cámaras Petroff-Hauser y de Neubaver 7. Realizar los cálculos y determinar las mediciones 8. Graficar las observaciones del recuento PASOS A PASO PREPARACIÓN DEL MONTAJE DE MUESTRA Colocar una gota de agua esterilizada sobre el portaobjetos Esterilizar el asa y tomar una muestra de la colonia Dispersar la muestra en la gota, y dejar secar al aire 3-5 minutos Fijar con calor la muestra, usando pinzas, flameo 3 veces PASO A PASO TINCIÓN DE GRAM Aplique el colorante Cristal Violeta por 1 minuto Lavar y dejar escurrir el exceso de agua Cubrir con solución de yodo, por 30 seg y lavar Aplicación del decolorante, por 10 seg. y lave. Colorante contraste, por 1 minuto. y lave, secar por absorción PASO A PASO LA OBSERVACIÓN DE MUESTRAS Colocar la placa con el lente de menor amplificación 10X Aplicamos un agota de aceite de inmersión y rotamos a 100X sin pasar por 40X Para retirar la placa, rote al lente 10X, sin bajar la platina. PASO A PASO MEDICIÓN Y RECUENTO DIRECTOColocar la muestra en la cámara de recuento, cubrir y dejar reposar unos minutos La rejilla tiene 25 cuadrados ocupando un área de 1 mm2, y un volumen de 0.02 mm3 Contar las células de cada cuadrado grande y promediar # de células por ml: n X 25 X 50 X 1000 = PREGUNTAS 1. Qué es una colonia de Bacterias GRAM POSITIVAS La mayoría de las bacterias se multiplican rápidamente y son visibles como colonias cuando se las siembra en medios de cultivo sólidos adecuados, requieren una incubación de aproximadamente 24 horas en una atmósfera que favorezca su desarrollo, a temperatura óptima Como se pudo ver en la primera muestra la cual correspondía a la caja Petri nombrada AN se pudo observar una colonia los cuales tenían una forma en cocos (esféricas u ovaladas) de bacterias Gram positivos que se agrupan en forma de racimo después de su tinción su observo de un color azul. Figura 1 Figura1.Autoria propia 2. ¿Qué color marcó a las bacterias Gram positivas? Después de haber realizado los respectivos procedimientos, nos dimos cuenta de que la bacteria GRAN POSITIVA, tuvo un marco de color azul, esta coloración se debe gracias a la Función de GRAM, ya que consiste en detectar la presencia de microorganismos, especialmente bacterias y hongos. 3. ¿Qué color marcó a las bacterias Gram negativas? 4. ¿Cuál es la diferencia entre la cámara de recuento Petroff- Hauser y la de Neubaver? RESULTADOS ESPERADOS 1. Los estudiantes identifican claramente los tipos de tinciones 2. Los estudiantes diferencian adecuadamente las etapas de la tinción GAM positiva y negativa 3. Los estudiantes desarrollan la capacidad de realizar un recuento y cálculos para la medición de las muestras. CONCLUSIONES Se concluye que la tinción de Gram se apoya en una técnica de laboratorio con la cual se distingue los diferentes conjuntos de bacterias para de esta forma poder estudiarlas y clasificarlas en Gran negativas y Gram positivas El cristal violeta se une a la pared bacteriana, la mezcla alcohol disuelve la membrana externa de las bacterias Gram negativas “más fina que la de las Gram positivas” extrayéndose el cristal violeta después se tiñen con safranina. Según el color que tomen las bacterias después de su tinción se clasifican Gram positivas si su color es azul o gran negativas si su color es rojo RECOMENDACIONES GRÁFICO Observaciones de la muestra 1 y 2 con los lentes 10X y 100X en la muestra uno vimos una colonia agrupada de forma de racimos con una coloración azul por lo que se puede asumir que es Gram positiva En la muestra dos se observó formas de bacilos y cocos con una coloración roja por lo que se asume que eran las Gram negativas BIBLIOGRAFÍA Hernández, N. (2008). Manual de Microbiología. Área de Laboratorio intensivos. Universidad Rural de Guatemala. Valencia, H. (2009) Manual de Prácticas de Microbiología Básica. Universidad Nacional de Colombia. Elaborado por: SANDRA Firmado digitalmente por SANDRA PAOLA PAOLA POZO POZO GARCIA GARCIA Fecha: 2021.12.13 05:06:39 -05'00' ----------------------------------------------- SANDRA PAOLA POZO GARCÍA Docente - Investigador Revisado por: Firmado electrónicamente por: MIRIAN YOLANDA JIMENEZ GUTIERREZ ----------------------------------------------- ING. MIRIAN JIMENEZ COORDINADOR DE LA CARRERA DE AMBIENTAL Firmado digitalmente por DANIEL DAVIDDANIEL DAVID ESPINOZA CASTILLO ESPINOZA CASTILLO Fecha: 2021.12.14 12:18:22 -05'00' ----------------------------------------------- ING. DANIEL DAVID ESPINOZA CASTILLO COORDINADOR DE LA CARRERA DE AGRONOMÍA Firmado electrónicamente por: JULIO CESAR BENAVIDES LARA ----------------------------------------------- ING. JULIO BENAVIDES COORDINADOR DE LA CARRERA DE ZOOTECNIA Nota. Se recomienda que los Técnicos Docentes tengan acceso a las Guías de Laboratorio con el objeto de coordinar con el profesor de asignatura las necesidades de recursos, materiales y equipos necesarios para el desarrollo de las prácticas. ANEXOS (Dibujos)
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