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MANUAL DE PRACTICAS PARA GRAL-1

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1 
UNIVERSIDAD VERACRUZANA 
 
 
FACULTAD DE BIOANÁLISIS 
 
 
“Manual de Prácticas de Parasitología 
General” 
 
 M.A.S.S Claudia Arronte 
 Dr. Omar Lagunes Merino 
 Q.C. Francisco Solís Páez 
 M.A.C. Ricardo Vázquez Ballona 
 
 Xalapa, Ver. 2019 
 
2 
 
 
 
MANUAL DE PRÁCTICAS DE 
PARASITOLOGÍA GENERAL 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
3 
CONTENIDO pág. 
Introducción……………………………………………………………………………………...4 
Objetivo general…………………………………………………………………………...…....5 
Objetivos específicos…………………………………………………………………………..5 
Reglamento de laboratorio…………………………………………………………………….6 
 Capítulo I 
Recolección, manejo y conservación de muestras biológicas……………..………….8 
Practica 1 Microscopia y medición de parásitos………………………………………….9 
 Capitulo II principales clases de protozoarios ……………………..…………….....14 
Practica 2 Sarcodina …………………………………………………………………………...16 
Practica 3 Mastigophora ……………………………………………….………….…….…..21 
Practica 4 Ciliata ……………………………………………………………………………....25 
Practica 5 Esporozoa ………………………………………….……………………………..28 
 Capitulo III Principales clases de Helmintos…………………………………………31 
Practica 6 Nematodos parte 1 características morfológicas del verme adulto……………33 
Practica 7 Nematodos parte 2 características morfológicas del estadio infectante………36 
Practica 8 Tremátodos parte 1 características del verme adulto…………………………...38 
Practica 9 Tremátodos parte 2 características morfológicas del estadio infectante……...40 
Practica 10 Cestodo parte 1 características morfológicas del verme adulto………………43 
Practica 11 Cestodos parte 2 características de estadios larvarios extraintestinales……45 
Practica 12 Cestodos parte 3 características morfológicas del estadio infectante. ……...47 
 Capitulo IV Artrópodos………………….………………………………………..49 
Practica 13 Generalidades ………………………………………………………….…..…..51 
Practica 14 Tinción y conservación de laminillas …………………………………………….53 
Anexos 
Anexo 1 Preparación de reactivos………………………………………………..………..61 
Anexo 2 Glosario ……………………………………………………………………………...67 
Anexo 3 Clasificación ………………………………………………………………………...69 
Fuentes de consulta……………………………………………………………………...…..70 
 
4 
 
INTRODUCCION 
 
La parasitología es la disciplina que se encarga de estudiar el parasitismo producido 
por protozoarios, helmintos y artrópodos. Se define como parasito a todo ser vivo, 
vegetal o animal, que pasa toda o parte de su existencia a expensas de otro ser 
vivo, generalmente más potente que el (hospedero), del cual vive causándole o no 
daño, que puede ser aparente o inaparente, y con quien tiene una dependencia 
obligada y unilateral. 
 El parasitismo es la forma de vida más extendida en el mundo, se da entre un 
organismo llamado parasito y otro denominado hospedero, la asociación implica un 
intercambio de moléculas y es imprescindibles solo para el parásito, que causa un 
daño al hospedador. 
Este tipo de enfermedades parasitarias representan una de las principales causas 
de enfermedad, ya que se presenta a cualquier edad, aunque con mayor frecuencia 
en niños, y principalmente está determinado por condiciones sociales y económicas. 
La Organización Mundial de la Salud (OMS) estableció que, dado a que las 
parasitosis son patologías con alto componente social, estas podrían ser tratadas, 
pero difícilmente eliminadas. Ya que las principales medidas de prevención están 
vinculadas a la modificación de los hábitos, la educación y el bienestar de la 
población. 
El diagnóstico de los parásitos se fundamenta principalmente en la observación y el 
reconocimiento de sus características morfológicas, macroscópicas y 
microscópicas, de muestras de pacientes con ciertas sintomatologías asociadas a 
los parásitos. Es necesario contar con muestras biológicas de calidad analítica y 
realizar un manejo adecuado de la muestra previo al análisis. 
 
El presente Manual de Parasitología General ha sido rediseñado con base al 
existente, con la finalidad de funcionar como guía de trabajo en la experiencia 
educativa de Parasitología General, la cual se encuentra curricularmente 
establecida en la retícula del estudiante de la licenciatura de química clínica. 
 
Debido a la implementación del Nuevo Modelo Educativo en la Facultad de 
Bioanalisis, generó la reestructuración en un sistema de créditos, con Experiencias 
Educativas en 4 áreas de formación, un gran porcentaje de estas Experiencias 
Educativas incluyen horas paralelas donde los alumnos llevan a cabo prácticas que 
fortalecen sus conocimientos, habilidades y actitudes, para lo cual es necesario 
contar con manuales que guíen las actividades de los alumnos dentro de los 
laboratorios. 
 
 
 
5 
 
Mediante el estudio de la experiencia educativa de Parasitología general, se 
desprende la unidad de competencia: el estudiante identifica los principales 
organismos que afectan al humano y a animales domésticos a través del estudio de 
la morfología procedente de muestras biológicas con la finalidad de contribuir en el 
diagnóstico de las enfermedades parasitarias; con una actitud de conciencia social 
y respeto a la integridad del individuo. 
 
El manual está organizado por 14 prácticas de laboratorio que comprenden los 
saberes teóricos propuestos en el Programa de la Experiencia Educativa de 
Parasitología General a saber: manejo, recolección y conservación de muestras, 
microscopia, identificación de protozoos, identificación de helmintos, tinción y 
conservación de laminillas. 
 
Cada una de las prácticas está conformada por los siguientes puntos: 
 
• Número y Nombre de la práctica 
• Micro unidad de competencia 
• Introducción 
• Marco teórico 
• Material 
• Procedimiento 
• Reporte 
• Autoevaluación 
• Fuentes de consulta 
Además, cuenta con un glosario de terminologías usadas en este documento y un 
cd con imágenes de los principales parásitos que causan daño a los seres humanos 
OBJETIVO GENERAL 
Rediseñar y actualizar el manual de laboratorio de la Experiencia Educativa de 
Parasitología General, el cual será de apoyo contextualizando los saberes teóricos 
y de las prácticas. 
OBJETIVOS ESPECIFICOS 
• Contar con una guía actualizada para que los alumnos cuenten con 
información reciente y apegada al plan de estudios de la experiencia 
educativa. 
• Que este documento contenga información clara y precisa para alumnos y 
académicos que tengan acceso a ella. 
 
 
6 
REGLAMENTO DE LOS LABORATORIOS 
El presente Reglamento es aplicable a todos los laboratorios del departamento de 
laboratorios de la Unidad de Ciencias de la Salud, zona Xalapa de la Universidad 
Veracruzana. Su observancia es obligatoria para el personal académico, alumnos, 
personal manual y administrativo. No excluye otro reglamento que resulte aplicable. 
DISPOSICIONES GENERALES 
1.- El responsable de cada práctica es el maestro. 
2.- No se permite a los alumnos trabajar en los laboratorios sin la presencia del 
maestro. 
3.- El equipo de protección personal dentro de los laboratorios y en los anexos de 
los laboratorios será: 
ALUMNOS: 
▪ Bata de algodón 100 %, de manga larga 
▪ Lentes de seguridad durante todo el tiempo que dure la práctica. En caso de 
lentes graduados, que sean de cristal duro inastillable y uso de protectores 
laterales. 
▪ El pelo recogido en las prácticas que se utilice mechero 
▪ Guantes en caso de que la práctica lo exija, a criterio del maestro. 
▪ Toalla o lienzo de algodón. 
Profesor: 
▪ Bata de algodón 100 %, de manga larga 
▪ Lentes de seguridad durante todo el tiempo que dure la práctica. En caso de 
lentes graduados, que sean de cristal duro inastillable y uso de protectores 
laterales. 
▪ El pelo recogido en las prácticas que se utilice mechero 
LOS SERVICIOS 
4.- El departamento de laboratorios de la unidad de ciencias de la salud prestara los 
serviciosa usuarios de conformidad a las siguientes normas: 
Los C.C. catedráticos deberán: 
▪ Respetar sus horarios de entrada y salida. 
▪ Permanecer dentro del laboratorio mientras haya alumnos trabajando. 
▪ Solicitar con anticipación su material de trabajo, por escrito en las hojas 
especiales que para ello existen, con un mínimo tiempo de 48 hrs. hábiles. 
Las hojas de pedido se les proporcionaran en los laboratorios. 
▪ Enseñar oportunamente a los alumnos el manejo y cuidado del material, 
reactivos y equipo que utilicen en la práctica. 
▪ Informar a los alumnos sobre el manejo de residuos peligrosos biológico 
infecciosos. 
 
 
7 
 
 
Dentro de los laboratorios alumnos, profesores, personal técnico y manual deben 
usar: 
• Portar bata blanca de manga larga y zapatos cerrados. En caso de que 
las condiciones de la práctica lo requieran, deberá también portar 
guantes, lentes de protección y/o cubre bocas. 
 
• Quedará estrictamente prohibido introducir alimentos al laboratorio. 
 
• Mantener el orden y la postura correcta durante toda la práctica 
 
• Es obligación del alumno y usuarios de los Laboratorios, limpiar su área 
de trabajo, colocar los materiales de toma de muestras en los depósitos 
adecuados y tratar los desechos de residuos biológicos infecciosos y 
químicos de acuerdo con las indicaciones dadas por el maestro en 
corresponsabilidad con los técnicos académicos asignados a cada 
laboratorio. 
 
• El alumno queda obligado a cuidar los reactivos, el equipo y el material 
del que haga uso durante la práctica. 
 
• Queda estrictamente prohibido el uso de teléfonos celulares, y 
reproductores de audio y/o video. 
 
• Queda prohibido dejar en las mesas de trabajo objetos innecesarios para 
la práctica (mochilas, bolsas, laptops, etc.) 
 
• Todo residuo peligroso y no peligroso deberá eliminarse en el lugar 
indicado de acuerdo a la tabla de RPBI. (anexo) 
 
• No mover, sustraer, manipular o hacer uso indebido del equipo sin 
autorización. 
 
