Histología Cuestionario

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Aroñ K Mejias Grupo 10 
	6
República Bolivariana de Venezuela
Universidad de Carabobo
Facultad de Ciencias de la Salud
Departamento de Ciencias Morfológicas y Microscópicas
Catedra de Histología y Embriología 
Cuestionario N1
Técnicas histológicas y microscopia
Lic. Beatriz Cohelo
Cuadro comparativo de técnicas histológicas y frotis de sangre
	
	Técnica histológica
	Frotis de sangre
	1.Tejido
	Tejido epitelial, conjuntivo,
muscular.
	Tejido sanguíneo.
	2.Obtencion de muestra
	Autopsia, necropsia o
biopsia.
	Inyección o punción
intravenosa o de capilares.
	3. Tamaño de la muestra 
	2-3mm
	3-4 ml.
	4. Fijación.
	Formol 10%.
	Metanol 10%.
	5. Deshidratación, aclaración,
inclusión.
	Requiere de estos procesos.
	No se realizan estos
procesos.
	6. Montaje.
	Corte de tejido fijado en una
lámina portaobjetos.
	Extensión de tejido lámina
porta objetos.
	7. Los colorantes.
	Acidofilos y basofilos
	Acidofilos y basofilos
	8. Técnica de tinción 
	Hematoxilina y eosina
	Wright (azul de metileno y
eosina).
1. Cuadro comparativo entre Microscopia Óptica y Electrónica
	
	Óptica 
	Electrónica 
	Radiación empleada
	Haz de luz.
	Haz de electrones.
	Fuente de radiación
	Lámpara de luz visible
	Cátodo o catión (electrones).
	Longitud de onda
	2000 -7500 A.
	0.37-0.86 A.
	Medio presente en el tubo. Límite de resolucion
	Aire
0,2 micrómetros
	Vacío
De transmisión: 0,05nm
De barrido: 2,5nm.
	Lentes
	Cristal.
	Electromagnéticos.
	Tipo de imagen
	Ocular.
	Placa fotográfica
	Aumento del microscopio
	100x-1000x.
	De transmisión: 10000x100000
 De barrido:1000x-10000.
	Medio de fijación del tejido
	Fenol/ Formol.
	Gluteraldehído.
	Medio de inclusión del
tejido
	Parafina
	Resina epoxi (monomérica).
	Espesor de corte del tejido
	8-10 micrómetros.
	20-100 nm
	Instrumento de corte de la
muestra
	Micrótomo de acero.
	Micrótomo de diamante.
	Colorantes empleados
	Ácidos y básicos:
Hematoxilina - eosina,
Wright, Pas Schiff, fucsina,
azul de metileno, entre otras
	Metales pesados: Nitrato de
Uranios, tetroxido de osmio,
entre otros.
	Contraste
	Absorción y reflexión.
	Scattering
2. Cuadro resumen de la técnica de preparados histológicos.
	Deshidratación
	Facilitar la
penetración de
solventes que no son
solubles en agua
	Etanol creciente. Se
sumerge la muestra
en varios frascos de
etanol en
concentraciones
crecientes.
	Agua sustituida por
etanol
	Aclaramiento
	Facilitar la
penetración de
parafina ya que no
es soluble en etanol.
	Xilol (xileno). Se
sumerge en xilol que
es miscible en
alcoholes y en la
parafina.
	Muestra aclara, lista
para ser incluida.
	Infiltración
	Endurecer la muestra
para dar firmeza al
momento de corta
	Derretir la parafina,
sumergir la muestra.
Se coloca en un
bloque la muestra
con parafina para
que esta se enfrié y
solidifique
	Muestra firme y
solidificada
	Encastramiento del
tejido
	Preparación del taco.
Soporte para el
montaje y corte en el
micrótomo.
	El bloque se coloca
sobre un soporte de
madera o plástico
	Muestra en soporte
para corte.
	Corte
	Disminuir el tamaño
para que pueda ser
visible las estructura
en el microscopio.
Un corte denso y
grande no es visible.
	Se realizan cortes
finos en micrótomo
	Cortes de 8-10
micrómetros.
	Montaje
	Permite prepara la
muestra a su
visualización,
dándole soporte
	Se monta en un
porta objetos.
	Corte sobre el
portaobjetos
(montaje).
	Desparafinación
	Disolver la parafina,
facilita la penetración
del etanol.
	Sumergir en xilol.
	Muestra sin parafina
lista para
rehidratarse
	Hidratación
	Permite la
penetración de los
colorantes.
	Sumergir en frascos
con etanol
decreciente hasta
llegar al agua.
	Muestra hidratada.
	Coloración
	Contrasta la
estructura, otorgando colores que facilitan
su estudio.
	Agregar colorantes la
muestra.
	Muestra teñida
	Deshidratación
	Elimina el agua para
facilitar la absorción
en medios
hidrófobos.
	Sumergir en frascos
de etanol
decreciente.
	Sustitución de agua
por alcohol.
	Aclaración
	Facilita la
penetración de la
resina y da
transparencia
	Sumergir en xilol
	Muestra lista para
montaje.
	Montaje final
	Permite conservar la
muestra
	Se añade bálsamo
de Canadá y se
cubre con un
portaobjetos.
	Muestra lista para
ser observada.
4. Menciona los tipos de colorantes o tinciones histológicas y a que estructuras son afines.
· Hematoxilina: sal tiñe sustancias o estructuras ácidas, basofilas y núcleo.
· Eosina: sal que tiñe sustancias o estructuras básicas que son acidofilas y citoplasma.
· Hematoxilina férrica: Tiñe el núcleo y estriaciones del músculo esquelético.
· Fucsina: Tiñe fibras elásticas.
· Giemsa: Usado en el frotis de sangre, tiñe las células del tejido sanguíneo, es una tinción
· Metacromática, tiñe las estructuras acidofilas y basofilas.
· Wright: Usado en el frotis de sangre. Tiñe: acido nucleicos, núcleo celular, eritrocitos, leucocitos, algunas proteínas.
· Tricrómico de Mallory: Tiñe las fibras de colágeno de la matriz extracelular, eritrocitos y fibras musculares esqueléticas y cardíacas.
· Sudan III: Lípidos
· Azul de metileno: Núcleo, ácidos nucleicos
· Tionina: Nucléolo.
· Feulgen: Tiñe las cromatinas de las células en interfase y división celular.
· Peryódico reactivo de Schiff: Tiñe los hidratos de carbono, glucógeno, las fibras reticulares en tejido conjuntivo, y el moco en células y tejidos.
· Fluoresceína: Usada en la inmunocitoquímica, hace visible los anticuerpos.
5. Partes de un microscopio óptico
	Mecánicas
· Cabezal
· Brazo
· Revolver
· Platina
· base
· Carro (desplazamiento de la platina)
· Tornillos macrométrico y micrométrico
	Partes ópticas
· Lámpara (Foco)
· Condensador /Diafragma
· Objetivos
· Oculares