Descarga la aplicación para disfrutar aún más
Vista previa del material en texto
CLARIFICACIÓN DE AGUAS TURBIAS PREVIA A LA ULTRAFILTRACIÓN: INFLUENCIA DEL USO DE COAGULANTES EN LA VIDA ÚTIL DE LA MEMBRANA. Almazán, Jorge Emilio; Gutiérrez Cacciabue, Dolores; Chávez Díaz, Lucía; Giménez Moreno, Azul; Santi, Mariana y Rajal, Verónica.Beatriz INIQUI-CONICET, Facultad de Ingeniería, Universidad Nacional de Salta. Avda. Bolivia 5150, +54 387 4255461. emilioalmazan8787@gmail.com RESUMEN La ultrafiltración (UF) es una alternativa para la obtención de agua segura que consiste en la retención de contaminantes en una membrana de tamaño de poros adecuado logrando así su remoción. Este proceso es efectivo para desinfectar aguas claras, pero cuando son aguas turbias, como las que se encuentran en los ríos de Salta (Argentina) durante el verano, la membrana se ensucia y daña rápidamente. Esto disminuye su vida útil, obligando a su limpieza o reemplazo, aumentando los costos. Para evitar este inconveniente, previo a la UF se realiza una etapa de clarificación utilizando coagulantes-floculantes. El objetivo de este trabajo fue comparar el comportamiento de dos floculantes: sulfato de aluminio (comercial) y mucílago de penca de tuna (natural) usados en la clarificación de aguas turbias previo a la UF. Se prepararon cuatro matrices acuosas a las cuales se les agregó sólidos de un río y se inoculó cantidades conocidas de tres bacterias: enterococos, Escherichia coli y Pseudomonas aeruginosa. A dos de las matrices se le agregó dosis óptima de: sulfato de aluminio a una y mucílago de penca de tuna a la otra. A las dos restantes no se les agregó clarificante simulando una sedimentación natural. Las cuatro matrices fueron posteriormente alimentadas al sistema de UF para evaluar el efecto sobre la vida útil de la membrana. Se midieron variables fisicoquímicas y microbiológicas al inicio y final del ensayo. La UF fue eficiente ya que en general no se detectaron bacterias en el permeado. Sin embargo, en el ensayo con sulfato de aluminio y en la matriz que simuló una sedimentación natural sí se encontró Pseudomonas aeruginosa en el permeado. Esto sería un indicio de que el clarificante natural es más prometedor que el comercial con respecto a la disminución de la turbidez y remoción de microorganismos. Palabras claves: sulfato de aluminio, mucílago de penca de tuna, membrana de UF, ensuciamiento ABSTRACT Ultrafiltration (UF) is an alternative for obtaining safe water. Its operating principle is the retention of contaminants in a membrane with an adequate pore size that achieves the pollutants removal. This process is highly effective to disinfect clear waters. Although a great fouling and damages are observed in the membrane when turbid waters, like those found in the rivers of Salta during the summer, are employed. Due to this, its useful life is reduced forcing cleaning or replacement and increasing the costs involved. To avoid this inconvenience, a clarification stage using coagulants-flocculants was performed before the UF. The aim of this study was to compare the performance of two flocculants: aluminum sulphate (commercial) and mucilage of tuna (natural) used in clarifying turbid waters previous to the UF. Four aqueous matrices were prepared. Solids collected from a river were added to each and known quantities of enterococcus, Escherichia coli and Pseudomonas aeruginosa were inoculated. The optimal dose of aluminum sulfate was added to an aqueous matrix, and the corresponding to the mucilage of tuna to another matrix. A natural sedimentation was simulated for the remaining two matrixes (no clarifiers were added). The four matrixes were subsequently fed to the UF system to evaluate the effect on the performance of the membrane. Physicochemical and microbiological variables were measured at the beginning and end of the test. The UF was in general