bacter_2022

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Bacter 2019
Plantae
Animalia
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Aristóteles
Ernst Haeckel (S. XIX) Tercer Reino: Protista
Organismos unicelulares intermedios animal/vegetal
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El cuarto reino: Monera, 
Bacterias y algas verde-azuladas, 
células procariotas: sin núcleo celular definido ni organelos
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R. H. Whittaker en 1969 el quinto reino: Fungi
Poseen células eucarióticas, tienen núcleos y paredes celulares pero carecen de 
pigmentos fotosintéticos. 
En 1978 Whittaker y Margulis conservaron estos mismos 5 reinos pero incluyeron 
a las algas en los Protistas, denominándolo Protoctista.
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Tradicionalmente las células se han clasificado en eucariotas (eucariontes) y 
procariotas (procariontes). La Biología Celular actualmente propone una tercera 
categoría: las postcariontes para definir aquellas células que una vez maduras no 
requieren del núcleo para desarrollar sus funciones, por ejemplo los eritrocitos y las 
plaquetas, aunque sus precursores inmaduros si presentan núcleo.
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• Monera, incluye a todos los microorganismos procariotas.
• Protista, incluye a todos los microorganismos eucariotas
unicelulares u ocasionalmente multicelulares.
• Fungi, incluye a los hongos en sus diversas formas.
•Plantae, corresponde al reino vegetal
• Animalia, corresponde al reino animal
R.H. Whittaker: 
CINCO REINOS
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En 1977 Carl Woese propuso una categoría superior a reino:
DOMINIO
Tres linajes evolutivos; ARCHAEA, BACTERIA y EUKARYA. 
Las características para separar estos dominios son el tipo de célula, 
compuestos que forman la membrana y estructura del ARN
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• Bacteria:
procariotas unicelulares cuya pared celular contiene
peptidoglucano
• Arquea:
procariotas unicelulares cuya pared celular no contiene 
peptidoglucano
• Eukarya:
todos los eucariotas
Carl Woese
TRES DOMINIOS
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En la taxonomía bacteriana los niveles o rangos utilizados son los siguientes (en 
orden ascendente):
● especie
● Género
● FAMILIA
● ORDEN
● CLASE
● PHYLUM
● REINO
● DOMINIO
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BACTERIAS
• Procariotas (procariontes)
• Microorganismos unicelulares que se 
reproducen por fisión binaria (división simple)
• Muchas tiene vida libre
• Contienen información genética, sistemas de 
producción de energía y sistemas biosintéticos 
para crecimiento y reproducción
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Células Procariontes
• No son compartamentalizadas 
– No hay membrana nuclear, ni mitocondrias, ni RE, 
ni aparato de Golgi, ni fagosomas o lisosomas. 
• Poseen un sólo cromosoma circular
– El cromosoma está unido a un sitio específico en la 
membrana celular (mesosoma)
• Las membranas bacterianas generalmente no 
contienen esteroles (ejemplo: colesterol)
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Estructura nuclear y función:
-Membrana nuclear
-Nucléolo
-Ácido desoxirribonucleico (ADN)
Ausente
Ausente
Una sola molécula, no
asociada a histonas
Presente
Presente
Varios cromosomas,
asociados con histonas
División Fisión binaria
No hay mitosis, ni meiosis
Mitosis y meiosis
Estructura citoplasmática y organización:
-Membrana citoplasmática
-Ribosomas
-Sistema respiratorio
Generalmente carece de esteroles
70 S
En la membrana plasmática
Presenta esteroles
80 S
En las mitocondrias
Pared celular Estructura compleja, con
peptidoglucano como
componente
Cuando la presentan, no
contiene peptidoglucano
Mecanismos metabólicos Gran variedad, en particular
reacciones anaeróbicas que
generan energía. Algunas
fijan Nitrógeno
La glicólisis es la vía para
obtener energía en
condiciones anaeróbicas
Tamaño En general, menor de 2 μm
de diámetro
Desde 2 μm hasta más de
100 μm de diámetro
Ejemplos
Bacterias
Algas verde-azules
Protozoarios
Hongos
Algunas algas
DIFERENCIAS ENTRE CELULAS PROCARIONTES Y EUCARIONTES
PROCARIONTES EUCARIONTES
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Estructuras bacterianas
Estructuras permanentes o constantes:
• Pared celular*
• Membrana celular
• Ribosomas
• Material genético
Estructuras variables o accesorias:
• Flagelos
• Fimbrias o pilis