 
 
 
 
 
 
8 
RECOLECCIÓN, MANEJO Y CONSERVACIÓN DE MUESTRAS BIOLÓGICAS 
 
GENERALIDADES 
En la correcta recolección, manejo y conservación de muestras biológicas es donde 
radica el éxito o fracaso a diagnósticos confiables de enfermedades parasitarias. 
Para ello es de gran importancia seguir ciertos lineamientos establecidos para el 
manejo de estas muestras biológicas. 
La confiabilidad de los resultados depende del cuidado que se tenga al momento de 
recolectar la muestra. Por ello se debe tomar en cuenta las siguientes precauciones: 
1. Rotular muy bien cada una de las muestras con el nombre del paciente, edad, 
sexo y fecha de la recolección de la misma. 
2. Recolección en cantidad suficiente, para evitar que la muestra se reseque 
con demasiada rapidez. 
3. Uso de un recipiente adecuado para su recolección, estos pueden ser limpio 
o estériles de boca ancha para facilitar su recolección. 
4. Examen de las heces cuando aún están frescas, estas se deben de examinar 
menos de una hora después de su recolección. 
RECOLECCION 
Hay muchas formas de recolectar la muestra, pero la más frecuente es por medio 
de la expulsión natural y método de raspado con una cucharilla rectal esta última 
solo es usada en niño. 
MANEJO 
Se deben de utilizar frascos limpios de boca ancha, evitar la contaminación de la 
muestra con orina o agua durante su recolección ya que esto propicia que las 
muestras sean rechazadas. 
CONSERVACION 
Los frascos se guardarán en lugares frescos, pues el calor acelera los fenómenos 
de fermentación y con frío se pueden destruir los quistes y trofozoítos de protozoos 
(Goldman y Johnson, 1950; Chang, 1955). Otra forma de conservar muestras de 
materia fecal es usando químicos esto para conservar más tiempo la muestra y sin 
correr el riesgo de que las lavar o huevos presentes en las muestras se destruyan. 
CONSERVADORES Y PRESERVADORES 
▪ Solución de formalina* al 10 %. 
▪ Solución de formalina al 5%. 
▪ Solución de merthiolate-yodo-formaldehído (MIF). 
▪ Fijador de fenol alcohol y formol (PAF) 
 
 
9 
PRÁCTICA # 1 
MICROSCOPÍA Y MEDICIÓN DE PARÁSITOS 
 
Microunidad de competencia: 
El estudiante identifica las diversas especies parasitarias a través de la morfología 
microscópica y macroscópica mediante la recolección, observación y conservación 
de muestras biológicas de manera apropiada en equipos colaborativos. 
INTRODUCCION: 
La capacidad del ojo humano es limitada a la hora de estudiar lo pequeño, es por 
ello que la microscopia es la técnica de producir imágenes visibles de estructuras o 
detalles pequeños para ser percibidos a simple vista, pero para que esto se logre 
se debe de tener en cuenta estos tres elementos: 
▪ El objeto a estudiar. 
▪ Una fuente de iluminación. 
▪ Un sistema óptico. 
Cuando se pretende estudiar alguna célula, órgano o tejido, se deben de definir los 
aspectos (morfológicos, bioquímicos, fisiológicos, entre otros) que se desean 
observar, con base a esto se define o elige la técnica de microscopia a seguir junto 
con la ayuda de instrumentos de medición. 
MARCO TEORICO 
La microscopia es el conjunto de técnicas y métodos destinados a ser visibles los 
objetos de estudio que por su pequeñez están fuera del rango de resolución del ojo 
normal, el microscopio es el elemento central de la microscopia. 
Unos de los tipos de microscopia son: 
• Microscopia de campo oscuro 
Es una técnica de iluminación especial que se caracteriza en la iluminación oblicua 
para realzar el contraste en las muestras que no son reflejadas bien bajo 
condiciones normales de la iluminación del campo claro, observándose partículas 
que aparecen como puntos brillantes sobre un fondo negro. 
 
 
 
10 
 
• Microscopia de contraste de fases 
se usa principalmente para aumentar el contraste entre las partes claras y oscuras 
de las células sin colorear. Es ideal para especímenes delgados, o células aisladas. 
El tipo de iluminación que emplea provoca variaciones en cómo refractan la luz 
algunos especímenes “invisibles”, haciéndolos visibles, la microscopia de contraste 
de fases hace posible observar células en estado vivo más fácilmente, ayudando 
así a evitar la creación de condiciones artificiales tales como las introducidas por la 
tinción. 
 
• Microscopia de fluorescencia 
Utiliza dispositivos especiales que permiten aprovechar este fenómeno para 
visualizar estructuras que con otro tipo de microscopio no se puede realizar. 
 
• Micrómetro ocular 
consiste en una placa circular de vidrio que se coloca entre las dos lentes del ocular 
de Huygens, en el diafragma, que es donde se forma la imagen producida por el 
objetivo y donde está el foco del ocular. Posee una escala numerada, en este caso 
del 0 al 10 con 10 divisiones entra cada número. 
 
 
 
 
 
11 
• Micrómetro objetivo 
tiene forma de portaobjetos, presenta un círculo central con 100 divisiones 
equidistantes, cada una con un valor de 0,01 mm. Se enfoca como una preparación 
ordinaria. 
 
 
 
Material 
▪ micrómetro ocular 
▪ cámara de Neubauer 
 
PROCEDIMIENTO 
Instructivo para la calibración del microscopio con el micrómetro ocular: 
 
a) Descripción de la escala de la cámara de Neubauer: 
 
En la cámara de Neubauer hay cuatro secciones marcadas con una L, donde se 
cuentan los leucocitos y una zona central donde recuentan los eritrocitos. En la 
figura 1 se señala el tamaño de los diferentes cuadros. El cuadro central de la 
cámara es la zona de cuenta de eritrocitos, en esta cuadricula mide 1mm (1000 
micras como lo indica la figura 1) 
 Figura 1. 
La cuadricula para cuenta de eritrocitos está dividida en 5 x 5 cuadros y cada una 
mide 0.2 mm ó 200 micras. A su vez cada cuadro está dividido en 4 x 4 cuadros y 
cada uno mide 0.05 mm ó 50 micras; a partir de ellos se obtienen los coeficientes 
micrométricos (C.M). 
 
12 
b) Descripción de la escala del micrómetro ocular 
La escala del micrómetro ocular tiene 10 divisionesgrandes del mismo tamaño, de 
las cuales de la segunda a la sexta presentan 5 subdivisiones iguales. 
 
Para medir una estructura, esta se hará coincidir dentro de la escala, contabilizando 
las divisiones grandes como cinco y las pequeñas como uno. 
 
 
 Mide 100 micrómetros 
 
 
 
 
 
 
 
c) Determinación de los coeficientes micrométricos 
 Se deben establecer los coeficientes micrométricos de cada objetivo (10X, 40X, y 
100X). 
Colocar el micrómetro ocular en el orificio izquierdo del microscopio, la cámara de 
Neubauer en la platina, enfocar con el objetivo de 10X y centrar en el campo la 
cuadrícula de eritrocitos. 
Hacer coincidir la escala del micrómetro ocular en la línea media de la cuadricula 
para hacer cuenta de eritrocitos. 
Buscar donde una de las divisiones de la escala del micrómetro coincida con el 
borde de un cuadro de la cámara de Neubauer y establecer los coeficientes 
micrométricos (C.M) 
 
 
 
 
d) Medición de estructuras microscópicas 
Para determinar el tamaño de una estructura microscópica se deberá hacer coincidir 
la estructura, en la escala del micrómetro ocular, moviendo la platina. 
http://images.google.com.mx/imgres?imgurl=http://www.ilustrados.com/publicaciones/multimedia/hu-cre60.gif&imgrefurl=http://www.ilustrados.com/publicaciones/EpZyVkluZEstBSbYoH.php&usg=__OORcqp9528Pn5ZG1SLlzJwpyJ4o=&h=236&w=313&sz=4&hl=es&start=20&um=1&tbnid=hV_4QBnxcHYVmM:&tbnh=88&tbnw=117&prev=/images?q%3Dcamara%2Bde%2Bneubauer%26hl%3Des%26sa%3DN%26um%3D1
 
13 
 
Una vez que coincida el borde izquierdo de la estructura con una línea, establecer 
el número de subdivisiones que abarca, contabilizando como 5 las que no tienen 
subdivisiones y como uno cada uno de las mismas. 
 
Calcular la medida de la estructura, en micrómetros, multiplicando el número de 
subdivisiones por el coeficiente micrométrico del objetivo correspondiente. 
 
REPORTE 
NOMBRE__________________________________________________ 
Realiza las siguientes actividades 
• Realiza los cálculos de medición de cada una de las estructuras 
observadas. 
• Elabora un esquema a escala de cada una de las estructuras observadas. 
• Además, realiza la descripción de cada una de estas estructuras. 
OBSERVACIONES 
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________ 
AUTOEVALUACION 
• Investiga en bibliografía actualizada las características de medición de otras 
estructuras de los parásitos 
• Elabora un cuadro comparativo de medidas morfológicas entre diferentes 
quistes y huevos de parásitos y dibújalas a escala 1:05 
Fuentes de consulta 
• http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/parasitologia/trematodos/
generalidades.php 
• http://image.slidesharecdn.com/biologa-general-2008-sesin-03-estudio-de-
la-biologa-1205964562432550-4/95/biologa-general-2008-sesin-03-estudio-
de-la-biologa-22-728.jpg%3Fcb%3D1205939363 
• https://es.slideshare.net/yoleida7/partes-del-microscopio-presentation-
647414 
 
 
 
http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/parasitologia/trematodos/generalidades.php
http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/parasitologia/trematodos/generalidades.php
http://image.slidesharecdn.com/biologa-general-2008-sesin-03-estudio-de-la-biologa-1205964562432550-4/95/biologa-general-2008-sesin-03-estudio-de-la-biologa-22-728.jpg%3Fcb%3D1205939363
http://image.slidesharecdn.com/biologa-general-2008-sesin-03-estudio-de-la-biologa-1205964562432550-4/95/biologa-general-2008-sesin-03-estudio-de-la-biologa-22-728.jpg%3Fcb%3D1205939363
http://image.slidesharecdn.com/biologa-general-2008-sesin-03-estudio-de-la-biologa-1205964562432550-4/95/biologa-general-2008-sesin-03-estudio-de-la-biologa-22-728.jpg%3Fcb%3D1205939363
https://es.slideshare.net/yoleida7/partes-del-microscopio-presentation-647414
https://es.slideshare.net/yoleida7/partes-del-microscopio-presentation-647414
 
