MÉTODOS DE DIAGNOSTICO DE LAS ALERGIAS

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CECILIA TORRES R. 
 
MÉTODOS DE DIAGNOSTICO DE LAS ALERGIAS 
 
HISTORIA CLINICA: 
La historia clínica consistirá en recoger de forma metódica, exhaustiva y dirigida toda la información 
que el PX o su familia puedan aportar sobre sus manifestaciones clínicas. 
Con los datos que nos expliquen se orientará el diagnóstico, la posible etiología del proceso, la 
valoración de la gravedad, se descartarán comorbilidades y posteriormente se solicitarán los 
exámenes complementarios necesarios para confirmar el diagnóstico o para realizar el diagnóstico 
diferencial y se instaurará el tratamiento preciso. 
1. Historia familiar de alergia e 1 o ambos progenitores (↑asma) = Mecanismos epigenéticos. 
2. Historia personal 
a. Relación inmediata entre la exposición a un alérgeno y la aparición de los síntomas. 
b. Síntomas y signos relevantes (patrones típicos de EA). 
 
 
 
 
 
3. Conocer la etiología: 
a. Entorno natural y ecosistemas de su zona (trabajo y escuela) → Alergeno prevalente 
en su entorno. 
b. A mayor edad del niño, más probable es la etiología alérgica de los síntomas. 
c. A. RESPIRATORIO 
i. Se deben investigar la estacionalidad y la relación con los datos climáticos, 
la cronología de los síntomas y su relación con la exposición a alérgenos en 
el domicilio, en la escuela, en el lugar de las actividades extraescolares sean 
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al aire libre o en recintos cerrados, el contacto con alérgenos ocupacionales 
debidos a trabajo de los padres en el domicilio o a contacto con su ropa de 
trabajo. 
d. A. DIGESTIVO/ CUTANEA 
i. Contacto con alimentos, látex, fármacos y los cofactores como la suma de 
la ingesta de un determinado alimento previa al ejercicio. 
4. VISITAS SUCESIVAS DE SEGUIMIENTO Y REEVALUACIÓN 
5. EVOLUCIÓN DE LA ENFERMEDAD ALÉRGICA EN LA EDAD PEDIÁTRICA. 
6. MECANISMOS INMUNOLÓGICOS 
 
 
 
 
 
 
Interrogar acerca de la frecuencia de los síntomas (cuántos días a la semana los tiene, si son 
constantes o intermitentes) o si se manifiestan durante alguna estación del año en especial. 
Interrogar acerca de los medicamentos que toma el paciente 
Hay que considerar que el PX puede tener distintas EA a lo largo de su vida, un mismo PX puede 
padecer varias EA al mismo tiempo. 
PX refiere síntomas de congestión nasal, rinorrea abundante, hiposmia, estornudos en salva (>4 
continuos) o prurito nasal debe sospecharse rinitis alérgica. En muchos casos la rinitis alérgica 
coexiste con la conjuntivitis alérgica. 
PX refiere tos, sensación de opresión torácica, disnea o falta de aire y sibilancias se sospechará 
asma. Aquí puede solicitarse la determinación de IgE sérica total, además de pruebas cutáneas y, 
en casos específicos determinación de IgE específica frente a los alergenos sospechosos. 
PX con manifestaciones gastrointestinales o cutáneas atribuidas a la ingesta de algún alimento las 
pruebas cutáneas, sobre todo las que se practican con el alimento fresco (prick to prick) y la 
determinación de IgE específica frente a los alergenos alimentarios sospechosos. 
Cualquier medicamento puede provocar reacciones alérgicas. Por esto, si en el interrogatorio el 
paciente refiere síntomas gastrointestinales o cutáneos al ingerir cualquier medicamento, el estudio 
indicado será una prueba de activación de basófilos. 
 
