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más complejos, la contracción se convirtió en la función espe- cializada de las células musculares, mientras que la integración y transmisión de los impulsos nerviosos se han convertido en funciones especializadas de las neuronas. Este capítulo describe los componentes celulares del SNC y la excitabilidad de las neu- ronas, las cuales son el origen de las señales eléctricas que permi- ten a las neuronas integrar y transmitir impulsos (potenciales de acción, potenciales de receptor y potenciales sinápticos). Tejido excitable: nervio O B J E T I V O S Después de revisar este capítulo, el lector será capaz de: Nombrar las partes de una neurona y sus funciones. ■ Nombrar los diversos tipos de glía y sus funciones. ■ Describir la naturaleza química de la mielina y resumir las diferencias en las formas en que ■ las neuronas no mielinizadas y mielinizadas conducen los impulsos. Definir el transporte axónico anterógrado y retrógrado, y los motores moleculares partici- ■ pantes en cada uno. Describir los cambios en los conductos iónicos subyacentes a los potenciales de electrotó- ■ nicos, el potencial de acción y la repolarización. Listar los diversos tipos de fibras nerviosas que se encuentran en el sistema nervioso de los ■ mamíferos. Describir la función de las neurotrofinas. ■ El sistema nervioso central (SNC) humano contiene alrededor de 1011 (100 000 millones) de neuronas. También contiene 10 a 50 veces este número de células neurogliales. El SNC es un sistema complejo; se calcula que 40% de los genes humanos participa en su formación, al menos en cierto grado. Las neu- ronas, los bloques de construcción básicos del sistema nervio- so, evolucionaron a partir de células neuroefectoras primitivas que responden con contracción a varios estímulos. En animales INTRODUCCIÓN capilares para formar las uniones ocluyentes que constituyen la barrera hematoencefálica. También emiten prolongaciones que envuelven las sinapsis y la superficie de las células nervio- sas. Los astrocitos protoplásmicos tienen un potencial de mem- brana que varía con la concentración externa de potasio (K+), pero no generan potenciales propagados. Producen sustancias con tropismo para las neuronas y ayudan a mantener la con- centración adecuada de iones y neurotransmisores mediante la captación de K+ y de los neurotransmisores glutamato y ácido γ-aminobutírico (GABA). NEURONAS Las neuronas del sistema nervioso central de los mamíferos tienen formas y tamaños diversos. La mayoría tiene las mis- mas partes que la neurona motora espinal típica mostrada en la figura 4-2. El cuerpo celular (soma) contiene el núcleo y es el centro metabólico de la neurona. Las neuronas tienen varias prolongaciones llamadas dendritas que se extienden fuera del cuerpo celular y se ramifican muchas veces. En particular, en la corteza del cerebro y del cerebelo, las dendritas tienen pequeñas proyecciones abultadas llamadas espinas dendríticas. Una neu- rona típica tiene también un largo axón fibroso que se origina en un área algo engrosada del cuerpo celular, la cresta axónica. La primera porción del axón se denomina segmento inicial. El axón se divide en terminaciones presinápticas, cada una de las cuales termina en varios botones sinápticos, también llamados botones terminales. Contienen gránulos o vesículas en las que se almacenan los transmisores sinápticos que secretan los ner- vios. Según el número de proyecciones que surjan del cuerpo celular, las neuronas pueden clasificarse en unipolares, bipolares y multipolares (fig. 4-3). ELEMENTOS CELULARES DEL SISTEMA NERVIOSO CENTRAL CÉLULAS NEUROGLIALES Por muchos años después de su descubrimiento, las células neu- rogliales (o neuroglia) se consideraron como el tejido conectivo del SNC. De hecho, el sufijo glía significa pegamento en griego. Sin embargo, en la actualidad se reconoce a estas células por su función en la comunicación dentro del SNC en conjunto con las neuronas. A diferencia de las neuronas, las células neurogliales mantienen la división celular en la edad adulta, y su capacidad para proliferar es notable después de una lesión cerebral (p. ej., apoplejía). Hay dos tipos de células neurogliales en el sistema nervioso de los vertebrados: microglia y macroglia. La microglia se com- pone de células limpiadoras parecidas a los macrófagos hísticos, eliminan detritos derivados de la lesión, infección y enfermedad (p. ej., esclerosis múltiple, demencia relacionada con sida, en- fermedad de Parkinson y enfermedad de Alzheimer). La micro- glia proviene de macrófagos fuera del sistema nervioso central y carece de relación fisiológica o embriológica con otros tipos de células neurales. Hay tres tipos de macroglia: oligodendrocitos, células de Schwann y astrocitos (fig. 4-1). Los oligodendrocitos y células de Schwann participan en la formación de mielina alrededor de los axones en el SNC y en el sistema nervioso periférico, respec- tivamente. Los astrocitos se encuentran en todo el cerebro, hay dos tipos de estas células. Los astrocitos fibrosos, que contienen muchos filamentos intermedios, se encuentran sobre todo en la materia blanca. Los astrocitos protoplásmicos se encuentran en la materia gris y tienen citoplasma granular. Ambos tipos emi- ten prolongaciones a los vasos sanguíneos, donde inducen a los Capilar Botón terminal Astrocito fibroso Neurona Botón terminal Nódulos de Ranvier Capas de mielina Lengüeta interna Núcleo Célula de Schwann Axón Neurona Axones A Oligodendrocito B Célula de Schwann C Astrocito Oligodendrocito en la materia blanca Oligodendrocitos perineurales FIGURA 41 Los principales tipos de células neurogliales en el sistema nervioso. A) Los oligodendrocitos son pequeños, con relativamente pocas prolongaciones. Los que están en la materia blanca proporcionan mielina, los que están en la materia gris sostienen a las neuronas. B) Las células de Schwann aportan la mielina al sistema nervioso periférico. Cada célula forma un segmento de vaina de mielina de 1 mm de largo; la vaina asume su forma conforme la lengüeta interna de la célula de Schwann gira alrededor del axón varias veces envolviéndolo en capas concéntricas. Los intervalos entre los segmentos de mielina son los nódulos de Ranvier. C) Los astrocitos son las células neurogliales más abundantes en el SNC, se caracterizan por su forma estrellada. Establecen contacto con los capilares y las neuronas, y se cree que tienen función nutricia. También participan en la formación de la barrera hematoencefálica. (Tomada de Kandel ER, Schwartz JH, Jessell TM [eds.]: Principles of Neural Science, 4th ed. McGraw-Hill, 2000.) Cuerpo celular (soma) Segmento inicial del axón Nódulos de Ranvier Célula de Schwann Botones terminales Dendritas Cresta axónica Núcleo A Célula unipolar C Célula seudounipolarB Célula bipolar Dendrita Axón Cuerpo celular Neurona de invertebrado Célula ganglionar de la raíz dorsalCélula bipolar de la retina Axón central Prolongación única bifurcada Cuerpo celular Axón periférico a la piel y al músculo Dendritas Cuerpo celular Axón Dendritas Cuerpo celular Axón D Tres tipos de células multipolares Dendrita basal Cuerpo celular Axón Neurona