2012 - ENFERMEDADES ORNAMENTALES - FILMINA FITOPATOLOGIA

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Enfermedades de cultivos 
ornamentales
CRISANTEMO (DENDRANTHEMA 
GRANDIFLORUM)
» ROYA BLANCA DEL CRISANTEMO:
Puccinia horiana HENN (LINDQUIST Y MERLO,1970) 
(PALMUCCI Y WRIGHT,1982).
» ROYA COMÚN: Puccinia chrysanthemi (MENCIONADA POR 
HAUMAN Y PARODI, 1921).
» TIZÓN DE LAS FLORES Botrytis cinerea (PALMUCCI et al.1996)
• PODREDUMBRE DEL TALLO
Sclerotinia sclerotiorum (WRIGHT y PALMUCCI,2000
• MARCHITAMIENTO VASCULAR: 
Verticillium dahliae (ALIPPI Y RONCO,1980)
• OIDIO: Oidium sp.
• MANCHA DE LA HOJA
Ascochyta chrysanthemi
• PODREDUMBRE DEL CUELLO Rhizoctonia solani
• MARCHITAMIENTO VASCULAR Fusarum spp
• PODREDUMBRE DE RAÍCES Pythium pp.
• MARCHITAMIENTO Erwinia chrysanthemi
ROYAS
ROYA BLANCA DEL CRISANTEMO 
PUCCINIA HORIANA HENN. 
ROYA BLANCA DEL CRISANTEMO: 
PUCCINIA HORIANA HENN.
(BASIDIOMYCOTINA) ETIOLOGÍA Y 
MORFOLOGÍA
MICROCÍCLICA. 
TELEUTOSPORAS 
GERMINAN “IN 
SITU”
BASIDIOSPORAS 
SIN HOSPEDANTE 
INTERMEDIARIO 
(BAKER,1967). 
CicloRoya microcíclica
teleutosporas
basidiosporas
FUENTES DE INÓCULO
ESQUEJES INFECTADOS
RESTOS VEGETALES
CRISANTEMOS PERENNES
DISPERSION DEL INOCULO
CORRIENTES DE AIRE-
SALPICADURAS DE AGUA-LLUVIA- HERRAMIENTAS-
VESTIMENTA, CALZADO
• GERMINACIÓN DE TELEUTOSPORAS 4-23°C
TEMPERATURA ÓPTIMA 17°C
• ALTA HUMEDAD RELATIVA AMBIENTE >96%
PRESENCIA DE AGUA LIBRE SOBRE LA 
SUPERFICIE FOLIAR (NO MENOS DE 5 HORAS)
• SUPERVIVENCIA DE TELEUTOSPORAS
EN HOJAS CAÍDAS 8 SEMANAS A 50% HRA
• PERIODO DE INCUBACION CON 
TEMPERATURAS. OPTIMAS 7- 10 DÍAS 
MEDIDAS DE CONTROL
• DESTRUIR RESIDUOS INFECTADOS
• IMPORTACION DE ESQUEJES / ZONA DE 
RIESGO 
• ESTADIOS INICIALES : RETIRAR HOJAS 
INFECTADAS Y QUEMARLAS
• EVITAR VARIEDADES SUCEPTIBLES
Registros /Origen de las variedades-
certificados fitosanitarios-tratamientos-
cortes-destinos de la producción
• PLANTACION DE ESQUEJES SANOS
• MONITOREO CONSTANTE.
• SELECCIÓN ADECUADA DE PRÁCTICAS 
CULTURALES (DENSIDAD-TIPO DE RIEGO-HORARIO 
DE APLICACIONES-VENTILACIÓN)
< HRA / EVITAR PELICULA DE AGUA SOBRE HOJAS
• EVITAR VARIEDADES SUCEPTIBLES
• APLICACIÓN DE FUNGICIDAS PREVENTIVOS Y 
CURATIVOS ALTERNANDO MODOS DE ACCION
FUNGICIDAS
• MANCOZEB
• OXYCARBOXINE(Plantvax)
• TRIFORINE(Saprol)
• TRIADIMENOL(Bayfidan)
• TRIADIMEFON(Bayleton)
• Benodanil
• Bitertanol
TRIASOLES
• Propiconazole-Diniconazole- Cyproconazole-
• Myclobutanil(1999)
<tamaño de plantas
1998 AZOXYSTROBIN (ESTROBIRULINAS) 2001
- RESISTENCIA GENÉTICA VERTICAL O TOTAL PARA 
UNA RAZA, MONOGÉNICA.
