LOBATO-TORRES-JESSICA-GUADALUPE

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INSTITUTO POLITÉCNICO NACIONAL 
ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS 
“Evaluación de la actividad farmacológica 
de Swietenia humilis Zucc en un modelo 
de diabetes en ratón” 
PROYECTO DE INVESTIGACIÓN (TESIS) 
QUE PARA OBTENER EL TÍTULO DE: 
QUÍMICO FARMACÉUTICO INDUSTRIAL 
P R E S E N T A: 
Jessica Guadalupe Lobato Torres 
Asesor: Dr. Tomás Alejandro Fregoso Aguilar (Depto. de Fisiología, 
ENCB) 
Co-Asesor: Dr. José Antonio Morales González (Escuela Superior de 
Medicina) 
Ciudad de México Octubre 2016 
JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES I 
INSTITUTO POLITÉCNICO NACIONAL 
 El presente trabajo se desarrolló en el Instituto Politécnico Nacional, en 
la Escuela Nacional de Ciencias Biológicas, Unidad Zacatenco Wilfrido Massieu 
s/n, Unidad Profesional Adolfo López Mateos, Gustavo A. Madero, 07700 
Ciudad de México, en el laboratorio de Hormonas y Conducta, del 
departamento de Fisiología, bajo la supervisión del asesor Dr. Tomás Alejandro 
Fregoso Aguilar y coasesor Dr. José Antonio Morales González con el 
financiamiento parcial de proyecto SIP (20150595) de la Secretaria de 
Investigación y Posgrado del IPN. 
JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES II 
INSTITUTO POLITÉCNICO NACIONAL 
 Agradecimientos 
Gracias Dios por ésta vida, por el sin fin de bendiciones y por el camino que me has 
dado. Espero me brindes y llenes de sabiduría y fuerzas para todas las siguientes 
pruebas, que estoy segura, me faltan por vivir. 
Gracias a mis padres, por ser mi inspiración para seguir en la batalla, por su apoyo 
infinito, por su comprensión y su amor día tras día. 
Gracias a mis hermanos, por ser un ejemplo a seguir ante todas las obligaciones y 
responsabilidades. 
Gracias a mi asesor Dr. Tomás Fregoso por ser mi guía, por ser tan paciente y 
dedicado en el desarrollo de este proyecto. Por permitirme sentir amor a mi trabajo, 
y por permitirme tener su laboratorio, el laboratorio de hormonas y comportamiento, 
como mi segunda casa. 
Gracias a las asesorías y ayuda de mi coasesor Dr. José Morales, por permitirme 
integrar los conocimientos de la Escuela Superior de Medicina. 
Gracias a la Dr. Estela Meléndez, al Dr. Jorge Mendoza, y al Dr. Ricardo Pastén, 
por su grata presencia como sinodales, y su gran ayuda en las correcciones de esta 
tesis. 
Gracias la Escuela Nacional de Ciencias Biológicas, por ser mi alma mater. En el 
2011, tan sólo necesitaba una oportunidad para demostrar todo lo que soy capaz 
de lograr, y esa pequeña oportunidad me la brindaste. Tras cinco años de carrera, 
hoy puedo portar con gran orgullo tu escudo, y decir que provengo de la gran 
Escuela Nacional de Ciencias Biológicas. 
JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES III 
INSTITUTO POLITÉCNICO NACIONAL 
Su ayuda ha sido fundamental, ha estado conmigo incluso en los momentos más 
difíciles. Este proyecto no fue fácil, pero estuvo motivándome y ayudándome hasta 
donde sus alcances lo permitían. 
Muchas Gracias. 
Dedicado a las personas que siempre estuvieron conmigo, a las que ya se fueron, y a las 
que están por venir… 
Fuiste mi motivación más grande para concluir con éxito esta tesis. 
Con amor, Jessica ♡ 
“Los sueños parecen al principio imposibles, luego improbables, y 
luego, cuando nos comprometemos, se vuelven inevitables” 
– Mahatma Gandhi.
JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES IV 
INSTITUTO POLITÉCNICO NACIONAL 
JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES V 
INSTITUTO POLITÉCNICO NACIONAL 
Parte del presente trabajo fue presentado en la 12va Reunión Internacional de 
Investigación en Productos Naturales en Xalapa, Veracruz del 18 al 20 de Mayo del 2016. 
 
 
5 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
 
 
ÍNDICE GENERAL 
Índice……………………………………………………………………………………………...5 
Índice de figuras…………………………………………………………………………………7 
Índice de tablas…………………………………………………………………………………..8 
Abreviaturas……………………………………………………………………………………...9 
Resumen………………………………………………………………………………………..10 
Introducción……………………………………………………………………………………..11 
Regulación de la secreción de insulina de las células β del páncreas y su 
acción……………………………………………………………………………………………13 
Fisiopatología de la diabetes mellitus…………………………………..…..……………14 
Diabetes tipo 1…………………………………………………..………………………….15 
Diabetes tipo 2………………………………………………………..…………………….16 
Diabetes gestacional……………………………………………..………………………..16 
Estrés oxidativo y radicales libres………………………………………..………………17 
Actividad antioxidante…………………………………….……………………………….17 
Determinación de la actividad antioxidante por la técnica in vitro del DPPH…..……17 
Modelo químico de diabetes………………………..…………………………………….18 
Mecanismo de acción de la estreptozotocina………………………….……………….18 
Semillas de Swietenia humilis Zucc………………………………………….…………..20 
Justificación……………………………………………………………………………………..21 
Hipótesis………………………………………………………………………………………...21 
Objetivos………………………………………………………………………………………...22 
Objetivo general…………………………………………………………………………..22 
Objetivos particulares…………………………………………………………………….22 
Metodología…………………………………………………………………………………….23 
Extracción metanólica de la semilla de Swietenia humilis Zucc………………….....23 
Análisis fitoquímico cualitativo…………………………………………………………..23 
 
