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LABORATORIO DE MICROBIOLOGIA (BT1007) PRACTICA 9. DETERMINACIÓN DE Salmonella OBJETIVO: Identificar al género Salmonella como un microorganismo patógeno en alimentos y conocer la técnica de enriquecimiento selectivo INTRODUCCIÓN: Salmonella es un género bacteriano, perteneciente a la familia Enterobacteriaceae integrada por gérmenes de forma bacilar, no esporulados, habitualmente móviles mediante flagelos perítricos, aunque existen mutantes inmóviles. Gram negativos, aeróbios-anaeróbios facultativos, fermentan la glucosa con producción de gas. No fermentan la lactosa. Reducen nitratos a nitritos. Son citocromo oxidasa-negativos. Forman colonias típicas sobre medios de cultivo sólidos y poseen características bioquímicas y serológicas definidas. Se puede afirmar que todos los productos crudos de origen animal y el ambiente en que se preparan pueden estar contaminados con Salmonella. De aquí que los alimentos que con más frecuencia dan lugar a casos de salmonelosis son: carnes y productos cárnicos, algunos embutidos, carne de aves y subproductos, huevos y ovoproductos, leche y derivados, puesto que a veces un bajo número de Salmonella (inferior a 100 gérmenes por gramo) puede ser causa de enfermedad, lo más importante es asegurar su ausencia en los alimentos listos para el consumo. Como parte de la metodología para el aislamiento e identificación del género Salmonella se utilizan, habitualmente, varias etapas: 1. Preenriquecimiento en medio líquido no selectivo. 2. Enriquecimiento en medios líquidos selectivos. 3. Aislamiento diferencial sobre medios sólidos selectivos. 4. Confirmación bioquímica de las colonias sospechosas. 5. Confirmación serológica de las colonias sospechosas. PROCEDIMIENTO: 1. Preenriquecimiento en medio líquido no selectivo: 1. Pesar asépticamente 25 g. de la muestra a analizar y adicionarlos a 225 ml de caldo peptonado. Homogeneizar la mezcla en el stomacher. 2. Incubar a 37°C durante 24 h. 2. Enriquecimiento en medios líquidos selectivos: 1. Inocular 1 ml del caldo de preenriquecimiento en 10 ml de caldo de tetrationato (adicionar 0.2 ml de una solución yodo-yoduro de potasio), e incubar a 43°C por 24 horas. 2. Inocular 1 ml del caldo de preenriquecimiento en 10 ml de caldo selenito cistina. Incubar a 43°C durante 24 hrs. 3. Aislamiento diferencial sobre medios sólidos selectivos: 1. A partir de los cultivos obtenidos en los medios líquidos selectivos, sembrar por duplicado sobre: ➢ Agar sulfito bismuto Incubar en estufa a 37°C por 48 horas. 2. Observar cuidadosamente las colonias desarrolladas. Las colonias típicas de Salmonella presentan las siguientes características: Agar sulfito bismuto: Las colonias son negras con borde claro y brillo metálico, también cafés, grises o verdes. 3. Aislar como mínimo 2 colonias con aspecto típico de Salmonella. 4. Confirmación bioquímica de las colonias sospechosas. 1. Sembrar cada colonia en agar de hierro y triple azúcar (TSI), primero en la superficie inclinada y luego en el fondo por picadura. Incubar a 37°C por 24 horas. 2. Sin flamear ni recargar el asa sembrar por picadura en el fondo y en la superficie inclinada del medio de agar lisina hierro (LIA). Incubar a 37°C por 48 horas. El medio de agar TSI (hierro triple azúcar) se utiliza para determinar la capacidad de un organismo para atacar los carbohidratos específicos incorporados en el medio basal de crecimiento (glucosa, lactosa y sacarosa) con o sin producción de gas, observando la producción de H2S. Interpretación: Fermentación solamente glucosa: a) En el agar inclinado: reacción alcalina (color rojo). b) En el fondo: reacción ácida (color amarillo); si hay producción de H2S, se produce un precipitado negro que puede enmascarar la acidez. El medio LIA (Agar de Hierro Lisina) se utiliza para medir la capacidad enzimática de un organismo para descarboxilar este aminoácido y formar una amina dando por resultado una alcalinidad en el medio. Interpretación: Prueba positiva: turbidez en el medio y un color púrpura debida a una reacción alcalina, con producción de H2S. Prueba negativa: un color amarillo claro brillante (solamente fermentación de glucosa). 