 
 
 
 
 
 
Interrogatorio debe ser adecuado por médicos de 1° contacto para sospecharlas. 
DX se basa en la historia clínica, estudios funcionales, pruebas complementarias in vivo e in 
vitro. 
Datos aportados se complementarán con la adecuada exploración física y, de acuerdo con el 
diagnóstico de sospecha, se solicitará el método adecuado. 
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La identificación de los alérgenos requiere el uso de herramientas diagnósticas complementarias 
para descubrir la sustancia responsable del cuadro clínico que se está investigando. 
Las distintas pruebas alérgicas incluyen: Pruebas cutáneas, Análisis de sangre y Pruebas de 
exposición o provocación controlada. 
PRUEBAS CUTANEAS: Según el tiempo de la lectura del resultado de la prueba, se clasifican en 
pruebas de lectura inmediata y de lectura tardía. 
En la prueba se utiliza siempre un CONTROL POSITIVO (Histamina) y un COTROL NEGATIVO 
(Suero salino) = Validez de la prueba. 
PRUEBAS CUTÁNEAS 
• Constituyen el 1° método utilizado para detectar alérgeno(s) responsable(s) de la enfermedad 
alérgica y establecer así el diagnóstico. 
• También permiten llevar un seguimiento y establecer el pronóstico de las enfermedades 
alérgicas. 
El tiempo entre la exposición al alérgeno causal y la aparición de la reacción determina dos tipos 
de reacciones: 
LECTURA INMEDIATA LECTURA TARDIA 
INDICADA: PX con sospechade una reacción 
inmediata (30-120 minutos desde la exposición 
al alérgeno) = Hipersensibilidad tipo I. 
DETECTA: Presencia de la IgE. (Produce 
liberación de sustancias vasoactivas o 
mediadores de inflamación, responsable de 
síntomas alérgicos.) 
INDICADA: PX con una reacción de 
Hipersensibilidad tipo IV. 
Clínica inicia en horas o días después de la 
exposición. 
DETECTA: Células linfocitos T. 
 
ANÁLISIS DE SANGRE O PRUEBAS DE LABORATORIO. 
• Analizar la respuesta causal específica = Identificar el alérgeno. 
• Determinar el mecanismo inmunológico de la reacción alérgica (adecuado control y TX del 
PX). 
En base a la fracción de la sangre en la que se realizan estos análisis, se clasifica en: 
TÉCNICAS SEROLÓGICAS TÉCNICAS CELULARES 
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USA: Suero de PX (fracción sanguínea que 
queda una vez son retiradas las células). 
CONTIENE: 
• Inmunoglobulinas. 
• Mediadores de la reacción alérgica. 
USA: Sangre periférica del PX. 
CONTIENE: 
• Células efectoras = Linfocitos y/o 
basófilos. 
Se observa su actividad tras su estimulo IN 
VITRO con el alergeno sospechoso. 
INMEDIATAS 
Minutos – 1 a 2 horas. 
Mediada por IgE 
TARDIAS 
Varias horas – Incluso días. 
Mediada por linfocitos 
 
Pruebas de alergia IN VIVO Pruebas de alergia IN VITRO 
Técnicas realizadas dentro de un organismo 
vivo y son de alta complejidad. El tiempo de 
observación es en tiempo real. 
Técnicas realizadas en un ambiente controlado 
fuera del organismo vivo. El tiempo de 
observación es limitado 
PRICK TEST O PRUEBA INTRAEPIDERMICA 
(Reacción de hipersensibilidad inmediata) 
↑Practicada y usada (ASMA). 
Para alergia mediada por IgE. 
↑ Sensibilidad y buena Especificidad. 
Proceso: 
1. Tener 1 gota del extracto del 
alergeno (inhalables/alimentarios). 
2. Colocar gota del extracto alérgico 
en la cara anterior del antebrazo o 
espalda. 
3. Hacer ligera punción con una 
lanceta, para que el alergeno 
penetre en epidermis. 
4. Penetra y contacta con mastocitos. 
PX Sensibilizado: Roncha o habón (>3cm 
diámetro) rodeada de un eritema. 
Inicia: Pocos minutos. 
Termina: 15-20 min → Realizar lectura. 
 
* Prueba variante: PRICK-PRICK 
USADA: Cuando en el proceso de elaboración 
del extracto se inactivan proteínas alergénicas, 
por ser más lábiles (Frutas- Verduras = Falso-) 
UTILIZA: Productos naturales. 
PROCESO: 
1. Se coloca un pequeño fragmento del 
alimento natural u otro alérgeno 
sospechoso. 
2. Con una lanceta se pincha el alimento 
y luego la piel. 
En el caso de frutas o verduras, se deben 
probar la piel y la pulpa por separado. 
Exámenes de laboratorio básicos 
Incluye: 
• Biometría hemática. 
• Química sanguínea. 
• Citología nasal. 
• Estudio coproparasitoscópico. 
Poco concluyentes y poco especifico. 
 