14 
Capitulo II Principales clases de protozoarios 
 
Los protozoarios forman un amplio conjunto de microorganismos constituidos por 
una sola unidad estructural semejante a una célula, a los cuales los zoólogos sitúan 
dentro del subreino o Phylum Protozoa, por razones de conveniencia, todos estos 
organismos se llaman “unicelulares”, aunque muchos Protozoologos prefieren 
considerarlos como “acelulares”, debido a la unidad de que están formados los 
protozoarios realizan todas las funciones esenciales para la vida. 
Manwell (1961) señala que “los protozoarios compiten con cualquiera en el reino 
animal de manera única. Si pudieran ser aumentados al tamaño de los vertebrados 
con los que estamos familiarizados, algunos infundirían verdadero terror”. 
La unidad simple de que están formados la mayoría de los protozoarios varía mucho 
en dimensiones y forma, lo que depende principalmente del grupo de 
microorganismo a que pertenecen, si bien es cierto que entre los protozoarios 
existen diferencias notables en dimensiones y formas, tienen ciertas estructuras 
fundamentales (organelos) comunes a todo el grupo. La más importante es el núcleo 
relativamente viscoso, que contiene los cromosomas esenciales para la vida, 
reproducción y transmisión de los caracteres genéticos del organismo. 
El Phylum o rama Protozoa se divide en varias clases, cuatro de los cuales incluyen 
parásitos del hombre. En el cuadro 1.1, que se explica por sí solo, se anotan las 
características más sobresalientes de estas cuatro clases. En el cuadro 2.2 se 
presenta la clasificación de los géneros de interés médico. 
 
Cuadro 1.1 características diferenciales entre las clases de protozoarios parásitos 
del hombre. 
Clase Mastigophora Sarcodina Sporozoa Ciliata 
organelos de 
locomoción 
Flagelos Seudópodos Ausente Cilios 
Núcleo Único, 
compacto 
Único, 
vesicular 
Único, o 
simple 
Micro y macro 
núcleo 
Reproducción División 
binaria 
División 
binaria 
Esquizogonia 
Esquizogonia 
sexuada 
División 
binaria 
conjugación 
Forma de 
resistencia 
A veces quiste Quiste Ooquistes Quiste 
Especies 
parasitarias 
Algunas Algunas Todas Muy pocas 
 
 
 
15 
Cuadro 1.2 Principales clases y géneros de protozoarios de importancia médica 
para el hombre. 
Clase Genero 
 
 
Mastigophora 
• Tripanosoma 
• Leishmania 
• Trichomonas 
• Giardia 
 
 
Sarcodina 
• Entamoeba 
• Endolimax 
• Iodomoeba 
• Dientamoeba 
 
Sporozoa 
• Isospora 
• Toxoplasma 
• Plasmodium 
• Sarcocystis 
 
Ciliata 
• Balantidium 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
16 
PRÁCTICA #2 
Sarcodina 
 
MICROUNIDAD DE COMPETENCIA: 
El estudiante identifica taxonómicamente los parásitos del Phylum Sarcodina a 
través de sus características morfológicas utilizando técnicas CPS directo por medio 
de la observación al microscopio con responsabilidad 
MARCO TEÓRICO 
Subphylum Sarcodina; Schmarda,1871. Seudópodos o material protoplásmico 
locomotor sin seudópodos bien definidos; los flagelos, cuando existen, suelen 
limitarse a los estadios evolutivos o a otras fases temporales. Este subphylum se 
caracteriza por incluir microorganismos de una sola célula, a la cual se le observa 
fácilmente el citoplasma dividido en dos partes, una externa hialina denominada 
ectoplasma, cuyas prolongaciones forman los seudópodos que permiten el 
desplazamiento de la amiba. Se reproducen asexualmente por fisión binaria 
transversa y durante su ciclo de vida (ciclo biológico) pasan por los estadios de 
quiste y trofozoíto. 
Trofozoíto: es el estadio trófico, realiza todas las funciones celulares, y produce el 
daño al hospedero, por tanto, es el estadio clínicamente importante, este estadio 
suele presentar un tamaño de entre 10 y 60 µm, en fresco presenta movilidad 
progresiva, el núcleo mide de 3-5 µm de diámetro (no se aprecia sin teñir),la 
cromatina perinuclear está constituida por finos gránulos, el citoplasma presenta un 
aspecto granular. 
 
 
 
 
17 
 
Quiste: es el estadio epidemiológicamente importante, porque es la forma 
infectante del parásito y la encargada de diseminar la infección, cuando los 
trofozoítos van a transformarse en quistes expulsan todo el material ingerido y se 
redondean, estas formas prequistica se reconocen por la presencia de un único 
núcleo redondeado, los quistes tienen pared lisa y uniforme, son esféricos, 
subesfericos o alargados. 
 
 
 
 
Dentro del subphylum Sarcodina se encuentran tres géneros de importancia 
médica, dicha clasificación se hace con base en la morfología del núcleo. 
1- Género Entamoeba 
Poseen un núcleo más o menos esférico con membrana nuclear clara, definida, 
revestida con gránulos de cromatina y un cariosoma pequeño situado en el centro 
o cerca del mismo, del cual se desprenden unas fibrillas acromáticas (no se tiñen), 
que lo unen a la membrana nuclear. 
 A este género pertenecen cinco especies: 
a-Entamoeba histolytica 
b-Entamoeba dispar 
c-Entamoeba coli 
d-Entamoeba hartmani 
 
 
 
 
 
 
http://medicina.udea.edu.co/parasitologia/Sarcodina.html#hd
http://medicina.udea.edu.co/parasitologia/Sarcodina.html#hd
http://medicina.udea.edu.co/parasitologia/Sarcodina.html#hd
http://medicina.udea.edu.co/parasitologia/Sarcodina.html#coli
http://medicina.udea.edu.co/parasitologia/Sarcodina.html#hartmani
 
18 
2- Género Endolimax 
Tiene un núcleo diminuto, esférico o casi esférico, con un cariosoma evidente e 
irregular y de situación central o excéntrico, del cual se desprenden unas fibrillas 
acromáticas que lo unen a la membrana nuclear. La especie que parasita al hombre 
es la Endolimax nana 
 
 Quiste trofozoíto 
3- Género Iodomoeba 
Posee un núcleo esférico o casi esférico, con un cariosoma grande rico en 
cromatina, de posición central o ligeramente excéntrico, envuelto por una masa de 
glóbulos acromáticos, de los cuales se desprende una red bastante tupida de 
fibrillas acromática que se extienden hasta la membrana nuclear. 
 
 Quiste trofozoíto 
 
MATERIAL: 
• Portaobjetos 
• Cubreobjetos 
• Pipetas Pasteur 
• Microscopio compuesto 
• Aplicadores de madera o palillos. 
• La muestra utilizada es tan pequeña, que es poco representativa 
 
http://medicina.udea.edu.co/parasitologia/Sarcodina.html#endolimax
http://medicina.udea.edu.co/parasitologia/Sarcodina.html#iodamoeba
 
19 
 
REACTIVOS: 
• Sol. Salina fisiológica 
• agua destilada 
• yodo cristaloide 
• yoduro de potasio 
 
PROCEDIMIENTO 
 
1. En un portaobjeto se colocan, separadamente, una gota de solución salina y 
otra de lugol. 
2. Con el aplicador de madera, se toma una muestra de 1 a 4 mg de heces y se 
mezcla con la solución salina. 
3. Con el mismo aplicador se retiran las fibras y otros fragmentos gruesos. 
4. Se coloca el cubreobjetos. 
Se efectúa la misma operación en la gota del lugol y se observa 
REPORTE 
Nombre:__________________________________________________________ 
OBSERVACIONES 
 
 
 
 
 
RESULTADOS 
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
____________________________ 
 
 
20 
 
CONCLUSIONES 
 
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
_____________________ 
 
 
 
AUTOEVALUACIÓN 
• Realiza un cuadro comparativo, describiendo las diferencias entre un 
trofozoíto y un quiste. 
• Realizar un dibujo a escala de lo observado al microscopio. 
REFERENCIAS 
• http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/pdf/Amebas%20intestinal
es%20no%20patogenas_2011.pdf. 
• http://www.fcnym.unlp.edu.ar/catedras/parasitologia_general/pdf/Tp2.pdf. 
• http://ocw.usal.es/ciencias-biosanitarias/Parasitologia%20%28Farmacia%29 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/pdf/Amebas%20intestinales%20no%20patogenas_2011.pdf
http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/pdf/Amebas%20intestinales%20no%20patogenas_2011.pdf
http://www.fcnym.unlp.edu.ar/catedras/parasitologia_general/pdf/Tp2.pdf
http://ocw.usal.es/ciencias-biosanitarias/Parasitologia%20%28Farmacia%29
 
21 
Practica # 3 
Mastigophora 
 
Microunidad de competencia 
El estudiante identifica taxonómicamente los parásitos del Phylum Mastigophora, a 
través de sus características morfológicas con ayuda del microscopio con 
responsabilidad y en trabajo colaborativo. 
MARCO TEORICO 
Phylum Mastigophora; Diesing, 1866. Trofozoítos que poseen típicamente uno o 
más flagelos; reproducción asexual básicamente por fisión binaria longitudinal, 
poseen organelos separadas por membrana y citoesqueleto. 
Los flagelados que parasitan al hombre pertenecen a la 
clase Zoomastigophorea, grupo en el que se encuentran los flagelados que no 
tienen cloroplastos. Dentro de esta clase hay cuatro órdenes de importancia médica. 
Presenta cuatro formas distintas de involución: amastigota, promastigota, 
epimastigota y tripomastigota. 
• Amastigota: esférico u ovalado, es la forma reproductiva en el interior de las 
células mamíferas (principalmente en células musculares y nerviosas). 
• Promastigote: con el flagelo anterior al núcleo, libre del cuerpo de la célula. 
• Epimastigota: alargado y con el Cinetoplasto localizado anteriormente al 
núcleo, es la forma reproductiva en el tracto digestivo de los invertebrados y en 
medio de cultivos. 
• Tripomastigota: también alargado, pero con el Cinetoplasto localizado 
posteriormente al núcleo. Se encuentra en la sangre de los mamíferos y es la 
forma infectante de ellos. Esta forma no se divide. 
 