• Cápsula
• Esporas
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Pared celular gramnegativa
• Formada por varias zonas:
– Membrana citoplásmica
– Espacio periplásmico
– Peptidoglicano 
– Membrana externa que contiene fosfolípidos, 
el lipopolisacárido (LPS) característica de 
GramNeg y proteínas (de membrana externa)
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• Situada por fuera de la membrana celular
• Única capa homogénea de 20 a 80 nm de 
espesor
• Peptidoglicano (mureína) como constituyente 
principal 
– Polímero de N-acetil glucosamina y N-acetil 
murámico y varios aa: L-alanina, ácido D-glutámico, 
ácido meso-diaminopimélico y D-alanina
• Tiene unidos ácidos teicoicos y lipoteicoicos
(polímeros de glicerol y ribitol unidos por grupos fosfatos)
Pared celular grampositiva
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Pared celular 
Bacilos Alcohol Acido Resistentes
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• Bacteria modelo:
Género Mycobacterium
• Gran cantidad de glicolípidos
– Complejo lipidico arabinogalactano
– Ácidos micólicos
• No tingibles con Gram
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BENEFICIOS
Ultraestructura
bacteriana
Ubicación definitiva 
como procariotas
Relación bacteria-
hombre
Flora normal y 
patógena
Estructura 
antigénica 
bacteriana
Avances 
en vacunas
Composición 
bioquímica y 
metabolismo 
bacterianos
Mecanismos de 
acción 
de nuevos 
antimicrobianos
Estudio del material 
genético bacteriano
Técnicas en 
investigación y 
diagnóstico
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Requerimientos de O2
Forma
• Esférica: Cocos
• Cilíndrica: Bacilos
• Espiral: Espirilos
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• Bacilos
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• Formas espirales:
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Tinción Gram
•Cristal violeta
•yodo lugol
•alcohol acetona
•safranina
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Tinción Gram
1. Aplicar cristal violeta
Grampositivo Gramnegativo
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Tinción Gram
1. Aplicar cristal violeta
Grampositivo Gramnegativo
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Tinción Gram
3. Decolorar con alcohol-acetona
Grampositivo Gramnegativo
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Tinción Gram
4. Aplicar safranina
Grampositivo Gramnegativo
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Tinción Gram
Resultado final:
Grampositivos Gramnegativos
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IMPORTANCIA DE LA FLORA NORMAL
Efectos directos:
•Producción de bacteriocinas
•Producción de metabolitos tóxicos
•Reducción del potencial redox
•Consumo de nutrientes esenciales
•Competencia por receptores
Efectos indirectos:
•Aumento de la producción de anticuerpos.
•Estímulo de la fagocitosis
•Aumento de la producción de interferón.
•Deconjugación de ácidos biliares.
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FLORA DE LA PIEL
•Staphylococcus (estafilococos): 
• epidermidis y otros coagulasa - (90 % del total de gérmenes aerobios de la 
piel). 
• aureus: presente en cara y manos de "portadores nasales" de dicho 
germen. 
•Streptococcus (estreptococos)
•Difteroides (corinebacterias), en folículos pilosos, glándulas sebáceas y
sudoríparas. 
• Propionibacterium acnes
•Micrococcus
•Candida: sobre todo en personal sanitario
ZONAS DE LA PIEL CON MAYOR FLORA 
•Cuero cabelludo, cara y oído. 
•Axilas. 
•Regiones urinarias y anal. 
•Plantas y pliegues interdigitales de los pies. 
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FLORA DE LA NARIZ
•Staphylococcus 
•aureus (20 % de la población). 
•epidermidis 
•Micrococcus
•Streptococcus 
•Difteroides
FLORA DE LA CONJUNTIVA
•Staphylococcus: 
epidermidis
aureus. 
Streptococcus
Propionibacterium acnes
Haemophilus spp.
Neisserias spp.
FLORA DE LA BOCA
La cavidad oral es uno de los hábitats microbianos mas complejos y heterogéneos del 
cuerpo. 
Streptococcus del grupo viridans: 
mitis. 
mutans (relacionados con las caries). 
sanguis. 
Otros Streptococcus no viridans. 
Bacteroides. 
Fusobacterium.Actinomyces. 
Trichomonas tenax. 
Candida spp.
La superficie de los dientes y los surcos gingivales contienen un gran número de bacterias 
anaerobias. Bacter 2019
FLORA FARINGEA
Streptococcus: 
grupo viridans 
S. pyogenes (Beta Hemolítico del grupo A) 
S. pneumoniae (neumococo) 
Staphylococcus: 
epidermidis
aureus 
Especies de Neisseria. 
