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Práctica 1.- Exudado Faringeo Asignatura: MICROBIOLOGIA CLINICA Periodo 2023 Docente: Edlin Mariel Ramos González Integrantes: Cesia Carolina Castillo Izaguirre Fecha de entrega: 12/03/2023 RESUMEN Un exudado faríngeo es una prueba diagnóstica que se obtiene a partir de células de la faringe y es de utilidad para detectar microorganismos que pueden causar una infección, posterior a la toma de muestra se siembra en medios de cultivos con grandes fuentes de vitaminas, carbono y nitrógeno para estimular el crecimiento de los microorganismos, para poder brindar un tratamiento adecuado al paciente acorde con el material orgánico que se presenta. Durante la práctica se tomó una muestra por medio del exudado faríngeo y otra muestra por el exudado nasofaríngeo las cuales fueron estriadas en un medio agar sal y manitol, un medio agar sangre y un medio dextrosa sabouraud. PALABRAS CLAVE: exudado faríngeo, agar sangre, agar sal y manitol, staphylococcus, INTRODUCCION Un cultivo del exudado faríngeo es una prueba para detectar microorganismos que pueden causar una infección. Se añade una muestra de células de la faringe a una sustancia que estimula la multiplicación de los microorganismos. Si no hay una multiplicación de microorganismos, el cultivo es negativo. Si hay una multiplicación de microorganismos que pueden causar una infección, el cultivo es positivo. El tipo de microorganismo puede identificarse con un microscopio o pruebas químicas. A veces, se hacen otras pruebas para determinar cuál es el medicamento adecuado para tratar la infección. (North Shore, 2019) Algunos ejemplos de microorganismos causantes de infecciones que pueden encontrarse durante un cultivo del exudado faríngeo incluyen: Candida albicans. - Este hongo causa aftas, una infección de la boca y la lengua y, a veces, de la garganta. Estreptococo del Grupo A.- Esta bacteria puede causar faringitis estreptocócica, escarlatina y fiebre reumática. Neisseria meningitidis. - Esta bacteria puede causar meningitis. (Struthers, 2018) PRUEBAS DE DETECCION Catalasa. – la catalasa es la enzima presente en la mayoría de los microorganismos que poseen citocromos estas bacterias que sintetizan la catalasa hidrolizan el agua oxigenada que se libera en burbujas, el objetivo de esta prueba es separar Micrococacceae (positiva) de Streptococcus spp. y Enterococcus spp. (negativa). Cuando la prueba es positiva se observan burbujas tras agregar al cultivo la reacción. (UNAM, 2017) Oxidasa. -Esta prueba sirve para determinar la presencia de enzimas oxidasas. La reacción de la oxidasa se debe a la presencia de un sistema citocromooxidasa que activa la oxidación del citocromo el cual es reducido por el oxígeno molecular produciendo agua o peróxido de hidrógeno según la especie bacteriana. Por lo general, el sistema citocromooxidasa solo se encuentra en las bacterias aerobias, algunas anaerobias facultativas y, excepcionalmente, en algún microaerófilo (Vibrio fetus), pero las bacterias anaerobias estrictas carecen de actividad oxidasa. En esta prueba, se reporta como resultado positivo la aparición de un color azul- violeta en la muestra, tras añadir el reactivo al cultivo. Con esta prueba se pueden identificar especies de Neisseria (positiva) y Pseudomonas de los miembros oxidasa (negativo) de las Enterobacterias. (UNAM, 2017) MEDIOS DE CULIVOS Agar sangre es un medio de cultivo utilizado paras el aislamiento de numerosos microorganismos, este permite el crecimiento de microorganismos nutricionalmente exigentes y con una visualización clara de una reacción de hemolisis. En un medio de cultivo de agara sangre se pueden observar distintos tipos de hemolisis: Hemólisis alfa: Lisis parcial de los glóbulos rojos. Se observa un halo de color verdoso alrededor de la colonia en estudio. Es debido a la oxidación de la hemoglobina a metahemoglobina (compuesto de color verdoso) por el peróxido de hidrógeno generado por los microorganismos. Hemólisis beta: Lisis total de los glóbulos rojos. Se observa un halo claro, brillante alrededor de la colonia en estudio. Hemólisis gamma: Ausencia de lisis de los glóbulos rojos. El medio de cultivo no presenta modificaciones de color y aspecto alrededor de la colonia en estudio. (Barraza, 2018) Agar Sal y Manitol En el medio de cultivo, el extracto de carne, la peptona de carne y la tripteína, constituyen la fuente de carbono, nitrógeno, vitaminas y minerales que promueven el desarrollo microbiano. El manitol es un hidrato de carbono fermentable. El cloruro de sodio (que se encuentra en alta concentración) es el agente selectivo que inhibe el desarrollo de la flora acompañante, el rojo fenol es el indicador de pH y el agar es el agente solidificante. (Rossi, 2012) Las bacterias que crecen en un medio con alta concentración de sal y fermentan el manitol, producen ácidos, con lo que se modifica el pH del medio y vira el indicador de pH del color rojo al amarillo. Los estafilococos crecen en altas concentraciones de sal, y pueden o no fermentar el manitol. (Rossi, 2012) Los estafilococos coagulasa positiva fermentan el manitol y se visualizan como colonias amarillas rodeadas de una zona del mismo color. Los estafilococos que no fermentan el manitol, se visualizan como colonias rojas, rodeadas de una zona del mismo color o púrpura. (Rossi, 2012) TINCION DE GRAM La tinción de Gram es una prueba que detecta bacterias en el lugar donde se sospecha