6 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
Espectroscopia FT IR y RMN ¹H…………………………………………………………..24 
Actividad antioxidante de Swietenia humilis Zucc……………………………………….24 
Curva de calibración………………………………………………………………….24 
Curva de absorbancia del extracto metanólico de Swietenia humilis Zucc……24 
Actividad genoprotectora de Swietenia humilis Zucc………....…………………………25 
Evaluación farmacológica de la semilla de Swietenia humilis Zucc…………………….26 
Actividad hipolipemiante y efecto sobre el peso corporal………………………………..26 
Actividad hipoglucemiante…………………………………………………………………...26 
Modelo de diabetes con estreptozotocina…………………………………………26 
Medición de glucosa en sangre……………………………………………………..27 
Preparación de la suspensión con el extracto…………………………………….27 
Grupos experimentales………………………………………………………………27 
Análisis de parámetros metabólicos en sangre……………………………………………28 
Análisis estadístico……………………………………………………………………………28 
Resultados…………………………………………………………………………………………29 
Fitoquímica cualitativa………………………………………………………………………29 
Espectroscopia FT IR y RMN ¹H…………………………………………………………..29 
Actividad antioxidante……………………………………………………………………….31 
Actividad genoprotectora…………………………………………………………………...31 
Actividad hipoglucemiante………………………………………………………………….32 
Actividad hipolipemiante y registro de peso corporal……………………………………33 
Niveles séricos de glucosa, triglicéridos, albúmina, colesterol y creatinina…………. 34 
Discusión………………………………………………………………………………………….35 
Conclusiones……………………………………………………………………………………..40 
Bibliografía…………………………………………………………….………………………….41 
Anexos…………………………………………………………………………………………….45
Anexo 1………………………………………………………………………………………45 
Anexo 2………………………………………………………………………………………47 
7 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
Índice de figuras 
Figura 1.- Estructura química del 2,2-difenil-1-picrilhidracilo (DPPH)……………………………………………18 
Figura 2.- Estructura química de la estreptozotocina (STZ)……………………………………………………... 18 
Figura 3.- Fruto y semillas provenientes del árbol del Zopilacahuite…………………………………………… 20 
Figura 4.- Diagrama general de la metodología experimental……………………………………………………23 
Figura 5.- Espectro de FT IR del extracto metanólico de la semilla de Swietenia humilis Zucc………………..30 
Figura 6.- Espectro de RMN H del extracto metanólico de la semilla de Swietenia humilis Zucc……………..30 
Figura 7.- Gráfica de Actividad Antioxidante a diferentes concentraciones contra porcentaje de Inhibición del 
radical de DDPH……………………………………………………………………………………………………... . 31 
Figura 8.- Gráfica de la actividad genoprotectora ante la administración de antraceno………………………..31 
Figura 9.- Niveles de glucosa sanguínea de 5 tratamientos durante 6 semanas……………………………….32 
Figura 10.- Niveles de glucosasanguínea de 4 tratamientos durante 6 semanas……………………...……… 33 
Figura 11. - Variación de peso corporal de 5 tratamientos durante 6 semanas…………………………………33 
8 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
Índice de tablas 
Principales hormonas implicadas en la regulación de los niveles de glucosa en sangre………………….12 
Ejemplos de plantas con propiedades antidiabéticas confirmadas…………………………………………..19 
Metabolitos secundarios encontrados…………………………………………………………………...………29 
Niveles séricos de glucosa, triglicéridos, albúmina, colesterol y creatinina…………………………………34 
Reactivos de los kits enzimáticos SPINREACT………………………………………………………………...47 
9 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
Abreviaturas 
STZ Estreptozotocina 
GLUT 4 Transportador de Glucosa tipo 4 
DPPH 2,2-difenil-1-picrilhidracilo 
ERO’s Especies Reactivas de Oxígeno 
UV Ultravioleta 
RMN Resonancia Magnética Nuclear 
RMN 1H Resonancia Magnética de Hidrógeno 1 
RMN 13H Resonancia Magnética de Carbono 13 
10 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
RESUMEN 
La diabetes mellitus es una gama de trastornos metabólicos, que originan un nivel alto de 
glucosa en sangre que pueden ocasionar síntomas agudos y anomalías metabólicas. Con la 
finalidad de encontrar un tratamiento natural contra la diabetes, se realizó el aporte de 
datos científicos de la semilla Swietenia humilis Zucc por medio de estudios químicos 
(fitoquímica cualitativa, espectroscopía y actividad antioxidante por el método in vitro del 
DPPH) y farmacológicos (actividad hipoglucemiante, hipolipemiante, y genoprotectora). La 
semilla Zopilote o Zopilacahuite como es conocida, es utilizada de manera empírica para el 
tratamiento de la diabetes en el estado de Morelos, Guerrero, Sinaloa y Chiapas. Se evaluó 
la actividad farmacológica mediante la creación de 8 grupos de ratones machos NIH (n=6-
8, 25-30g) a los cuales se les administró el extracto: I) Normoglucémicos (H2O destilada, vía 
ig); II) Normoglucémicos+ S. humilis Zucc (750mg/Kg, vía ig); III) Diabéticos, tratados con 
estreptozotocina (120mg/Kg, vía ip); IV) Diabéticos + Acarbosa (300mg/kg, vía ig); V) 
Diabéticos + Acarbosa (300mg/kg, vía ig) + S. humilis Zucc (750mg/Kg, vía ig); VI, VII, y VIII) 
Diabéticos + S. humilis Zucc (500 mg/kg, 750mg/Kg, 1000mg/kg, vía ig). Los extractos fueron 
administrados cada dos días por un periodo de seis semanas registrando los niveles de 
glucosa en sangre periférica y el peso corporal, así como la toma de plasma de la sangre 
periférica al finalizar el tratamiento para el análisis clínico de los niveles de glucosa, 
colesterol, triglicéridos, creatinina y albúmina por espectroscopia. La semilla S. humilis Zucc 
presentó alcaloides, azúcares reductores, saponinas, flavonoides, cumarinas y quinonas y 
exhibió baja actividad antioxidante, pero buena actividad genoprotectora; así como 
actividad antihiperglicemiante a partir de la primera semana con 500mg/Kg y de la tercera 
semana con 750 mg/kg, y tuvo efecto hipoglucemiante a partir de la segunda semana con 
1000mg/Kg y efecto sinérgico con la administración de una dosis media (750 mg/kg) y un 
fármaco de referencia (acarbosa 300 mg/kg); con todas las dosis el efecto protector ante la 
disminución de peso se presentó durante todo el tratamiento. El extracto disminuyó los 
niveles séricos de glucosa, triglicéridos y creatinina. 
11 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
INTRODUCCIÓN 
México ocupa actualmente el octavo lugar mundial en la prevalencia de 
diabetes. En cuanto a mortalidad por diabetes, México ocupa el sexto lugar mundial 
y el tercer lugar en el continente americano. Desde el 2000, la diabetes es la 
principal causa de muerte en México, ocasionando el 17.2% de las muertes, a cada 
hora se diagnostican 38 nuevos casos de diabetes y cada dos horas mueren 5 
personas a causa de complicaciones originadas por la diabetes. Las complicaciones 
derivadas por la diabetes son las renales, daño en el sistema nervioso, las 
enfermedades de la vista que terminan en ceguera y el padecimiento de pie 
diabético que debido al daño es la primera causal para amputación de miembros. 
Ningún país escapa a la epidemia de diabetes, y en los estados y territorios de todo 
el mundo son los pobres y los desfavorecidos quienes más sufren (FID, 2014). 
La diabetes mellitus consiste en una gama de trastornos metabólicos 
comunes, que se originan de diversos mecanismos patógenos y todos tienen por 
consecuencia la hiperglucemia, es decir, un nivel alto de glucosa en sangre, que 
puede ocasionar síntomas agudos y anomalías metabólicas (FID, 2014). 
Las biomoléculas como grasas, proteínas e hidratos de carbono provenientes 
de los nutrientes ingeridos pueden ser utilizados o almacenados, teniendo como 
uno de los fines proveer de energía al cuerpo humano (Silverthorn, 2009). En el 
caso de la glucosa sanguínea, ésta se mantiene en un intervalo estrecho, 
conservando una homeostasis de la glucosa, realizando con esto una función de 
gran importancia con múltiples niveles de comunicación entre órganos a través de 
hormonas (insulina), nervios y sustratos. La normatividad mexicana indica realizar 
pruebas clínicas para recabar datos con la finalidad del diagnóstico de la diabetes, 
que se describen a continuación: presencia de síntomas clásicos y una glucemia 
plasmática casual > 200 mg/dl; glucemia plasmática en ayuno > 126 mg/dl; o bien 
glucemia >200 mg/dl a las dos hrs. después de una carga oral de 75 g de glucosa 
anhidra disuelta en agua, sin olvidar que en la prueba de ayuno o en la PTOG, o en 
ausencia de síntomas inequívocos de hiperglucemia, estos criterios se deben 
confirmar repitiendo la prueba en un día diferente (NOM 015, 2010). 
La insulina es una hormona producida en el páncreas que permite que la 
glucosa de los alimentos entre a las células del cuerpo, donde se convierte en la 
energía necesaria para que funcionen los músculos y tejidos (FID, 2014). 
El páncreas es una glándula elongada anexa al aparato digestivo, con una 
función digestiva exocrina y una endócrina basada en los islotes de Langerhans. 
Contiene tres tipos de células: α (alfa), productoras de glucagón; β (beta), 
productoras de insulina; δ (delta), productoras de somatostatina (Jácome, 2005). 
12 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
Las células β pancreáticas ajustan la cantidad de insulina secretada para 
favorecer la captación de glucosa, principalmente contribuyen a la regulación de las 
concentraciones de glucosa plasmática; se estimulan desde el momento de la 
presentación de los alimentos, a lo largo de la absorción de nutrientes y hasta que 
la glucosa regresa a las cifras de ayuno. 
Las necesidades de glucosa en ayuno son suministradas principalmente por 
el hígado. Las reservas de glucógeno hepático proporcionan parte de esta glucosa 
gracias a la conversión de precursores de gluconeogénesis. La regulación de la 
glucogenólisis y gluconeogénesis hepáticas depende de la insulina y del glucagón, 
hormonas secretadas en los islotes pancreáticos (Tabla 1). La insulina inhibe la 
producción de glucosa en varios niveles mientras que el glucagón mantiene la 
glucemia al estimular la gluconeogénesis y la glucogenólisis en el hígado. 
Tabla 1.- Principales hormonas implicadas en la regulación de los niveles de glucosa 
en sangre. 
Regulación de la Glucosa 
Hormona Glándula Estímulo Acción 
Insulina Páncreas Aumento de la glucosa en la 
sangre. 
Ayudar a transportar la 
glucosa hacia las células; 
reduce los niveles de glucosa 
en la sangre. 
Glucagón Páncreas Disminución de la glucosa en 
la sangre; esfuerzo debido al 
ejercicio. 
Estimula la gluconeogénesis 
del hígado; aumenta los 
niveles de glucosa en la 
sangre. 
Adrenalina Suprarrenal Esfuerzo debido al ejercicio; 
disminución de laglucosa en 
la sangre. 
Estimula la degradación del 
glucógeno y la liberación de 
glucosa por el hígado; 
aumenta los niveles de 
glucosa en la sangre. 
Cortisol Suprarrenal Esfuerzo debido al ejercicio; 
disminución de la glucosa en 
la sangre. 
Estimula la degradación de las 
proteínas y la gluconeogénesis 
resultante; aumenta los niveles 
de glucosa en la sangre. 
Fuente: Williams, 2002. 
 El papel central de la insulina en el metabolismo de la glucosa es resaltado 
por el hecho de que todas las formas de diabetes humana tienen una causa básica 
de alguna anomalía en la secreción o acción de la insulina. El incremento de la 
concentración de insulina circulante disminuye la glucosa en sangre al inhibir la 
producción hepática de glucosa y estimular la captación y metabolismo de la misma 
por el músculo y tejido adiposo. La insulina tiene efectos potentes para disminuir la 
lipólisis de los adipocitos, principalmente a través de la inhibición de la lipasa 
13 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
sensible a hormona e incrementa el almacenamiento de lípidos al favorecer la 
síntesis de lipoproteína lipasa y la captación de glucosa por los adipocitos, así como 
también estimula la captación de aminoácidos y la síntesis de proteínas e inhibe la 
degradación de proteínas en músculo y otros tejidos causando la disminución en las 
concentraciones circulantes de la mayor parte de los aminoácidos (Powers y 
D’Alessio, 2012). 
Regulación de la secreción de insulina de las células β del páncreas y su 
acción 
La glucosa es transportada dentro de la célula β a través de un transportador 
GLUT2, el cual es el transportador principal de glucosa en las células del páncreas. 
Al interior, la glucosa sufre fosforilación con rapidez por una glucocinasa (GK) dicho 
paso es el limitante de la velocidad en el metabolismo de la glucosa. La glucosa-6-
fosfato producida entra a la vía glucolítica y produce cambios en la relación de 
NADPH y la proporción ADP/ATP. El incremento de ATP bloquea los conductos de 
K+ sensibles a ATP, ocasionando despolarización de la membrana celular. Dichos 
canales son proteínas heteroméricas que consisten en un conducto rectificador de 
K+ que permite el paso de este ión hacia el interior de la célula, gracias a la 
interacción con una subunidad denominada proteína Kir6.2, también conocida como 
receptor de sulfonilureas; las mutaciones en éste conducto son causantes de 
algunos tipos de diabetes o hipoglucemia neonatales. La despolarización de 
membrana que ocasiona abertura de los conductos de Ca2+ dependientes de voltaje 
y el incremento de Ca2+ intracelular, provocará la exocitosis de insulina de las 
vesículas de almacenamiento (Powers y D’Alessio, 2012). 
El receptor de insulina se encuentra en el hígado, músculo estriado y en tejido 
adiposo, y está compuesto por un dímero de sub-unidades α/β unidos por enlaces 
disulfuro formando una glucoproteína heterotetramérica: Dos subunidades α y dos 
subunidades β que atraviesan la membrana. 
La unión de insulina a las subunidades α permite la transfosforilación de una 
subunidad β por la otra, y la autofosforilación en sitios específicos de la región 
yuxtamembranosa a la cola intracelular del receptor. Así mismo, el transportador 
GLUT4 se expresa en los tejidos que responden a la insulina, como músculo 
estriado y tejido adiposo, los cuales constituyen sitios importantes para la captación 
de glucosa. El GLUT4 sobresale entre estos transportadores como el más 
dependiente de los estímulos aislados por insulina o por otros efectores; en estado 
basal, la mayor parte del transportador GLUT4 se encuentra en el espacio 
 