Inmunoglobulina E sérica total 
USADO: Apoyar una sospecha clínica y valorar 
adecuadamente los valores de IgE específica. 
 
La cifra elevada de IgE total es un marcador de 
ATOPIA (En todas las alergias pero dermatitis 
atópica ↑elevado) Haya o no clínica. 
 
IgE se encuentra en bajas cantidades en el 
suero. 
• PX atópicos: >100 kU/L. 
• En niños la IgE total se eleva 
progresivamente hasta la edad de 10-
15 años: 300 kU/L sin enfermedad.Concentraciones elevadas de la IgE total se 
encuentran, con frecuencia, en infecciones por 
parásitos y en reacciones de hipersensibilidad 
tipo I, enfermedades alérgicas respiratorias 
(rinitis o asma), digestivas (alergia alimentaria, 
esofagitis eosinofílica) o cutáneas (dermatitis 
atópica), enfermedades infecciosas-
inflamatorias. 
 
NO se efectúe de forma rutinaria debido a su 
baja sensibilidad y especificidad en el 
diagnóstico de alergia. 
• Infecciones por parásitos, patologías 
infecciosas, inflamatorias, neoplásicas 
o en inmunodeficiencias. 
• Intervienen factores ambientales: 
Alcohol y tabaco (↑IgE) 
 
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Solo como una medida complementaria para el 
diagnóstico de asma alérgica. 
PRUEBAS INTRADERMICAS (De lectura 
INMEDIATA) O INTRADERMOREACCION 
>Sensibles 
UNICA para: PX con respuesta débil en las 
pruebas por punción o es negativo y datos 
clínicos muy sugerentes de alergia. 
USADA: Alergia a fármacos y venenos de 
himenópteros. 
NO usar en alimentos ni inhalantes. 
Proceso: 
1. Inyección (en solución acuosa) directa 
del extracto alergénico con aguja fina 
en la dermis superficial (concentración 
del extracto es menor y diluido varias 
veces). 
2. Hecho en el antebrazo o espalda. 
Lectura: 15 a 20 minutos. 
PX SENSIBILIZADO: Pápula =/> a 5 mm 
de diámetro. 
Determinación de IgE específica 
Biomarcador utilizado para identificar las 
enfermedades alérgicas. 
Diagnóstico molecular de alergia. 
La elevación de la IgE específica frente a un 
alérgeno indica una sensibilización frente a 
este y una propensión a presentar síntomas 
de alergia. 
La sensibilización frente a un alérgeno no 
siempre indica la aparición de síntomas de 
alergia tras el contacto con ese alérgeno. 
 
VALOR DE REF: 0,35 kUA/L. 
Los niveles de IgE que se asocian a síntomas 
dependen de cada alérgeno. 
• Alérgenos inhalados son superiores a 
los alérgenos alimentarios. 
 
Valores bajos o negativos de IgE no excluye 
que PX este sensibilizado. 
• Alergia a los medicamentos 
PRUEBAS INTRADERMICAS (De lectura 
TARDIA) 
USADA: Alergia tardía por medicamentos. 
Misma técnica que para la lectura inmediata. 
Lectura se hace a partir de las 24 horas de 
haber administrado el extracto alergénico o 
también a las 48 e incluso 96 horas. 
 
PRUEBAS DE PARCHE o EPICUTANEAS 
Evalúa las reacciones de hipersensibilidad 
tardías de tipo IV mediadas por linfocitos T. 
 
USADA: Dermatitis de contacto y reacciones 
tardías frente a medicamentos. PX con 
sospecha de dermatitis por contacto, alergenos 
alimentarios o aeroalergenos sin IgE específica, 
Dermatitis crónica sin mejoría, dermatitis 
atópica grave y reacción de hipersensibilidad de 
tipo retardado a medicamentos. 
Material: Aplicación de parche epicutáneo (sin 
punzar) con alergenos. 
• Se mantiene el alérgeno en la piel, 
tapado con una tira adhesiva 
Diagnóstico molecular de alergia 
Patrón de referencia in vitro en alergia 
alimentaria e inhalatoria. 
Discrimina entre alergias verdaderas y de 
reactividad cruzada. 
Identifica los alergenos verdaderos que 
deberán incluirse en la inmunoterapia. 
 