 
 
22 
a) b) c) 
 
1. Tripanosoma 
Las especies de este género presentan las fases de Amastigote, Promastigote, 
Epimastigote y Tripomastigote durante su ciclo vital. (ejemplo Trypanosoma cruzi) y 
tiene típicamente huéspedes vertebrados e invertebrados. Tripanosoma cruzi utiliza 
como transmisor biológico a chinches pertenecientes a la familia Triatomidae. 
 
2. Leishmania 
Este género fue establecido por Ross, en 1903, las especies de este género 
tienen un núcleo, un Cinetoplasto y un axonema, y en la fase de Promastigote 
un solo flagelo sale del axonema sin formar membrana ondulante. El principal 
vector de infección son los mosquitos de los géneros Phlebotomus (en Eurasia 
y África) y Lutzomya (en América). 
 
3. Trichomonas 
Wenyon, 1926 los trofozoítos típicos de este género tienen cuatro flagelos libres 
y un quinto a lo largo del borde externo de la membrana ondulante y un axostilo 
bien visible. En el hombre se encuentran tres especies: 
• Trichomonas tenax 
• Trichomonas hominis 
• Trichomonas vaginalis 
 
 
 
 
a) Trichomonas vaginalis, b) Trichomonas tenax y c) 
Trichomonas hominis. 
https://es.wikipedia.org/wiki/Mosquito
https://es.wikipedia.org/wiki/Phlebotomus
 
23 
 
4. Giardia 
Giardia lamblia (Stile,1915), habitan en el intestino delgado, la enfermedad que 
producen es Giardiasis que puede llegar a producir síndrome de mala absorción 
intestinal. Las formas en que se observa a través de él examen directo son 
trofozoítos y quistes. 
 
Material 
▪ Materia Biológico (Heces) 
▪ Abatelenguas 
▪ Lugol(ver miscelánea de reactivos) 
▪ Aplicador de madera 
▪ Cubreobjetos 
▪ Portaobjetos 
▪ Microscopio 
▪ laminillas fijas y teñidas de Leishmania, Trichomonas y Toxoplasma. 
 
Reactivos 
▪ NaCl 0.85 % 
▪ Formaldehído al 10 % (ver miscelánea de reactivos) 
PROCEDIMIENTO 
1. En un portaobjeto se colocan, separadamente, una gota de solución salina y 
otra de lugol. 
2. Con el aplicador de madera, se toma una muestra de 1 a 4 mg de heces y se 
mezcla con la solución salina. 
3. Con el mismo aplicador se retiran las fibras y otros fragmentos gruesos. 
4. Se coloca el cubreobjetos. 
5. Observar al microscopio en 10x y 40x. 
Para las laminillas fijas 
1. observar en 40x cada una de ellas. 
2. Cambiar 
3. Realizar el reporte de lo observado, anotando los estadios morfológicos 
observados en las muestras al microscopio junto con su esquema. 
 
 
 
24 
 
REPORTE 
NOMBRE__________________________________________________ 
OBSERVACIONES 
 
 
 
 
 
RESULTADOS 
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________ 
 
AUTOEVALUACION 
• Realiza un esquema donde describas el ciclo biológico del tripanosoma cruzi. 
• Dibuja a escala lo observado al microscopio. 
• Realiza un cuadro comparativo indicando características importantes de los 
diferentes géneros de la clase Mastigophora. 
FUENTES DE CONSULTA 
▪ http://farmasil.tripod.com/TEMA14.htm 
▪ http://www.fcnym.unlp.edu.ar/catedras/parasitologia_general/pdf/Tp2.pdf 
▪ http://repositorio.continental.edu.pe/bitstream/continental/3340/1/DO_FCS_
508_GL_UC0640_2017.pdf 
 
 
 
 
 
 
 
 
http://farmasil.tripod.com/TEMA14.htm
http://www.fcnym.unlp.edu.ar/catedras/parasitologia_general/pdf/Tp2.pdf
http://repositorio.continental.edu.pe/bitstream/continental/3340/1/DO_FCS_508_GL_UC0640_2017.pdf
http://repositorio.continental.edu.pe/bitstream/continental/3340/1/DO_FCS_508_GL_UC0640_2017.pdf
 
25 
PRÁCTICA # 4 
Ciliata 
Microunidad de competencia 
El estudiante clasifica e identifica taxonómicamente los parásitos de acuerdo al 
Phylum Ciliata a través de sus características morfológicas utilizando técnicas CPS 
directos con responsabilidad y trabajo colaborativo. 
MARCO TEORICO 
Los protozoos ciliados constituyen un grupo muy numeroso, aproximadamente 
8.000 especies, aunque solo una es patógena para el ser humano Balantidium 
coli, habita en el intestino grueso, la enfermedad que produce es Balantidiasis, 
puede llegar a producir un cuadro de disentería. 
El Balantidium coli presenta dos fases en su ciclo biológico: trofozoíto y quiste. 
Trofozoíto: su identificación en materia fecal es fácil debido a su gran tamaño (50-
100 µm de longitud y 40- 70 µm de anchura) ovalado o periforme y está rodeado 
por cilios cortos. 
Quiste son esféricos, de 4 a 75 µm, la pared quística es doble, gruesa y 
transparente. Este organismo fácilmente se enquista. 
 
MATERIAL 
▪ Materia Biológico (Heces) 
▪ Abatelenguas 
▪ Aplicador de madera 
▪ Cubreobjetos 
▪ Portaobjetos 
▪ Microscopio 
REACTIVOS 
▪ Formaldehído al 10 % (ver miscelánea de reactivos) 
▪ Lugol (ver miscelánea de reactivos) 
▪ NaCl 0.85 % (ver miscelánea de reactivos) 
 
 
26 
PROCEDIMIENTO 
Coproparasitoscópico microscópico directo: 
1. En un portaobjeto se colocan, separadamente, una gota de solución salina 
y otra de lugol. 
2. Con el aplicador de madera, se toma una muestra de 1 a 4 mg de heces y 
se mezcla con la solución salina. 
3. Con el mismo aplicador se retiran las fibras y otros fragmentos gruesos. 
4. Se coloca el cubreobjetos. 
5. Observar al microscopio en 10x y 40x. 
Para las laminillas fijas 
1 Observar en 40x cada una de ellas. 
2 Cambiar 
3 Realizar el reporte de lo observado, anotando los estadios morfológicos 
observados en las muestras al microscopio junto con su esquema. 
 
 
REPORTE 
Nombre: ______________________________________________________ 
OBSERVACIONES 
 
 
 
 
 
RESULTADOS 
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________ 
 
 
 
 
 
 
27 
 
AUTOEVALUCION 
• Leer dos artículos sobre Balantidium coli y realizar una síntesis. 
• Esquematiza el mecanismo de infección de Balantidiasis. 
 
 
FUENTES DE CONSULTA 
▪ http://ocw.usal.es/ciencias-biosanitarias/introduccion-a-la-protozologia-
clinica-i/contenidos/Unidad%205%20Ciliados.pdf (consultado 6 de abril 
2017) 
 
▪ http://catarina.udlap.mx/u_dl_a/tales/documentos/lqf/hinojosa_s_le/capitulo5
.pdf 
 
▪ http://parasitologiajmv-hilda.blogspot.mx/2010/09/protozooarios-parasitos-
balantidium.html 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
http://ocw.usal.es/ciencias-biosanitarias/introduccion-a-la-protozologia-clinica-i/contenidos/Unidad%205%20Ciliados.pdf
http://ocw.usal.es/ciencias-biosanitarias/introduccion-a-la-protozologia-clinica-i/contenidos/Unidad%205%20Ciliados.pdf
http://parasitologiajmv-hilda.blogspot.mx/2010/09/protozooarios-parasitos-balantidium.html
http://parasitologiajmv-hilda.blogspot.mx/2010/09/protozooarios-parasitos-balantidium.html
 
28 
PRÁCTICA # 5 
Esporozoa 
Microunidad de competencia 
El estudiante identifica a través de la observación al microscopio el Phylum Sporozoa 
tomando como base criterios morfológicos ,con responsabilidad. 
MARCO TEORICO 
Se caracterizan por tener complejo apical, compuesto por conoide, anillo polar, 
rhoptrias, micronemas y microporos, cuya función es secretar moléculas 
indispensables para el reconocimiento, adherencia e invasión de los Esporozoito y 
merozoitos a la célula blanco. Son parásitos que carecen de estructura locomotora. 
Se reproducen por división múltiple. Pueden ser parásitos intracelulares, pero 
también encontrarse fuera de las células. El ciclo vital es complejo. En términos 
generales, implica generaciones sexuales y asexuales, y a veces dos huéspedes. 
la mayoría de los protozoos Apicomplexa de importancia patógena para el ser 
humano pertenecen a la subclase Coccidia, nombre con el que se les conoce 
comúnmente. Los coccidios que habitan en el intestino son parásitos acido alcohol 
resistente durante su ciclo de vida producen ooquistes, este estadio es de pared 
gruesa y resistente, siendo este la forma infectante de parasito. 
❖ Isospora: 
Morfología: Los ooquistes son estructuras ovaladas que poseen una cubierta 
transparente, y en el interior se observa según en el estado en que se encuentre, 
uno o dos esporoblastos o la presencia de trofozoítos. 
Diagnóstico clínico: Mediante el análisis de una muestra de heces fecales y se 
examina al microscopio 
 
 
 
 
 
 
29 
❖ Plasmodium: 
Morfología: Microscópicamente, el glóbulo rojo parasitado es dos veces mayor que 
una célula normal, ligeramente rosados con punteados citoplasmáticos. El parásito 
internalizado tiene una forma irregular, descrito como ameboide. 
Diagnóstico clínico: se confirma obteniendo dos gotas de sangre del pulpejo de un 
dedo, tiñéndolas con un colorante y mirándolas al microscopio 
 
❖ Toxoplasma: 
Morfología: Es un protozoo que mide 4 a 8 µm de largo por 2 a 4 µm de ancho, 
tiene forma de media luna con un extremo aguzado y el otro romo, durante su ciclo 
biológico el protozoo adopta esta forma de medialuna, puede tres fases que son 
de ooquiste, bradizoito y traquizoito. 
Diagnóstico clínico: La toxoplasmosis puede ser diagnosticada al aislar el parásito 
por medio de inoculación de animales de laboratorio o cultivo celular o con un 
perfil serológico 
 
MATERIAL 
▪ Materia Biológico(Heces) 
▪ Abatelenguas 
▪ Aplicador de madera 
▪ Cubreobjetos 
▪ Portaobjetos 
▪ Microscopio 
▪ Laminillas fijas y teñidas del genero Plasmodium y toxoplasma 
REACTIVOS 
▪ Formaldehído al 10 % (ver miscelánea de reactivos) 
▪ Lugol (ver miscelánea de reactivos) 
▪ NaCl 0.85 % (ver miscelánea de reactivos) 
 
 
 
 
 
30 
PROCEDIMIENTO 
Coproparasitoscópico microscópico directo: 
1. En un portaobjeto se colocan, separadamente, una gota de solución salina y otra 
de lugol. 
2. Con el aplicador de madera, se toma una muestra de 1 a 4 mg de heces de 
porcino y se mezcla con la solución salina. 
3. Con el mismo aplicador se retiran las fibras y otros fragmentos gruesos. 
4. Se coloca el cubreobjetos. 
5. Observar al microscopio en 10x y 40x. 
Para las laminillas fijas 
1. observar en 40x cada una de ellas. 
2. Cambiar 
3. Realizar el reporte de lo observado, anotando los estadios morfológicos observados 
en las muestras al microscopio junto con su esquema. 
 