motora de la médula espinal Célula piramidal del hipocampo Célula de Purkinje del cerebelo Dendritas Cuerpo celular Axón Dendrita apical Terminaciones del axón FIGURA 42 Neurona motora con axón mielinizado. Una neurona motora está formada por el cuerpo celular (soma) con un núcleo, varias prolongaciones llamadas dendritas y un largo axón fibroso que se origina en la cresta axónica. La primera parte del axón se llama segmento inicial. Las células de Schwann forman una vaina de mielina que rodea al axón, excepto en su parte final y en los nódulos de Ranvier. Los botones terminales se localizan en las terminaciones nerviosas. FIGURA 43 Algunos tipos de neuronas en el sistema nervioso de los mamíferos. A) Las neuronas unipolares tienen unaprolongación, con distintos segmentos que sirven como superficies receptoras y terminaciones liberadoras. B) Las neuronas bipolares tienen dos prolongaciones especializadas: una dendrita que lleva información a la célula y un axón que transmite información desde la célula. C) Algunas neuronas sensitivas tienen una subclase de células bipolares llamadas células seudounipolares. Conforme la célula se desarrolla, una sola prolongación se divide en dos y ambas funcionan como axones, uno se dirige a la piel o músculo y el otro a la médula espinal. D) Las células multipolares tienen un axón y muchas dendritas. Los ejemplos incluyen las neuronas motoras; células piramidales del hipocampo con dendritas en el vértice y en la base, y las células cerebelares de Purkinje con un árbol dendrítico en un solo plano. (Tomada de Kandel ER, Schwartz JH, Jessell TM [eds.]: Principles of Neural Science, 4th ed. McGraw-Hill, 2000.) transporte ortógrado se presenta en microtúbulos que corren a lo largo del axón y requiere dos motores moleculares, la dineína y la cinesina (fig. 4-4). El transporte anterógrado avanza desde el cuerpo celular hacia las terminaciones del axón. Tiene un com- ponente rápido y uno lento; el transporte axónico rápido avan- za a cerca de 400 mm/día, la velocidad del transporte axónico lento es 0.5 a 10 mm/día. El transporte retrógrado, que viaja en sentido contrario (de la terminación nerviosa al cuerpo celular), se produce a lo largo de microtúbulos a una velocidad cercana a 200 mm/día. Las vesículas sinápticas se reciclan en la mem- brana, pero algunas vesículas usadas se trasladan de regreso al La terminología convencional usada para las partes de una neurona funcionan lo suficientemente bien para las neuronas motoras y las interneuronas, pero surgen problemas con los tér- minos “dendritas” y “axones” cuando se aplican a otros tipos de neuronas que se encuentran en el sistema nervioso. Desde el punto de vista funcional, las neuronas casi siempre tienen cua- tro zonas importantes: 1) una zona receptora o dendrítica, en la que se integran los múltiples cambios de potenciales genera- dos por las conexiones sinápticas; 2) un sitio donde se generan los potenciales de acción propagados (el segmento inicial en las neuronas motoras espinales, el primer nódulo de Ranvier en las neuronas sensitivas cutáneas); 3) un axón que transmite los impulsos propagados a las terminaciones nerviosas, y 4) las ter- minaciones nerviosas, donde los potenciales de acción inducen la liberación de los transmisores sinápticos. El cuerpo celular a menudo se localiza en la zona dendrítica final del axón, pero puede estar dentro del axón (p. ej., neuronas auditivas) o unido al lado del axón (p. ej., neuronas cutáneas). Su localización no im- plica diferencia en lo concerniente a la función receptora de la zona dendrítica y la función transmisora del axón. Los axones de muchas neuronas están mielinizados, o sea que adquieren vainas de mielina, un complejo de proteínas y lípidos que envuelve al axón (fig. 4-2). En el sistema nervioso periférico, la mielina se forma cuando una célula de Schwann envuelve su membrana hasta 100 veces (fig. 4-1). Luego la mielina se com- pacta cuando las porciones extracelulares de una proteína de membrana, la proteína cero (P0), se fijan con las porciones extra- celulares de P0 en la membrana yuxtapuesta. Varias mutaciones del gen para P0 causan neuropatías periféricas; se han descrito 29 mutaciones distintas que causan síntomas que varían desde leves hasta graves. La vaina de mielina envuelve al axón, excepto en su terminación y en los nódulos de Ranvier, constricciones periódicas de 1 μm situadas a intervalos aproximados de 1 mm (fig. 4-2). La función aislante de la mielina se describe más ade- lante en este capítulo. No todas las neuronas están mielinizadas; algunas son amielínicas, o sea que tan sólo están rodeadas por células de Schwann sin la envoltura de la membrana de esta cé- lula que produce mielina alrededor del axón. En el SNC de los mamíferos, la mayoría de las neuronas está mielinizada, pero las células que forman la mielina son oligo- dendrocitos y no células de Schwann (fig. 4-1). A diferencia de las células de Schwann, que forma la mielina entre dos nódulos de Ranvier sobre una sola neurona, los oligodendrocitos emi- ten múltiples prolongaciones que forman mielina sobre muchos axones vecinos. En la esclerosis múltiple, una enfermedad au- toinmunitaria incapacitante, hay destrucción en parches de la mielina en el SNC (recuadro clínico 4-1). La pérdida de la mie- lina produce retraso o bloqueo de la conducción en los axones desmielinizados. TRANSPORTE AXÓNICO Las neuronas son células secretoras, pero difieren de otras células de este tipo en que su zona secretora casi siempre está al final del axón, lejos del cuerpo celular. La mayor parte de este aparato de síntesis proteínica se localiza en el cuerpo celular y se transpor- tan proteínas y polipéptidos a la terminación axónica mediante el flujo axoplásmico. Por tanto, el cuerpo celular mantiene la integridad funcional y anatómica del axón; si éste se corta, el ex- tremo distal al corte se degenera (degeneración walleriana). El Enfermedades desmielinizantes La conducción normal de potenciales de acción depende de las propiedades aislantes de la mielina. Por tanto, los defectos en la mielina pueden tener consecuencias neurológicas adversas importantes. Un ejemplo es la esclerosis múltiple (MS), una enfermedad autoinmunitaria que afecta a más de tres millones de personas en el mundo, casi siempre inicia entre los 20 y 50 años de edad y afecta a las mujeres con una frecuencia casi dos veces mayor que en los varones. Al parecer la causa de la MS incluye factores genéticos y ambientales. Es más frecuente en personas caucásicas que viven en países con clima templado, incluidos países de Europa, el sur de Canadá, el norte de Esta- dos Unidos y el sureste de Australia. Los desencadenantes am- bientales incluyen la exposición temprana a virus como el virus Epstein-Barr y los causantes del sarampión, herpes, varicela o influenza. En la MS hay anticuerpos y leucocitos que atacan la mielina, lo que causa inflamación y lesión de la vaina, y al final también de los nervios que rodea. La pérdida de mielina pro- duce fuga de K+ a través de los conductos activados por vol- taje, hiperpolarización y falla de los potenciales de acción. Las deficiencias fisiológicas típicas van desde