- RESISTENCIA POLIGÉNICA , HORIZONTAL,VARIABLE, 
EFICAZ CONTRA MUCHAS RAZAS
- PLANTAS TRANSGÉNICAS/GEN DE TRICHODERMA SPP
PRODUCTOR DE QUITINASAS
PODREDUMBRE DEL TALLO
Sclerotinia sclerotiorum (WRIGHT y PALMUCCI, 2000)
Sclerotinia sclerotiorum
• Alta humedad relativa 
ambiente
• Inicialmente mancha 
húmeda y luego 
pdredumbre basal, 
marchitamiento y muerte.
• Esclerocios!!!!
MANEJO
• Retirar y quemar plantas 
enfermas
• Fungicidas preventivos 
en P y V temprano.
• TOMATO SPOTTED WILT VIRUS
(TSWV, Dal Bó,1995)
necrosis en tallos
Polifago- más de 50 familias de mono y 
dicotiledóneas
• En Argentina citado en tomate y 
crisantemo
• Síntomas: Enanismo, manchas o puntos 
necróticos, necrosis en tallos, manchas 
anillares, mosaicos, líneas amarillas, 
necrosis de venas.
• En plantas jóvenes más severidad 
(necrosis y muerte de plántulas)
• Plantas asintomáticas
Vectores: Frankiniella occidentalis, y otros
• TSWV es adquirido por la larva que come (25-
30 minutos) sobre plantas infectadas y 
transmitido por el adulto (5 minutos) luego de un 
periodo de latencia.
Relación virus vector de tipo 
persistente propagativo
• Fuente de inóculo: 
Trips infectado
Plantas o gajos portadores
MANEJO INTEGRADO
Monitoreo constante
Uso de Plantas indicadoras
Uso de material certificado
Erradicación.
Control de vectores
Uso de trampas para vectores.
Umbral:10-20 trips/semana
(Resistencia a piretroides, organofosforados y carbamatos)
MARCHITAMIENTO DEL CLAVEL
Fusarium oxysporum f. sp dianthi
MARCHITAMIENTO DEL CLAVEL
Enfermedad limitante de la producción en Argentina
(Fusarium oxysporum dianthi)
Etiología: Fusarium. oxysporum f. sp. dianthi raza 2
Hospedantes: Clavel
SINTOMATOLOGÍA
Inicial: Pérdida de turgencia unilateral, decoloración de 
hojas, doblamiento de brotes hacia un lado. 
Estado más avanzado: menor tamaño de brotes, menor 
crecimiento de las plantas, pudrición seca en la base 
de tallos y en raíces, marchitamiento generalizado y 
muerte de las plantas.
Corte de vasos: taponamiento, necrosis
CLAMIDOSPORAS
Fusarium oxysporum
Supervivencia: clamidosporas en tejidos muertos 
del hospedante o en el suelo.
Penetración. Por raíces, directa o por heridas.
Colonización: Por micelio o transporte pasivo 
de microconidios
UNILATERAL POR PRESENCIA DE BARRERAS 
LATERALES.
DIFICULTADES DE CONTROL
FÁCIL PROPAGACION DEL MATERIAL INFECTADO
ALTA PERSISTENCIA DEL INOCULO EN EL SUELO
ALTO COSTO Y RELATIVA EFICACIA DE LAS MEDIDAS DE CONTROL
Condiciones predisponentes
Temperatura óptima para el desarrollo del patógeno (25 y 
30ºC)
Altos niveles de nitrógeno y bajos de potasio. 
Plantas jóvenes con gran desarrollo foliar y tejidos suculentos 
DISEMINACION: por esquejes infectados, suelo contaminado, 
herramientas y agua.