 
 
 
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intracelular; después de la activación de los receptores de insulina, el transportador 
GLUT4 se desplaza con rapidez y en abundancia a la membrana plasmática, donde 
facilita el transporte de glucosa de la circulación hacia el interior de la célula. La 
señalización de insulina también reduce la endocitosis del transportador GLUT4 al 
incrementar el tiempo de permanencia de la proteína en la membrana plasmática. 
Después de la difusión facilitada al interior de las células, siguiendo un gradiente de 
concentración, la glucosa sufre fosforilación por acción de la glucosa-6-fosfato 
(G6PD) por una familia de hexocinasas. Al igual que el transportador GLUT4, la 
hexocinasa II es regulada por la insulina a través de la transcripción. La G-6-P es 
un sustrato que puede entrar a varias vías. Puede ser isomerizado a G-1-P por 
acción de la fosfoglucomutasa y más tarde se almacena como glucógeno (la insulina 
incrementa la actividad de la glucógeno sintasa; la G6PD puede entrar a la vía 
glucolítica (lo que da origen a la producción de ATP); la G-6-P también puede entrar 
a la vía de pentosa-fosfato (Powers y D’Alessio, 2012). 
 
Fisiopatología de la diabetes mellitus 
El diagnóstico de diabetes mellitus se basa en la correlación de las 
complicaciones específicas de la diabetes con una cifra de glucemia en particular. 
Las organizaciones como la American Diabetes Association (ADA, 2015), la 
Organización Mundial de la Salud (OMS, 2016) y en nuestro país la normatividad 
mexicana (NOM 015,2010) ya antes mencionada, han adoptado criterios para el 
diagnóstico de diabetes, con base en la glucemia en ayuno, las cifras de glucosa 
después de la administración de glucosa oral o la concentración de hemoglobina 
A1C (HbA1C; Powers y D’Alessio, 2012). 
Las cuatro categorías principales de diabetes incluyen la diabetes tipo 1, 
diabetes tipo 2, otras formas de diabetes y la diabetes gestacional. Aunque la 
hiperglucemia es común a todas las formas de diabetes, el mecanismo 
patofisiológico que conduce a la diabetes es muy diferente (Nolte, 2013). 
Existen pruebas clínicas para diagnosticar la diabetes; las cuales se realizan 
en un entorno médico, ya que el doctor será quien brinde el diagnóstico final. A 
continuación, se indican las pruebas (ADA, 2015): 
 Prueba de Hemoglobina A1C. La prueba A1C mide el nivel promedio de 
glucosa en la sangre durante los últimos 2 o 3 meses. Las ventajas de recibir 
un diagnóstico de esta manera es que no se tiene que ayunar ni beber nada. 
Se diagnostica diabetes cuando: A1C ≥ 6.5% (ADA, 2015). 
 Glucosa plasmática en ayunas. Ésta prueba generalmente se realiza a 
primera hora en la mañana, antes del desayuno, y mide su el nivel de glucosa 
 
 
 
 
15 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
 
en la sangre cuando se está en ayunas. Ayunar significa no comer ni beber 
nada (excepto agua) por lo menos 8 horas antes del examen. Se diagnostica 
diabetes cuando: glucosa plasmática en ayunas ≥ 126 mg/dL (ADA, 2015). 
 Prueba de tolerancia a la glucosa oral. Esta es una prueba de dos horas 
que mide el nivel de glucosa en la sangre antes de beber una bebida dulce 
especial y 2 horas después de tomarla. Le indica a su médico cómo el cuerpo 
procesa la glucosa. Se diagnostica diabetes cuando: glucosa en la sangre a 
las 2 horas ≥ 200 mg/dL (ADA, 2015). 
 Prueba aleatoria (o casual) de glucosa plasmática. Esta prueba es un 
análisis de sangre en cualquier momento del día cuando se presentan 
síntomas de diabetes severa. Se diagnostica diabetes cuando: glucosa en la 
sangre ≥ 200 mg/dL (ADA, 2015). 
Diabetes tipo 1 
Es causada por una reacción autoinmune, en la que el sistema de defensa 
del cuerpo ataca las células β productoras de insulina en el páncreas. Como 
resultado, el cuerpo ya no puede producir la insulina que necesita. No se sabe muy 
bien por qué ocurre esto. La enfermedad puede afectar a personas de cualquier 
edad, pero generalmente se presenta en niños o adultos jóvenes. Las personas con 
este tipo de diabetes necesitan insulina todos los días para controlar los niveles de 
glucosa en sangre. Sin insulina,una persona con diabetes tipo 1 muere. La diabetes 
tipo 1 suele desarrollarse repentinamente y puede producir síntomas tales como: 
sed anormal y sequedad de boca, micción frecuente, falta de energía, cansancio 
extremo, hambre constante, pérdida repentina de peso, heridas de cicatrización 
lenta, infecciones recurrentes y visión borrosa. Los individuos con diabetes tipo 1 y 
sus familiares tienen un incremento en la prevalencia de enfermedades 
autoinmunitarias como la enfermedad de Addison, enfermedad tiroidea 
autoinmunitaria, la enfermedad de Graves y la de Hashimoto (Powers y D’Alessio, 
2012). 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
16 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
 
Diabetes Tipo 2 
Es el tipo de diabetes más común y por lo general ocurre en adultos, pero 
cada vez más aparece en niños y adolescentes. 
En la diabetes tipo 2, el cuerpo puede producir insulina pero, o bien esta no 
es suficiente, o bien el cuerpo no puede responder a sus efectos; dando lugar a una 
acumulación de glucosa en sangre. Muchas personas con diabetes tipo 2 no son 
conscientes de su enfermedad durante mucho tiempo, ya que los síntomas pueden 
tardar años en aparecer o ser reconocidos. Durante este tiempo, el cuerpo está 
siendo dañado por el exceso de glucosa en sangre. Estas personas suelen ser 
diagnosticadas sólo cuando las complicaciones de la diabetes ya se han 
desarrollado (FID, 2014). Hay varios factores de riesgo como: La obesidad, la mala 
alimentación, la inactividad física, la edad avanzada, los antecedentes familiares de 
diabetes. A diferencia de las personas con diabetes tipo 1, la mayoría de las 
personas con diabetes tipo 2 no requieren, por lo general, dosis diarias de insulina 
para sobrevivir. Muchas personas pueden controlar su enfermedad a través de una 
dieta sana y una mayor actividad física, y medicación oral. Sin embargo, si no son 
capaces de regular sus niveles de glucosa, pueden necesitar insulina (FID, 2014). 
 
Diabetes gestacional 
Las mujeres que desarrollan una resistencia a la insulina y, por tanto, una 
alta concentración de glucosa en sangre durante el embarazo, se dice que tienen 
diabetes gestacional. La condición se produce debido a que la acción de la insulina 
es bloqueada, probablemente por las hormonas producidas por la placenta, 
provocando insensibilidad a la insulina. La diabetes gestacional no controlada 
puede tener graves consecuencias, tanto para la madre como para el bebé, puede 
dar lugar a un bebé con un tamaño significativamente superior a la media 
(macrosomía fetal), lo que hace que un parto normal se convierta en difícil y de 
riesgo. El recién nacido correrá el riesgo de sufrir lesiones en los hombros y 
problemas respiratorios. También existe el riesgo de pre-eclampsia, una condición 
en la que la alta presión arterial repentina representa un peligro para la salud de la 
madre y su bebé. La diabetes gestacional en las mujeres normalmente desaparece 
después del nacimiento. Sin embargo, las mujeres que han tenido diabetes 
gestacional tienen un mayor riesgo de desarrollar diabetes gestacional en 
embarazos posteriores y de desarrollar diabetes tipo 2 más adelante en la vida. 
Las mujeres con diabetes gestacional tienen que vigilar y controlar sus 
niveles de glucosa en sangre para reducir al mínimo los riesgos para el bebé (FID, 
2014). 
 