debilidad muscu lar, fatiga, disminución de la coordinación, palabras arrastradas, visión borrosa o nebulosa, disfunción vesical y trastornos sen- sitivos. A menudo los síntomas se exacerban por el aumento de la temperatura corporal o ambiental. La progresión de la enfermedad es muy variable. En la forma más frecuente, hay episodios transitorios que aparecen en forma súbita, duran unas cuantas semanas o meses y luego desaparecen en forma gradual. Los episodios ulteriores pueden aparecer años más tarde y al final no se logra la recuperación total. Otras perso- nas tienen una forma progresiva sin periodos de remisión. El diagnóstico de MS es muy difícil, casi siempre se retrasa hasta que ocurren múltiples episodios con deficiencias separadas en tiempo y espacio. Las pruebas de conducción nerviosa per- miten detectar disminución en la velocidad de conducción en las vías motoras y sensitivas. El análisis del líquido cefalorra- quídeo permite detectar la presencia de bandas oligoclonales indicativas de una reacción inmunitaria anormal contra la mie- lina. La valoración más definitiva es la imagen por resonancia magnética (MRI), donde se visualizan múltiples áreas cica- trizadas (escleróticas) en el cerebro. Aunque no hay curación para la MS, algunos fármacos (p. ej., interferón β) que suprimen la respuesta inmunitaria reducen la intensidad y disminuyen la velocidad de progresión de la enfermedad. RECUADRO CLÍNICO 4-1 CAPÍTULO 4 Tejido excitable: nervio 83 mal conductor pasivoy se necesitaría un potencial de muchos voltios para producir una señal de una fracción de voltio en el otro extremo de un axón de un metro de largo en ausencia de los procesos activos que ocurren en el nervio. La conducción es un proceso activo, que se autopropaga, y el impulso se desplaza sobre el nervio con amplitud y velocidad constantes. A menudo el proceso se compara con lo que ocurre cuando se acerca un fósforo al extremo de un rastro de pólvora; al encender las partí- culas de pólvora justo frente a la flama, ésta se desplaza en forma constante sobre el rastro hasta su final, al mismo tiempo que se va extinguiendo al avanzar. Las neuronas de los mamíferos son relativamente pequeñas, pero existen células nerviosas no mielinizadas gigantes en varias especies de invertebrados. Estas células se encuentran en cangre- jos (Carcinus), jibias (Sepia) y calamar (Loligo). Las propiedades fundamentales de las neuronas se identificaron por primera vez en estas especies y luego se observó que eran similares en los mamíferos. La región cervical de la capa muscular del calamar contiene axones individuales de hasta 1 mm de diámetro. Las propiedades fundamentales de estos axones largos son similares a las de los axones de los mamíferos. POTENCIAL DE MEMBRANA EN REPOSO Cuando dos electrodos se conectan a través de un amplificador adecuado y se colocan en la superficie de un solo axón, no se observa diferencia de potencial. Sin embargo, si un electrodo se inserta en el interior de la célula, se observa una diferencia de potencial constante, con el interior negativo con respecto al exterior de la célula en reposo. Un potencial de membrana se cuerpo celular y se depositan en lisosomas. Algunos materiales captados por las terminaciones por endocitosis, como el fac- tor de crecimiento nervioso (NGF) y varios virus, también se transportan de regreso al cuerpo celular. Parece que existe una excepción potencialmente importante a estos principios en al- gunas dendritas. En ellas, las cadenas del mRNA monocatenario transportadas desde el cuerpo celular hacen contacto con los ribosomas apropiados y al parecer la síntesis de proteínas crea dominios proteínicos locales. EXCITACIÓN Y CONDUCCIÓN Las células nerviosas tienen un umbral de excitación bajo. El es- tímulo puede ser eléctrico, químico o mecánico. Se producen dos tipos de trastornos fisicoquímicos: potenciales locales no propagados, que según su localización se llaman potenciales si- nápticos, generadores o electrotónicos, y potenciales propaga- dos, los potenciales de acción (o impulsos nerviosos). Estas son las únicas respuestas eléctricas de las neuronas y otros tejidos excitables, y son el lenguaje principal del sistema nervioso. Se producen por cambios en la conducción de iones a través de la membrana celular que se deben a alteraciones en los conductos iónicos. Los fenómenos eléctricos en las neuronas son rápidos, se miden en milisegundos (ms), y los cambios en el potencial son pequeños, se miden en milivoltios (mV). En condiciones normales, el impulso se transmite (conduce) a lo largo del axón hacia su terminación. Los nervios no son “ca- bles telefónicos” que transmiten impulsos en forma pasiva; aun- que la conducción de los impulsos nerviosos es rápida, es mucho más lenta que la electricidad. De hecho, el tejido nervioso es un Cuerpo celular Microtúbulo Vesícula secretora Proteína cinesina Microtúbulo Axón Microtúbulo Proteína dineína Vesícula de membrana reciclada Terminación axónica FIGURA 44 Transporte axónico mediante dineína y cinesina a lo largo de los microtúbulos. El transporte axónico anterógrado rápido y lento ocurre a lo largo de microtúbulos que corren por todo el axón, desde el cuerpo celular hasta la terminación. El transporte retrógrado ocurre desde la terminación al cuerpo celular. (Tomado de Widmaier EP, Raff H, Strang KT: Vander’s Human Physiology. McGraw-Hill, 2008.) produce por la separación de las cargas positivas y negativas a través de la membrana celular (fig. 4-5). En las neuronas, el potencial de membrana en reposo casi siempre es cercano a –70 mV, lo cual es casi igual al potencial de equilibrio para el potasio (fig. 4-6). Para que haya una diferencia de potencial a través de una membrana con doble capa de lípidos, deben cumplirse dos con- diciones. Primera, debe haber una distribución desigual de iones de una o más especies a uno y otro lado de la membrana (o sea, un gradiente de concentración). Segunda, la membrana debe ser permeable a uno o más de los tipos de iones. La permeabilidad se produce por la existencia de conductos o poros en la doble capa; estos conductos casi siempre son permeables a una sola especie de iones. El potencial de membrana en reposo representa una situa- ción de equilibrio en la cual la fuerza impulsora para el despla- zamiento de los iones a los que la membrana es permeable en favor del gradiente de concentración es igual y opuesta a la fuer- za impulsora para que estos iones se desplacen a favor de sus gradientes eléctricos. – – – – – – – – – – –– – + + + + + + +++ + +++ + + + + + + + + + + + + + + + + + +++ ++ – – – – – – – – – – – – – – – ––– – – – – Igual +,– Igual +,– Extremo extracelular Extremo citoplásmico FIGURA 45 Este potencial de membrana se debe a la separa- ción de las cargas positiva y negativa a ambos lados de la mem- brana celular. El exceso de cargas positivas (círculos rojos) fuera de la célula y de las cargas negativas (círculos azules) dentro de la célula en reposo representa una pequeña fracción del número total de iones presentes. (Tomada de Kandel ER, Schwartz JH, Jessell TM [eds.]: Principles of Neural Science, 4th ed. McGraw-Hill, 2000.) PK PNa Na+ K+ P o te n c ia l d e