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AGAR HEKTOEN Sustratos: Lactosa Sacarosa salicina Tiosulfato de sodio Agentes inhibidores: Sales biliares Indicadores: Azul de bromotimol Fucsina acida Citrato de hierro AGAR EMB Sustrato: Lactosa Sacarosa Agentes inhibidores: Azul de metileno Eosina indicadores: Azul de metileno Eosina AGAR MacConkey Sustrato: lactosa Agentes inhibidores: Sales biliares Cristal violeta Indicadores: Rojo neutro AGAR bismuto sulfito Sustrato: glucosa, tiosulfato de sodio Agentes inhibidores: Bismuto sulfito Verde brillante Indicadores: Sulfato de hierro AGAR S.S Sustrato: Lactosa Tiosulfato de sodio Agentes inhibidores: Verde brillante Sales biliares Indicadores: Rojo neutro Citrato ferrico AGAR XLD Sustrato: Lisina Xilosa Lactosa Sacarosa Tiosulfato de sodio Agentes inhibidores: Desoxicolato de sodio Sales biliares Indicadores: Citrato ferrico de amonio Rojo fenol Activación de la xilosa Descarboxilación de la lisina TSI Sustrato: Lactosa Sacarosa Glucosa Tiosulfato de sodio Indicadores: Rojo fenol Sales de hierro Enzimas: Glucosidasa Productos finales: Ácidos mixtos Medio empleado para la diferenciación de enterobacterias en base a la fermentación de la lactosa, sacarosa y glucosa También observar la producción de H2S y producción de gas Agar Simmons citrato Sustrato: Citrato de sodio Sales de amonio Indicadores: Azul de bromotimol Enzimas: citrato permeasa Productos finales: Carbonatos y Bicarbonatos alcalinos el metabolismo del citrato se realiza gracias a la enzima citrato permeasa a través del ciclo tricarboxilico El desdoblamiento de citrato genera oxalacetato y piruvato este ultimo en presencia de un medio alcalino da origen a ácidos orgánicos que al ser utilizados como fuentes de carbono produce carbonatos y bicarbonatos alcalinos Agar urea Sustrato: urea Indicadores: Rojo fenol Productos finales: Amonio CO2 Enzima: ureasa Caldo MR/vp Sustrato: glucosa Indicadores: Rojo de metilio Indicadores: Alfa naftol 5% Koh 40% Enzima: Glucosidasa Productos finales: ácidos mixtos Productos finales: Diacetilo Producto intermedio Acetil metil carbonil Sustrato: Lisina Glucosa Tiosulfato de sodio Agar lia Indicadores: Purpura de bromocresol Citrato de hierro y amonio Enzimas: Lisina desaminasa Lisina descarboxilasa Glusidasa Tiosulfato reductasa Productos finales Amina cadaverina y CO2 Alfacetoacidos K/A R/A K/K H2S K/K En lia pseudomonas se observa morado por que consume las peptonas sim Sustrato: Tripteina Tiosulfato de sodio Indicadores: Reactivo de kovas Sales de hierro enzimas: Triptofanasa Tiosulfato reductasa Productos finales: Amonio y acido pirúvico H2S Coprocultivo caldo selenito Sustrato: Lactosa Peptonas Inhibidores Selenito de sodio Fosfato de sodio Fundamento Medio de cultivo liquido selectivo, el enriquecimiento de muestras en donde se sospecha la presencia salmonella Permite la recuperación de cepas de shigella y no inhibe el crecimiento de pseudomonas y proteus caldo Tetrationato Reacción de yodo-iodorada con tiosulfato de sodio Carbonato de calcio: neutraliza y absorbe metabolitos tóxicos Sustrato Peptonas Inhibidores Sales biliares Tetrationato Se forma por la reacción del iodo- yodurada con el tiosulfato de sodio Peptonas proporcionan los nutrientes necesarios y el carbonato de calcio neutraliza y absorbe los metabolitos tóxicos Noboviocina inhibe el crecimiento de proteus rappaport caldo Sustrato Peptonas Inhibidores Altas concentraciones de sal de magnesio y sodio Verde de malaquita Medio de cultivo nutritivo que contiene un sistema buffer de fosfatos, alta concentración de sales de magnesio y sodio y la presencia del verde de malaquita El enriquecimiento selectivo se debe a la capacidad que tiene las cepas de salmonella de sobrevivir y replicarse en presiones osmóticas alta ph relativamente altos debido a que suprimen el efecto toxico del verde de malaquita por la alta concentración de cloruro de magnesio MacConkey con sorbitol Sustrato Sorbitol Inhibidores Sales biliares Cristal violeta Indicador Rojo neutro E.Coli: O 137 H7 