 
 
 
 
17 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
 
Estrés oxidativo y radicales libres 
El estrés oxidativo resulta de un desequilibrio entre la generación de radicales 
y sistemas de barrido de radicales donde se ha incrementado la producción de 
radicales libres o se ha reducido la actividad de las defensas antioxidantes o ambos. 
Como una implicación del estrés oxidativo en la patogénesis de la diabetes mellitus, 
se sugiere no sólo la generación de radicales libres de oxígeno, sino también debido 
a la glicosilación no enzimática de proteínas, la auto-oxidación de la glucosa, el 
metabolismo del glutatión, alteración de las enzimas antioxidantes y formación de 
peróxidos de lípidos. Los radicales libres pueden encontrarse en el interior o en el 
exterior de las células o incluso diseminados por todo el organismo, manteniendo 
actividad biológica al oxidarse, dañando principalmente tejido conjuntivo, proteínas, 
enzimas, lípidos, membranas celulares, ADN y ARN, entre otros; y su acción 
también la pueden ejercer sobre los leucocitos favoreciendo su activación anómala, 
por lo cual están implicados en la producción de enfermedades degenerativas como 
el cáncer, enfermedades cardiovasculares y cerebrovasculares (Hernández, 2004). 
Actividad antioxidante 
La forma en cómo funcionan los antioxidantes es terminando las reacciones 
en cadena que provocan los radicales libres e inhiben otras reacciones de oxidación, 
oxidándose ellos mismos (Zamora, 2007). 
Determinación de la actividad antioxidante por la técnica in vitro del DPPH 
Esta determinación se basa en la utilización de la molécula del radical libre 
2,2-difenil-1-picrilhidracilo (DPPH) in vitro. El DPPH es un radical libre débil que 
presenta un electrón desapareado en su último orbital (figura 1), lo cual le confiere 
la capacidad de oxidar a diferentes macromoléculas tratando de estabilizar su última 
capa orbital; como consecuencia de esto, puede provocar la muerte de diferentes 
organelos, alterar la estructura de la membrana celular y por consiguiente causar la 
muerte de las células (e.g., las células β-pancreáticas). Físicamente, el radical 
DPPH presenta una coloración morada y cuando se expone a la presencia de 
alguna sustancia capaz de donarle electrones para completar su última capa orbital, 
se reduce y pasa a una coloración amarilla o transparente. Esto se puede evaluar a 
través de la medición de la absorbancia en una longitud de onda de 517nm, 
mediante el uso de un espectrofotómetro (Dibyendu, 2013). 
18 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
Figura 1.- Estructura química del 2,2-difenil-1-picrilhidracilo (DPPH), Fuente: The Merck Index, 2001. 
Modelo químico de diabetes 
Mecanismo de acción de la estreptozotocina (STZ) 
 Este fármaco (figura 2) es usado para inducir la diabetes mellitus tipo 1 y tipo 
2; la STZ entra en la célula β a través de un transportador de glucosa (GLUT2) y 
causa daño al DNA por alquilación de las cadenas de este ácido, también induce la 
activación de un proceso llamado poli ADP-ribosilación, que conduce al agotamiento 
celular de NAD+ y ATP que llevara a la célula a la apoptosis. Otro mecanismo 
paralelo es la producción de especies reactivas de oxígeno (EROs), que a vez 
también causarán daño en la célula. Por otro 
lado, los radicales libres se producen 
continuamente en el cuerpo como resultado de 
procesos metabólicos normales y la interacción 
con estímulos ambientales. El estrés oxidativo 
provocado por la generación de radicales libres 
puede constituir el evento clave y común en la 
patogénesis de complicaciones diabéticas 
secundarias (Szkudelski, 2001). 
En muchos países se han obtenido 
extractos de plantas y fitoquímicos (Tabla 2), que llaman la atención por su potencial 
para el uso de tratamiento y prevención de la diabetes mellitus que han sido 
probados tanto in vivo como in vitro, los cuales podrían ser aprobados como 
refuerzo para el tratamiento de ésta enfermedad. De manera general el mecanismo 
que realizan estos metabolitos es, que influyen en la secreción de la insulina, 
aumentar la expresión de receptores para insulina, aumentar la expresión de 
enzimas, receptores y transportadores relacionados con el metabolismo de la 
glucosa (Coman, 2012). 
Figura 2.- Estructura química de la 
estreptozotocina (STZ). Fuente: The Merck 
Index, 2001.
19 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
Tabla 2.- Ejemplos de plantas con propiedades antidiabéticasconfirmadas. 
Fuente: Coman, 2012. 
20 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
Semillas de Swietenia humilis Zucc 
El árbol Swietenia humilis Zucc pertenece a la familia Meliaceae, del género 
Swietenia y especie humilis. Crece en áreas tropicales y subtropicales en toda 
América. En México se localiza en los bosques tropicales de Sinaloa, Colima, 
Michoacán, Guerrero y Chiapas (Standley, 1920). El árbol es conocido como 
zopilote, zopilacahuite, vanadillo o caobilla, y a las semillas se les denomina con el 
mismo nombre (figura 3). En dichos estados de la República Mexicana, su 
etnobotánica sugiere el uso para tratamiento de diversas enfermedades. En otros 
géneros de la familia Meliaceae, se han reportado efectos hipoglucemiantes; sin 
embargo, para Swietenia humilis Zucc no se tenían reportes científicos hasta el 
2014, sobre la actividad hipoglucemiante e hipolipemiante, ni sobre su toxicidad 
(Rico, 2014). Cabe recalcar que el presente estudio se realizó durante febrero 2015 
a junio de 2016, donde a inicios del año 2015 fue publicado un artículo científico de 
la Universidad Nacional Autónoma de México (UNAM) en donde redactan el efecto 
hipoglucemiante y antihiperglucémico de los limonenos provenientes de Swietenia 
humilis (Ovalle, 2014). 
Figura. 3.- Fruto y semillas provenientes del árbol del Zopilacahuite. Fuente: Rojas, 2011. 
21 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
JUSTIFICACIÓN 
La Federación Internacional de la Diabetes estima que aproximadamente 387 
millones de personas padecen diabetes a nivel mundial y esta cifra va en aumento 
en todos los países (FID, 2014); igualmente se sabe que los tratamientos alopáticos 
son costosos y algunas veces inaccesibles para las personas que padecen esta 
enfermedad, además de presentar numerosos efectos adversos en la mayoría de 
los casos. 
Por tal razón, es necesario encontrar un tratamiento efectivo y natural, que 
sea económico y relativamente más seguro como terapia alternativa para este tipo 
de trastornos crónico-degenerativos. En este sentido se propone aportar datos 
científicos que avalen el uso de Swietenia humilis Zucc en el tratamiento de este 
tipo de padecimientos. 
HIPÓTESIS 
Si se le atribuye a la planta Swietenia humilis Zucc el uso tradicional para el 
tratamiento de la diabetes mellitus, entonces se esperará que los extractos 
metanólicos de ésta planta presentarán actividades farmacológicas de tipo 
hipoglucemiante, hipolipemiante, y antioxidante en un modelo químico de diabetes 
en ratón. 
 
 
 
 
22 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
 
OBJETIVOS 
Objetivo General: Determinar la actividad hipoglucemiante, hipolipemiante y antioxidante 
del extracto metanólico de la semilla de Swietenia humilis Zucc en un modelo químico de 
diabetes en ratón. 
 
Objetivos Particulares: 
 
1. Determinar la presencia de metabolitos secundarios en el extracto 
metanólico de semilla de Swietenia humilis Zucc mediante un estudio 
fitoquímico cualitativo. 
2. Determinar los principales grupos funcionales de los metabolitos secundarios 
en el extracto metanólico de semilla de Swietenia humilis Zucc mediante 
estudios espectroscópicos convencionales. 
3. Evaluar la actividad antioxidante del extracto metanólico de la semilla 
Swietenia humilis Zucc por método in vitro del DPPH. 
4. Determinar la actividad genoprotectora del extracto metanólico de Swietenia 
humilis Zucc 
5. Evaluar el efecto del extracto metanólico de Swietenia humilis Zucc sobre el 
peso corporal en ratones tratados con estreptozotocina. 
6. Comprobar la actividad hipolipemiante e hipoglucemiante del extracto 
metanólico de la semilla Swietenia humilis Zucc en un modelo químico de 
diabetes en ratón inducido por estreptozotocina. 
7. Cuantificar los niveles de glucosa, colesterol, triglicéridos, albumina y 
creatinina en el plasma de la sangre periférica de ratón al término del 
tratamiento. 
 