efficient since no mailto:emilioalmazan8787@gmail.com bacteria were detected in the permeate. However, Pseudomonas aeruginosa were detected in the permeate of the assay with aluminum sulfate and its comparison with the matrix without flocculant This would be an indication that the natural clarifier is more promising than the commercial with regard to the decrease in turbidity and removal microorganisms. INTRODUCCIÓN El agua es un recurso indispensable para la vida pero siempre existieron dificultades con respecto a su disponibilidad y purificación. Existen numerosos tratamientos de desinfección que son de suma importancia para la población humana ya que de estos depende la calidad del agua para consumo y para diferentes usos antrópicos (Solis Silvan et al., 2012). El método de desinfección más utilizado es el agregado de cloro y/o sus derivados. Sin embargo, se demostró que esta técnica no asegura la completa eliminación de patógenos. Además existe evidencia de que durante el proceso de cloración pueden producirse subproductos organo-clorados, que pueden ser perjudiciales para la salud de la población (Di Zio et al., 2005) La Ultrafiltración (UF) es un proceso para el tratamiento y desinfección de agua de consumo humano y es una práctica moderna cada vez más extendida (Abdessemed et al., 2000; Loo et al., 2012; Mierzwa et al., 2012). Esta operación unitaria se basa en la retención de contaminantes en una membrana de tamaño de poros determinado (entre 0,001 y 0,1 µm) logrando así su remoción (Drioli et al., 2011). La UF presenta numerosas ventajas en comparación a los métodos convencionales de desinfección, entre los cuales se pueden nombrar que trabaja en continuo, ahorra energía, es fácilmente escalable y combinable con otros procesos, no emplea agentes químicos que puedan originar subproductos, es altamente efectivo para la eliminación de virus, bacterias, parásitos y materia orgánica natural (Cruz, 2012; Hinkova et al., 2002; Mierzwa et al., 2012), entre otros. Sin embargo, el principal inconveniente que presenta la UF y que restringe algunas veces su uso es el ensuciamiento de la membrana (fouling o biofouling cuando están involucrados microorganismos), cuando se trabaja con matrices acuosas con alta turbidez. Esto produce una disminución del flujo permeado de la membrana y de su selectividad, que ocasiona menores rendimientos y mayores costos de energía, operación y mantenimiento (Bellona et al., 2010; Vincent-Vela et al., 2012). En la provincia de Salta, durante la estación húmeda, el caudal de los ríos aumenta considerablemente, resuspendiendo partículas sólidas con microorganismos adheridos (Gutiérrez Cacciabue, 2013), principalmente de menor tamaño que ocasionan el aumento en la turbidez del agua. Estas aguas turbias con alta carga microbiana posiblemente ensuciarían notablemente la membrana de UF y la eficiencia del proceso disminuiría. Es por eso que se hace sumamente necesaria una etapa de clarificación del agua previa a su desinfección por UF. La clarificación es una de las etapas más importantes en el proceso de potabilización de las aguas, ya que permite la remoción de materiales de naturaleza coloidal en suspensión tales como arcilla, limo y lodos, mediante el proceso conocido como coagulación-floculación (Solis Silvan et al., 2012). Su uso como etapa previa a la UF permitiría el tratamiento de agua proveniente de cualquier fuente, incluso con alta turbidez, aumentando el rendimiento de la membrana y disminuyendo su ensuciamiento (Vincent-Vela et al., 2012). Para acelerar los procesos de sedimentación, se utilizan diferentes tipos de agentes convencionales que consisten en sales metálicas tales como el sulfato de aluminio, el cloruro férrico y el sulfato ferroso (Solis Silvan et al., 2012), siendo el primero el más utilizado. Sin embargo, algunos estudios han informado que en análisis realizados a muestras