A veces: Neisseria meningitidis
Haemophilus influenzae
Algunos de los componentes de la flora en individuos sanos son 
potencialmente patógenos (ej. neumococo, S. pyogenes, Haemophilus)
FLORA DE LA URETRA ANTERIOR 
•Staphylococcus epidermidis. 
•Estreptococos, sobre todo alfa hemolíticos. 
•Enterococcus faecalis
•En ocasiones: 
•Corinebacterias y bacilos gramnegativos.
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FLORA DE LA VAGINA 
Experimenta cambios en su flora con la edad. 
Antes de la pubertad predominan Staphylococcus, Streptococcus, 
Difteroides y Escherichia coli
Luego de la pubertad predomina el Lactobacillus aerophillus
Se encuentran algunos hongos incluyendo Candida, que puede proliferar 
para causar candidiasis si el pH vaginal aumenta y disminuyen las 
bacterias competidoras. 
El protozoo Trichomonas vaginalis se puede hallar en mujeres sanas
FLORA DEL ESTOMAGO
El estómago, por su acidez, puede considerarse una barrera contra la 
penetración de bacterias extrañas al tracto intestinal. 
La cantidad de bacterias presentes en el estómago es generalmente 
baja y, en sus paredes, podemos encontrar:
Lactobacilos
Streptococcus (Estreptococos) acidotolerantes 
Estas bacterias aparecen poco después del nacimiento, estando bien 
establecidas a la semana de vida. 
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FLORA DEL INTESTINO DELGADO 
Lactobacilos
Estreptococos 
Enterobacterias
Especies de Bacteroides
Candida spp.
La primera parte del intestino delgado es 
muy ácida y se parece al estómago en su 
flora normal. A medida que el pH se hace 
alcalino aumenta el número de bacterias. 
FLORA DEL INTESTINO 
GRUESO (COLON) 
En el intestino grueso la gran 
mayoría de las bacterias son 
anaerobias 95 - 99 %.
Especies de Bacteroides
Especies de Fusobacterium 
Enterococcus faecalis 
Enterobacterias:
Escherichia coli 
Especies de Klebsiella
Salmonellas spp.
Pseudomonas
Eubacterias
Bifidobacterias 
Lactobacillus
Especies de Clostridium
Staphylococcus aureus 
Estreptococos
Candida spp.
GERMENES PRESENTES EN LA MATERIA 
FECAL 
Especies de Bacteroides 
Bifidobacterias 
Eubacterias 
Coliformes
Enterococcus faecalis 
Candida spp.
En el intestino existen varios protozoos inocuos que 
pueden ser considerados parte de la flora normal a 
pesar de ser animales ej.: Entamoeba coli Bacter 2019
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¿Qué son los probióticos?
Son bacterias (cultivos o mezclas de cultivos) que cuando son administradas en 
cantidades adecuadas, confieren un beneficio a la salud a través de la flora intestinal. 
Para que una bacteria sea considerada probiótico tiene que cumplir con las siguientes 
características: 
- Ser integrante normal de la flora humana 
- Ser resistente a la degradación por jugos gástricos y bilis 
- Ser capaz de colonizar el intestino 
- Que no cause efectos adversos 
- Que tenga efectos favorables comprobados científicamente 
¿Cuáles son sus funciones?
Interviene en los procesos digestivos, en la síntesis de vitaminas, en la 
regulación del sistema inmune, en el mantenimiento de la funcionalidad e 
integridad de la mucosa intestinal, y en la estimulación de los movimientos 
del intestino. 
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¿Cuáles son los beneficios de los probióticos?