 
23 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
METODOLOGÍA 
El presente trabajo se dividió en dos grandes procesos metodológicos, fase 
química: fitoquímica cualitativa, espectroscopia y actividad antioxidante in vitro. 
Fase farmacológica: actividad hipoglucemiante, hipolipemiante y genoprotectora. La 
semilla Swietenia humilis Zucc fue adquirida en un establecimiento comercial 
debidamente autorizado. 
Figura 4.- Diagrama general de la metodología experimental. 
Extracción metanólica de la semilla de Swietenia humilis Zucc 
La semilla está contenida en una cáscara, la cual se retiró primero la cáscara 
y se separó. Se trituró la semilla, se pesó y se transfirió a un frasco de vidrio 
previamente etiquetado y rotulado (Nombre del colector, Nombre de la semilla y 
Fecha) y se le adicionó el volumen de metanol necesario para cubrir las semillas. 
En este envase se dejó macerar durante dos semanas, realizando un cambio de 
disolvente cada semana, logrando obtener dos cambios de disolvente en total. Así 
pues, se juntaron ambos volúmenes del macerado para su posterior concentració n 
mediante destilación a presión reducida con ayuda de un rotavaporador (Prendo, 
Modelo 1750) obteniéndose el extracto crudo (Berdeja et al., 2015). 
Análisis fitoquímico cualitativo 
Una vez obtenido el extracto metanólico concentrado, se re suspendió en 
metanol para ayudar a la manipulación y se realizaron las pruebas fitoquímicas 
cualitativas, basadas en la metodología descrita en el manual de laboratorio de 
fitoquímica para la carrera Químico Farmacéutico Industrial (Berdeja et al., 2015). 
 
 
 
 
24 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
 
Se seleccionaron las pruebas más sencillas y se describen en este trabajo 
(Ver Anexo1). 
Espectroscopia FT IR y RMN ¹H 
Una vez obtenido el extracto metanólico crudo concentrado y cuando se 
evaporó el disolvente, la pasta resultante se colocó en un envase de vidrio 
debidamente rotulado (nombre del colector, nombre de la semilla y fecha), de donde 
se tomó una muestra representativa y se colocó en un tubo eppendorf, debidamente 
rotulado (nombre del colector, nombre de la semilla y fecha) y se envió para su 
análisis por espectroscopia FT-IR y RMN ¹H al Centro de Nanociencias y Micro 
Nanotecnología (CNMN) del Instituto Politécnico Nacional, ubicado en Av. Luis 
Enrique Erro s/n, Nueva Industrial Vallejo, 07738 Ciudad de México, D.F. 
Actividad antioxidante de Swietenia humilis Zucc 
Curva de calibración 
Se preparó una solución del reactivo DDPH (2,2-difenil-picrihidrazil) y se pesó 
0.1 g adicionando metanol y aforando a 25 mL, una vez envasada se protegió de la 
exposición directa a la luz y se etiquetó debidamente. La solución se dejó reposar 
durante 10 minutos y se preparó tres tubos por duplicado de 40, 140 y 200 μL de 
DDPH y 1960, 1860, 1800 μL de metanol, respectivamente. Se leyó la absorbancia 
a cada tubo al espectrofotómetro (modelo Velab VE-5100UV) de UV-Visible a una 
longitud de onda de 517 nm. Posteriormente se determinó el promedio de las 
absorbancias y se graficó, utilizando la ecuación de la recta para calcular el valor de 
la concentración de DDPH en función de la absorbancia (Singh, 2011). 
Curva de absorbancia del extracto metanólico de Swietenia humilis Zucc 
En un tubo de ensayo se adicionó metanol (1855 μL), se cubrió con papel 
aluminio, y se leyó la absorbancia, siendo éste el tiempo 0. Después se adicionó y 
mezcló DPPH (140 μL) y 5 μL del extracto disuelto en metanol, siendo éste el tiempo 
1. Este procedimiento se realizó a los tiempos 5, 10, 15, 30, 60, 90 minutos. Esto se 
realizó por duplicado. Se determinó el promedio de ambas absorbancias y el error 
estándar; en la ecuación de la curva de calibración se sustituyó dichos valores y se 
graficó el promedio de absorbancia contra el tiempo de medición de la reacción.Los 
valores de los promedios de las absorbancias se sustituyeron en la siguiente fórmula 
para conocer la actividad antioxidante o él % de inhibición de la presencia del radical 
DPPH, y se grafica el % de inhibición de la presencia del radical DPPH contra el 
tiempo de reacción (Singh, 2011). 
 
 
 
 
 
25 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
 
% 𝑖𝑛ℎ𝑖𝑏𝑖𝑐𝑖ó𝑛 = 
( 𝐴𝑏𝑠 𝐷𝑃𝑃𝐻𝑡=0 − 𝐴𝑏𝑠 𝑀𝑢𝑒𝑠𝑡𝑟𝑎𝑡=0)
𝐴𝑏𝑠 𝐷𝑃𝑃𝐻𝑡=0
 𝑋 100 
Donde: 
% inhibición= El porcentaje de inhibición de la presencia del radical DPPH. 
Abs DDPH t=0 = Absorbancia del DDPH al tiempo cero. 
Abs Muestra t=0 = Absorbancia de la muestra al tiempo cero. 
Actividad genoprotectora de Swietenia humilis Zucc 
Se utilizaron tres grupos de ratones NIH macho con un peso aproximado de 
25 a 30 g, manejando una n= 6 ratones para cada grupo. Los animales se alojaron 
en las cámaras de animales de la ENCB, campus Zacatenco (IPN) del depto. de 
Fisiología, con un ciclo de luz-oscuridad de 12:12 h. (luces encendiéndose a las 
8:00 AM) y con agua y alimento adlibitum. El manejo experimental de los animales 
estuvo basado en la norma NOM-062-ZOO1-1999 para la producción, cuidado y 
uso de animales de laboratorio y NOM-087-ECOL-1995 para la disposición final de 
productos biológicos, excretas y cadáveres. En todo momento se siguieron los 
protocolos de ética internacionales para el diseño de experimentos. 
Al primer grupo denominado control negativo, se le administró vehículo 
(aceite mineral) por vía intragástrica (IG); al grupo control positivo, se le administró 
antraceno (10 mg/kg) por vía intragástrica (IG) y al grupo con tratamiento se le 
administró antraceno (10 mg/kg) previo extracto de Swietenia humilis Zucc (500 
mg/kg) por vía intragástrica (IG). 
El periodo total para la evaluación de esta actividad fue de cuatro semanas, 
donde la administración de dichos tratamientos fue sólo durante las dos primeras 
semanas, cada segundo día. Durante estas cuatro semanas, se tomó una muestra 
de sangre periférica de ratón para realizar un frotis cada dos días a partir del día 
cero (sin ningún tratamiento). 
El procedimiento para realizar los frotis fue, a partir de un corte del extremo 
distal de ratón se obtiene sangre periférica realizando frotis en portaobjetos, y se fijó 
en metanol durante seis minutos. Posteriormente, se introdujo en colorante de 
Giemsa, para poner de manifiesto los micronúcleos durante una hora; a 
continuación, se lavó a la llave de agua corriente para quitar exceso de colorante. 
Se dejó secar y se procedió a su evaluación al microscopio (modelo Carl Zeiss, J-
08096697) al aumento 100X; en todos los casos se contaron los micronúcleos 
presentes en 10 campos. La estadística se menciona en el apartado de análisis 
estadístico. 
 
 
 
 
26 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
 
Evaluación farmacológica de la semilla de Swietenia humilis Zucc 
 
Actividad hipolipemiante y efecto sobre el peso corporal 
Se utilizaron ratones NIH macho con un peso aproximado de 25 a 30 g, 
manejando una n= 8 a 10 ratones para cada grupo. Los animales se alojaron en las 
cámaras de animales de la ENCB, campus Zacatenco (IPN) del depto. de Fisiología, 
con un ciclo de luz-oscuridad de 12:12 h. (luces encendiéndose a las 8:00 AM) y 
con agua y alimento adlibitum. El manejo experimental de los animales estuvo 
basado en la norma NOM-062-ZOO1-1999 para la producción, cuidado y uso de 
animales de laboratorio y NOM-087-ECOL-1995 para la disposición final de 
productos biológicos, excretas y cadáveres. En todo momento se siguieron los 
protocolos de ética internacionales para el diseño de experimentos. 
Semanalmente se midió el peso de los ratones, con la finalidad de observar 
si el extracto tuvo un efecto protector contra la pérdida de peso corporal provocado 
por la STZ (Kaleem, 2006); se realizó el pesaje con una balanza (modelo Adam, 
DCT5000) y se registró los datos. 
Actividad hipoglucemiante 
Se utilizaron ratones NIH macho con un peso aproximado de 25 a 30 g, 
manejando una n= 8 a 10 ratones para cada grupo. Los animales se alojaron en las 
cámaras de animales de la ENCB, campus Zacatenco (IPN) del depto. de Fisiología, 
con un ciclo de luz-oscuridad de 12:12 h. (luces encendiéndose a las 8:00 AM) y 
con agua y alimento adlibitum. El manejo experimental de los animales estuvo 
basado en la norma NOM-062-ZOO1-1999 para la producción, cuidado y uso de 
animales de laboratorio y NOM-087-ECOL-1995 para la disposición final de 
productos biológicos, excretas y cadáveres. En todo momento se siguieron los 
protocolos de ética internacionales para el diseño de experimentos. 
Modelo de diabetes con estreptozotocina (STZ) 
Para diabetizar a los ratones, se administró STZ con una dosis de 120mg/kg 
por vía IP disuelta en Buffer de citratos como vehículo (pH= 4.5 0.1M); 
posteriormente para verificar el estado hiperglucémico de los ratones, se midieron 
los niveles de glucosa en sangre después de una semana de la administración con 
STZ (Shinde, 2003). 
 