de aguas potabilizadoras se encontraron trazas de sulfato de aluminio, lo que representa un riesgo potencial para la salud humana, debido a la relación entre el aluminio residual y efectosneurológicos adversos (Bratby, 2006). A partir de esto, surge el interés en utilizar floculantes naturales de origen vegetal, entre ellos los extractos derivados de la tuna, para clarificar aguas superficiales turbias. Esta planta es parte del paisaje natural de la provincia de Salta ya que las condiciones ambientales son particularmente favorables para su crecimiento y se la encuentra asilvestrada cerca de los caminos y poblaciones (Lozano, 2011). El uso de estos clarificantes naturales implicaría un abaratamiento en los costos para la potabilización del agua, la posibilidad de que la población tenga acceso a ellos y la prevención de posibles riesgos para la salud (Fabris et al., 2010; Nkurunziza et al., 2009). El objetivo de este trabajo fue evaluar y comparar el efecto del agregado de dos floculantes, uno natural y otro comercial, en la remoción de la turbidez y de tres microorganismos seleccionados: enterococos, Escherichia coli y Pseudomonas aeruginosa durante el proceso de sedimentación, previo a la etapa de UF, para conocer su influencia en la vida útil de la membrana. MATERIALES Y MÉTODOS Preparación del stock bacteriano Previo a la realización de los ensayos, fue necesario preparar los stocks bacterianos correspondientes (Fig. 1). Para el Ensayo 1, el stock de bacterias se preparó a partir de tres cepas de colección seleccionadas: Escherichia coli (ATCC 25922), Enterococcus faecalis (ATCC 29212) y Pseudomonas aeruginosa (ATCC 27853). Para el Ensayo 2, el stock de bacterias se preparó a partir de dos cepas aisladas de muestras de agua recolectadas del Río la Caldera (Salta): Escherichia coli y enterococos y una muestra de colección de Pseudomonas aeruginosa (ATCC 27853) De la cepa en cuestión, se tomó una ansada y se sembró en dos tubos conteniendo 5 ml caldo nutritivo. Se incubó en estufa durante 18 h a 37 °C. Pasado este tiempo se mezclaron y fraccionaron ambos tubos de caldo en ocho tubos de microcentrífuga, los que se centrifugaron a 4.000xg durante 10 minutos. A continuación se descartó el sobrenadante y se resuspendió el pellet de células con 0,5 ml de buffer fosfato salino (PBS) 1x. Se agitó y centrifugó nuevamente (4.000xg, 10 min). El sobrenadante (PBS) se descartó y se resuspendió nuevamente con 0,5 ml de PBS fresco. De esta manera se eliminó todo residuo de caldo nutritivo para evitar que las bacterias siguieran creciendo. El stock (determinado mediante recuento en placa) es el que se utilizó para sembrar en las respectivas matrices acuosas para el ensayo de sedimentación. Para el Ensayo 2 el stock consistió en: 2,8 1010 UFC/ml de Escherichia coli, 1 109 UFC/ml de enterococos y 3 1010 UFC/ml de Pseudomonas aeruginosa. Ensayos de Sedimentación: sulfato de aluminio vs. mucílago de tuna Para poder evaluar el potencial efecto del uso de dos coagulantes, uno comercial y otro natural, para la clarificación de aguas previa a la UF, se realizaron dos ensayos: uno utilizando sulfato de aluminio como coagulante (Ensayo 1) y otro mucílago de tuna (Ensayo 2), comparando en ambos casos con una sedimentación natural (sin el uso de coagulantes) (Fig. 1). Para todos los ensayos de sedimentación se utilizó un tanque plástico de 30 litros de capacidad para simular un equipo sedimentador. En el Ensayo 1, para el armado de las dos matrices acuosas sintéticas se utilizó una combinación de dos fracciones de sólidos: 75-45 µm y <45 µm. La relación entre ambos tamaños de partículas fue de 2,25; la cual se calculó como la proporción de porcentajes de cada fracción: 30 % para partículas <45 µm y 70 % para aquellas de 75-45 µm. A continuación, en el tanque de plástico se añadieron 18 l de agua de red previamente autoclavada y neutralizada con