REPORTE 
Nombre: ______________________________________________________ 
OBSERVACIONES 
 
 
 
RESULTADOS 
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________ 
AUTOEVALUACION 
▪ Describe el ciclo biológico del Plasmodium y toxoplasma. 
▪ Elabora un cuadro comparativo de estos donde expreses: 
a) La imagen del parasito 
b) Las fases en las que se encuentra 
c) Las diferentes especies. 
FUENTES DE CONSULTA 
▪ http://medicina.udea.edu.co/parasitologia/Apicomplexa.html 
▪ http://practicasdeparasitos.blogspot.mx/2014/11/practicas-del-laboratorio-
de.html 
▪ http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/pdf/Parasitologia_2017.p
df 
http://medicina.udea.edu.co/parasitologia/Apicomplexa.html
http://practicasdeparasitos.blogspot.mx/2014/11/practicas-del-laboratorio-de.html
http://practicasdeparasitos.blogspot.mx/2014/11/practicas-del-laboratorio-de.html
http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/pdf/Parasitologia_2017.pdf
http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/pdf/Parasitologia_2017.pdf
 
31 
Capitulo III HELMINTOS 
Principales clases de Helmintos 
 
Los helmintos son metazoos planos y cilíndricos, se encuentran en el humano 
principalmente en el aparato digestivo; son un grupo de gusanos que la única 
característica que comparten, aparte de ser gusanos y ser invertebrados, es que 
son parásitos del hombre. 
Los metazoarios o helmintos son mucho más complejos que los protozoos, sus 
células se agrupan formando órganos y tejidos; se reproducen sexualmente 
pudiendo ser hermafroditas o presentar sexos separados. 
Los helmintos incluyen dos Phylum o clases: 
1. Platelmintos: gusanos de cuerpo plano, entre los que se incluyen: 
 
❖ Nematelmintos o Nemátodos: son gusanos cilíndricos, tienen sexos 
separados. Su cuerpo está recubierto por una cutícula, con cavidad 
pseudocelómica, tubo digestivo completo que se inicia en la boca y termina 
en el ano. La boca está rodeada por tres labios, salvo en las uncinarias que 
presentan una cápsula bucal con elementos cortantes; estas estructuras 
producen pequeños pero múltiples traumas en la mucosa intestinal que 
contribuyen a la producción de la anemia macrocítica que suele asociarse a 
estas parasitosis. Los huevos tienen diferentes características que son útiles 
para el diagnóstico de las diversas especies. Del huevo se liberará una larva, 
en el tubo digestivo o en el medio ambiente. Los estadios larvarios son varios 
y se producen mudas entre estadio y estadio. El hombre se infecta por vía 
oral, como en el caso de Áscaris lumbricoides, por vía cutánea, como en el 
caso de las uncinarias o por vía parenteral, como por ejemplo las filarias. 
Sólo unas pocas especies son parásitos del hombre y existen, a diferencia 
de los Céstodos y Tremátodos, muchos nematodos de vida libre. 
 
 
 
32 
❖ Tremátodos: a excepción del género Schistosoma, también son 
hermafroditas y su cuerpo es chato pero indiviso. El estadio adulto es parásito 
de vertebrados, está cubierto por una cutícula resistente y presentan discos 
suctorios, órganos de fijación, en la cara ventral. Poseen un tubo digestivo 
incompleto que se inicia en la boca, llamada citostoma. Poseen un poro 
genital por donde se eliminan los huevos. El ciclo evolutivo es indirecto y 
cumplen parte de él en el agua. Los huevos, a excepción del 
género Schistosoma, presentan un opérculo por el que se libera la larva, 
denominada miracidio. El primer huésped intermediario es un molusco, 
puede haber un segundo huésped intermediario dependiendo de la especie. 
 
❖ Cestodos: son hermafroditas, tienen el cuerpo plano y segmentado, y 
cuando parasitan al hombre en su estadio adulto, se ubican en intestino 
delgado. El órgano de fijación es el escólex, provisto de estructuras 
especialmente adaptadas para esta función, estas pueden ser ventosas y 
bótrides o ganchos. Del escólex surge un cuello del que se genera el cuerpo, 
por brotación, constituido por segmentos, denominados proglótidas. Cada 
proglótidas es una unidad funcional completa; a medida que se alejan del 
cuello van madurando, denominándose a los más distantes proglótidas 
maduros. En ellos el útero ocupa casi su totalidad y se encuentran repletos 
de huevos, los que se liberarán al romperse los segmentos. Se los conoce 
como Tenias por ejemplo Taenia saginata, Taenia solium, Echinococcus 
granulosus. 
 
 
 
 
33 
 
PRÁCTICA # 6 
Nematodos parte 1 características morfológicas del verme adulto. 
 
MICROUNIDAD DE COMPETENCIA 
El estudiante realiza de forma responsable la observación a través del estereoscopio las 
estructuras parasitarias de vermes adultos diferenciando hembra y macho, de los 
diferentes géneros pertenecientes al este Phylum de los nematodos. 
 
MARCO TEORICO 
Es uno de los Phylum más ricos en especies en la naturaleza, muchos son de vida 
libre y otros son parásitos de plantas y animales vertebrados, son los metazoos 
parásitos más significativamente asociados al hombre. 
Los nematodos son cilíndricos y alargados, con simetría bilateral primitiva, los 
nematodos no tienen músculos circulares, se mueven mediante cambios sinuosos 
e sus cuerpos, lenta o rápidamente, a veces con movimientos en forma de 8. Todos 
los nematodos parásitos del hombre tienen sexo separado, tubo digestivo completo 
en ano, el macho suele ser más pequeño que la hembra. 
❖ Algunos géneros de importancia medica 
▪ Uncinarias (Ancylostoma duodenal, Strongyloides estercolaris, Necator 
americano) 
▪ Áscaris lumbricoides 
▪ Trichuris trichiura 
▪ Enterobius vermicularis 
▪ Trichinella spiralis 
 
➢ Uncinarias 
▪ Ancylostoma duodenal 
Es una especie parasitaria del filo de los nematodos causante de una de las parasitosis más 
prevalentes en el mundo, causante de la anquilostomiasis en el hombre. es 
un gusano redondo, no mayor a 2 cm de largo. Como el resto de 
los nematodos son organismos con sexos separados. Carecen de labios pero 
la boca está provista de una cápsula con cuatro ganchos o dientes cortantes con 
las que se adhiere a las vellosidades de la mucosa del intestino. 
Hay dos tipos de larvas: 
https://es.wikipedia.org/wiki/Gusano
https://es.wikipedia.org/wiki/Cent%C3%ADmetro
https://es.wikipedia.org/wiki/Nematoda
https://es.wikipedia.org/wiki/Ser_vivo
https://es.wikipedia.org/wiki/Sexo
https://es.wikipedia.org/wiki/Labio
https://es.wikipedia.org/wiki/Boca
https://es.wikipedia.org/wiki/Diente
https://es.wikipedia.org/wiki/Mucosa
https://es.wikipedia.org/wiki/Intestino
 
34 
a) Hembra de vida libre 
b) macho de vida libre 
c) hembra parasitada 
▪ Rabditiforme: 
De aproximadamente 300 μm x 17 μm. Son redondeadas en el extremo bucal con 
una abertura que se comunica con un esófago y un bulbo digestivo. 
▪ Filariformes: del doble del largo (unos 500 μm). 
- El esófago cubre 1/3 parte de la extensión del cuerpoy la cola con terminación 
puntiaguda 
 
 
▪ Strongyloides stercolaris 
Es un geohelminto que se localiza en el intestino delgado en el humano, el huésped 
principal, este parásito facultativo tiene cuerpo filiforme, esófago recto y extremo 
posterior aguzado. La hembra parásita mide 2 mm de longitud. Las larvas 
filariformes, formas infectivas, miden alrededor de 600 µm de longitud, tienen 
esófago recto y extremo posterior ligeramente bifurcado, en tanto que las larvas 
rabditoides, formas diagnósticas, tienen menor tamaño y bulbo esofágico 
prominente. Los huevos inmersos en la submucosa del intestino delgado son 
ovalados y miden alrededor de 50 µm de longitud, la hembra y macho de vida libre 
presentan bulbo esofágico evidente; la primera mide 1 mm de longitud. 
 