3. Descartar los cultivos que no den las reacciones típicas de Salmonella en ambos medios. ACTIVIDADES: 1. De acuerdo con el procedimiento discutido en clase y en la práctica realizar un diagrama de manera individual donde especifiques de manera secuencial con imágenes los pasos para la determinación de Salmonella. 2. Por equipos realizar una discusión con base en los siguientes resultados suponiendo que el equipo proceso la muestra: Resultados Para la realización de esta práctica, se utilizó como muestra una salchicha, ésta fue añadida a caldo peptonado, homogeneizada e incubada en las condiciones necesarias para el preenriquecimiento. Posteriormente, se inoculó el caldo preenriquecido en dos medios selectivos: caldo de tetrationato y caldo selenito cistina. Después del tiempo de incubación correspondiente a cada medio, se sembró por duplicado en los medios sólidos selectivos XLD y sulfito bismuto. En el primer medio se sembró una placa con el caldo selenito, otra con el caldo tetrationato y una más mitad selenito, mitad tetrationato. Del medio sulfito bismuto, se inoculó una caja petri con caldo selenito y otra con caldo tetrationato. Las cinco placas se dejaron incubar durante dos días a 37°C, cuando hubo transcurrido este periodo, se obtuvieron los siguientes resultados: No se presentó ningún crecimiento en el medio XLD ni en el medio sulfito bismuto que fueron cultivados a partir del caldo tetrationato (véase Figura 1). Figura 1. Medios selectivos cultivados a partir de caldo tetrationato no presentaron ningún crecimiento Por otro lado, todos los medios cultivados a partir del caldo selenito presentaron la formación de colonias (véase Figura 2). Figura 2. Medios XLD y sulfito bismuto cultivados a partir de caldo selenito En el medio sulfito bismuto se observó la formación de colonias negras con borde claro y brillo metálico (véase Figura 3), circulares, de entre 2 y 3 milímetros, con margen liso y entero, características típicas de Salmonella. Mientras que en el medio XLD crecieron colonias circulares de entre 5 a 7 mm, de color gris claro y con borde verde grisáceo (Figura 2). Figura 3. Cultivo en medio sulfito bismuto que presenta colonias con características típicas de Salmonella Para la prueba confirmativa, se seleccionó una colonia de cada medio y se inocularon las colonias seleccionadas tanto en agar de hierro y triple azúcar (TSI) como en agar lisina hierro (LIA). La siembra se realizó en superficie inclinada y luego por picadura. Los tubos sembrados a partir de las colonias negras del agar sulfito bismuto resultaron positivos para Salmonella, pues presentaron un cambio en la coloración de los medios (véase Figura 4). Figura 4. Confirmación bioquímica de colonias negras del agar sulfito bismuto De igual forma, los tubos que fueron inoculados con las colonias del medio XLD resultaron positivos para Salmonella. Mientras que los tubos correspondientes a la placa XLD2 fueron negativos, ya que no mostraron cambios significativos en la coloración de los medios confirmativos, ni producción de ácido sulfhídrico (véase Figura 5). XLD XLD 2 Figura 5. Confirmación bioquímica de colonias a partir del medio XLD 3. Agrega a tu reporte la resolución del cuestionario. CUESTIONARIO: 1. Explique el objetivo y fundamento de cada una de las 4 etapas para el aislamiento e identificación del genero Salmonella. 2. Con respecto al uso de pruebas rápidas para la identificación de Salmonella, explica: a) ¿Cuál es la que ofrece un mayor índice de confiabilidad? b) Ventajas con respecto al método convencional. c) Desventajascon respecto al método convencional. d) Fundamento de la técnica. 4. ¿Cuáles son los fundamentos de los diferentes medios empleados en la práctica indicando cuáles son los inhibidores y cómo es el desarrollo típico de Salmonella en cada uno de ellos? 5. ¿Por qué es importante detectar la presencia de Salmonella spp. en los alimentos? 6. ¿Indique las características generales de Salmonella?
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