MANEJO INTEGRADO
Tratamiento del suelo
 Desinfección por vapor de agua, metam sodio, 
dazomet 
 Solarización- Solarización combinada con subdosis de 
fungicidas
 Control biológico 
- biocontroladores comerciales, 
- incorporacion de antagonistas al adicionar 
compost, humus o materia orgánica
Monitoreo constante
 Uso de material de propagación sano
 Elección de cultivares de buen comportamiento
 Limpieza del cultivo
Formas de cultivo que eviten el contacto con el 
suelo
 Camas aisladas del suelo por polietileno
 Camas hidropónicas (rockwool,cascara de arroz, corteza de pino)
En presencia de la enfermedad:
Erradicación de plantas enfermas 
Tratamientos localizados en manchones
Invernáculos y 
propagación
Manchas blancas
aisladas –borde oscuro
Tambien en tallos(nudos)
Botrytis cinerea
Moho gris, podredumbre de los 
pimpollos- Tizón de ramas del rosal
www.ces.ncsu.edu/.../odin002/rosebbc.htm
www.urbanext.uiuc.edu 
www.ces.ncsu.edu/.../odin002/odin002.htm
Atizonamiento de flores y del tallo 
en un cultivo de Rosa sp
http://www.ces.ncsu.edu/.../odin002/rosebbc.htm�
http://www.ces.ncsu.edu/.../odin002/odin002.htm�
Evolucion de la esporulacion en frutos inoculados
www-biol.paisley.ac.uk/.../Botrytis_cinerea.html
http://www-biol.paisley.ac.uk/bioref/Fungi/Botrytis_cinerea.html�
Condiciones predisponentes
Temperatura óptima de 15 ºC (18-23 ºC)
Alta humedad relativa ambiente > 95%
Presencia de agua libre sobre la planta
Presencia de heridas y tejidos 
senescentes
CONDICIONES IDEALES EN INVERNÁCULOS 
MAL VENTILADOS
Dificultades para su control
Hongo polífago
Formación de estructuras de resistencia: 
esclerocios
Alta capacidad de desarrollo saprofítico
Resistencia a fungicidas
Presencia de infecciones asintomáticas
MANEJO INTEGRADO
• Erradicar y quemar partes afectadas
• Mejorar la ventilación
• Fertilizar con Calcio disminuye la 
enfermedad
• Aplicar fungicidas cada 7 días rotando los 
principios activos 
Tratamientos preventivos: En prefloración y 
durante largos períodos de bajas temperaturas y 
alta humedad
Productos en Argentina: 
Carbendazin, Mancozeb A, 
Procimidone y Zineb
Iprodione y folpet+ fosetil aluminio 
para especies florales
En el extranjero: Benomyl, metil-
tiofanato y maneb
OIDIO DEL ROSAL
CICLO DE OIDO DEL ROSAL (POLICICLICA)
Fuente: Agrios, G.N. 1997. Plant Pathology. 4th edition 
www.bbsrc.ac.uk 
www.hero.ac.uk 
www.sactorose.org
Inóculo primario
Inóculo secundario
Estructura de resistencia: 
cleistotecio o micelio
http://images.google.com.ar/imgres?imgurl=http://www.hero.ac.uk/resources/5732.jpg&imgrefurl=http://www.hero.ac.uk/uk/research/archives/2001/mushroom_moments1268.cfm&h=184&w=224&sz=21&hl=es&start=56&tbnid=zqaU4BNe6mSgfM:&tbnh=89&tbnw=108&prev=/images%3Fq%3DSPREAD%2BSPORES%2BPOWDERY%2BMILDEW%26start%3D40%26gbv%3D2%26ndsp%3D20%26svnum%3D10%26hl%3Des%26sa%3DN�http://images.google.com.ar/imgres?imgurl=http://www.nysaes.cornell.edu/ent/biocontrol/pathogens/ampelomyces.GIF&imgrefurl=http://www.nysaes.cornell.edu/ent/biocontrol/pathogens/pathintro.html&h=126&w=142&sz=16&hl=es&start=49&tbnid=BV0N8IVrJt6oGM:&tbnh=83&tbnw=94&prev=/images%3Fq%3DSPREAD%2BASCOSPORES%2BPOWDERY%2BMILDEW%26start%3D40%26gbv%3D2%26ndsp%3D20%26svnum%3D10%26hl%3Des%26sa%3DN�
http://images.google.com.ar/imgres?imgurl=http://www.sactorose.org/ipm/21fungi/21powderymildew-leaf11.jpg&imgrefurl=http://www.sactorose.org/ipm/83powderymildew.htm&h=255&w=332&sz=19&hl=es&start=32&tbnid=reulGyllEUoz3M:&tbnh=91&tbnw=119&prev=/images%3Fq%3DSPREAD%2BASCOSPORES%2BPOWDERY%2BMILDEW%26start%3D20%26gbv%3D2%26ndsp%3D20%26svnum%3D10%26hl%3Des%26sa%3DN�
Autoica completa
Común a la intemperie 
en lugares húmedos y sombrios
Favorecida por lluvia y rocío
Más de 4 hs de humedad foliar. 18-21|C
Frio heladas para que germinen las teleutosporas!!!!!