 
 
 
▪ Áscaris lumbricoides 
Es un nematodo parásito del intestino delgado del hombre, constituye un problema 
de salud pública en situaciones con condiciones higiénicas inadecuadas del agua y 
alimentos. Los individuos de Áscaris lumbricoides son cilíndricos con extremos 
puntiagudos, con una longitud que va desde 15 cm y que pueden alcanzar los 50 
cm, su coloración rosado claro-nacarado y poseen tres labios gruesos (uno ventral 
y dos dorsos laterales) en su extremidad anterior. 
 
 
https://es.wikipedia.org/wiki/Micr%C3%B3metro_(unidad_de_longitud)
https://es.wikipedia.org/wiki/Es%C3%B3fago
https://es.wikipedia.org/wiki/Es%C3%B3fago
https://es.wikipedia.org/wiki/Nematodo
https://es.wikipedia.org/wiki/Par%C3%A1sito
https://es.wikipedia.org/wiki/Intestino_delgado
https://es.wikipedia.org/wiki/Homo_sapiens
 
35 
▪ Trichuris trichiura 
Es una especie parásita de nematodo del orden Trichurida, agente causal de 
la parasitosis conocida como tricuriasis. Conocido también como gusano látigo, por 
su parte anterior muy delgada y su parte posterior más ancha, como el mango. 
Se trata de gusanos alargados, miden de 3 a 5 cm, con el extremo anterior delgado 
que ocupa 3/5 del parásito. Presentan un esófago con la porción anterior muscular 
con una cutícula en la parte superior, en la parte posterior se encuentra la glándula 
basilar rodeado del esticosoma, conformado de esticocitos con funciones 
secretoras. Presentan dimorfismo sexual; la hembra tiene el extremo posterior 
recto, la vulva se encuentra en la intersección del extremo anterior con el posterior; 
los huevos que pone tienen forma de limón; el macho tiene el extremo posterior en 
forma de espiral con una espícula copulatriz, testículos, vasos eferentes y glándulas 
seminales. 
 
▪ Trichinella spiralis 
Es una especie de Nematoda de la clase Adenophorea que produce una 
enfermedad conocida como triquinelosis, triquinosis o triquiniasis. El adulto hembra 
mide de 2.2 a 3.5 mm; y el macho de1.2 a 1.6 mm; las larvas vivíparas miden 
100 μm; y los quistes 250-500 μm. 
 
 
 
 
MATERIAL 
• estereoscopio 
• Aplicadores de madera 
• Muestra de parásitos adultos 
• Cajas Petri 
• Pinzas 
• Agujas para disección 
 
https://es.wikipedia.org/wiki/Especie
https://es.wikipedia.org/wiki/Par%C3%A1sita
https://es.wikipedia.org/wiki/Nematodo
https://es.wikipedia.org/wiki/Orden_(biolog%C3%ADa)
https://es.wikipedia.org/wiki/Trichurida
https://es.wikipedia.org/wiki/Parasitosis
https://es.wikipedia.org/wiki/Tricuriasis
https://es.wikipedia.org/wiki/Gusano
https://es.wikipedia.org/w/index.php?title=Esticosoma&action=edit&redlink=1
https://es.wikipedia.org/wiki/Dimorfismo_sexual
https://es.wikipedia.org/wiki/Esp%C3%ADcula
https://es.wikipedia.org/wiki/Especie
https://es.wikipedia.org/wiki/Nematoda
https://es.wikipedia.org/wiki/Clase_(biolog%C3%ADa)
https://es.wikipedia.org/wiki/Adenophorea
https://es.wikipedia.org/wiki/Triquinelosis
https://es.wikipedia.org/wiki/Micr%C3%B3metro_(unidad_de_longitud)
 
36 
REACTIVOS 
• Sol. Salina 
 
 
 
 
PROCEDIMIENTO 
Método 
1.- Colocar en una caja de Petri el espécimen biológico del verme a observar. 
 
2.- Realizar las mediciones de longitud del diámetro del espécimen 
 
3.- identificar las características de la boca, cola cloaca y órganos reproductores. 
 
4.- Anotar características del color, textura, pigmentación y aquellas que consideres 
importantes para identificación del espécimen. 
 
5.- Realiza tus esquemas y anotaciones en tu reporte. 
 
REPORTE 
Nombre:__________________________________________________________ 
OBSERVACIONES 
 
 
 
 
 
RESULTADOS 
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________ 
AUTOEVALUACION 
 
37 
▪ Explica el ciclo biológico de los nematodos en general.(mapa conceptual, 
dibujos etc.) 
▪ Realiza un cuadro comparativo con las características principales de los 
nematodos de importancia medica. 
 
 
• Coloca en el paréntesis el número que corresponda. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Referencias 
▪ http://www.medigraphic.com/pdfs/gaceta/gm-2011/gm114c.pdf 
▪ http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/parasitologia/toxoplasmo
sis.html 
▪ http://www.medigraphic.com/pdfs/medlab/myl-2008/myl087-8c.pdf 
 
 
 
 
 
 
1: abertura bucal; 
2: intestino; 
3: abertura cloacal; 
4: órgano excretor; 
5: testículo; 
6: anillo nervioso 
peri faríngeo; 
7: cordón nervioso 
dorsal; 
8: cordón nervioso 
ventral; 
9: poro excretor 
 
( ) abertura bucal; 
( ); cordón nervioso dorsal 
( ): intestino 
( )órgano excretor; 
( ) testículo; 
( ) abertura cloacal 
( )peri faríngeo; 
( ) anillo nervioso 
( ) poro excretor 
 ( )cordón nervioso ventral 
 
http://www.medigraphic.com/pdfs/gaceta/gm-2011/gm114c.pdf
http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/parasitologia/toxoplasmosis.html
http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/parasitologia/toxoplasmosis.html
http://www.medigraphic.com/pdfs/medlab/myl-2008/myl087-8c.pdf
 
38 
PRÁCTICA # 7 
Nematodos parte 2 características morfológicas del estadio infectante 
Microunidad de competencia 
El estudiante por medio de métodos de tinción apropiados, realiza extendidos 
sanguíneos en trabajo colaborativo, así mismo identificara las diferencias y 
similitudes de las fases de los protozoos con ayuda del microscopio. 
MARCO TEORICO 
El Phylum Nematoda son parásitos de forma cilíndrica de tamaño variable, está 
constituidos por tres capas, cutícula, hipodermis y muscular. La cutícula es la capa 
más externa, la cual reviste el estomodeo, son organismos totalmente acuáticos, 
existen especies de vida libre, marinas, en el suelo. 
Los nematodos se puede encontrar dos tipos de ciclo de vida: 
Ciclo directo: cuando los parásitos se encuentran libres en el ambiente, su 
desarrollo es dentro del huevo o al salir de ellos. 
Ciclo indirecto: Cuando las larvas infectivas se desarrollan hasta la etapa infectiva 
en el interior del huésped intermediario; con la intermediación de otros huéspedes 
siendo en ocasiones él mismo. 
 
Material 
▪ Materia Biológico (Heces, Viales positivo proporcionados por el catedrático) 
▪ Abatelenguas 
▪ Aplicador de madera 
▪ Cubreobjetos 
▪ Portaobjetos 
▪ Microscopio 
▪ Laminillas permanentes de las diversas especies. 
 
REACTIVOS 
▪ Formaldehído al 10 % (ver miscelánea de reactivos) 
▪ Lugol (ver miscelánea de reactivos) 
▪ NaCl 0.85 % (ver miscelánea de reactivos) 
 
 
 
 
 
 
https://es.wikipedia.org/wiki/Larvas
https://es.wikipedia.org/wiki/Hu%C3%A9sped
 
39 
PROCEDIMIENTO 
1. En un portaobjeto se colocan, separadamente, una gota de solución salina y 
otra de lugol. 
2. Con el aplicador de madera, se toma una muestra de 1 a 4 mg de heces y se 
mezcla con la solución salina. 
3. Con el mismo aplicador se retiran las fibras y otros fragmentos gruesos.4. Se coloca el cubreobjetos. 
5. Observar al microscopio en 10x y 40x. 
Para las laminillas fijas 
1. observar en 40x cada una de ellas. 
2. Cambiar 
3. Realizar el reporte de lo observado, anotando los estadios morfológicos 
observados en las muestras al microscopio junto con su esquema. 
REPORTE 
Nombre:__________________________________________________________ 
OBSERVACIONES 
 
 
 
 
 
 
 
 
AUTOEVALUACION 
▪ Dibuja un huevo de los nematodo de importancia medica en su estadio 
infectante y escribe el nombre de cada una de sus partes. 
Referencias 
• http://ocw.usal.es/ciencias-biosanitarias/Parasitologia%20%28Farmacia%29 
• De Haro Arteaga I., Salazar Schettino P., Cabrera Bravo M. (1995) 
“Diagnostico Morfológico de las Parasitosis” Editorial Méndez Editores. 
Segunda edición 
• http://www.parasitologia.blogcindario.com/2007/05/00001-parasitologia.html 
- 63k 
 
http://ocw.usal.es/ciencias-biosanitarias/Parasitologia%20%28Farmacia%29
 
40 
PRÁCTICA # 8 
Tremátodos parte 1 características del verme adulto 
 
Microunidad de competencia 
. El estudiante obtiene, maneja y conserva muestras biológicas para su posterior análisis 
microscópico y/o macroscópico, con seguridad y autorreflexión 
 
MARCO TEORICO 
Los trematodos son gusanos aplanados no segmentados. Son hermafroditas y 
están provistos de tubo digestivo ramificado, pero no tienen ano, si no que el tubo 
digestivo termina en varios ciegos. 
El hombre funciona como huésped definitivo de varios trematodos; los huéspedes 
intermediarios funcionan como transmisores, en México la más importante es 
Fasciola hepática 
 
MATERIAL 
▪ Materia Biológico (Heces, Viales positivo proporcionados por el catedrático) 
▪ Abatelenguas 
▪ Aplicador de madera 
▪ Cubreobjetos 
▪ Portaobjetos 
▪ Microscopio 
▪ Laminillas permanentes de las diversas especies. 
 
 
REACTIVOS 
▪ Formaldehído al 10 % (ver miscelánea de reactivos) 
▪ Lugol (ver miscelánea de reactivos) 
▪ NaCl 0.85 % (ver miscelánea de reactivos) 
▪ 
REPORTE 
Nombre: __________________________________________________________ 
 
 
 
41 
OBSERVACIONES 
 
 
 
 
 
RESULTADOS 
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________ 
 
 
 
 
AUTOEVALUACION 
▪ Realiza un esquema o dibujo de un trematodo e indica cada una de sus 
partes. 
▪ Describe brevemente su ciclo de vida 
▪ ¿Cuáles son las fases en las que se pueden encontrar a los trematodos? 
 