tiosulfato de sodio (1,8%) para eliminar cualquier residuo de cloro que pudiera estar presente. A la matriz se le adicionaron 90 g de la combinación de sólidos (concentración final 5 g/l) y 2,5 ml del stock de cada una de las tres bacterias mencionadas anteriormente (Concentración inicial 106 UFC/ml), para alcanzar una concentración final de 1 105 UFC/ml. El Ensayo 1 se realizó dos veces. En el primero se le adicionó al tanque sedimentador, sulfato de aluminio puro en una concentración de 200 mg/l (Salas Aguero, 2013) y en el segundo no se adicionó coagulante, simulando una situación de sedimentación natural, con el objeto de comparar los resultados de ambas experiencias (Fig.1). A continuación se agitó durante tres minutos para permitir la homogeneización y la interacción de los microorganismos con las partículas sólidas y el floculante. El tiempo de sedimentación en este ensayo para ambas experiencias fue de 30 minutos. Figura 1: Esquema de los ensayos realizados. Para el Ensayo 2 se colocaron 20 l de agua recolectada del Río La Caldera. A continuación, se adicionaron 100 g de una fracción de sólidos de 75- 45 µm (concentración final 5 g/l) y un volumen determinado del stock de cada una de las tres bacterias antes mencionadas para alcanzar una concentración final aproximada de 105 UFC/ml: 75 µl de Escherichia coli, 2 ml de enterococos y 70 µl de Pseudomonas aeruginosa. Igual que para el Ensayo 1 Sólidos Microorganismos Sulfato de Aluminio Sedimentación con floculante comercial 30 minutos 18 l agua sintética Agua clarificada Desinfección con UF Sólidos Microorganismos Sedimentación natural 30 minutos 18 l agua sintética Agua clarificada Desinfección con UF Sólidos Microorganismos Mucílago penca de tuna Sedimentación con floculante natural 15 minutos 20 l agua ambiental Agua clarificada Desinfección con UF Sólidos Microorganismos Sedimentación natural 15 minutos 20 l agua ambiental Agua clarificada Desinfección con UF Ensayo 2 Ensayo 1, este segundo ensayo se repitió dos veces. En la primera experiencia se le adicionó al tanque sedimentador 20 g de tuna para lograr una concentración de 1 g/l que es la óptima encontrada en trabajos anteriores (Gimenez Moreno et al., 2016; Salas Aguero, 2013) y en la segunda no se adicionó mucílago de tuna, simulando una situación de sedimentación natural. Una vez que todo fue adicionado, se agitó durante tres minutos. El tiempo de sedimentación en este ensayo para ambas experiencias fue de 15 minutos. Tanto en el Ensayo 1 como en el 2 se midieron variables fisicoquímicas (Temperatura, pH, conductividad y turbidez) al inicio y al final de la sedimentación, utilizando una sonda multiparamétrica U10 HORIBA (Japón). Luego de realizar la sedimentación, se pasó el agua del tanque de sedimentación al tanque del equipo de UF para su posterior filtración. Cabe aclarar que los sólidos utilizados en ambos ensayos pertenecen al lecho de un río de Salta, los cuales fueron previamente colectados y clasificados por tamaño (Gutiérrez Cacciabue, 2013). Proceso de Ultrafiltración A continuación se procedió a filtrar cada una de las matrices acuosas clarificadas anteriormente con el fin de determinar la eficiencia del módulo de UF para la eliminación de los microorganismos presentes en el agua cuando se realiza una sedimentación como etapa previa con y sin el uso de floculantes. Además, se evaluó si en algún momento durante el proceso de ultrafiltración la membrana sufría alguna rotura (vida útil) que ocasionara la aparición de permeado microorganismos y/o sólidos. Para ello se utilizó un equipo de UF a escala laboratorio que consiste en un tanque de alimentación de acero inoxidable, una bomba peristáltica, el módulo de UF y mangueras para separar el flujo permeado del flujo retenido (Fig. 2) (Poma et al., 2012).El agua del tanque de alimentación de ambos ensayos se impulsó por medio de la bomba a través del