Urocultivos AGAR CLED Sustrato: Extratacto de carne peptona de caseína Peptona de gelatina Lactosa Agentes inhibidores L-cistina Indicadores Andrade Azul de bromotimol Se basa en la fermentación de la lactosa y disminución del ph del medio con la producción de ácidos La peptona de caseína, la peptona de gelatina y el extracto de carne proporcionan los nutrientes Agar chromogenico Sustrato: Sustratos cromogenicos Productos finales Colonias marrones (proteus spp, morganella y providencia) actividad del triptófano desaminasa Colonias azul turquesa actividad enzima B-glucosidasa (enterobacterias) Colonias rosadas actividad enzima B-galactosidasa (E.coli) Colonias azul violeta Ambos sustratos cromogenicos escinde Violeta oscuro bacterias coliformes Vibrio Citrato positivo NaCl 0% V.cholerae NaCl 3% 6% todos crecen + 5 leucocitos en el campo INVASIVO - 5 leucocitos en el campo TOXIGENICO TSI Sustrato: Lactosa Sacarosa Glucosa Tiosulfato de sodio Indicadores: Rojo fenol Sales de hierro Enzimas: Glucosidasa Productos finales: Ácidos mixtos /A K/A V. Choleare ( sacarosa y glucosa ) V. Parahemolyticus (glucosa ) V. Vulnificus (glucosa y lactosa ) LIA Sustratos: Lisina Glucosa Tiosulfato de sodio Indicadores: Purpura de bromocresol Citrato de hierro y amonio Enzimas: Lisina desaminasa Lisina descarboxilasa Glusidasa Tiosulfato reductasa Productos finales Amina cadaverina y CO2 Alfacetoacidos K/K Todos son iguales: descarboxilan la lisina NO producen H2S NO producen GAS APA Recuperación de las cepas del microorganismo El cloruro de sodio mantiene el balance osmótico PH alcalino agar TCBS Sustrato: Sacarosa Tiosulfato de sodio Inhibidor: Bilis de buey Citrato de sodio Ph alcalino Indicador: Azul de bromotimol Azul de timol Citrato férrico Siembra directa a partir de APA Sacarosa = amarilla (V. cholerae) No fermenta = verde (V. parahemolyticus ) V. Choleare V. Choleare ( sacarosa y glucosa ) V. Parahemolyticus (glucosa ) V. Vulnificus (glucosa y lactosa ) KLIGLER agar Sustratos Lactosa Glucosa Tiosulfato de sodio Indicadores Rojo fenol Lactosa Glucosa Alcalino Acido A/A V. Choleare ( sacarosa y glucosa ) V. Parahemolyticus (glucosa ) V. Vulnificus (glucosa y lactosa ) K/A Fuente de iones de azufre Citrato de hierro Amonio Fuente de nutrientes Tripteina Motilidad Indol Ornitina agar Sustrato: Glucosa -- Tripteina Ornitina= putrescina y CO2 Indicador Purpura de bromocresol Reactivo de kovas Medio alcalino= purpura Medio acido = amarillo Indol positivo Fermentación de glucosa Movilidad positiva Ornitina positiva Alcalino ACIDO Ornitina positiva= choleare y parahemolyticus Ornitina variable= vulnificus Todos son móviles Todos son indol positivo Ornitina es el sustrato para la detección de la enzima ornitina descarboxilasa Hilo mucoide desoxicolato de sodio 0,5 % Las bacterias son lisadas por el desoxicolato quedando ADN liberado, presentándose un aspecto viscoso en la muestra y se formara una cuerda mucoide cuando se introduzca lentamente el asa Negativo: aeromonas Tripticasa de soya Sustrapto Tripteina Peptina de soya Cloruro de sodio balance osmótico La tripteina y la peptona de soya aportan nutrientes ricos en peptonas La peptona de soya es fuente de hidratos de carbonos que estimulan el crecimiento de diversos microorganismos El cloruro de sodio mantiene el balance osmótico Agar almidón Hidrolisis de almidón Sustrato Almidón (polímero de glucosa) Enzima Amilasa (exoenzima) Producto Final Glucosa Restos de maltosa Revelador Lugol El Lugol con el almidón forman un complejo color café-purpura que desaparece cuando el almidón ha sido degradado Fundamento:Capacidad que tiene el microorganismo de utilizar las enzimas amilolíticas para hidrolizar el almidón Y esta hidrolisis se revela con el Lugol Prueba de GELATINA Licuefacción de la gelatina Sustrato Gelatina (proteina) Enzimas Gelatinasa (proteasa, exoenzimas ) Producto aminoácidos Revelador No requiere Carbón activado en polvo Fundamento: Evidenciar la capacidad que tiene un microorganismo de producir enzimas proteolíticas como lo son las enzimas gelatinasas