m e m b ra n a ( m V ) Tiempo (ms) P e rm e a b ili d a d r e la ti v a d e m e m b ra n a (a) (b) +30 0 –70 600 300 50 1 0 1 2 3 4 3 2 4 5 6 7 1 K+ Conducto activado de Na+ Conducto activado de K+ FIGURA 46 Cambios en (a) el potencial de membrana (mV) y (b) la permeabilidad relativa de la membrana (P) al Na+ y al K+ durante un poten- cial de acción. (Tomada de Widmaier EP, Raff H, Strang KT: Vander’s Human Physiology. McGraw-Hill, 2008.) negativa. La figura 4-7 muestra el control por retroalimentación secuencial en los conductos de K+ y Na+ activados por voltaje durante el potencial de acción. El descenso en la concentración externa de Na+ disminuye el potencial de acción, pero tiene poco efecto en el potencial de membrana en reposo. Es predecible la falta de un efecto im- portante en el potencial de membrana en reposo, ya que la per- meabilidad de la membrana en reposo al Na+ es relativamente baja. Por el contrario, el aumento de la concentración externa de K+ disminuye el potencial de membrana en reposo. Aunque el Na+ entra a la célula nerviosa y el K+ sale de ésta durante el potencial de acción, el número de iones implicado es diminuto en relación con la cantidad total presente. El hecho de que el nervio gane Na+ y pierda K+ durante la actividad ya se de- mostró en forma experimental, pero las diferencias significati- vas en las concentraciones iónicas sólo pueden medirse después de la estimulación repetida y prolongada. Otros iones, en especial Ca2+, pueden afectar el potencial de membrana a través del movimiento por conductos y de interac- ciones con la membrana. El descenso en la concentración extra- celular de Ca2+ aumenta la excitabilidad de las células nerviosas y musculares porque disminuye el grado de despolarización necesario para iniciar los cambios en la conductancia de Na+ y K+ que producen el potencial de acción. Por el contrario, un au- mento en la concentración extracelular de Ca2+ puede estabilizar la membrana porque disminuye la excitabilidad. DISTRIBUCIÓN DE CONDUCTOS IÓNICOS EN LAS NEURONAS MIELINIZADAS La distribución espacial de los conductos iónicos a lo largodel axón tiene un papel clave en el inicio y regulación del potencial de acción. Los conductos de Na+ activados por voltaje están muy concentrados en los nódulos de Ranvier y el segmento inicial de las neuronas mielinizadas. El segmento inicial y, en las neu- ronas sensitivas, el primer nódulo de Ranvier son los sitios en los que se generan los impulsos, y los otros nódulos de Ranvier son sitios a los que brincan los impulsos durante la conducción saltatoria. El número de conductos de Na+ por micrómetro cua- drado (μm2) de membrana en las neuronas mielinizadas de los mamíferos se calcula en 50 a 75 en el cuerpo celular, 350 a 500 en el segmento inicial, menos de 25 en la superficie de la mielina, 2 000 a 12 000 en los nódulos de Ranvier y 20 a 75 en las termi- naciones del axón. A lo largo de los axones de las neuronas no mielinizadas, el número es cercano a 110. En muchas neuro- nas mielinizadas, los conductos de Na+ están flanqueados por conductos de K+ que participan en la repolarización. LEY DE “TODO O NADA” Es posible determinar la intensidad mínima de la corriente estimulante (umbral de intensidad) que al actuar durante un tiempo determinado, apenas produce un potencial de acción. El umbral de intensidad varía según la duración; con estímulos débiles la duración se prolonga, con estímulos fuertes se acorta. La relación entre la fuerza y la duración de un umbral de estímu- lo se conoce como curva de fuerza-duración. Las corrientes que se incrementan con lentitud no activan al nervio porque éste se adapta al estímulo aplicado, un proceso llamado adaptación. En las neuronas, la concentración de K+ es mucho mayor en el interior que en el exterior de las células, ocurre lo contrario con el Na+. Esta diferencia de concentración se establece por acción de la Na+-K+ ATPasa. El gradiente de concentración de K+ hacia el exterior produce desplazamiento pasivo de este ion hacia fuera de la célula cuando se abren los conductos selectivos para K+. De igual manera, el gradiente de concentración del Na+ hacia el interior induce el desplazamiento pasivo de sodio hacia el interior de la célula cuando se abren los conductos selectivos para Na+. Como en reposo hay más conductos de K+ abiertos que conductos de Na+, la permeabilidad de la membrana al K+ es mayor. Por consiguiente, las concentraciones intracelular y extracelular de potasio son los principales determinantes del po- tencial de membrana en reposo, que se aproxima al potencial de equilibrio para el K+. Las fugas constantes de iones no pueden continuar para siempre sin que al final desaparezcan los gra- dientes iónicos. Esto se previene con la actividad de la Na+-K+ ATPasa, que desplaza en forma activa al Na+ y al K+ en contra de su gradiente electroquímico. FLUJOS IÓNICOS DURANTE EL POTENCIAL DE ACCIÓN Las membranas celulares de los nervios, como las de otras cé- lulas, contienen muchos tipos distintos de conductos iónicos. Algunos de éstos se activan con voltaje y otros con ligando. Es el comportamiento de estos conductos, y en especial los de Na+ y K+, lo que explica los fenómenos eléctricos en los nervios. La figura 4-6 muestra los cambios en la conductancia de la membrana para Na+ y K+ que ocurren durante los potenciales de acción. La conductancia de un ion es el recíproco de su resis- tencia eléctrica en la membrana y es una medida de la permeabi- lidad de la membrana a ese ion. Como respuesta a un estímulo despolarizante, se activan algunos de los conductos de Na+ acti- vados por voltaje y cuando se llega al umbral del potencial, los conductos de Na+ activados por voltaje rebasan a los conductos de K+ y de otros iones, con lo que se produce un potencial de acción (un ciclo de retroalimentación positiva). El potencial de membrana se inclina hacia el potencial de equilibrio para Na+ (+60 mV), pero no lo alcanza durante el potencial de acción, sobre todo porque el aumento en la conductancia para Na+ es de corta duración. Los conductos de Na+ entran muy pronto a un estado cerrado llamado estado desactivado y permanecen así unos cuantos milisegundos antes de regresar al estado de reposo, cuando pueden activarse de nuevo. Además, la direc- ción del gradiente eléctrico para el Na+ se invierte durante la sobreactivación, ya que el potencial de membrana se invierte y esto limita la entrada de Na+. Un tercer factor que produce la re- polarización es la abertura de los conductos de K+ activados por voltaje. Esta abertura es más lenta y más prolongada que la de los conductos de Na+; por consiguiente, gran parte del aumento en la conductancia del K+ aparece después del incremento en la conductancia del Na+. El desplazamiento neto de la carga posi- tiva hacia el exterior de la célula debido a la salida de K+ en este momento ayuda a completar la repolarización. El regreso lento de los conductos de K+ al estado cerrado también explica la hi- perpolarización ulterior, seguida por el regreso al potencial de membrana en reposo. Por tanto, los conductos de K+ activados por voltaje terminan el potencial de acción y producen el cierre de sus compuertas