FUENTES DE CONSULTA 
▪ universidad de salamanca. (2011). introducción a la pro zoología clínica. 
Consultado 23 de abril 2017, de ocw Sitio web: http://ocw.usal.es/ciencias-
biosanitarias/introduccion-a-la-protozoologia-clinica-ii-filos-apicomplexa-y-
microsporidia 
▪ Departamento de microbiología y parasitología. (2017). parasitología. 
Consultado el 15 abril 2017, de universidad autónoma de México Sitio web: 
http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/pdf/Parasitologia_2017.p
df 
▪ Becerril Flores, Romero Cabello (2004). Parasitología médica de las 
moléculas a la enfermedad. México, DF: McGraw-hill Interamericana 
 
 
42 
PRÁCTICA # 9 
Tremátodos parte 2 características morfológicas del estadio infectante 
Microunidad de competencia 
El estudiante observa a través del microscopio las formas parasitarias presentes en 
la muestra biológica y determina a qué género y especie pertenecen. 
 
MARCO TEORICO 
La delineación morfológica de las especies de trematodos (Rudolphi, 1808) es 
efectiva para reconocer miles de especies. Sin embargo, la distinción 
intraespecífica, las variaciones interespecífica, la identificación de fases de 
especímenes en diferentes ciclos de vida, se han visto enriquecidas con los estudios 
moleculares a partir de los 1980s. (Blasco-Costa et al., 2016). 
Clase Trematoda son una clase del filo de gusanos platelmintos, son conocidos 
comúnmente como duelas, el tamaño de los trematodos varía entre unos 
centímetros, poseen órganos adhesivos (ventosas, ganchos) que lo fijan al 
hospedador. 
Los trematodos se caracterizan por tener un cuerpo no segmentado, con frecuencia 
en forma de hoja, se les conoce como trematodos digenéticos por tener uno o dos 
huéspedes intermediarios y un definitivo, los trematodos de importancia medica se 
ubican en la subclase Digenea, entre ellos los géneros Fasciola, Clonorchis 
(hígado), Schistosoma (intestino, riñon) y Metagonimus (intestino delgado), 
Paragonimus (pulmones) 
 
MATERIAL 
▪ Materia Biológico (Heces, Secreciones, Viales positivo proporcionados por el 
catedrático) 
▪ Abatelenguas 
▪ Aplicador de madera 
▪ Cubreobjetos 
▪ Portaobjetos 
▪ Microscopio 
▪ Laminillas permanentes de las diversas especies. 
 
Reactivos 
 
▪ Formaldehído al 10 % (ver miscelánea de reactivos) 
▪ Lugol (ver miscelánea de reactivos) 
▪ NaCl 0.85 % (ver miscelánea de reactivos) 
 
 
 
43 
PROCEDIMIENTO 
1.En un portaobjeto se colocan, separadamente, una gota de solución salina y 
otra de lugol. 
2. Con el aplicador de madera, se toma una muestra de 1 a 4 mg de heces y se 
mezcla con la solución salina. 
3. Con el mismo aplicador se retiran las fibras y otros fragmentos gruesos. 
4. Se coloca el cubreobjetos. 
5. Observar al microscopio en 10x y 40x. 
Para las laminillas fijas 
1. observar en 40x cada una de ellas. 
2. Cambiar 
3. Realizar el reporte de lo observado, anotando los estadios morfológicos 
observados en las muestras al microscopio junto con su esquema. 
 
REPORTE 
Nombre: __________________________________________________________ 
OBSERVACIONES 
 
 
 
 
 
RESULTADOS 
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________ 
 
CONCLUSIONES 
 
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________ 
 
 
44 
 
AUTOEVALUCIÓN 
• Realiza un cuadro donde clasifiques las fuentes de infección por trematodos. 
• Esquematiza el ciclo biológico de los trematodos 
• Busca dos artículos sobre Tremátodos y realiza un resumen y 5 preguntas. 
Referencias 
• http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/parasitologia/cestodos.ht
ml 
• https://es.slideshare.net/luisdiegoc1/parasitologa-tema-18-2226-
tremtodoscstodos-extraintestinalesnemtodos-extraintestinales-42531101 
• http://www.higiene.edu.uy/parasito/teo09/genhel.pdf 
• http://ocw.usal.es/ciencias-biosanitarias/introduccion-a-la-protozologia-
clinica-i/contenidos/ 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
PRÁCTICA # 10 
Cestodo parte 1 características morfológicas del verme adulto 
http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/parasitologia/cestodos.html
http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/parasitologia/cestodos.html
https://es.slideshare.net/luisdiegoc1/parasitologa-tema-18-2226-tremtodoscstodos-extraintestinalesnemtodos-extraintestinales-42531101
https://es.slideshare.net/luisdiegoc1/parasitologa-tema-18-2226-tremtodoscstodos-extraintestinalesnemtodos-extraintestinales-42531101
http://www.higiene.edu.uy/parasito/teo09/genhel.pdf
http://ocw.usal.es/ciencias-biosanitarias/introduccion-a-la-protozologia-clinica-i/contenidos/
http://ocw.usal.es/ciencias-biosanitarias/introduccion-a-la-protozologia-clinica-i/contenidos/
 
45 
 
Microunidad de competencia 
El alumno identificará con responsabilidad y cuidado, las característicasmorfológicas de los céstodos adultos reforzando los conocimientos impartidos en 
clase teóricas. 
 
MARCO TEORICO 
Clase Cestoidea, subclase Eucestoda constituye importante grupo de gusanos 
planos del Phylum Platyhelmintes que carecen de boca y aparato digestivo, los 
cestodos son capaces de infectar al ser humano, se conocen como tenias, son 
animales invertebrados macroscópicos aplanados en forma de listón. 
Los cestodos presentan cuerpo alargado, adaptado a la forma tubular del 
intestino el cual está dividido en tres regiones: 
Escólex: varia en forma y dimensión; es importante para la identificación de la 
especie, es un elegante órgano de fijación que puede ser armado (con ganchos) o 
inertes (sin ganchos). 
Cuello: situado inmediatamente después del escólex, región de tejido indiferenciado 
la cual da origen a los ploglótides. 
Estróbilo: o cadena estrobilar es el conjunto de ploglótides que constituyen la mayor 
parte del cuerpo del parásito 
Material 
• Especímenes de cestodos conservados en formol 
• Preparaciones teñidas de cestodos 
 
PROCEDIMIENTO 
• Observación de las características morfológicas externas de vermes adultos 
conservados en frascos 
• Observación en el microscopio esteroscópico las preparaciones y dibujar los 
órganos presentes en los proglótides, indicando a qué especie pertenece 
REPORTE 
Nombre: __________________________________________________________ 
 
OBSERVACIONES 
 
 
46 
 
 
 
 
RESULTADOS 
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________ 
 
AUTOEVALUACION 
1.Revisar la bibliografía acerca de los cestodos adultos y dibujar los patógenos del 
hombre, indicando los órganos que presentan cada uno de ellos 
2. Investigar la prevalencia de infección por cestodos en México en los últimos 5 
años 
Referencias 
▪ http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/parasitologia/nematodos-
generalidades.html 
▪ http://www.higiene.edu.uy/parasito/teo09/genhel.pdf 
▪ https://es.slideshare.net/luisdiegoc1/parasitologa-tema-18-2226-
tremtodoscstodos-extraintestinalesnemtodos-extraintestinales-42531101 
 
http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/parasitologia/nematodos-generalidades.html
http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/parasitologia/nematodos-generalidades.html
http://www.higiene.edu.uy/parasito/teo09/genhel.pdf
https://es.slideshare.net/luisdiegoc1/parasitologa-tema-18-2226-tremtodoscstodos-extraintestinalesnemtodos-extraintestinales-42531101
https://es.slideshare.net/luisdiegoc1/parasitologa-tema-18-2226-tremtodoscstodos-extraintestinalesnemtodos-extraintestinales-42531101
 
47 
PRÁCTICA # 11 
Cestodos parte 2 características de estadios larvarios extraintestinales 
 
Microunidad de competencia 
El alumno identifica las características morfológicas de las larvas extraintestinales 
de los cestodos con interés cognitivo 
Marco teórico 
Los estadíos larvarios extraintestinales) se desarrolla a partir del huevo. Presenta 3 
pares de ganchos. Las formas larvarias se consideran de importancia médica 
debido a que pueden alojarse en tejidos de diferentes sistemas corporales y causar 
enfermedades graves. El metacéstodo de T. solium causa la cisticercosis; los 
metacestodos de Echinococcus granulosus y E. multilocularis producen la 
hidatidosis (quiste hidatídico); la esparganosis en el humano se debe a larvas 
plerocercoides de cestodos de la familia Diphyllobothriidae, el género Spirometra; 
la infección se adquiere por ingesta de carne cruda o mal cocida de víboras, ranas 
y agua tratada inadecuadamente. (Liu et al., 2015). La cisticercosis es una 
parasitosis de humanos y cerdos causada por el metacéstodo de Taenia solium, el 
cual presenta el escólex del parásito adulto invaginado en una vesícula. (Silva-
Álvarez et al., 2015). 
Material 
Presentación en power point de las larvas extraintestinales de Céstodos 
PROCEDIMIENTO 
Proyectar la presentación de larvas extraintestinales, revisar y repasar el ciclo 
biológico de los céstodos, indicando en qué hospederos intermediarios se alojan 
REPORTE 
Nombre: __________________________________________________________ 
OBSERVACIONES 
 
 
 
 
 
 
 
48 
RESULTADOS 
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________ 
AUTOEVALUACIÓN: 
1.Dibujar los estadíos larvarios extraintestinales de una tenia saginata e indicar 
como los adquiere el hombre 
 
 
FUENTES DE CONSULLTA 
• http://ocw.usal.es/ciencias-biosanitarias/introduccion-a-la-protozologia-
clinica-i/descargar-curso-completo/view 
• http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/parasitologia/cestodos.ht
ml 
 
 
http://ocw.usal.es/ciencias-biosanitarias/introduccion-a-la-protozologia-clinica-i/descargar-curso-completo/view
http://ocw.usal.es/ciencias-biosanitarias/introduccion-a-la-protozologia-clinica-i/descargar-curso-completo/view
 
49 
PRÁCTICA # 12 
Cestodos parte 3 características morfológicas del estado infectante 
 
MICROUNIDAD DE COMPETENCIA 
El alumno identificará las diversas especies a través de la observación al microscopio 
tomando como base criterios morfológicos para su diagnóstico clínico con interés cognitivo 
y responsabilidad. 
MARCO TEÓRICO 
Los Cestodos son animales invertebrados, aplanados dorso ventralmente, en forma 
de cinta por lo que se les denomina Tenias. Todos son parásitos que se localizan 
en el intestino, estructuras adyacentes o ductos accesorios de animales 
vertebrados, excepto una especie del orden Pseudophyllidea que es de vida libre. 
La mayoría son hermafroditas, tienen ciclo de vida heteroxeno, excepto, 
Hymenolepis nana que presenta ambos tipos de ciclos (Monoxeno y heteroxeno). 
Durante su ciclo de vida pasan por los estadios de huevo, larva y adulto. 
 