que hidrolizan la gelatina La gelatina es hidrolizada por la gelatinasa en sus aminoácidos constituidos, con perdida de sus características gelificantes Solidificación del medio Reducción de nitratos a nitritos Fundamento: Determinar la capacidad de un organismo de reducir el nitrato a nitritos o en su defecto a otros productos como el nitrógeno o oxido nitroso Atreves de la presencia de enzimas nitrato reductasa Caldo nitritos Sustrato: Nitrato de potasio Reveladores: Acido sulfanilico al 0.8% Dimetil-Alfa naftilamina al 0.5% Polvo de zinc La reacción de color se debe a la formación de un compuesto diazonio, p-sulfabenceno alfo naftilamina Desnitrificación Descarboxilación de la L-ornitina Fundamento: El aminocido L-ornitina es descarboxilado por la enzima ornitina desacaboxilasa para formar una diamina putrecina y CO2, lo que intensifica el color violeta del medio Negativo : Viraje del medio de purpura a amarillo Indicador purpura de bromocresol Sustrato: glucosa y ornitina Todos los vibrios son ornitina positivo Vulnificos variable Prueba de ADH Determinar la formación de amoniaco ya sea atreves de la hidrolisis o descarboxilación de la arginina indicado través del reactivo de Neesler que forma un complejo con el amoniaco Positivo: anaranjado oscuro Negativo: incoloro o ámbar Arginina negativo Determinación de la L-arginina Puede ser catabolizada por dos sistemas Hidrolizada Amoniaco Fosfato de adenina triFosfato de adenina Fosfato Fermentación inositol Vibrio inositol negativo Sustrato Inositol Inhibidor Litio Enzima Inositol fosfato fosfatasa PSEUDOMONAS Medio OF Microorganismos oxidativo: producen ácido solo en el tubo abierto, expuesto al O2 atmosférico. Por lo que solamente el tubo expuesto al aire atmosférico cambia su color original a amarillo. Atmosfera de aerobiosis Microorganismos fermentadores: producen ácido en los 2 tubos. O sea que los dos tubos viran del verde al amarillo. atmosfera de anaerobiosis Bacterias sacarolíticas: son inertes a este medio que conserva su pH alcalino después de la incubación, conservando su color original. Sustrato Glucosa Indicador Azul de bromotimol Fermentativo oxidativo Aceite de inmersión Alcaligenes Pseudomonas oxidativas Agar F (King B) Fundamento Es un medio de confirmación para la detección y diferenciación de Pseudomonas aeruginosa de otras Pseudomonas basadas en la producción de fluoresceína (pyoverdin) y la inhibición de la piocianina. El hidrogenofosfato de potasio es una fuente de fósforo, y el sulfato de magnesio proporciona cationes para activar la producción de fluoresceína y inhibir la producción de piocianina y piorrubina pigmento fluorescente amarillo-verde que puede oxidarse a amarillo. AGAR P (King A) La peptona de gelatina es baja en fósforo para reducir la acción inhibitoria sobre la producción de piocianina. El sulfato de potasio y el cloruro de magnesio proporcionan cationes para activar la producción de piocianina y mejorar la producción de pigmentos. El glicerol es una fuente de carbono. Glicerina favorece la producción de pigmentos pigmento verde azulado que se oxida a marrón Agar Cetrimida el cloruro de magnesio y el sulfato de potasio promueven la formación de piocianina, pioverdina, piomelanina y fluorescencia de P-aerusinogena La cetrimida es un detergente catiónico que actúa como agente inhibidor libera nitrógeno y el fósforo de las células de casi toda la flora acompañante Medio utilizado para el aislamiento e identificación de Pseudomonas aeruginosas y de otras especies del genero Pigmentos y olor de pseudomonas Piocianina pigmento azul Pioverdina pigemento verde Piorrubina pigemento marron Piomelanina pigmento negro Produce un olor a uvas o nixtamal, por la producción de trimetilaminas. En lia pseudomonas se observa morado por que consume las peptonas Oxidasa Mycobacterium Tinciones técnica de Kinyoun se utiliza un agente tenso activo (alta concentración de fenol en la carbol fucsina) que aumenta la permeabilidad del colorante a través de la capa cérea. Esta alta concentración de fenol permite disolver