módulo de UF, obteniéndose dos corrientes, la de permeado libre de microorganismos y partículas sólidasy la de retenido, que se recirculó al tanque de alimentación. El proceso continuó hasta alcanzar el menor volumen posible de retenido (Rajal et al., 2007). El módulo de UF utilizado en este caso fue un filtro de hemodiálisis marca GAMBRO modelo 24R de poliamida, descartable que en trabajos anteriores mostró gran eficiencia de desinfección (Cruz, 2012). Este módulo entra en el rango de ultrafiltración ya que soporta presiones transmembrana de 0,8 bar y tiene una configuración de fibra hueca. Figura 2. Equipo de ultrafiltración utilizado. Tanque de Alimentación Bomba Tanque de permeado Caudalímetro Cartucho de membrana Válvula Manómetro Antes de comenzar el proceso de UF, se tomó una muestra inicial (100 ml) del tanque de alimentación y luego se tomaron cada veinte minutos muestras (400 ml) del permeado en vasos estériles (Eaton, 2005). Recuento bacteriano La cuantificación de las bacterias se realizó por el método de filtración por membrana (Eaton, 2005): Escherichia coli en Agar mTEC modificado (Fluka, USA) a 44,5 °C durante 24 h (Método 1603; EPA 2002a) (EPA, 2002b), enterococos en Agar mE (Difco, USA) a 41 °C por 48 h y confirmación en Agar Esculina-Hierro (EIA) a 41 °C por 20 min (Método 1106.1; EPA 2002b)(EPA, 2002a) y Pseudomonas aeruginosa usando Agar Cetrimide (Britania, Argentina), incubando a 37 °C por 24 h (Método W6-NHS-UK; HPA 2007) (HPA, 2007). RESULTADOS Y DISCUSIÓN Caracterización fisicoquímica de las matrices acuosas En los dos Ensayos hubo una diferencia notable entre la turbidez inicial y final cuando se usó floculante (Tabla 1). En el caso del Ensayo 1, con sulfato de aluminio como floculante, se logró una remoción aproximada de la turbidez del 98%, mientras que con la sedimentación natural hubo una disminución de la turbidez del 88%. Cuando se usó el mucílago de penca de tuna como coagulante, se logró una remoción del 97% de turbidez, y en el mismo ensayo sin floculante la remoción de turbidez fue del 65%. Se pudo observar la diferencia de resultados obtenida entre ambos ensayos debido al tamaño de sólidos utilizado en cada uno, tanto en la turbidez inicial como en la final. Si bien en el Ensayo 1 se trabajó con sólidos de menor tamaño, el sulfato de aluminio demostró un gran poder clarificante y la turbidez residual fue más baja que en el Ensayo 2 debido al mayor tiempo de sedimentación. El pH, la temperatura y la conductividad no variaron significativamente en ninguno de los ensayos antes y después de la sedimentación (Tabla 1). Tabla 1: Variables fisicoquímicas medidas al Inicio y al Final de la etapa de sedimentación para las cuatro matrices acuosas, dos con y dos sin floculante para ambos ensayos: Temperatura (en °C), pH, conductividad (en mS/cm) y turbidez (en UNT). Ensayo 1 Ensayo 2 Variables Con floculante (sulfato de aluminio) Con floculante (Mucílago de tuna) Inicial Final Inicial Final pH 5,6 6,4 8,1 7,8 Turbidez 893 10 459 14 Temperatura 20,7 20,5 11,6 12,0 Conductividad 0,26 0,26 0,25 0,25 Sin floculante Sin floculante Inicial Final Inicial Final pH 8,5 8,4 8,7 9,1 Turbidez 840 103 387 130 Temperatura 18,2 18,1 16,0 16,0 Conductividad 0,28 0,28 0,22 0,24 Análisis microbiológicos durante la UF Como se dijo anteriormente, los Ensayos de UF se realizaron con el objeto de determinar si la membrana se veía afectada por la composición de la matriz acuosa, produciéndose su ensuciamiento y/o rotura, lo que podría disminuir la eficiencia de remoción de microorganismos. En ambos ensayos se observó que la membrana retuvo los enterococos y Escherichia coli ya que no fueron detectados en los permeados (Fig 3 y 4). En el Ensayo 1, la eficiencia de remoción de Enterococcus faecalis y Escherichia coli en los dos experimentos (tanto con floculante comercial y con sedimentación natural) fue del 100% (Fig 