Material 
▪ Materia Biológico (Heces, Viales positivo proporcionados por el catedrático) 
▪ Abatelenguas 
▪ Aplicador de madera 
▪ Cubreobjetos 
▪ Portaobjetos 
▪ Microscopio 
▪ Laminillas permanentes de las diversas especies. 
 
Reactivos 
▪ Formaldehído al 10 % (ver miscelánea de reactivos) 
▪ Lugol (ver miscelánea de reactivos) 
▪ NaCl 0.85 % (ver miscelánea de reactivos) 
PROCEDIMIENTO 
1. En un portaobjeto se colocan, separadamente, una gota de solución salina y 
otra de lugol. 
2. Con el aplicador de madera, se toma una muestra de 1 a 4 mg de heces y se 
mezcla con la solución salina. 
3. Con el mismo aplicador se retiran las fibras y otros fragmentos gruesos. 
4. Se coloca el cubreobjetos. 
6. Observar al microscopio en 10x y 40x. 
Para las laminillas fijas 
1. observar en 40x cada una de ellas. 
 
50 
2. Cambiar 
3. Realizar el reporte de lo observado, anotando los estadios morfológicos 
observados en las muestras al microscopio junto con su esquema. 
REPORTE 
Nombre: __________________________________________________________ 
OBSERVACIONES 
 
 
 
 
 
RESULTADOS 
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________ 
 
AUTOEVALUCION 
• Realiza un mapa conceptual donde describas las características y 
clasificación del cestodo. 
• Buscar y leer un artículo sobre cisticercosis, así como realizar un resumes 
con preguntas. 
FUENTES DE CONSULTA 
• http://ocw.usal.es/ciencias-biosanitarias/introduccion-a-la-protozologia-clinica-i/descargar-curso-completo/view 
• http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/parasitologia/trematodos.
html. 
 
 
 
 
 
http://ocw.usal.es/ciencias-biosanitarias/introduccion-a-la-protozologia-clinica-i/descargar-curso-completo/view
http://ocw.usal.es/ciencias-biosanitarias/introduccion-a-la-protozologia-clinica-i/descargar-curso-completo/view
http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/parasitologia/trematodos.html
http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/parasitologia/trematodos.html
 
51 
Capitulo IV Artrópodos. 
 
La importancia medica de los artrópodos se deriva, en primer lugar, de que 
transmiten diversas enfermedades parasitarias entre las características generales 
de los artrópodos se pueden mencionar que están provistos de patas articuladas y 
frecuentemente de alas. 
Los artrópodos presentan sexos separados, tubo digestivo completo y distintos tipos 
de aparatos bucales, ya que unos están adaptados para picar, otros para lamer o 
succionar. Su sistema nervioso es bastante desarrollado y consta de una serie de 
ganglios nerviosos y un sistema de nervios periféricos. 
Los artrópodos sufren metamorfosis conforme se desarrollan, y pasan por diversos 
estadios que van desde le huevo hasta el adulto a través de: 
a. Varias ninfas 
b. Larvas y ninfas 
c. Larvas o crisálidas 
Según la metamorfosis se divide en 4 grupos: 
1) Ametabolos: el individuo que sale del huevo es semejante en su forma 
externa al adulto excepto en su tamaño. 
2) Paurometabolos: el individuo que sale del huevo se diferencia del adulto 
entre otras cosas porque este último tiene alas. 
3) Hemimetábolos: el individuo que sale del huevo es totalmente diferente del 
adulto, pero no hay estadios pupales. 
4) Holometábolos: metamorfosis completa e incluye el estado pupal al menos 
por un estadio. 
Tipos de artrópodos 
• Mosquitos 
Son dípteros de la familia Culicidae tienen alas en forma de raqueta y escamas que 
se distribuyen en las alas y en el cuerpo. Hay 6 géneros de culícidos, pero para la 
medicina, los importantes son: 
➢ Culex 
➢ Anopheles 
➢ Aedes 
➢ Haemagoggus 
 
 
 
 
52 
• Moscas 
Son dípteros que tienen antenas cortas, de tres segmentos. Cuentan con una gran 
familia: una de ellas es la Muscidae, que incluye a la mosca doméstica, otra incluye 
las moscas tsé-tsé del genero Glossina, que transmite el “el mal del sueño” 
• Triatomas 
Dentro de este orden de hemípteros solo la subfamilia Triatomidae tiene importancia 
medica e incluye varios géneros: triatoma, transmiten Trypanosoma cruzi. 
• Piojos 
Desde el punto de vista médico, nos interesan dos especies: Ptirus pubis, que se 
encuentran por lo general en la región púbica y ocasionalmente en axilas o 
abdomen, y Pediculus humanus alojado en el cabello 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
53 
PRÁCTICA #13 
Artrópodos 
MICROUNIDAD DE COMPETENCIA: 
El estudiante relaciona las diversas especies parasitarias patógenas al hombre e 
identifica los vectores a través de la morfología microscópica y macroscópica 
mediante la recolección, observación y conservación de insectos de manera 
apropiada en equipos colaborativos. 
MARCO TEORICO 
Los miembros del Phylum Artrópoda constituyen el grupo más numeroso de 
especies en el reino animal; y fuera del hombre, la fuente más importante de 
enfermedad. 
La importancia médica del grupo de los artrópodos no se debe tanto al número de 
especies de parásitos que pueden transmitir, sino a la gran morbilidad y mortalidad 
producidas por estas enfermedades y a su amplia distribución geográfica. Estas 
afecciones, desde que se tiene noticia, han sido la causa de enormes pérdidas 
económicas y muertes en la población humana y han alcanzado en ocasiones 
proporciones de tipo pandémico. 
MATERIAL 
• Estereoscopio 
• Portaobjetos 
• Cubreobjetos 
• Formol al 10% 
PROCEDIMIENTO 
1. Se procede a colocar el insecto en el portaobjetos tapando con el cubreobjetos. 
2. Observar en el microscopio estereoscópico, dibujar y describirlo 
Salto de página 
REPORTE 
NOMBRE__________________________________________________ 
 
 
 
54 
Realiza las siguientes actividades 
• Realiza los dibujos de cada una de las estructuras observadas. 
• Investiga a qué clase pertenecen los artrópodos observados 
• Además, realiza la descripción de cada uno de ellos 
OBSERVACIONES 
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________ 
AUTOEVALUACION 
• Investiga en bibliografía actualizada las características de los artrópodos 
observados 
• Elabora una lista de los artrópodos y los parásitos de los cuales son 
vectores, indicando si es biológico o fómite 
FUENTES DE CONSULTA 
· Chester B.P. et al (1992) Barcelona, 2° ed. Edit Salvat. p.p. 601-775 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
55 
PRACTICA # 14 
Tinción y conservación de laminillas preparadas con parásitos 
 
MICROUNIDAD DE COMPETENCIA 
Que el alumno se relacione y aplique las diferentes técnicas de tinción y 
conservación de laminillas preparadas con diferentes especies de parásitos. 
INTRODUCCION 
Las preparaciones teñidas son de utilidad para el diagnóstico de infecciones por 
protozoos y helmintos, facilitando la búsqueda de los diferentes estadios de 
protozoo y permitiendo hacer una buena diferenciación de la morfología en 
helmintos, así también como facilitar la observación de sus estructuras que permiten 
la identificación morfológica de cada uno, de igual manera a través de las tinciones 
se puede apreciar parásitos o comensales pequeños, que pasan desapercibidos en 
otras preparaciones. 
La tinción se puede realizar de dos formas: 
• Progresivas: son aquellas en las que se coloca colorante diluido durante un 
tiempo necesario para lograr una buena tinción hasta la intensidad deseada 
para poder observar al parasito en sus diferentes fases. 
• Regresivas: son tinciones en la que se utiliza colorante concentrado hasta 
lograr una tinción concentrada y posteriormente se hace una decoloración 
hasta una intensidad adecuada para observar al parasito en sus diferentes 
fases de vida. 
 
 
PROCEDIMIENTO 
❖ Preparaciones efímeras. 
Son fáciles rápidas y útiles para poder observar, discriminar y diagnosticar 
estructuras parasitarias después de realizar los métodos Coproparasitoscópico 
(CPS): directo en fresco, de concentración/flotación (Faust, Ferreira) o 
concentración sedimentación (Ritchie). La solución de lugol es de uso generalizado. 
 Lugol 
Técnica: 
a) El procedimiento consiste en colocar la muestra de materia fecal sobre un 
portaobjetos limpio y desengrasado 
b) Emulsionarla con una gota de lugol, cubrirla con cubreobjetos evitando la 
formación de burbujas d aire 
 
56 
c) Observar al microscopio con los objetivos de 10x confirmando la observación 
con el objetivo 40x. 
d) Anotar resultados de la observación. 
 
❖ Preparaciones permanentes 
Para fijar trofozoítos flagelados (Trichomonas vaginalis, Giardia lamblia). 
Técnica: 
1. En una caja Petri colocar un triángulo de la varilla de vidrio, y adicione unos 
cristales de yodo metálico 
2. Con la ayuda de una pipeta deposite el material biológico (secreción vaginal, 
sedimento urinario) sobre un portaobjetos sin extenderlo introducir esta porta 
en la caja Petri con la gota resuspendida hacia abajo con la finalidad que los 
vapores de yodo fijen a los protozoarios dejar actuar de 5 a 10 segundos, 
hasta obtener una mezcla de color ámbar homogénea. 
3. Sacar inmediatamente la preparación de la caja Petri (cuidando de los 
vapores del yodo ya que fijan la retina del ojo). 
4. Inmediatamente después, adicionar una gota de sangre con EDTA y realizar 
posteriormente un extendido sanguíneo

Otros materiales