mediante un proceso de retroalimentación La aplicación de estas corrientes produce un cambio localizado en el potencial despolarizante que se eleva en forma aguda y de- clina en forma exponencial con el tiempo. La magnitud de esta respuesta disminuye rápidamente conforme aumenta la distancia entre el electrodo estimulante y el de registro. Por el contrario, una corriente anódica produce un cambio de potencial hiperpo- larizante de duración similar. Estos cambios en el potencial se lla- man potenciales electrotónicos. Conforme aumenta la fuerza de la corriente, la respuesta es mayor a causa de la adición creciente de una respuesta local de la membrana (fig. 4-8). Por último, a 7 a 15 mV de despolarización (potencial de –55 mV), se alcanza el nivel de activación y se produce el potencial de acción. CAMBIOS EN LA EXCITABILIDAD DURANTE LOS POTENCIALES ELECTROTÓNICOS Y EL POTENCIAL DE ACCIÓN Durante el potencial de acción, así como durante los potencia- les electrotónicos y la respuesta local, cambia el umbral de la Una vez que se alcanza el umbral de intensidad, se produce un potencial de acción completo. Los incrementos adicionales en la intensidad de un estímulo no producen aumento ni otro cambio en el potencial de acción, siempre que las demás con- diciones experimentales permanezcan constantes. El potencial de acción no se produce si la magnitud del estímulo es menor al umbral y ocurre con amplitud y forma constantes sin importar la fuerza del estímulo si éste alcanza la intensidad del umbral o más. Por lo tanto, el potencial de acción tiene un carácter de “todo o nada” y se dice que obedece a la ley del todo o nada. POTENCIALES ELECTROTÓNICOS, RESPUESTA LOCAL Y NIVEL DE ACTIVACIÓN Aunque los estímulos que son menores del umbral no produ- cen un potencial de acción, sí tienen un efecto en el potencial de membrana. Esto puede demostrarse si se colocan electrodos de registro a unos cuantos milímetros de un electrodo estimulan- te y se aplican estímulos inferiores al umbral con duración fija. Despolarización del potencial de membrana Aumento del flujo de Na+ al interior de la célula Abertura de conductos de Na+ activados por voltaje Estímulo despolarizante Desactivación de conductos de Na+ Aumento de PNa Inicio Paro Retroalimentación positiva Repolarización del potencial de membrana Aumento del flujo de K+ hacia fuera de la célula Abertura de conductos de K+ activados por voltaje Despolarización de membrana por entrada de Na+ Aumento de PK Inicio Retroalimentación negativa (a) (b) + FIGURA 47 Control por retroalimentación en los conductos iónicos activados por voltaje en la membrana. (a) Los conductos de Na+ ejer- cen retroalimentación positiva. (b) Los conductos de K+ ejercen retroalimentación negativa. (Tomada a partir de Widmaier EP, Raff H, Strang KT: Vander’s Human Physiology.McGraw-Hill, 2008.) CONDUCCIÓN SALTATORIA La conducción en los axones mielinizados depende de un patrón similar de flujo de corriente circular. Sin embargo, la mielina es un aislante efectivo, y el flujo de corriente a través de ésta es insignificante. En cambio, la despolarización en los axones mie- linizados salta de un nódulo de Ranvier al siguiente, el vertedero neurona ante la estimulación. Las respuestas hiperpolarizantes elevan el umbral y los potenciales despolarizantes lo disminuyen conforme aproximan el potencial de membrana al nivel de ac- tivación. Durante la respuesta local, el umbral disminuye, pero durante la fase de incremento y gran parte de la fase de descenso del potencial en punta, la neurona es refractaria a la estimula- ción. Este periodo refractario se divide en periodo refractario absoluto, que corresponde al intervalo desde el momento que se alcanza el nivel de activación hasta que se alcanza un tercio de la repolarización completa, y un periodo refractario relativo, que dura desde este momento hasta el inicio de la posdespolariza- ción. Durante el periodo refractario absoluto, ningún estímulo, sin importar su fuerza, excita al nervio, pero durante el perio- do refractario relativo los estímulos más fuertes de lo normal pueden inducir la excitación. Durante la posdespolarización, el umbral disminuye de nuevo y durante la poshiperpolarización, aumenta. Estos cambios en el umbral se relacionan con las fases del potencial de acción en la figura 4-9. ORIGEN ELÉCTRICO DEL POTENCIAL DE ACCIÓN La membrana celular nerviosa está polarizada en reposo, con cargas positivas alineadas a lo largo del exterior de la membrana y cargas negativas sobre el lado interno. Durante el potencial de acción, esta polaridad se elimina y durante un breve periodo in- cluso se invierte (fig. 4-10). Las cargas positivas de la membrana delante y detrás del potencial de acción fluyen hacia el área de negatividad representada por el potencial de acción (“vertedero de corriente”). Al extraer las cargas positivas, este flujo disminu- ye la polaridad de la membrana delante del potencial de acción. Esa despolarización electrotónica inicia una respuesta local y cuando se alcanza el nivel de activación se produce una respues- ta propagada que a su vez produce despolarización electrotónica de la membrana frente a ella. −55 −70 −85 0.5 1.0 1.5 ms Potencial de membrana en reposo Potencial de acción propagado Nivel de activación Respuesta local P o te n c ia l d e m e m b ra n a ( m V ) Potencial en punta Posdespolarización Poshiperpolarización Respuesta local Adición de periodo latente Periodo supernormal Periodo refractario Tiempo Periodo subnormal E x c it a b ili d a d C a m b io d e p o te n c ia l Mielina Axón Líquido extracelular _ + _ + Dirección de la propagación Nódulo activo Nódulo inactivo + + _ _ + + + + – – + + + –––++–––– + + + + – – + + + –––++–––– Axón Líquido extracelular FIGURA 48 Potenciales electrotónicos y respuesta local. Se muestran los cambios en el potencial de membrana de una neurona después de la aplicación de estímulos de 0.2, 0.4, 0.6, 0.8 y 1.0 veces el umbral de intensidad superpuestos en la misma escala de tiempo. Las respuestas debajo de la línea horizontal son las registradas cerca del ánodo y las que están sobre la línea son las registradas cerca del cátodo. El estímulo de umbral de intensidad se repitió dos veces. Una vez pro- dujo un potencial de acción propagado (línea superior) y otra no. FIGURA 49 Cambios relativos en la excitabilidad de una mem- brana celular nerviosa durante el paso de un impulso. Nótese que la excitabilidad es el recíproco del umbral. (Modificada a partir de Morgan CT: Physiological Psychology. McGraw-Hill, 1943.) FIGURA 410 Flujo de corriente local (movimiento de cargas positivas) alrededor de un impulso en un axón. Arriba: axón amie- línico. Abajo: axón mielinizado. Las cargas positivas de la membrana antes y después del potencial de acción fluyen hacia el área de negativi- dad representada por el potencial de acción (“vertedero de corriente”). En los axones mielinizados, la despolarización salta de un nódulo de Ranvier al siguiente (conducción saltatoria). de intensidad, los axones con umbrales bajos se activan y se ob- serva un pequeño cambio de potencial. Conforme aumenta la intensidad de la corriente estimulante, también se accionan los