el material lipídico de la pared celular de la micobacteria, lo cual ocasiona la penetración de la carbolfuscina sin la necesidad de calor. fluorocromo Auramina utiliza auramina, tiene la capacidad de unirse a los lípidos de la pared de la micobacteria. Las bacterias ácido resistentes teñidas con fluorocromos son coloreadas de color amarillo brillante (si se utiliza auramina) o naranja-rojo (utilizando rodamina). La coloración de contraste utilizada en esta tinción es el permanganato de potasio, el cual produce un fondo negro de contraste. Ziehl neelsen Fosfato trisódico 10% PROCEDIMIENTO Adicionar a la totalidad de la muestra = cantidad de FTS 10% Agitar vigorosamente Dejar en reposo 2 horas Centrifugar a 3500 RPM x 30 minutos Descartar sobrenadante Procesar el sedimento por método del escobillón de kudoh 1. Descontaminación de la muestra Escobillón de kudoh (NaOH 2% o 4%) PROCEDIMIENTO Impregnar con la muestra la totalidad del algodón de un escobillón estéril Introducir el escobillón en 3ml de NaOH al 4% durante 2 minutos Sembrar en medio OK y STG N-acetil-L-cistina= homogenizar Tacquet y tison (NaOH y laurilsulfato de sodio) Combinación de la homogeneización y descontaminación Reactivos: Solución de lauril sulfato de sodio Hidróxido sódico Sustratos: Huevos enteros coagulados sales definidas Glicerol fécula de papa Inhibidor Verde de malaquita Lowenstein-Jensen Fotocromogenos= producen pigmento en la luz, pero no en la oscuridad Escotocromogenos= generan pigmento cuando ploriferan en la oscuridad No fotocromogenos= no tienen pigmento y las colonias tienen un color claro o de piel Ogawa Kudoh agar OK Medio para el aislamiento y cultivo de microorganismos del género Mycobacterium está constituido por un conjunto de sales tales como Citrato deMagnesio Sulfato de Magnesio Glutamato de Sodio Fosfato disódico Fosfato monopotásícoanhidro además incorpora glicerol verde demalaquita homogenizado de huevo estámezcla debe tener un pH de 6.4 ACUMULACION DE NIACINA Todas las micobacterias no tienen la capacidad de acumular la niacna, sin embargo M. tuberculosis, M. simiae y ocasionalmente cepas de M. africanum, M. bovis, M. marinum y M. chelonae si tienen las enzimas para convertir la niacina a ribonucleotido de niacina. los tubos de ensayo contienen una tira de papel filtro impregnado con bromuro de cianógeno. Se extraen las colonias provenientes del medio sólido mezcladas con un poco de solución salina y se colocan en el fondo del tubo de vidrio. Mycobacterium tuberculosis positiva Urea positiva Reducción de nitratos a nitritos Fundamento: Determinar la capacidad de un organismo de reducir el nitrato a nitritos o en su defecto a otros productos como el nitrógeno o oxido nitroso Atreves de la presencia de enzimas nitrato reductasa Caldo nitritos Sustrato: Nitrato de potasio Reveladores: Acido sulfanilico al 0.8% Dimetil-Alfa naftilamina al 0.5% Polvo de zinc La reacción de color se debe a la formación de un compuesto diazonio, p-sulfabenceno alfo naftilamina Desnitrificación Mycobacterium positivo PRUEBA DE LA ENZIMA ARISULFATASA las micobacterias de crecimiento rápido, son positivas a esta prueba. La arilsulfatasa es una enzima que cliva fenolftaleína libre a partirde la sal tripótasica del disulfito de fenolftaleína. La prueba es realizada, agregando disulfato de fenolftaleína tripotásica a un tubo que contiene sustrato de fenolftaleína en agar ácido oleico (Wayne). En 3 o 14 días de incubación, la lectura de la prueba puede realizarse al observar una coloración rojo a rosa después de la adición de carbonato de sodio, lo cual indica la prueba positiva. La prueba es negativa cuando no hay cambio de color después de la adición de carbonato de sodio. Mycobacterium tuberculosis es negativa a esta prueba. Brucella Brucella Muestras DX de laboratorio Cultivo Métodos directos Métodos directos Dx serológico Métodos indirectos Reacción de Huddleson Estudiar la presencia de Ag de Brucella en distintos tejidos Dx de laboratorio titulación de AC
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