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•Lactobacillus acidophilus
•Lactobacillus casei var. Shirota
•Lactobacillus fermentum
•Lactobacillus casei
•Lactobacillus johnsonii
•Lactobacillus crispatus
•Lactobacillus reuteri
•Lactobacillus rhamnosus
•Lactobacillus plantarum
•Lactobacillus bulgaricus
•Lactobacillus cellobiosus
•Lactobacillus curvatus
•Lactobacillus lactis cremoris
•Lactobacillus GG
•Bifidobacterium lactis
•Bifidobacterium longum
•Bifidobacteria adolescentis
•Bifidobacteria animalis
•Bifidobacteria infantis
•Bifidobacteria bifidum
•Streptococcus salivaris
•Streptococcus faecium
•Streptococcus diacetylactis
•Streptococcus intermedius
•Saccharomyces boulardii 
MICROORGANISMOS PROBIOTICOS
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• Patógeno es un microorganismo capaz de 
producir enfermedad 
• Patogenicidad es la capacidad que tienen los 
microorganismos de producir enfermedad en un 
organismo anfitrión
• Patógeno oportunista: producen enfermedad en 
pacientes inmunocomprometidos
• Virulencia es el grado o nivel de expresión de la 
patogenicidad
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Determinantes de una enfermedad infecciosa
El agente patógeno debe ser capaz de:
• Inicialmente ser transportado al anfitrión
• Adherirse, colonizar o invadir al anfitrión
• Multiplicarse o completar su ciclo vital sobre o 
dentro del anfitrión o de sus células
• En principio, evitar los mecanismos de defensa del 
anfitrión
• Poseer la capacidad mecánica, química o molecular 
para lesionar al anfitrión
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Transmisión del patógeno
• Contacto directo : persona a persona
• Indirectamente :
– Medio ambiente
– Superficies, aire
– Tierra, agua y alimentos
– Vectores
– Fómites *
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Colonización 
Establecimiento del patógeno en el portal de 
entrada adecuado
• Tejidos que están en contacto con el 
ambiente externo: tracto urogenital, 
digestivo, respiratorio y conjuntiva
• Patógenos que infectan estas regiones 
desarrollan MECANISMOS DE ADHERENCIA 
a tejidos y habilidad para rebasar los 
mecanismos de defensa locales
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Antibiótico
(del griego αντί - anti, "en contra" + βιοτικός - biotikos, "dado a la vida”) 
Sustancia química producida por un ser vivo o 
derivada sintética de ella que a bajas 
concentraciones mata o impide el crecimiento de 
ciertas clases de microorganismos sensibles, 
generalmente bacterias.
Un antibiótico es bacteriostático si impide el crecimiento 
de los gérmenes, y bactericida si los destruye.
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Antibiótico Acción
Inhibición de la síntesis de la pared celular
Penicilina
Cefalosporina
Cefamicina
Carbapenémicos
Monobactam
Unión a PFP y enzimas responsables de la síntesis de peptidoglicanos
Vancomicina
Isoniacida
Etionamida
Etambutol
Cicloserina
Polimixina
Bacitracina 
Inhibe la elongación de la cadena de peptidoglicanos
Inhiben la síntesis de ácido micólico
Inhibe la síntesis de arabinogalactano
Inhibe la elongación de la cadena de peptidoglicanos
Inhibe la membrana bacteriana
Inhibe la membrana citoplásmica bacteriana y transporta precursores de peptidoglicanos
Inhibidores de β lactamasas Unión a β lactamasas y evita la inactivación enzimática del anillo β lactámico
Inhibidores de la síntesis de proteínas
Aminoglucósidos
Tetraciclina
Oxazolidiona
Macrólidos
Clindamicina
Estreptograminas
Provoca la liberación prematura de cadenas de péptidos aberrantes en el ribosoma 30s
Bloquea la elongación polipeptídica en el ribosoma 302
Bloquea el inicio de la síntesis proteica en el ribosoma 50s
Bloquean la elongación polipeptídica en el ribosoma 50s
Inhibición de la síntesis de ácido nucleico
Quinolona
Rifampicina
Rifabutina
Metronidazol
Unión a la subunidad de la ADN girasa
Bloquean la transcripción uniéndose a la ARN-polimerasa ADN dependiente
Rotura del ADN bacteriano (su metabolito tóxico)
Antimetabolitos 
Sulfonamidas
Dapsona
Trimetoprim
Inhibe la dihidropteroato sintetasa y bloquea la síntesis de ácido fólico
Inhibe la dihidropteroato sintetasa 
Inhibe la dihidrofolato reductasa y bloquea la síntesis de ácido fólico
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Β-lactámicos
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Prueba de Kirby Bauer