3.4a, b) y se mantuvo constante hasta el final de la UF. Sin embargo, no sucedió lo mismo con Pseudomonas aeruigonsa. En la Experiencia 1 (Fig 3 a), cuando se utilizó el coagulante comercial para producir la sedimentación previo a la UF, hasta los 120 min (2 horas) la remoción de la Pseudomonas aeruginosa fue del 100% pero a partir de allí, se la detectó en el permeado. Esta situación se mantuvo y se incrementó levemente hasta el final del experimento (Fig 3 a) produciendo una leve disminución de la eficiencia al final de la experiencia (99,9 %). En la segunda experiencia en la que no se utilizó coagulante comercial en la sedimentación, (Fig 3b) a los 60 minutos se pudo notar la aparición de Pseudomonas aeruginosa en el permeado además de mencionar que el flujo de permeado aumentó, lo que podría indicar una posible rotura de la membrana. La eficiencia de remoción disminuyó de 100 % a 99, 81 % a los 60 min y a 99,71 % a los 80 min. Además, esta aparición, comparada con la Experiencia 1, se produjo mucho antes y la filtración fue más rápida (se tomaron por lo tanto menos muestras). En el Ensayo 1, cuando la turbidez final fue más elevada (cuando no se utilizó un coagulante comercial), los sólidos presentes y la materia orgánica que podría estar presente podrían ser los potenciales responsables de la rotura de la membrana, permitiendo el paso de Pseudomonas aeruginosa al permeado. Este inconveniente redujo la eficiencia de retención de la membrana y la eficiencia global del equipo de sedimentación. Figura 3.Recuento en unidades formadoras de colonias por 100 ml (UFC/100 ml) de las tres bacterias: Pseudomonas aeruginosa (PA), Escherichia coli (EC) y Enterococcus faecalis (EN) al inicio (tiempo cero) y en el permeado obtenido del proceso de ultrafiltación (UF) a distintos tiempos: a) con floculante (c/floc) y b) sin floculante (s/floc) comercial (sulfato de aluminio). En el Ensayo 2, en ambos casos (con o sin floculante natural) cuando se evalúo la UF, se determinó que la membrana retuvo todos los microorganismos, ya que no fueron detectados en el permeado (Fig 4 a y b). La eficiencia de remoción de E. coli, enterococos y Pseudomonas aeruginosa fue del 100% y se mantuvo constante hasta el final de la UF. Esto indicó que la carga de sólidos que ingresó a la unidad de UF, no produjo el ensuciamiento límite de la membrana lo que hubiese resultado en una ruptura de la misma (y la presencia de microorganismos en las muestras de permeado) o un flujo permeado nulo en un determinado tiempo del ensayo. El uso de mucílago de penca de tuna como floculante pareciera tener algún tipo de efecto de inactivación o de sedimentación de todas las bacterias analizadas, pero particularmente en Pseudomonas aeruginosa, debido a que en el Ensayo 2 no ésta no fue detectada en el permeado pero en el Ensayo 1 sí . Sin embargo, su presencia, también se puede deber a que en el Ensayo 1, se utilizaron sólidos de tamaño más pequeño, lo que puede haber dañado la membrana, provocando el paso del microorganismo a través de la misma. Además, el tiempo de sedimentación y las matrices utilizadas fueron diferentes, esto también podría estar influyendo en el comportamiento de dicha bacteria. Una propiedad importante que presenta la Pseudomonas aeruginosa es la capacidad de formar de biofilms sobre la superficie de la membrana (Cruz, 2012) lo que podría haber producido una disminución del flujo permeado en los Ensayos y eventual ruptura de la membrana. Figura 4. Recuento (UFC/100 ml) de las tres bacterias: Pseudomonas aeruginosa (PA), Escherichia coli (EC) y enterococos (EN) al inicio (tiempo cero) y en el permeado obtenido del proceso de ultrafiltación (UF) a distintos tiempos: a) con (c/floc) y b) sin (s/floc) floculante natural (mucílago de penca de tuna) agregado de floculante durante el proceso de sedimentación, previo a la UF. La tecnología de UF para la desinfección