 
 
 
 
27 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
 
Medición de glucosa en sangre 
Se manipuló al ratón de forma que se permitiera realizar un pequeño corte 
en el extremo distal de la cola, con la finalidad de obtener una gota de sangre, la 
cual se drenó y se desechó; de manera que la segunda gota de sangre se depositó 
en una tira reactiva previamente colocada en el dispositivo (Glucómetro, Optium 
FreeStyle, Abbott), y se procedió a hacer lectura del nivel de glucosa en sangre 
(mg/dL), el valor se encuentra en la pantalla del dispositivo. 
Preparación de la suspensión con el extracto 
Una vez obtenido el extracto metanólico crudo concentrado y cuando se 
evaporó el disolvente, se realizó una prueba de disolución con agua destilada y/o 
buffer de citratos para determinar el vehículo más adecuado para administrar la 
suspensión. El extracto de Swietenia humilis Zucc tuvo como vehículo agua 
destilada. La suspensión se realizó entonces con 2g del extracto crudo en 40 mL de 
agua destilada, dejando en agitación 12 h, obteniéndose una suspensión de 50 
mg/dL. 
Grupos experimentales 
Para determinar la actividad hipoglucemiante e hipolipemiante se formaron los 
siguientes grupos de ratones (n = 6 – 8 animales), donde al grupo control absoluto 
sólo se le administró el vehículo (agua destilada) por vía intragástrica (IG), mientras 
que al grupo control positivo se diabetizó con el método antes mencionado. Los 
grupos experimentales se diabetizaron y posteriormente se administraron con la 
suspensión del extracto metanólico de Swietenia humilis Zucc vía IG, por medio de 
una cánula metálica para ratón. La administración se realizó cada dos días durante 
36 días (6 semanas); semanalmente se midieron el peso corporal y los niveles de 
glucosa en sangre previo ayuno de 12-18 h, quedando los grupos de la siguiente 
manera: 
1. Normoglucémicos, control absoluto (sin diabetizar) administrados con 
vehículo. 
2. Control positivo, diabetizados con STZ (120 mg/kg, i.p.). 
3. Diabéticos + Tx500; diabetizados más el tratamiento con extracto metanólico 
de S. humilis (500 mg/kg, vía IG). 
4. Diabéticos + Tx750; diabetizados más el tratamiento con extracto metanólico 
de S. humilis (750 mg/kg, vía IG). 
28 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
5. Diabéticos + Tx1000; diabetizados más el tratamiento con extracto
metanólico de S. humilis (1000 mg/kg, vía IG).
6. Diabéticos + Acarb300; diabetizados más el tratamiento de Acarbosa (300
mg/Kg, vía IG).
7. Diabéticos + Acarb300 + Tx750; diabetizados más el tratamiento con
Acarbosa (300 mg/kg, vía IG) y extracto metanólico de S. humilis (750 mg/kg,
vía IG).
Análisis de parámetros metabólicos en sangre 
Una vez terminado el tratamiento, se procedió a sacrificara los ratones por 
decapitación, obteniendo la mayor cantidad posible de sangre. Esta se colectó en 
tubos con anticoagulante (BD Vacutainer / SST). Se procedió a centrifugar a 3400 
rpm durante 15 minutos y el sobrenadante se separó con ayuda de una pipeta 
pasteur; la muestra obtenida se guardó en tubos eppendorf y se mantuvieron en 
congelación. 
En el momento de las determinaciones, las muestras se colocaron en 
recipientes con hielo y se siguió la metodología descrita en los kits correspondientes 
(ver anexo 2). 
Análisis estadístico 
Los datos generados en esta parte del diseño experimental fueron analizados 
con ayuda del software Sigmastat 3.5. Para las mediciones semanales de peso y 
glucosa sanguínea se utilizó la prueba paramétrica ANOVA bifactorial de medidas 
repetidas; mientras que para la evaluación cuantitativa de los parámetros con kits 
de reactivos se realizó una ANOVA Unifactorial. Cuando fue necesario, se utilizó la 
prueba post hoc de comparaciones múltiples de Student-Newman-Keuls para 
buscar diferencias significativas entre factores. En todos los casos, se utilizó un nivel 
α = 0.05 como criterio para establecer diferencias significativas. 
 
 
 
 
29 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
 
RESULTADOS 
Fitoquímica cualitativa 
A continuación, se muestran los ensayos fitoquímicos cualitativos realizados 
en el extracto metanólico de la semilla Swietenia humilis Zucc y se mencionan las 
pruebas que resultaron positivas (Tabla 3). Se encontraron alcaloides, azúcares 
reductores, saponinas, flavonoides, cumarinas y quinonas como metabolitos 
secundarios. 
Tabla 3.- Metabolitos secundarios encontrados 
 
Espectroscopia FT IR y RMN ¹H 
La información espectral de la técnica FT-IR (Figura 5) coincide al determinar 
el espectro RMN 1H (Figura 6), considerando que hay tres regiones del espectro 
que son de una importancia particular, la de los protones aromáticos que resuenan 
en 7.50 ppm, grupos metoxilos en 3.5 y 4 ppm, donde la región de 4 ppm son 
protones orto protegidos y en 1.0 ppm cadenas alifáticas. En la señal 5 y 5.5 grupos 
vinílicos y en 1750 ppm característico de la forma carbonilo o éster; además de la 
banda ancha en 3500 ppm característico de los alcoholes. 
 Las señales entre 3.70 a la 5.35 ppm indican la presencia de monómeros 
diferentes atribuibles a la existencia de azucares reductores; entre 0.5 y 4.5 ppm 
indican la presencia de sacáridos, que son estructuras características de las 
saponinas; se observó una fuerte señal entre 3.42 y 3.89 ppm, indicando presencias 
de cadenas de carbono enlazadas a grupos fenilos en la señal de 6,46 ppm; además 
de identificarse grupos sulfato con lo que se sugiere una estructura general de 
flavonoides. 
30 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
Figura 5.- Espectro de FT IR del extracto metanólico de la semilla de Swietenia 
humilis Zucc. Se muestran principales grupos encontrados. Se empleó la técnica de 
espectroscopia de infrarrojo con transformación de Fourier (FT-IR). 
Figura 6.- Espectro de RMN 1H del extracto metanólico de la semilla de Swietenia 
humilis Zucc. Se muestran en números grandes de color negro los desplazamientos 
químicos obtenidos. 
31 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
Actividad antioxidante 
Los resultados obtenidos de la prueba del efecto antioxidante establecieron 
que las muestras que se analizaron llegaban a su punto máximo del porcentaje de 
inhibición del radical de DDPH en el minuto 30, demostrando una disminución en la 
inhibición después de haber pasado este tiempo; se debe enfatizar que el extracto 
metanólico de 50 mg/mL tuvo el mayor porcentaje de inhibición del radical libre 
DDPH (Figura 7); además, mantuvo los valores más grandes hasta el minuto 60, 
demostrando que el extracto metanólico desarrolló un mayor efecto antioxidante y 
más prolongado que el extracto crudo y acuoso. 
Figura 7.- Gráfica de Actividad Antioxidante a diferentes concentraciones contra porcentaje 
de Inhibición del radical de DDPH. Donde se manejan dos concentraciones del extracto crudo, un 
extracto metanólico y un extracto acuoso contra el porcentaje de inhibición del radical DDPH. 
Actividad genoprotectora 
De los resultados obtenidos (Figura 8) se observó que, a partir del primer día 
hasta el tercer día de administración del extracto en el grupo experimental, redujeron 
significativamente la cantidad de micronúcleos en sangre periférica de ratón a 
comparación del grupo control (Anova bifactorial de medidas repetidas, prueba de 
Student Newman Keuls, F10/75= 6.53; P<0.001), mostrando un efecto genoprotector ante 
la administración del antraceno. 
Figura 8.- Gráfica de la actividad genoprotectora ante la administración de antraceno . ANOVA 
bifactorial de medidas repetidas. *P<0.001, Student-Newman-Keuls, Control positivo VS Tx 
500mg/kg a partir del primer hasta el tercer día. 
 
 
 
 
32 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
 
Actividad hipoglucemiante 
En condiciones normales se registraron niveles de glucosa sanguínea entre 
90 y 130 mg/dL. Tras una semana de la administración de estreptozotocina, se 
consideraron animales diabéticos aquellos individuos que presentaron glicemia 
mayor o igual a 150 mg/dL. Se muestran los niveles de glicemia presentados en los 
tres grupos de ratones diabéticos (Figura 9) que fueron administrados con el 
extracto de la semilla Swietenia humilis Zucc con 500, 750, 1000 mg/kg 
respectivamente, con la comparación de los grupos control (normoglucémicos) y 
diabéticos absolutos en el transcurso de 6 semanas (ANOVA bifactorial de medidas 
repetidas, Student-Newman-Keuls, F4/217=57.67; P<0.001), dejando ver que los grupos 
con administración del extracto tuvieron menores niveles de glucosa en sangre en 
comparación con el grupo de diabéticos absolutos, cabe destacar que el grupo con 
extracto de 1000 mg/Kg fue capaz de bajar los valores de glucosa hasta los niveles 
normales obtenidos en el grupo control a partir de la segunda semana de 
administración, con lo cual se puede decir que presentó actividad hipoglucémica; 
sin embargo en los grupos tratados con 500 y 750 mg/Kg que mantuvieron los 
niveles de glucosa entre 180 – 300 mg/dL a partir de la segunda semana, dichos 
niveles de glucosa permanecieron por debajo de los niveles de glucosa del grupo 
diabético absoluto; a esto se le puede denominar actividad anti-hiperglicémica 
(Student-Newman-Keuls, P<0.005; Figura 9). Con la administración de acarbosa 300 
mg/Kg a ratones diabéticos, se observó la disminución de los niveles de glucosa, en 
comparación del grupo diabético absoluto (ANOVA bifactorial de medidas repetidas, 
Student-Newman-Keuls, F3/126=25.92; P<0.00; Figura 10); mientras que el grupo 
diabético más el tratamiento con extracto 750 mg/kg y acarbosa 300mg/kg exhibió 
una disminución de los valores de glucosa de manera significativa a partir de la 
tercera semana (Student-Newman-Keuls, P<0.005; Figura 10), con lo cual se observó 
el efecto sinérgico de la administración del extracto a una dosis media (750mg/Kg) 
junto con un fármaco de referencia. 
 