Requerimientos:
• Agar de Mueller Hinton (pH 7.2 a 7.4/ prof. 4mm)
• Solución salina estéril (tubos con 3 ml)
• Caldo de Mueller Hinton (tubos con 3 ml)
• Hisopos estériles
• Sensidiscos individuales
• Aplicadorde sensidiscos
• Escala de Mc Farland
Antibiogramas
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TUBO H2SO4 al 1% BaCl2 al 1%
Suspensión 
bacteriana (x108)
1 9.9 0.1 3
2 9.8 0.2 6
3 9.7 0.3 9
4 9.6 0.4 12
5 9.5 0.5 15
6 9.4 0.6 18
7 9.3 0.7 21
8 9.2 0.8 24
9 9.1 0.9 27
10 9.0 1.0 30
Escala de Mc Farland
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Antibiogramas
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Factores del antimicrobiano
• Farmacocinética
• Unión a proteínas plasmáticas
• Vías de administración
• Acción bacteriostática o 
bactericida
• Concentración en el sitio de la 
infección
Factores de influencian la correlación de resultados
antibiograma (in vitro) y respuesta clínica (in vivo)
Factores del microorganismo
•Virulencia
•Alta concentración de bacterias
•Infección mixta
•Desarrollo de resistencia durante el Tx
Factores del paciente
•Enfermedad de base
•Estado inmunológico
•Formación de abscesos
•Presencia de cuerpo extraño
•Función renal y hepática
•Cumplimiento del tratamiento
Antibiogramas
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Género Staphylococcus
 Cocos grampositivos 0.5 a 1.5 µ de diámetro
 Disposición en racimos irregulares, solos o en 
cadenas cortas
 No forman esporas
 Inmóviles
 Catalasa positivos
 Anaerobios facultativos
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http://upload.wikimedia.org/wikipedia/commons/5/57/Staphylococcus_aureus_01.jpg
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 Toma de muestras:
Hisopados
Secreciones
Líquidos biológicos
 Observación al microscopio:
Cocos grampositivos (en racimos)
Staphylococcus
Bacter 2019
Bacter 2019
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Staphylococcus aureus
Staphylococcus epidermidis
Staphylococcus saprophyticus
Especies de Staphylococcus
de mayor interés clínico 
Pruebas de identificación:
•Catalasa*
•Coagulasa
•Resistencia a Novobiocina
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Staphylococcus
Catalasa:
Bacter 2019
Staphylococcus
Bacter 2019
Bacter 2019
Staphylococcus saprophyticus
Novobiocina
Sensible Resistente (<16mm)
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Staphylococcus
Coagulasa Novobiocina Manitol
S. aureus + S +
S. epidermidis - S -
S. saprophyticus - R d
Bacter 2019
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S. aureus:
Piel:foliculitis, impétigo,furúnculos, celulitis, 
carbúnculos, infecciones de heridas en el post 
operatorio.
Infecciones profundas: endocarditis, meningitis, 
artritis, neumonía, osteomielitis, piomiositis, sepsis e 
insuficiencia múltiple de órganos
Enfermedad mediada por toxinas: intoxicación 
alimentaria, síndrome de escaldadura cutánea, 
síndrome de choque tóxico
Staphylococcus
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 Estafilococos coagulasa negativos:
Infecciones de cuerpos extraños a permanencia: 
Prótesis de válvulas cardíacas, alambres y electrodos de marcapaso 
permanentes, injertos vasculares, derivaciones de LCR, catéteres de diálisis 
peritoneal, prótesis articulares y catéteres intravenosos
Infecciones de vías urinarias: 
Nosocomiales (S. epidermidis) , 
Mujeres de consulta externa / VSA (S. saprophyticus)
Otras: 
Endoftalmitis posoperatoria, endocarditis de válvulas nativas y osteomielitis
Staphylococcus
Género Streptococcus
•Cocos grampositivos
•En pares o cadenas cortas o largas
•Catalasa negativos
•Oxidasa negativa
•Hábitat: 
•Flora de la boca y faringe de humanos y animales
•Algunos en intestino, vagina y piel
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Bacter 2019
Bacter 2019
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Género Streptococcus
Clasificación según Lancefield
Grupo y hemólisis Especie
•Beta hemolíticos
•Grupo A S. pyogenes
•Grupo B S. agalactiae
•Grupo C S. equisimilis, S. zooepidemicus o S. equi
•Grupo D *
•Grupo F S. anginosus
•Grupo G Grupo G
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Género Streptococcus
Clasificación según Lancefield
Grupo y hemólisis Especie
•No Beta hemolíticos (alfa/no)
•Grupo B S. agalactiae
•Grupo D Enterococos y No enterococos
•No Grupo B o D S. pneumoniae, viridans, etc.