axones con umbrales más altos. La respuesta eléctrica aumenta en forma proporcional hasta que el estímulo es lo bastante fuer- te para excitar a todos los axones del nervio. El estímulo que produce excitación de todos los axones es el estímulo máximo, y la aplicación de un estímulo mayor al máximo no produce un aumento adicional en el grado del potencial observado. TIPOS Y FUNCIÓN DE LAS FIBRAS NERVIOSAS Después de aplicar un estímulo a un nervio, existe un periodo de latencia antes del inicio del potencial de acción. Este inter- valo corresponde al tiempo que tarda el impulso en viajar a lo largo del axón desde el sitio de estimulación hasta los electrodos de registro. Su duración es proporcional a la distancia entre el electrodo estimulante y el de registro, e inversamente propor- cional a la velocidad de conducción. Si se conocen la duración del periodo de latencia y la distancia entre los electrodos de es- timulación y de registro, puede calcularse la velocidad de con- ducción axónica. Erlanger y Gasser dividieron las fibras nerviosas de los ma- míferos en grupos A, B y C; además subdividieron el grupo A en fibras α, β, γ y δ. En el cuadro 4-1 se presentan los diversos de corriente en el nódulo activo sirve para despolarizar electro- tónicamente el nódulo que sigue en el trayecto del potencial de acción hasta llegar al nivel de activación (fig. 4-10). Este salto de la despolarización de un nódulo al otro se llama conducción saltatoria. Es un proceso rápido que permite a los axones mie- linizados conducir a una velocidad hasta 50 veces mayor que las fibras amielínicas más rápidas. CONDUCCIÓN ORTODRÓMICA Y ANTIDRÓMICA Un axón puede conducir en cualquier sentido. Cuando se inicia un potencial de acción en la parte intermedia del axón, la despo- larización electrotónica inicia dos impulsos que viajan en senti- dos opuestos, a ambos lados del vertedero de corriente inicial. En la situación natural, los impulsos viajan sólo en un sentido, de las uniones sinápticas o receptores por los axones hasta su terminación. Esta conducción se llama ortodrómica. La con- ducción en sentido contrario se denomina antidrómica. Como las sinapsis (a diferencia de los axones) permiten la conducción sólo en un sentido, un impulso antidrómico no traspasa la pri- mera sinapsis que encuentra y desaparece en ese punto. POTENCIALES DE ACCIÓN BIFÁSICOS Las descripciones del potencial de membrana en reposo y del potencial de acción presentadas antes se basan en registros con dos electrodos, uno en el espacio extracelular y el otro dentro de la célula. Si ambos electrodos se sitúan sobre la superficie del axón, no hay diferencia de potencial entre ellos en reposo. Cuando se estimula el nervio y se conduce un impulso pasando por los dos electrodos, se produce una secuencia característica de cam- bios de potencial. Conforme la onda de despolarización llega al electrodo más cercano al estimulador, este electrodo se vuelve negativo con respecto al otro electrodo (fig. 4-11). Cuando el impulso pasa a la porción del nervio entre los dos electrodos, el potencial regresa a cero; luego, cuando pasa por el segundo electrodo, el primero se vuelve positivo con respecto al segun- do. Lo convencional es conectar las derivaciones de manera que cuando el primer electrodo se vuelva negativo con respecto al segundo, se registre una desviación ascendente. Por lo tanto, el registro muestra una desviación ascendente seguida de un in- tervalo isoeléctrico y luego una desviación descendente. Esta se- cuenciase llama potencial de acción bifásico (fig. 4-11). PROPIEDADES DE LOS NERVIOS MIXTOS Los nervios periféricos en los mamíferos están formados por muchos axones unidos en una envoltura fibrosa llamada epineu- ro. Por tanto, los cambios de potencial registrados fuera de las cé- lulas en tales nervios representan una suma algebraica de los potenciales de acción “todo o nada” de muchos axones. Los um- brales de los axones individuales en el nervio y su distancia desde los electrodos estimulantes varían. Con los estímulos in- feriores al umbral, ninguno de los axones se estimula y no se obtiene una respuesta. Cuando los estímulos alcanzan el umbral + _ + _ – + + _ + _ + _ + _ + _ + _ + _ + _ + _ + _ + _ + _ – + + _ + _ + _ + _ + _ + _ + _ + _ + _ + _ + _ + _ + _ + _ + _ + _ – + + _ + _ + _ + _ + _ + _ + _ + _ – + + _ + _ Nervio Tiempo mV FIGURA 411 Potencial de acción bifásico. Ambos electrodos de registro están en el exterior de la membrana nerviosa. La práctica convencional es conectar las derivaciones de tal forma que cuando el primer electrodo sea negativo con respecto al segundo, se registre una desviación ascendente. Por lo tanto, el registro muestra una des- viación ascendente seguida de un intervalo isoeléctrico y luego una desviación descendente. NEUROTROFINAS APOYO TRÓFICO DE LAS NEURONAS Se han aislado y estudiado varias proteínas necesarias para la supervivencia y crecimiento de las neuronas. Algunas de estas neurotrofinas son producto de los músculos u otras estructuras que las neuronas inervan, pero otras las producen los astrocitos. Estas proteínas se unen con receptores en las terminaciones de una neurona. Se interiorizan y luego se trasladan por transporte retrógrado hasta el cuerpo celular neuronal, donde fomenta la producción de proteínas relacionadas con el desarrollo, creci- miento y supervivencia de las neuronas. Otras neurotrofinas se producen en las neuronas y se transportan en forma anterógra- da hasta la terminación nerviosa, donde mantienen la integridad de la neurona postsináptica. tipos de fibras con sus diámetros, características eléctricas y fun- ciones. La comparación de los déficit neurológicos producidos por el corte cuidadoso de la raíz dorsal y otros experimentos de corte neuronal con los cambios histológicos en los nervios per- mitió establecer las funciones y características histológicas de cada una de las familias de axones generadoras de los diversos picos del potencial de acción compuesto. En general, mientras mayor sea el diámetro de una fibra nerviosa, es mayor su velo- cidad de conducción. Los axones grandes participan sobre todo en la sensibilidad propioceptiva, en la función motora somáti- ca, en el tacto consciente y la presión, mientras que los axones más pequeños se encargan de transmitir sensaciones de dolor y temperatura, además de la función autónoma. Las fibras C de la raíz dorsal conducen algunos impulsos generados por el tacto y otros receptores cutáneos, además de los impulsos generados por los receptores para el dolor y la temperatura. La investigación adicional mostró que no todos los compo- nentes de la descripción clásica con letras son homogéneos, y algunos fisiólogos usan un sistema numérico (Ia, Ib, II, III, IV) para clasificar las fibras sensitivas. Por desgracia, esto causó con- fusión. El cuadro 4-2 presenta la comparación del sistema nu- mérico y el sistema de letras. Además de las variaciones en la velocidad de conducción y el diámetro de fibras, las diversas clases de fibras en los ner- vios periféricos difieren en su sensibilidad a la hipoxia y a los anestésicos (cuadro 4-3). Este hecho tiene importancia clínica y fisiológica. Los anestésicos locales