de aguas ha sido utilizada también por otrosautores para evaluar la eficiencia de las membranas. Cruz (2012) determinó que la eficiencia de desinfección de la UF para un modelo bacteriano utilizado fue de aproximadamente 8,4 unidades logarítmicas y afirmó que la remoción no estuvo afectada por la composición de la matriz acuosa. Cuando estudió la eficiencia de la desinfección por UF en aguas ambientales, encontró mejores resultados en aguas provenientes de pozos poco profundos, con mayor presencia de iones divalentes y materia orgánica que para el agua superficial. Guo et al. (2009) estudiaron el proceso de UF con el uso de membrana de fibra hueca para el tratamiento de las aguas superficiales. Los experimentos mostraron resultados óptimos con una remoción de microorganismos cercana al 100%, y sin diferencia entre las diferentes aguas que utilizaron como alimentación. Dentro de las desventajas que presenta la ultrafiltración y la principal causa por la que el uso de membranas no se haya extendido en mayor medida en el campo del tratamiento de aguas, es el ensuciamiento el cual reduce la vida útil de ésta e incrementa la presión transmembrana lo que se traduce en un aumento del consumo de energía (Gao et al., 2011), también disminuye su eficiencia y produce una disminución del flujo permeado (Costa et al., 2006). CONCLUSIÓN Se determinó que durante el proceso de UF y con el acoplamiento una unidad de sedimentación como etapa previa, la remoción de E. coli y E. faecalis fue del 100%, tanto en el caso en que se usó un floculante del tipo comercial y para el caso de sedimentación natural. Sin embargo, para el caso de las Pseudomonas aeruginosa la eficiencia de remoción comenzó a disminuir al final del Ensayo 1 para ambas experiencias (con y sin floculante). Esta disminución en la remoción fue más marcada para el caso de la experiencia en la que no se utilizó el sulfato de aluminio (sedimentación natural). En el Ensayo 2 cuando se trabajó con mucílago de tuna, la membrana de UF retuvo totalmente todos los microorganismos, ya que no fueron detectados en el permeado, siendo la eficiencia de remoción de 100% para todos los casos, y se mantuvo constante hasta el final de la UF. A pesar de que pudo observarse que en general la vida útil de la membrana no disminuyó a lo largo del tiempo, y que acoplar una etapa de sedimentación reduce la turbidez principalmente de manera significativa, será necesario realizar otros ensayos, a escala piloto y a mayores tiempos, y controlando todas las variables, para comprobar la robustez de los resultados encontrados. REFERENCIAS Abdessemed, D., Nezzal, G., and Ben Aim, R. Coagulation—adsorption—ultrafiltration for wastewater treatment and reuse. Desalination 131, 307-314.2000. Bellona, C., Marts, M., and Drewes, J.E. The effect of organic membrane fouling on the properties and rejection characteristics of nanofiltration membranes. Separation and Purification Technology 74, 44- 54.2010. Bratby, J. Coagulation and Flocculation in Water and Wastewater Treatment. 2nd edn (IWA Publishing).2006. Costa, A.R., de Pinho, M.N., and Elimelech, M. Mechanisms of colloidal natural organic matter fouling in ultrafiltration. Journal of Membrane Science 281, 716-725.2006. Cruz, M.C. Desinfección de aguas por ultrafiltración: Influencia de la matriz acuosa y de la aplicación de membranas con propiedades bactericidas. Tesis Doctoral, Facultad de Ingeniería Universidad Nacional de Salta, Salta - Argentina.2012. Di Zio, A., Prisciandaro, M., and Barba, D. Disinfection of surface waters with UF membranes. Desalination 179, 297-305.2005. Drioli, E., Stankiewicz, A.I., and Macedonio, F. Membrane engineering in process intensification—An overview. Journal of Membrane Science 380, 1-8.2011. Eaton, A.D., Clesceri, L.S., Rice, E.W., Greenberg, A.E. Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater. 21 edn (Washington, DC. Estados Unidos.: APHA, American Public Health Association).2005. EPA. Environmental Protection Agency: Method 1106.1: Enterococci in Water by Membrane Filtration Using membrane-Enterococcus-Esculin Iron Agar (mE-EIA).2002a. EPA. Environmental Protection Agency: Method 1603: Escherichia coli (E. coli) in Water by Membrane Filtration Using Modified membrane-Thermotolerant Escherichia coli Agar (Modified mTEC).2002b. Fabris, R., Chow, C.W., and Drikas, M. Evaluation of chitosan as a natural coagulant for drinking water treatment. Water Science & Technology 61, 2119–2128.2010. Gao, W., Liang, H., Ma, J., Han, M., Chen, Z.-l., Han, Z.-s., and Li, G.-b. Membrane fouling control in ultrafiltration technology for drinking water production: A review. Desalination 272, 1-8.2011. Gimenez Moreno, A., Almazán, J.E., Gutiérrez Cacciabue, D., Romero- Dondiz, E., and Rajal, V.B. La penca de tuna como clarificante natural en procesos de sedimentación de aguas turbias. In Libro de Actas del IX Congreso Argentino de Ingeniería- CADI 2016. Guo, X., Li, Q., Hu, W., Gao, W., and Liu, D. Ultrafiltration of dissolved organic matter in surface water by a polyvinylchloride hollow fiber membrane. Journal of Membrane Science 327, 254-263.2009. Gutiérrez Cacciabue, D. Resistencia y persistencia de organismos patógenos en ambientes acuáticos de la provincia de Salta. Sistemas para la mitigación y el control de la contaminación. Tesis Doctoral, Facultad de Ingeniería Universidad Nacional de Salta, Salta - Argentina.2013. Hinkova, A., Bubnı́k, Z., Kadlec, P., and Pridal, J. Potentials of separation membranes in the sugar industry. Separation and Purification Technology 26, 101-110.2002. HPA. Health Protection Agency. Method Enumeration of Pseudomonas aeruginosa by membrane filtration. UK. Online: http://www.iremsaglik.com/HPA/w6.pdf. Loo, S.-L., Fane, A.G., Krantz, W.B., and Lim, T.-T. Emergency water supply: A review of potential technologies and selection criteria. Water Research 46, 3125-3151.2012. Lozano, L. Ecofisiología de la tuna (Opuntia ficus-indica (L.) Mill.). Avances en Horticultura –Review. Disponible en www.horticulturaar.com.ar.2011. Mierzwa, J.C., da Silva, M.C.C., Veras, L.R.V., Subtil, E.L., Rodrigues, R., Li, T., and Landenberger, K.R. Enhancing spiral-wound ultrafiltration performance for direct drinking water treatment through operational procedures improvement: A feasible option for the Sao Paulo Metropolitan Region. Desalination 307, 68-75.2012. Nkurunziza, T., Nduwayezu, J.B., Banadda, E.N., and Nhapi, I. The effect of turbidity levels and Moringa oleifera concentration on the effectiveness of coagulation in water treatment. Water Science & Technology 59, 1551- 1558.2009. Poma, H.R., Gutiérrez Cacciabue, D., Garcé, B., Gonzo, E.E., and Rajal, V.B. Towards a rational strategy for monitoring of microbiological quality of ambient waters. Science of The Total Environment 433, 98- 109.2012. Rajal, V.B., McSwain, B.S., Thompson, D.E., Leutenegger, C.M., Kildare, B.J., and Wuertz, S. Validation of hollow fiber ultrafiltration and real-time PCR using bacteriophage PP7 as surrogate for the quantification of viruses from water samples. Water Research 41, 1411-1422.2007. Salas Aguero, S.E. Ensayos de clarificación con extractos derivados de la Tuna. In Informe final de Beca de investigación para estudiantes avanzados (Directora: Verónica Rajal. CIUNSa.Universidad Nacional de Salta). Solis Silvan, R., Laines Canepa, J., and Hernandez Barajas, J. Mezclas con potencial coagulante para clarificar aguas superficiales. Revista Internacional de Contaminación Ambiental 28.2012. Vincent-Vela, M.-C., Cuartas-Uribe, B., Álvarez-Blanco, S., and Lora-García, J. Analysis of an ultrafiltration model: Influence of operational conditions. Desalination 284, 14-21.2012. http://www.iremsaglik.com/HPA/w6.pdf http://www.horticulturaar.com.ar.2011/
Compartir