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Género Streptococcus
Estreptococos del grupo D
Enterococos:
E. faecalis
E. faecium
E. avium
No enterococos
S. bovis
S. mutans
S. uberis Bacter 2019
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Bacter 2019
Bacter 2019
Bacter 2019
Género Streptococcus
Técnicas de aislamiento en agar sangre:
Aislamiento por estría e incisión
•rápida y fácil
•no requiere resiembras
•menor sensibilidad
•hemólisis no fácilmente visible
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Género Streptococcus
Técnicas de aislamiento en agar sangre:
Técnica de Placa Vaciada
•Sensible
•Colonias de fácil apreciación
•No requiere atmósfera especial
•Más laboriosa
•No indica cantidad de bacterias
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Género Streptococcus
Técnica de Placa Vaciada
Caldo SSF Base agar 
sangre
Sangre de 
carnero
Bacter 2019
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Género Streptococcus
Identificación:
Determinar tipo de hemólisis
Identificación presuntiva
•Susceptibilidad a Bacitracina
•Presencia de factor CAMP
•Hidrólisis de Esculina en presencia de bilis al 40%
•Tolerancia al caldo con NaCl al 6.5%
Caracterización serológica
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Sensibilidad a bacitracina
(grupo A)
Bacter 2019
Prueba del Factor CAMP 
(grupo B)Bacter 2019
Género Streptococcus
Hidrólisis de la bilis esculina Tolerancia al caldo “salado”
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Streptococcus pneumoniae
Bacter 2019
Sensibilidad a optoquina
Bacter 2019
Género Streptococcus
Tabla de identificación presuntiva
Hemolisis Bac. CAMP BEM NaCl 6.5% Opto
Grupo A b S - - - -
Grupo B b - + - - -
Enterococos b/a/- - - + + -
Grupo D (no entero) b/a/- - - + - -
No A,B ni D b - - - - -
Gpo. viridans a/- - - - - -
S. Pneumoniae a - - - - S
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Género Streptococcus
Procesos infecciosos
Serogrupo
A Faringitis, amigdalitis, otitis media, sinusitis, escarlatina,
erisipela, celulitis, impétigo, neumonía, endometritis, septicemia
Secuelas tardías: Fiebre reumática, glomerulonefritis
B Corioamnioitis, sepsis puerperal, sepsis y meningitis neonatales
C Infecciones respiratorias altas
D Infecciones del tracto genitourinario, infecciones de heridas, 
endocarditis
G Infecciones respiratorias altas, celulitis, septicemia, infecciones 
de tejidos profundos
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Bacter 2019
Conceptos básicos para la correcta recolección de 
muestras para estudios microbiológicos
◼ Material del verdadero sitio de la infección y con 
mínimo de contaminación de tejidos, órganos o 
secreciones adyacentes
❑ Muestra de endometrio contaminada con secreción vaginal
◼ Establecer períodos óptimos para la recolección de 
muestras para tener la mejor oportunidad de aislar a 
los verdaderos gérmenes causantes
❑ Pacientes con fiebre tifoidea se recupera S. typhi en MO y 
sangre la primera semana, en heces y orina en la segunda 
o tercera semanas
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Conceptos básicos para la correcta recolección de 
muestras para estudios microbiológicos
◼ Obtener suficiente cantidad para todas las 
pruebas solicitadas
❑ En muchos casos es factible
❑ Excepciones LCR y otros líquidos, secreciones 
conjuntivales e incluso sangre en neonatos o 
pacientes de difícil punción venosa
❑ No rechazar aunque sea escasa
◼ Es mejor una muestra escasa que nada
❑ Solicitar nueva muestra (trabajando la escasa)
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Conceptos básicos para la correcta recolección de 
muestras para estudios microbiológicos
◼ Utilizar dispositivos de recolección, recipientes para 
las muestras y medios de cultivo adecuados para 
asegurar el óptimo aislamiento de microorganismos
❑ Recipientes estériles
❑ Seguros para evitar derrames y contaminación
❑ Aptos para la recolección (boca ancha Vg.)
❑ Medios de transporte adecuados
Bacter 2019
Conceptos básicos para la correcta recolección de 
muestras para estudios microbiológicos
◼ Rotulación, transporte y conservación correctos de 
la muestra
❑ Nombre completo, ID de hospital y/o de laboratorio
❑ Tipo de muestra
❑ Fecha y hora de recolección
❑ Transporte inmediato a laboratorio
❑Conservación adecuada según la muestra
◼ LCR no refrigerar
◼ Orina refrigerar
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Conceptos básicos para la correcta recolección de 
muestras para estudios microbiológicos
◼ Siempre que sea posible obtener las muestras 
antes de la administración de antimicrobianos
❑ Estreptococos beta hemolíticos
❑ Neisseria gonorrhoeae
❑ Neisseria meningitidis
❑ Haemophilus influenzae
❑ Recordar que algunos antibióticos son bacteriostáticos, no 
bactericidas
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Protección 
◼ Bata 
◼ Guantes
◼ Cubrebocas
◼ Lavado de manos previo y posterior a la 
toma
◼ Lentes de seguridad
Bacter 2019
Recordar que en muestras para 
Microbiología
◼ Se esta trabajando con seres vivos 
◼ Algunos altamente patógenos
◼ Requieren determinadas condiciones vitales 
como temperatura, pH, nutrientes, hábitat, 
etc.