Figura 9.- Niveles de glucosa sanguínea (Media ± EEM) de 5 tratamientos durante 6 semanas. ANOVA 
bifactorial de medidas repetidas. *P<0.005, Student-Newman-Keuls, Dabs VS D500 hasta la 2da semana y 
después de la 4ta semana. *P<0.005, Student-Newman-Keuls, Dabs VS D750 a partir de la 3ra semana. 
 
 
 
 
33 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
 
 
 
Figura 10.- Niveles de glucosa sanguínea (Media ± EEM) de 4 tratamientos durante 6 semanas. 
ANOVA bifactorial de medidas repetidas. *P<0.005, Student-Newman-Keuls, Dabs VS D750 y D750 
más Acarbosa a partir de la tercera semana. 
 
Actividad hipolipemiante y registro de peso corporal 
Los ratones tratados con STZ, tiendena bajar de peso. Al respecto, como se 
observó en los 3 grupos experimentales que fueron tratados con las tres dosis del 
extracto de S. humilis (500, 750, y 100 mg/Kg) respectivamente, presentaron una 
variación de peso similar a la de los ratones normoglucémicos, mientras que el 
grupo diabético absoluto presentó una disminución de peso importante (ANOVA 
bifactorial de medidas repetidas, Student-Newman-Keuls, F4/203=18.41; P<0.001; 
Figura 11) presentando um efecto protector ante la pérdida de peso causada por 
STZ. 
Figura 11. - Variación de peso corporal (Media ± EEM) de 5 tratamientos durante 6 semanas. 
ANOVA bifactorial de medidas repetidas. *P<0.005, Student-Newman-Keuls, Dabs VS 3 Grupos en 
la 6ta semana. 
 
 
 
 
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Niveles séricos de glucosa, triglicéridos, albúmina, colesterol y 
creatinina. 
Los niveles séricos de glucosa, triglicéridos, albúmina, colesterol y creatinina 
se muestran a continuación, donde se utilizaron 7 grupos experimentales (ANOVA 
unifactorial de medidas repetidas; P<0.005; Tabla 4); los grupos tratados con el 
extracto de la semilla y que presentaron efecto hipoglucemiante, fueron aquellos 
con las dosis del extracto de 750 mg/Kg y a dosis del extracto de 1000 mg/Kg más 
Acarbosa de 300 mg/kg (P<0.005); con lo cual se demuestra que los resultados son 
coherentes con los registros realizados cada semana durante 6 semanas en el 
estudio crónico de este trabajo; observándose niveles de glucosa parecidos al grupo 
normoglucémico. En los niveles séricos de triglicéridos, se observó una disminución 
significativa tras el tratamiento con el extracto (500, 750, y 1000 mg/Kg) 
respectivamente presentando un efecto hipolipemiante, mientras que los niveles 
séricos de colesterol si bien no hay diferencia significativa, se puede observar la 
tendencia de todos los grupos con el tratamiento del extracto de tener los niveles de 
colesterol parecidos al grupo normoglucémico; por otro lado, en los niveles de 
creatinina disminuyeron con el tratamiento del extracto a dosis 500 mg/Kg y 750 
mg/Kg (P<0.005). 
Tabla 4.- Niveles séricos de glucosa, triglicéridos, albúmina, colesterol y creatinina 
(Media ± EEM). 
 
Niveles séricos en sangre periférica de ratón al término del tratamiento. ANOVA unifactorial 
*(P<0.005) VS Diabéticos Absolutos. 
 
 
 
 
 
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DISCUSIÓN 
Se encontraron alcaloides, azúcares reductores, saponinas, flavonoides, 
cumarinas y quinonas como metabolitos secundarios. La información aportada por 
la técnica FT-IR y principalmente por RMN 1H, auxiliaron a la identificación de 
metabolitos, donde en éste último, indica la posición en el espectro (desplazamiento 
químico) que determina el entorno químico del núcleo, y por tanto da información 
de grupos funcionales a los que pertenecen o que están cerca (Neira, 2009). Cabe 
recordar que no se hizo columnas de cromatografía para obtener diferentes 
fracciones, y después identificar las estructuras de cada una de ellas con su 
respectivo RMN 1H y RMN13C, por lo que los resultados de la espectrofotometría 
reportada forman parte de un todo y, por lo tanto, varias entidades químicas se 
pueden sobreponer una de otra. En caso de los flavonoides es característico los 
desplazamientos de protones como metoxilos, aromáticos, fenoles y carbonilo 
(Neira, 2009); para alcaloides protones aromáticos, vinílicos, la presencia de 
carbonilo y nitrógeno (Vargas, 2011); para azúcares reductores, por supuesto los 
grupos alcoholes, metilenos y carbonilos característicos de los anillos que forman 
unidades de monosacáridos (Prieto, 1992), para saponinas, las cadenas alifáticas 
que forman ciclos característicos (Holger, 2012), para cumarinas, la presencia de 
carbonilo de éster de ácido carboxílico posiblemente de la estructura característica 
de benzopironas (Garibello, 2010) y para quinolinas, los protones quinolínicos y 
carbonilos posiblemente provenientes de la estructura benzoquinona (Vargas, 
2011). 
Se ha demostrado que los extractos etanólicos y acuosos de semillas de 
Fennel (Foeniculum vulgare), tienen actividad antioxidante contra especies 
reactivas de oxígeno como el peróxido, inhibiendo por arriba del 77% para ambos 
tipos de extracto. Su actividad es dependiente de la concentración a partir de 100 
mg y esto se debe a la presencia de fenoles y ácido gálico (Münir, 2003). En caso 
del extracto metanólico de la semilla de zopilacahuite (Swietenia humilis Zucc), la 
mayor actividad se presentó a la concentración de 50 mg con un 15% de inhibición; 
teniendo en cuenta que para determinar como buena actividad antioxidante la 
inhibición del 50% o más, entonces la semilla presentó una baja actividad 
antioxidante en éste experimento. Por lo anterior, se justificó no probar 
concentraciones mayores; además como comentario personal, se encontró 
problemas en cuanto al manejo del extracto debido a que una vez rotoevaporado el 
extracto metanólico, la re-dispersión de la pasta resultante, sólo se logró en agua 
destilada. 
 
 
 
 
 
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La semilla, es el principal órgano reproductivo de la gran mayoría de las 
plantas y desempeña una función fundamental en la renovación, persistencia y 
dispersión de las poblaciones de plantas; pueden almacenarse vivas por largos 
periodos, asegurándose así la preservación de especies y variedades de plantas 
valiosas. Para ello presentan características como son: la dureza e impermeabilidad 
de la cubierta de la semilla; el contenido de agua inicial con el que se disemina la 
semilla y el que se puede lograr disminuir por deshidratación sin matarla; la 
tolerancia a la temperatura de congelación del agua, ya que los cristales de hielo de 
ésta pueden alterar las células de la semilla; la naturaleza de la latencia, la tasa 
metabólica o respiración mínima o interrumpida que se pueda alcanzar sin matarla; 
el tipo de reservas y su propensión al deterioro químico; el tipo de metabolitos 
secundarios y su ubicación dentro de las células de la semilla; la disposición del 
agua sub-celular, o sea la que está unida a macromoléculas como proteínas, que 
forman las células; la composición de los lípidos de las membranas celulares; la 
resistencia a la invasión de microorganismos y la resistencia al deterioro del material 
genético (Vázquez, 1997); esto explicaría que la semilla de S. humillis, a pesar de 
ser baja, presenta actividad antioxidante y genoprotectora debido a la acción de los 
metabolitos con función de preservación ante efectos externos. 
La actividad hipoglucemiante de los taninos y flavonoides ha sido reconocida 
(Bustamante et al., 2002); y se explica en gran parte por la habilidad de interactuar 
con los radicales libres y acomplejarse con ellos (Pietta, 2000; Corral et al., 1997), 
no sólo incluye a los metabolitos anteriormente mencionados sino además a los 
polisacáridos. En cuanto a los alcaloides, se ha reportado su acción como 
antioxidante (Soon, 2013). Dado que no fueron detectados taninos en el extracto 
metanólico, podría entonces pensarse que la actividad revelada por la semilla es 
proveniente, en principio, a la presencia de alcaloides y flavonoides, debido al 
posible mecanismo como secretagogo de insulina, además del incremento de la 
glucogénesis, inhibición de la gluconeogénesis y la inhibición de la absorción de la 
glucosa en el intestino (Islam, 2009). 
Sugiriendo como responsable de ésta actividad a la presencia de metabolitos 
secundarios como flavonoides y alcaloides; recordando que la actividad de STZ es 
específica, y que no se pudo determinar que absolutamente todas las células β del 
páncreas hayan sido destruidas, debido a que no se hicieron pruebas histológicas 
para tal fin. Las células que hayan sobrevividopodrían haber compensado para 
liberar insulina, lo cual, junto con la administración del extracto, ejercería el 
mecanismo de acción para disminuir los niveles de glucosa, ya sea aumentando la 
absorción de glucosa o inhibiendo la proteína tirosina fosfatasa PTP-1B, la cual 
potencia la acción de la insulina y leptina (Zhang, 2013). 
 