deprimen la transmisión en las fibras del grupo C antes de que afecten a las del grupo A del tacto. Por el contrario, la presión sobre un nervio puede causar pérdida de la conducción en las fibras de diámetro grande moto- ras, para tacto y presión, pero la sensibilidad al dolor permanece casi intacta. A veces se ven patrones de este tipo en personas que duermen con los brazos bajo la cabeza por periodos prolonga- dos, lo que comprime los nervios de los brazos. Por la relación del sueño profundo con la intoxicación alcohólica, el síndrome es más frecuente en los fines de semana y se le da el interesante nombre de parálisis de sábado por la noche o de domingo por la mañana. CUADRO 41 Tipos de fibras nerviosas en el nervio de los mamíferosa Tipo de fibra Función Diámetro de fibra (μm) Velocidad de conducción (m/s) Duración de espiga (ms) Periodo refractario absoluto (ms) A α Propiocepción; motora somática 12-20 70-120 β Tacto, presión 5-12 30-70 0.4-0.5 0.4-1 γ Motora para husos musculares 3-6 15-30 δ Dolor, frío, tacto 2-5 12-30 B Autonómica preganglionar <3 3-15 1.2 1.2 C Raíz dorsal Dolor, temperatura, algunos mecanorreceptores 0.4-1.2 0.5-2 2 2 Simpática Simpático posganglionar 0.3-1.3 0.7-2.3 2 2 aLas fibras A y B son mielinizadas; las fibras C son no mielinizadas. CUADRO 42 Clasificación numérica que se usa algunas veces para las neuronas sensitivas Número Origen Tipo de fibra Ia Huso muscular, terminación anular-espiral A α Ib Órgano tendinoso de Golgi A α II Huso muscular, terminación en ramo de flores; tacto, presión A β III Receptores para dolor y frío; algunos receptores para contacto A δ IV Receptores para dolor, temperatura y otros Raíz dorsal C RECEPTORES En el cuadro 4-4 se presentan cuatro neurotrofinas ya estable- cidas y sus tres receptores de gran afinidad. Cada uno de estos receptores trk forma dímeros, lo cual inicia la autofosforilación en los dominios citoplásmicos de la tirosina cinasa citoplásmi- ca de los receptores. Hay un receptor NGF adicional de baja afinidad que es una proteína de 75 kDa, se llama p75NTR. Este receptor se une con las cuatro neurotrofinas listadas con igual afinidad. Existe cierta evidencia de que puede formar un hete- rodímero con un monómero trk A y que el dímero tiene mayor afinidad y especificidad para NGF. Sin embargo, ahora parece que los receptores p75NTR pueden formar homodímeros que en ausencia de receptores trk inducen apoptosis, un efecto contra- rio a los efectos usuales de las neurotrofinas: promover el creci- miento y la nutrición. ACCIONES La primera neurotrofina que se clasificó fue NGF, un factor de crecimiento proteínico necesario para el crecimiento y mante- nimiento de las neuronas simpáticas y algunas neuronas sensi- tivas. Está presente en un amplio espectro de especies animales, incluidos los humanos, y se encuentra en muchos tejidos distin- tos. Los ratones macho tienen una concentración muy alta en las glándulas salivales submandibulares y con la castración, el nivel disminuye a un punto igual al que se observa en las hem- bras. El factor está formado por dos subunidades α, dos β y dos γ. Las subunidades β, cada una con masa molecular de 13 200 Da, tienen actividad promotora del crecimiento nervioso; las subunidades α tienen actividad similar a la tripsina, y las sub- unidades γ son proteasas de serina. Se desconoce la función de las proteasas. La estructura de la subunidad β de NGF se parece a la de la insulina. Las neuronas captan el NGF y lo transportan en forma re- trógrada desde las terminaciones de las neuronas a los cuerpos celulares. También está presente en el cerebro y al parecer está encargado del crecimiento y mantenimiento de las neuronas colinérgicas en el prosencéfalo basal y el núcleo estriado. La in- yección de antisuero contra NGF en animales neonatos causa la destrucción casi total de los ganglios simpáticos; por tanto, produce una inmunosimpatectomía. Hay evidencia de que el mantenimiento de las neuronas mediante NGF se debe a la dis- minución de la apoptosis. El factor neurotrófico derivado del cerebro (BDNF), la neu- rotrofina-3 (NT-3), NT-4/5 y NGF mantienen cada uno un pa- trón distinto de neuronas, aunque existe ciertasuperposición. La alteración de NT-3 mediante eliminación génica causa pérdi- da marcada de mecanorreceptores cutáneos, incluso en los su- jetos heterocigóticos. El BDNF actúa con rapidez y en realidad puede despolarizar las neuronas. Los ratones con deficiencia de 3-4 ORDAUC Susceptibilidad relativa de las fibras nerviosas A, B y C de los mamíferos al bloqueo de la conducción producido por varios agentes Susceptibilidad a: La más susceptible Intermedia La menos susceptible Hipoxia B E C Presión A B C Anestésicos locales C B A CUADRO 44 Neurotrofinas Neurotrofina Receptor Factor de crecimiento nervioso (NGF) trk A Factor neurotrófico derivado del cerebro (BDNF) trk B Neurotrofina 3 (NT-3) trk C, menos en trk A y trk B Neurotrofina 4/5 (NT-4/5) trk B Regeneración axónica El daño a los nervios periféricos a menudo es reversible. Aunque el axón degenera en la porción distal al daño, muchas veces so- breviven los elementos conectivos del llamado muñón distal. La germinación axónica se produce en el muñón proximal, y crece hacia la terminación nerviosa. Esto se debe a factores promotores del crecimiento secretados por las células de Schwann que atraen a los axones hacia el muñón distal. Las mo- léculas de adhesión de la superfamilia de inmunoglobulina (p. ej., NgCAM/L1) promueven el crecimiento axónico en las mem- branas celulares y matrices extracelulares. Las moléculas inhibi- doras en el perineuro aseguran que los axones en regeneración crezcan en la trayectoria correcta. Los muñones distales desner- vados son capaces de estimular la producción de neurotrofinas que fomentan el crecimiento. Una vez que el axón regenerado alcanza su objetivo, se forma una nueva conexión funcional (p. ej., unión neuromuscular). La regeneración permite la re- cuperación considerable, aunque no completa. Por ejemplo, es posible que haya daño permanente del control motor fino porque algunas neuronas motoras se guían a una fibra motora inapropiada. Sin embargo, la recuperación de los nervios perifé- ricos luego del daño rebasa por mucho la de las vías nerviosas centrales. El muñón proximal de un axón dañado en el SNC for- mará gemaciones cortas, pero es rara la recuperación del mu- ñón distal y es improbable que los axones dañados formen nue- vas sinapsis. Esto se debe a que las neuronas del SNC no tienen las sustancias químicas promotoras del crecimiento necesarias para la regeneración. De hecho, la mielina del SNC es un inhi- bidor potente del crecimiento axónico. Además, después de la lesión del SNC hay varios fenómenos que forman un ambiente inapropiado para la regeneración: proliferación de astrocitos, activación de microglia, formación de cicatriz, inflamación e invasión de células inmunitarias. Por tanto, el tratamiento de las lesiones cerebrales y espinales a menudo se enfoca en la rehabilitación y no en la reversión del daño nervioso. La in- vestigación nueva se enfoca en identificar maneras para iniciar y mantener el crecimiento axónico, dirigir los axones en rege- neración