◼ Pueden pasar del paciente al personal 
¡¡¡ y viceversa !!!
Bacter 2019
En Laboratorio de Microbiología …
“ No todo lo que crece infecta ni 
todo lo que infecta crece” 
Enterobacterias
• Bacilos gramnegativos 
– 0.5-2.0 u de ancho y de 2 a 4 u de largo
• anaerobios facultativos
• fermentan la glucosa en medio anaerobio
• oxidasa negativos
• reducen nitratos a nitritos
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Agar McConkey
Bacter 2019
Agar McConkey
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Proteus (Swarming) 
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Agar SS
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R/A K/K K/A H2S+ K/A A/A A/A A/A A/A
H2S+ C/GAS+++ C/GAS+ S/GAS 
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Bacter 2019
K/K K/A H2s+ R/A
Bacter 2019
Bacter 2019
Bacter 2019
Bacter 2019
Bacter 2019
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+ Indol _
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Medio SIM, Medio semisólido que evalúa tres propiedades bioquímicas:
Sulfhídrico (H2S), Indol y Motilidad
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Agar Urea de Christensen
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Se presentan cuatro tubos con Agar TSI. Sobre la base de las reacciones observadas, 
menciona a que microorganismo podría corresponder cada tubo. En algunos casos 
hay mas de una opción
Menciona las diferentes reacciones en cada uno de los tubos dando 
ejemplos de microorganismos probables
Bacter 2019
Bacter 2019
Menciona probables microorganismos para cada tubo
Pseudomonas aeruginosa
• Bacilos gramnegativos
• Aerobios
• Habita en la tierra, el agua y superficie de 
las plantas 
• Oportunista
• Necesidades nutricionales básicas
• Resistente a altas concentraciones de NaCl 
y tinturas, antisépticos suaves
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Pseudomonas aeruginosa
Crecimiento en Agar Sangre de Carnero
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Pseudomonas aeruginosa (OXIDASA +)
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Pseudomonas aeruginosa 
Producción de pigmentos
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¿Que buscamos?
T. vaginalis 
Candida spp.
Vaginosis bacteriana
Micoplasma y Ureaplasma
N. gonorrhoeae
C. trachomatis
Protozoarios
Exudados genitales
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Gardnerella vaginalis
(Células “Clave”)
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Trichomonas vaginalis
Examen en fresco
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Trichomonas vaginalis
Tinción Giemsa
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Candida albicans
Examen en fresco y filamentación
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Candida albicans
Tinción Gram de exudado vaginal
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Candida albicans
Prueba de tubos germinales
Candida albicans
Tinción Gram de colonias en agar Sangre de carnero
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Neisseria gonorrhoeae
Cultivo en Agar de Thayer Martin
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Neisseria gonorrhoeae
Oxidasa y utilización de azúcares
Bacter 2019
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VIDEO
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Chancro duro: Sífilis
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Chancroide o chancro blando: 
Haemophilus ducreyi
Agentes etiológicos principales
Resfriado común Rinovirus, Coronavirus, mixovirus, 
paramixovirus y adenovirus
Rinitis purulenta Sinusitis: S. pneumoniae, H.influenzae, 
M. catarrhalis, P. aeruginosa
Faringoamigdalitis Estreptococcica
No estreptococcica
Infecciones de Vías 
Respiratorias Altas
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Agentes etiológicos de Faringoamigdalitis
Desconocida 30-40%
Estreptococcica (15 a 30%):
Serogrupos A, C y G
No estreptococcica:
Bacterias H.influenzae, Corynebacterium spp, Anaerobios, Gonococo,
M. pneumoniae, Chlamydia spp., etc.
Virus Rinovirus, Adenovirus, RSV, HSV, virus de influenza A, B;
virus de parainfluenzae 1,2,3,4; EBV,CMV, etc.
Hongos Candida spp.