USAR EN: 
• Embarazadas. 
• PX con alergia en la piel con 
lesiones activas o dermografismo 
severo. 
• PX donde el destete farmacológico 
no sea posible. 
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(alergenos disueltos en vaselina y 
colocado en apósitos) 
• Se aplica en zonas de piel sanas: 
Espalda o antebrazo. 
Px sensibilizado: Reacción eccematosa. 
Resultados: 
• 1° lectura se realiza a las 48 horas. 
• Respuesta se visualiza 2 días después 
de retirado el parche. 
• Se registran, según el grado de lesión 
provocada en la piel. 
o Eritema sin vesículas – Intenso 
edema con vesículas y 
ulceración. 
*FOTOPARCHE 
• Aplicar alergeno en 2 partes diferentes. 
• A las 24-48 hrs después se aplica luz 
artificial SOLO a 1 de las muestras. 
• Si se presenta reacción en la zona 
donde se aplico la luz = Fotoalergeno. 
• En edades iniciales o tardías de la 
vida. 
Se determina con diferentes plataformas: 
• Análisis individual mediante InmunoCAP 
con 630 moléculas disponibles. 
• Análisis para múltiples resultados en un 
solo ensayo por medio de microarreglos 
como ISAC 112. 
• Macroarreglos como ALEX (288 
moléculas); 
PRICK TO PRICK 
Para alergia con alimentos frescos. 
Proceso: 
3. Pinchar con lanceta la sustancia a 
probar. 
4. Hacer punción en piel del PX. 
PX Sensibilizado: Roncha o habón. 
Para entender resultados: Conocer las 
proteínas que componen los alergenos 
(¿Sensibilización verdadera o reacción 
cruzada?) 
Ventaja: Inmediatez, gran sensibilidad y bajo 
costo. 
Si la reacción del paciente ha sido inmediata 
(en un período de tiempo corto, minutos), la 
técnica celular diagnóstica observará la 
respuesta del basófilo (célula principalmente 
implicada en este tipo de reacciones junto a los 
mastocitos). 
• Test de liberación de histamina (TLH) 
• Test de activación de basófilos (TAB) 
 
Si, la reacción ha sido tardía (más de 24 horas 
tras la exposición al antígeno), se examinará la 
respuesta de los linfocitos (células implicadas 
en el mecanismo inmunopatológico 
de estas reacciones retardadas). 
• El test de transformación linfoblástica 
(TTL) → Linfocito T 
PRUEBAS DE PROVOCACION 
Es un procedimiento DX definitivo. 
Uso: Descartar o confirmar presencia de una 
sustancia en una reacción alérgica. 
Pueden ser orales, conjuntivales, nasales y 
bronquiales. 
De acuerdo con la historia clínica del paciente y 
la gravedad del antecedente de la reacción se 
decide la cantidad inicial, la cantidad final, en 
cuántos pasos y con qué intervalos 
PX permanece en vigilancia para realizar 
mediciones objetivas y subjetivas. 
Prueba de activación de basófilos 
USO: Alergia a medicamentos, sospecha de 
alergia a inhalables, intolerancia a 
medicamentos. 
 
MATERIAL: Pequeña cantidad de sangre 
venosa periférica que, posteriormente, se 
estimula con el alergeno por citometría de flujo. 
 
PX en ayuno de 8 horas y no tomar 
antihistamínicos 48 horas antes del estudio. 
En el reporte del estudio se señala el porcentaje 
de basófilos activados durante la prueba. Si 
éste es igual o mayor a 30% se considera 
positiva 
 Triptasa sérica 
Biomarcador que se encuentra en grandes 
cantidades en los gránulos secretores 
(mastocitos y basófilos.) 
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En las personas sanas la β-triptasa es 
indetectable; sin embargo, se eleva en 
manifestaciones alérgicas graves. 
Prueba complementaria para el diagnóstico 
clínico de anafilaxia. 
MATERIAL: Extracción de 3 muestras 
1° Enseguida de la sospecha clínica de 
anafilaxia e inicio del TX. 
2° A las dos horas a partir del comienzo de la 
Crisis. 
3° A las 24 horas para tener un nivel basal del 
PX. 
Límite superior de población sana: 11.4 μg/L 
La concentración de la α-triptasa en individuos 
sanos es de alrededor de 4.5 ng/m