MALARIA

Vista previa del material en texto

MALARIA
La malaria es la enfermedad causada en el ser humano por determinadas especies del género Plasmodium.
Las especies capaces de infectar al ser humando son P. falciparum (la que provoca el mayor número de casos y la que provoca mayor morbimortalidad), P. vivax, P. ovale, P. malariae y P. knowlesi (morfológicamente indistinguible de P. malariae pero con la tasa de replicación más rápida +/-24 h).
La malaria es endémica en la mayoría de los trópicos. 
Se presentó con mayor frecuencia en la región africana (92%).
P. falciparum causa la mayor carga de enfermedad, seguida de P. vivax.
P. falciparum predomina en África subsahariana, Nueva Guinea e Hispaniola (Haití y República Dominicana); P. vivax es mucho más común en las Américas y el Pacífico occidental.
EPIDEMIOLOGÍA
patogenia
La malaria se transmite a través de la picadura de un mosquito hembra Anopheles spp, que ocurre principalmente entre el anochecer y el amanecer. 
Otros mecanismos de transmisión: enfermedad adquirida congénitamente, transfusión de sangre, intercambio de agujas contaminadas, trasplante de órganos y transmisión nosocomial.
P. vivax y P. ovale pueden establecer en el hígado formas de latencia llamadas hipnozoítos.
El período de incubación es de 21-30 días tras la picadura de la hembra de Anopheles.
El mosquito Anopheles infectado con Plasmodium pica a un ser humano y transmite esporozoitos al torrente sanguíneo.
Los esporozoitos migran a través de la sangre hasta el hígado donde invaden los hepatocitos y se dividen para formar esquizontes multinucleados.
Los esquizontes se rompen y liberan merozoitos a la circulación donde invaden los glóbulos rojos. 
Dentro de los glóbulos rojos, los merozoitos maduran desde formas de anillo hasta trofozoítos.
Algunos merozoitos se diferencian en gametocitos masculinos o femeninos. Estas células son ingeridas por el mosquito Anopheles y maduran en el intestino medio, donde los esporozoitos se desarrollan y migran a las glándulas salivales del mosquito.
Manifestaciones Clínicas
El periodo de incubación depende de la especie de Plasmodium: P. falciparum: 10-12 días, P. vivax y ovale: 14 días (8-30 días), P. malariae: 18-40 días y P. knowlesi: 11 días, aproximadamente.
Los síntomas iniciales son inespecíficos, como cefalea, náuseas, vómitos, mialgias, taquicardia, taquipnea, escalofríos, malestar, fatiga, diaforesis (sudoración).
Se debe sospechar malaria en pacientes con cualquier enfermedad febril si han estado expuestos a una región donde la malaria es endémica
Los hallazgos físicos pueden incluir manifestaciones de anemia y un bazo palpable(esplenomegalia). 
En las primeras etapas del curso de la infección por malaria, se producen paroxismos febriles a intervalos irregulares todos los días.
La temperatura de las personas no inmunes y los niños puede elevarse por encima de los 40ºC y puede ocurrir junto con taquicardia y / o delirio
La evaluación de laboratorio puede demostrar: 
Parasitemia (generalmente <5000 parásitos/mcl de sangre, <0,1% de glóbulos rojos parasitados [GR]) 
Anemia
Trombocitopenia
Transaminasas elevadas
Coagulopatía leve 
Niveles elevados de nitrógeno ureico en sangre (BUN) y creatinina.
Malaria no Complicada
https://www.uptodate.com/contents/malaria-clinical-manifestations-and-diagnosis-in-nonpregnant-adults-and-children?search=MALARIA&source=sear
3
Malaria Complicada
La detección de parásitos en frotis de sangre teñidos con Giemsa por microscopía óptica es la herramienta estándar para el diagnóstico de la malaria
La sensibilidad de la microscopía puede ser excelente, con la detección de parásitos de la malaria en densidades tan bajas como 4 a 20 parásitos / mcL de sangre (aproximadamente 0,0001 a 0,0005 por ciento de parasitemia)
La microscopía permite la identificación de las especies de Plasmodium así como la cuantificación de la parasitemia
La microscopía no puede detectar de forma fiable una parasitemia muy baja (<5 a 10 parásitos / mcL) o casos en los que la mayor parte de la biomasa del parásito está secuestrada
En la microscopía de malaria se utilizan dos tipos de frotis de sangre: frotis finos y gruesos. 
Si se sospecha malaria y el frotis inicial es negativo, deben prepararse y examinarse frotis adicionales durante las siguientes 48 a 72 horas
CDC recomienda repetir un frotis grueso y fino cada 12 a 24 horas para un total de 3 series antes de descartar la malaria 
Los frotis finos permiten la identificación de las especies de parásitos infectantes y pueden usarse para medir la densidad del parásito
Diagnóstico
El dx es clínico,epidemiológico y confirmatorio mediante las pruebas de laboratorio
Microscopia de Luz Optica
El diagnóstico de la malaria se basa en la demostración de la forma asexuada del parásito en sangre periférica
Los frotis gruesos
Se expresa en porcentaje en función de los eritrocitos parasitados (eritrocitos parasitados/eritrocitos sanos [por 100])
Es útil como diagnóstico etiológico (no de especie) y seguimiento de la respuesta terapéutica
FROTIS DE GOTA GRUESA
FROTIS DE EXTENSION FINA
https://www.uptodate.com/contents/malaria-clinical-manifestations-and-diagnosis-in-nonpregnant-adults-and-children?search=MALARIA&source=sear
https://www.uptodate.com/contents/malaria-clinical-manifestations-and-diagnosis-in-nonpregnant-adults-and-children?search=MALARIA&source=sear
TRATAMIENTO
Profilaxis