para conectarse de nuevo con sus neuronas blanco y reconstituir los circuitos neuronales originales. RECUADRO CLÍNICO 4-2 (desactivado) antes de regresar al estado de reposo. La dirección del gradiente eléctrico para Na+ se invierte durante la respuesta excesiva porque el potencial de membrana se invierte, lo cual limi- ta la entrada de Na+. Los conductos de K+ activados por voltaje se abren y el movimiento neto de la carga positiva hacia el exterior de la célula ayuda a completar el proceso de repolarización. El retor- no lento de los conductos de K+ al estado cerrado explica la poshi- perpolarización, seguida de un regreso al potencial de membrana en reposo. Las fibras nerviosas se dividen en distintas categorías según el diá- ■ metro del axón, velocidad de conducción y función. Las neurotrofinas son productos de los astrocitos y se trasladan por ■ transporte retrógrado al cuerpo de la célula neuronal, donde fomen- tan la producción de proteínas relacionadas con el desarrollo, creci- miento y supervivencia de las neuronas. PREGUNTAS DE OPCIÓN MÚLTIPLE Para todas las preguntas elija una sola respuesta, a menos que se indique lo contrario. 1. La distancia entre un electrodo estimulante y un electrodo de regis- tro es de 4.5 cm. Cuando se estimula el axón, el periodo de latencia es 1.5 ms. ¿Cuál es la velocidad de conducción del axón? A) 15 m/s B) 30 m/s C) 40 m/s D) 67.5 m/s E) No puede determinarse con la información presentada. 2. ¿Cuál de los siguientes tiene la menor velocidad de conducción? A) Fibras Aα B) Fibras Aβ C) Fibras Aγ D) Fibras B E) Fibras C 3. Un varón cae en un sueño profundo con un brazo bajo la cabeza. Cuando despierta, su brazo está paralizado, pero siente hormigueo y la sensibilidad dolorosa aún está intacta. La razón de la pérdida de función motora sin pérdida de la sensibilidad al dolor es que en los nervios de su brazo: A) las fibras A son más susceptibles a la hipoxia que las fibras B B) las fibras A son más sensibles a la presión que las fibras C C) las fibras C son más sensibles a la presión que las fibras A D) los nervios motores se afectan más por el sueño que los nervios sensitivos E) los nervios sensitivos están más cercanos al hueso que los ner- vios motores y por tanto, se afectan menos con la presión 4. ¿Qué parte de la neurona tiene la mayor concentración de conduc- tos de Na+ por milímetro cuadrado de membrana celular? A) dendritas B) dendritas cercanas al cuerpo celular C) segmento inicial D) membrana axónica bajo la mielina E) ninguna de las anteriores 5. ¿Cuál de las siguientes declaraciones sobre el factor de crecimiento nervioso no es verdadera? A) Está formado por tres subunidades polipeptídicas B) Facilita el proceso de apoptosis C) Es necesario para el crecimiento y desarrollo del sistema ner- vioso simpático D) Los nervios lo captan a partir de los órganos que inervan E) Está presente en el cerebro BDNF pierden neuronas sensitivas periféricas; también presen- tan cambios degenerativos graves en los ganglios vestibulares y amortiguación de la potenciación a largo plazo. OTROS FACTORES QUE AFECTAN EL CRECIMIENTO NEURONAL La regulación del crecimiento neuronal es un proceso comple- jo. Las células de Schwann y los astrocitos producen factor neu- rotrófico ciliar (CNTF). Este factor promueve la supervivencia de las neuronas espinales dañadas y embrionarias, y es posible que sea valioso como tratamiento de enfermedades humanas que presentan degeneración de las neuronas motoras. El factor neu- rotrófico derivado de la línea celular neuroglial (GDNF) man- tiene las neuronas dopaminérgicas del mesencéfalo in vitro. Sin embargo, los animales con bloqueo génico para GDNF tienen neuronas dopaminérgicas que parecen normales, aunque no tie- nen riñones y no desarrollan el sistema nervioso entérico. Otro factor que intensifica el crecimiento de las neuronas es el factor inhibidor de leucemia (LIF). Además, las neuronas y otras células responden al factor de crecimiento similar a la insulina tipo I (IGF-I) y las diversas formas del factor transformador de crecimiento (TGF), factor de crecimiento de fibroblastos (FGF) y factor de crecimiento derivado de plaquetas (PDGF). El recuadro clínico 4-2 compara la capacidad de regenera- ción de las neuronas después de una lesión nerviosa central y periférica. RESUMEN DEL CAPÍTULO Hay dos tipos principales de neuroglia: microglia y macroglia. Las■ microgliales son células limpiadoras. La macroglia incluye oligo- dendrocitos, células de Schwann y astrocitos; los primeros dos par- ticipan en la formación de mielina; los astrocitos producen sustan- cias que tienen tropismo para las neuronas y ayudan a mantener la concentración adecuada de iones y neurotransmisores. Las neuronas están formadas por un cuerpo celular (soma), que es■ el centro metabólico de la neurona; dendritas que se extienden fuera del cuerpo celular y tienen abundantes ramificaciones, y un axón fi- broso largo que se originade una zona engrosada del cuerpo celular, la cresta axónica. Los axones de muchas neuronas adquieren una vaina de mieli-■ na, un complejo de proteínas y lípidos que envuelve al axón. La mielina es un aislante efectivo y la despolarización de los axones mielinizados salta de un nódulo de Ranvier al siguiente; el verte- dero de corriente en el nódulo activo induce la despolarización electrotónica hasta el nivel de activación en el nódulo siguiente al potencial de acción. El transporte anterógrado ocurre a lo largo de microtúbulos que■ corren por el axón y requiere motores moleculares, dineína y ci- nesina. En las neuronas ocurren dos tipos de trastornos fisicoquímicos:■ potenciales locales no propagados (potenciales sinápticos, genera- dores o electrotónicos) y potenciales propagados (potenciales de acción). Como respuesta a un estímulo de propagación, los conductos de■ Na+ activados por voltaje se activan y cuando se alcanza el umbral del potencial, se produce un potencial de acción. El potencial de membrana se desplaza hacia el potencial de equilibrio para el Na+. Los conductos de Na+ cambian rápidamente a un estado cerrado Kandel ER, Schwartz JH, Jessell TM (editors): Principles of Neural Science,4th ed. McGraw-Hill, 2000. Nicholls JG, Martin AR, Wallace BG: From Neuron to Brain: A Cellular and Molecular Approach to the Function of the Nervous System, 4th ed. Sinauer Associates, 2001. Thuret S, Moon LDF, Gage FH: Therapeutic interventions after spinal cord injury. Nat Rev Neurosci 2006;7:628. Volterra A, Meldolesi J: Astrocytes, from brain glue to communication elements: The revolution continues. Nat Rev Neurosci 2005;6:626. Widmaier EP, Raff H, Strang KT: Vander’s Human Physiology. Mc- Graw-Hill, 2008. RECURSOS DEL CAPÍTULO Aidley DJ: The Physiology of Excitable Cells, 4th ed. Cambridge Univer- sity Press, 1998. Boron WF, Boulpaep EL: Medical Physiology, Elsevier, 2005. Bradbury EJ, McMahon SB: Spinal cord repair strategies: Why do they work? Nat Rev Neurosci 2006;7:644. Catterall WA: Structure and function of voltage-sensitive ion channels. Science 1988; 242:649. Hille B: Ionic Channels of Excitable Membranes, 3rd ed. Sinauer Asso- ciates, 2001.
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