AGROBACTERIUM
Agrobacterium tumefaciens en 
blueberry. (Courtesy R. S. Byther)
Tumores o agallas por
Hipertrofia e hiperplasia
 A. rhizogenes: Proliferación raíces 
del manzano
 A. rubi : Agallas en frambueso
 A. vitis: Agallas en vid
 Agrobacterium tumefaciens 
(Polífago) Agalla de corona
AGALLAS
Agalla de corona
Hospedantes: 90 familias con más de 330 géneros 
botánicos 
Principalmente ROSACEAS
Sintomatologia: Tumores en cuello o raíces
Menor flujo de agua, disminución del follaje, menor 
floración y diámetro de tallos
SUPERVIVENCIA: Vida saprofítica en el suelo o agallas 
viejas
PENETRACION: Por heridas en raíces o tallos
Condiciones predisponentes
Presencia de heridas
Suelos o aguas contaminadas
Suelos húmedos, alcalinos con alta 
temperatura (18-22 ºC) y 60% humedad 
relativa ambiente
DISEMINACION: Agua de riego, 
salpicaduras de lluvia, tierra contaminada
Fuentes de inóculo: Agallas en el suelo y plantas 
de vivero infectadas
Dificultades de control:
Origen de la patología: Plásmido Ti
Medidas de manejo integrado
Control obligatorio en viveros desde 1922
Eliminar plantas afectadas y acidificar el hoyo (azufre o yeso.
Utilizar sustratos y aguas libres de la bacteria
Usar plantas sanas
Evitar heridas (Cubrir con mastic)- Controlar plagas del suelo
Desinfectar heramientas
Rotar con monocotiledóneas (2-3 años)
Control biológico (A. radiobacter cepa 84 controla biotipo 2)
	�Enfermedades de cultivos ornamentales
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	CRISANTEMO (DENDRANTHEMA GRANDIFLORUM)
	ROYAS
	ROYA BLANCA DEL CRISANTEMO PUCCINIA HORIANA HENN. 
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	��ROYA BLANCA DEL CRISANTEMO: PUCCINIA HORIANA HENN. (BASIDIOMYCOTINA)�
	Ciclo
	FUENTES DE INÓCULO��ESQUEJES INFECTADOS�RESTOS VEGETALES�CRISANTEMOS PERENNES��DISPERSION DEL INOCULO �CORRIENTES DE AIRE-	�SALPICADURAS DE AGUA-LLUVIA- HERRAMIENTAS-VESTIMENTA, CALZADO�
	�
	MEDIDAS DE CONTROL
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	 - RESISTENCIA GENÉTICA VERTICAL O TOTAL PARA UNA RAZA, MONOGÉNICA.��- RESISTENCIA POLIGÉNICA , HORIZONTAL,VARIABLE, EFICAZ CONTRA MUCHAS RAZAS��- PLANTAS TRANSGÉNICAS/GEN DE TRICHODERMA SPP	 PRODUCTOR DE QUITINASAS
	� PODREDUMBRE DEL TALLO� Sclerotinia sclerotiorum (WRIGHT y PALMUCCI, 2000)�
	Sclerotinia sclerotiorum
	 TOMATO SPOTTED WILT VIRUS
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	Polifago- más de 50 familias de mono y dicotiledóneas
	Vectores: Frankiniella occidentalis, y otros
	MANEJO INTEGRADO
	MARCHITAMIENTO DEL CLAVEL �Fusarium oxysporum f. sp dianthi 
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	Condiciones predisponentes
	MANEJO INTEGRADO
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	Botrytis cinerea�Moho gris, podredumbre de los pimpollos- Tizón de ramas del rosal
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	Condiciones predisponentes
	Dificultades para su control
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	Agalla de corona
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	Condiciones predisponentes
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	Fuentes de inóculo: Agallas en el suelo y plantas de vivero infectadas�Dificultades de control:� Origen de la patología: Plásmido Ti