 
 
 
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Con la administración de Acarbosa 300 mg/Kg a ratones diabéticos, se 
observó la tendencia a disminuir los niveles de glucosa, en comparación del grupo 
diabético absoluto (figura 10); mientras que el grupo diabético más el tratamiento 
con extracto 750 mg/kg y Acarbosa 300mg/kg exhibió una disminución de los 
valores de glucosa de manera significativa a partir de la tercera semana, con lo cual 
se comprueba el efecto sinérgico de la administración del extracto a una dosis media 
(750mg/Kg) junto con un fármaco de referencia. El posible mecanismo el cual se 
potencia la actividad anti-hiperglicémica, está relacionado con la inhibición de la α-
glucosidasa presente en el borde en cepillo del epitelio interstinal; está enzima 
desdobla los carbohidratos de la dieta, pero al ser inhibida por la acarbosa, se 
retrasa este proceso, provocando la disminución de la absorción de glucosa en el 
tracto digestivo, ésta situación, se podría sumar a la actividad de los alcaloides y 
otros metabolitos secundarios de provocar el aumento de la absorción de glucosa y 
con la inhibición de la PTP-1B; también se debería considerar la actividad de los 
flavonoides para activar la síntesis de glucógeno así como la activación de la enzima 
hexocinasa (Bhava, 2008). Es de resaltar que el grupo tratado con el extracto (750 
mg/kg) y acarbosa (300 mg/kg), presentó muertes durante el tratamiento, 
posiblemente causado por la administración conjunta de acarbosa y el extracto en 
dosis ya mencionadas, sin embargo, no se hizo ninguna modificación en la 
dosificación. 
Las anormalidades en el metabolismo de los lípidos acarrean una elevación 
en los niveles séricos de lípidos y lipoproteínas que juegan un papel importante en 
la ocurrencia prematura y severa de arterosclerosis, que afecta a las personas 
diabéticas (Ravi, 2005). El posible mecanismo para contrarrestar la disminución de 
peso causada por la administración STZ, tal vez se debió a la presencia de 
alcaloides, flavonoides y cumarinas con actividad antioxidante ante las especies 
reactivas de oxígeno o inhibir la oxidación de la LDL (Palomo, 2010) reduciendo así 
el daño de STZ; aunado con la reducción de lípidos por el mecanismo de inhibición 
hepática de la biosíntesis de colesterol, el incremento de la excreción de ácidos 
biliares y la actividad de la colesterol aciltransferasa (Khanna, 2002), que podría 
explicar la reducción significativa de triglicéridos. 
Las personas con diabetes, tienen un mayor riesgo de desarrollar 
enfermedades cardiovasculares, relacionadas con los niveles de triglicéridos y 
colesterol. Para los pacientes con diabetes se recomienda tener un nivel de 
colesterol por debajo de 100 mg/dL y en personas sanas menor a 200 mg/dL, 
mientras que de triglicéridos menor a 150 mg/dL para personas diabéticas y en 160 
mg/dL para personas sanas; las complicaciones de hipertrigliceridemia son el 
sobrepeso, niveles altos de glucosa, hipotiroidismo, y enfermedades del riñón 
 
 
 
 
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(Cambell, 2007). En cuanto a triglicéridos, los grupos tratados con la semilla a las 
dosis de 500 y 1000 mg/kg mostraron reducción de los niveles de triglicéridos en 
comparación del grupo diabético absoluto, llegando a presentar niveles de 
triglicéridos parecidos a los exhibidos por el grupo normoglucémico. En cuanto 
colesterol, se recomienda para personas sanas, tener niveles por debajo de 200 
mg/dL; sin embargo, en este trabajo experimentalmente no se encontraron 
diferencias significativas en los grupos de ratones. Cabe aclarar que no se 
encontraron diferencias significativas en comparación con el grupo diabético 
absoluto debido a que éste presentó niveles promedio de 18.52 mg/dL, mientras 
que en los demás grupos se observó un nivel por arriba de dicha cifra, así pues, se 
procedió a comparar con el grupo normoglucémico y se observó que todos los 
tratamientos (500, 750, 1000 mg/kg y 750 mg/kg más 300 mg/Kg de acarbosa) 
presentaron niveles similares a los normoglucémicos, por lo que se puede indicar 
que el extracto mantuvo los niveles de colesterol dentro de lo normal. El mecanismo 
para disminuir y regular los niveles de triglicéridos y colesterol, proviene 
posiblemente de la actividad que realizan los alcaloides y flavonoides; se ha 
demostrado que los alcaloides pueden regular el metabolismo de lípidos (Wu, 2014) 
mientras que los flavonoides, regulan los receptores activados por el factor 
proliferador de peroxisomas (PPAR) en el metabolismo de carbohidratos, lípidos y 
proteínas (Bhavna, 2008). 
El control de la hiperglicemia en los pacientes diabéticos es importante, se 
deben evaluar los niveles de riesgo de enfermedades cardiovasculares, así como 
daño en los riñones tales como nefropatía diabética e insuficiencia renal. Si existe 
un daño renal, se detecta la presencia de proteínas en la orina. En el presente 
estudio, cuanto a los niveles de albúmina, no se observó diferencia significativa 
entre ninguno de los grupos experimentales, de lo cual se puede hacer la 
observación que la determinación de albúmina se debió de complementar con un 
análisis y determinación de albúmina en orina. Los niveles altos de creatinina, son 
un indicativo de posibles enfermedades renales (McClatchey, 2001). En cuanto a 
la determinación de creatinina, existió disminución significativa de sus niveles 
séricos cuando se comparó el grupo diabético absoluto con los grupos 
experimentales de 500 mg/kg del extracto y del extracto de 750 mg/kg más 
Acarbosa (300 mg/kg). Como ya se mencionó antes, dicho extracto contiene 
alcaloides y flavonoides; éstos últimos podrían ejercer su acción antioxidante 
bloqueando la disminución de superóxido dismutasa y glutatión peroxidasa, así 
como la disminución de la expresión de los factores de crecimiento TGF-β1 y CTGF, 
previniendo el daño renal en la nefropatía diabética (Zou et al., 2014). 
 
 
 
 
39 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
 
Por lo antes discutido, se puede comentar que el extracto S. humilis es una 
fuente viable para la obtención de metabolitos con actividad farmacológica. Para 
ello se recomendaría concretar la identificación de metabolitos con 
espectrofotometría de masas, desarrollar columnas de cromatografía para obtener 
las diferentes fracciones y su correspondiente evaluación farmacológica de cada 
una de ellas, logrando así, un estudio biodirigido. 
 
 
 
 
 
40 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS JESSICA GUADALUPE LOBATO TORRES 
 
CONCLUSIONES 
 El extracto metanólico de S. humilis presentó alcaloides, azúcares 
reductores, saponinas, flavonoides, cumarinas y quinonas. 
 El extracto metanólico de S. humilis presentó baja actividad antioxidante, el 
extracto metanólico 50 mg/kg tuvo el mayor efecto, aunque solo alcanzó un 
15% inhibición del radical libre DDPH. 
 El extracto metanólico de S. humilis (500 mg/Kg) presentó efecto 
genoprotector ante la administración de antraceno a partir del primer hasta el 
tercer día. 
 El extracto metanólico de S. humilis a dosis de 500 mg/Kg presentó actividad 
anti-hiperglicémica a partir de la primera semana, con dosis de 750 mg/Kg la 
presenta a partir de la tercera semana y actividad hipoglucemiante con dosis 
1000 mg/Kg la presenta a partir de la segunda semana. 
 El extracto metanólico de S. humilis en las tres dosis experimentales (500 
mg/Kg, 750 mg/Kg y 1000 mg/kg) presentó efecto protectorante la 
disminución de peso provocada por STZ durante todo el tratamiento. 
 El extracto metanólico de S. humilis con dosis de 750 mg/Kg más acarbosa 
300 mg/Kg presentó efecto sinérgico. 
 El extracto metanólico de la semilla de S. humilis disminuyó 
significativamente los niveles séricos de glucosa (con dosis de 1000 mg/kg y 
de 750 mg/kg más acarbosa 300 mg/kg), de triglicéridos (con dosis de 500 
mg/kg y 1000 mg/kg), y de creatinina (con dosis de 500 mg/kg y de 750 mg/kg 
más acarbosa 300 mg/kg). 
Por lo antes mencionado, se concluye que el extracto de metanólico de la semilla 
S. humilis, a pesar de la baja actividad antioxidante demostrada en éste trabajo, 
sería una buena opción terapéutica como coadyuvante para el tratamiento de la 
diabetes mellitus ya que presentó actividad hipoglucemiante, hipolipemiante y 
genoprotectora. 
 
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