Infecciones de Vías 
Respiratorias Altas
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• Otitis media
• Sinusitis
• Mastoiditis
• Absceso retrofaríngeo
• Absceso periamigdalino
• Neumonía
• Mediastinitis
• Meningitis
• Endocarditis
• Fiebre reumática
• Glomerulonefritis
Complicaciones de la Faringoamigdalitis estreptocócica
Infecciones de Vías 
Respiratorias Altas
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• Fuentes para aislar patógenos del Tracto Respiratorio Superior:
Organismo Nasofaringe Boca Garganta Ojos Oído Senos
N.meningitidis + + +
H. influenzae + + +
S. aureus+ + + +
S. pyogenes + +
S. pneumoniae + + + +
P. aeruginosa + +
N. gonorrhoeae + +
Moraxella +
C. diphteriae +
B. pertussis +
Candida spp. + +
Infecciones de Vías 
Respiratorias Altas
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Toma de muestra:
•Paciente en ayunas
•Sin aseo bucal
•Sin tratamiento AMB
Medios de Cultivo:
•Caldo nutritivo
•Agar Sangre de Carnero
•Agar Sal y Manitol
Exudado Faríngeo
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Siembra directa en Agar Sangre de Carnero:
Ventajas: Rápido, económico, semicuantitativo
Desventajas: No óptimo para SBH, se afecta por 
swarming de Proteus
Caldo y Placa vaciada:
Desventajas: Laborioso, requiere incubación, se afecta por 
swarming, no idea del número de colonias
Ventajas: Más sensible, colonias de fácil identificación
Sal y Manitol: Investigación de S. aureus*
Exudado Faríngeo
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Muestra Nasal
Toma de muestra: Directa o por drenado, sin tratamiento 
antimicrobiano (tópico o sistémico)
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• Siembra de la muestra:
Caldo nutritivo Placa vaciada
Agar sal y manitol Staphylococcus aureus*
Agar sangre de carnero Estreptococos y Neumococos
Agar chocolate H. Influenzae, N. gonorrhoeae y 
N. meningitidis
MacConkey Pseudomonas aeruginosa, 
Klebsiella pneumoniae
Muestra Nasal
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Bacilos gramnegativos de longitud variable
pleomórficos
inmóviles
no esporulados
requieren factores X (hemina) y V (NAD)
anaerobios facultativos
Haemophilus influenzae
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Requerimiento de factores X y V
Requiere sólo factor X H. aphrophilus
Requiere solo factor V H. parainfluenzae
Requiere factores X y V H. influenzae
Haemophilus influenzae
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Satelitismo a Staphylococcus aureus ( factor V)
H. influenzae H. parainfluenzae
agar sangre (factor X) agar soya tripticaseína
Haemophilus influenzae
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Satelitismo a discos con factores X y V
X V
H. aphrophilus
Haemophilus influenzae
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Satelitismo a discos con factores X y V
X V
H. parainfluenzae
Haemophilus influenzae
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Satelitismo a discos con factores X y V
X V
H. influenzae
Haemophilus influenzae
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H. influenzae en agar Sangre (Satelitismo con S. aureus)
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H. influenzae en agar Sangre (Satelitismo con S. aureus)
Bacter 2019
Bacter 2019
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Urocultivos
Microorganismos que invaden VU por vía ascendente:
Bacilos Gramnegativos:
Enterobacterias: E. coli, Proteus spp., Klebsiella, Enterobacter, etc.
Pseudomonas y Acinetobacter
Cocos Grampositivos:
S. aureus, S. saprophyticus, S. epidermidis
E. faecalis y S. agalactiae
Hongos:
Candida spp. y Torulopsis glabrata
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Urocultivos
Microorganismos que invaden VU por vía hematógena:
Bacterias:
Salmonella spp. Mycobacterium sp.
Parásitos:
Schistosoma haematobium
Hongos:
Histoplasma capsulatum
Virus:
Citomegalovirus y Adenovirustipo II
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Urocultivos
Recolección de la muestra de Orina
Primera orina de la mañana*
Frasco esterilizado
Técnica aséptica
Sin tratamiento antimicrobiano
Siembra inmediata o refrigeración*
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Agar CLED
Urocultivos
Criterios de interpretación según Kass
 Una densidad 105 UFC/ml indica infección,
 <105 UFC/ml podría indicar contaminación uretral o 
vaginal, 
 En tanto que se deben evaluar nuevamente las 
densidades entre 104 y 105 UFC/ml basándose en la 
información clínica.
 Las bacterias contaminantes generalmente aparecen en 
escasas cantidades, que varían según la morfología 
colonial. 
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Urocultivos
Criterios de interpretación según Stamm
 En presencia de sintomatología
 EGO compatible con IVU
 Una densidad 103 UFC/ml indica infección,
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Urocultivos
Factores que influyen en recuentos coloniales 
bajos aún en presencia de IVU activa:
 flujo urinario aumentado
 pH urinario bajo
 terapia antimicrobiana actual o reciente
 organismos de lento crecimiento 
(enterococos o Candida)
 técnicas de cultivo inapropiadas
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