una infección, como la garganta, los pulmones, los genitales o las lesiones en la piel. Hay dos categorías principales de infecciones bacterianas, grampositivas y gram negativas. Las categorías se diagnostican según cómo reacciona la bacteria a la tinción de Gram. La tinción de Gram es de color púrpura. Cuando la tinción se combina con la bacteria en una muestra, las bacterias pueden seguir de color púrpura o volverse rosadas o rojas. Si se mantienen púrpuras, son Gram positivas. Si se vuelven rosadas o rojas, son Gram negativas. (Nuñez, 2020) ANTIBIOGRAMA Las pruebas de sensibilidad o antibiogramas determinan la susceptibilidad de un microorganismo frente a los medicamentos antimicrobianos, a partir de la exposición de una concentración estandarizada del germen a estos fármacos. Las pruebas de sensibilidad pueden hacerse para bacterias, hongos o virus. Para algunos microorganismos, los resultados obtenidos con un fármaco permiten predecir los resultados que se obtendrán con fármacos similares. Así, no todos los medicamentos potencialmente útiles necesitan probarse. Las pruebas de sensibilidad se realizan in vitro, y no tienen en cuenta numerosos factores que afectan al fármaco in vivo (p. ej., la farmacodinámica y la farmacocinética, las concentraciones del medicamento en el sitio de acción, el estado inmunitario del huésped, las defensas específicas de sitio) y que influyen en el éxito de un tratamiento. Por ello, las pruebas de sensibilidad no siempre predicen los resultados de la terapia. OBJETIVOS Conocer el método para una buena toma de muestra de un exudado faríngeo y nasofaríngeo Identificar qué tipos de microorganismos pueden crecer en este tipo de muestras (nasofaríngeo y faríngeo) Observar si hay crecimiento de bacterias en nuestros medios (sangre, sal y manitol y dextrosa sabouraud) METODOLOGIA MATERIALES Cajas Petri Abate lenguas Hisopos estériles Asa bacteriológica Mechero bunsen Papel estraza Equipo de tinción de Gram Peroxido de hidrogeno al 3% Reactivo para prueba de oxidasa EQUIPO Incubadora Microscopio SUSTANCIAS 500 ml Solución Salina Fisiológica (0.85% NaCl) Agua destilada 200 ml Agar sal y manitol 200 ml Agar nutritivo 200 ml Agar Eosina Azul de metileno 200 ml de Agar sangre 50 ml de Caldo nutritivo EQUIPO DE PROTECCION ´PERSONAL Mascarilla Lentes de seguridad Guantes Bata TOMA DE MUESTRA 1. Colocar al paciente por debajo del nivel de la vista. 2. Pedir que incline un poco la cabeza hacia atrás y abra la boca y que diga “ah” (si no se logra ver la laringe con ayuda de un abate lengua bajar la lengua.) 3. Hacer un raspado con 2 hisopos estéril a un lado de la úvula (hacer el rapado en la parte más roja o donde presente puntos blancos. 4. Con uno de los hisopos, realizar un frotis y proceder a teñirlo con la técnica de Gram. · SIEMBRA. 1.Con el otro hisopo, realizar la descarga del inóculo en un extremo del agar sangre. En el agar sangre, realice dos picaduras, una en la última y una penúltima estría; con la finalidad de observar la hemolisis bajo la superficie del agar. colocar en una jarracon una vela encendida (atmosfera de anaerobiosis) por 24hrs 2. Y en los diferentes medios de cultivo, con ayuda de un asa bacteriológica, realizar la distribución del inóculo empleando la técnica de estría cruzada. 3. Incubar a 37ºC durante 24 h. 4.. Con el otro hisopo, hacer un frotis y realizar tinción de Gram y tinción negativa. 6.. Observar las morfologías que se desarrollan en los diferentes medios de cultivos y realizar Gram a las colonias sospechosas. 7.. Realizar pruebas de catalasa y coagulasa. TINCION DE GRAM 1.- Se hace un frotis delgado del material a estudiar y se deja secar al aire. 2. – Se fija la preparación pasándola un par de veces a través de la flama del mechero. De esta forma se evita que sea lavada durante la tinción. 3.- Cubrir la superficie del frotis con solución de cristal violeta por un lapso de un minuto. 4.- Enjuagar con agua destilada. 5.- Cubrir la superficie del frotis con la solución de yodo de Gram, dejando que esta actué por un lapso de un minuto. 6.- Enjuagar con agua destilada. 7.- Cubrir la superficie del frotis con la solución de alcohol- cetona por un lapso de 30 segundos. 43 8.- Enjuagar con agua destilada. 9.- Cubrir el frotis con la solución de safranina por 15 segundos. 10.- Enjuagar con agua destilada. 11.- Secar al aire. 12.- Observar al microscopio a 40x y 100x. PRUEBA DE COAGULASA 1. La prueba de la coagulase se efectúa al tomar una asada de la muestra 2. inocular por suspensión en el tubo de plasma citratado, incubar a 37°C durante 4, 8 y 24 hrs., 3. observar la formación de coágulo. Si en este tiempo no se ha formado reportar la prueba corno negativa. PRUEBA DE CATALASA 1. Para efectuar la prueba de la catalasa, tomar una asada de la muestra 2. suspender en una gota de agua sobre una porta objetos 3. adicionarle una o dos gotas de peróxido de hidrógeno y esperar la formación inmediata de burbujas, de ser así reportar la prueba como positiva. RESULTADOS Durante esta practica se logaron completar exitosamente diversos objetivos para una elaboracion de un exudado faringeo Imagen 1.toma de muestra se tomo una muestra de las amigdalas del paciente Imagen 2.siembra de muestra se sembro la muestra del exudado en los diferentes tipos de agares siendo el agar sangre estriado en dos cuadrantes,el dextrosa s.estrado por angulo recto y el agar sal y manitol estriado por angulo recto Imagen 3. elaboracion de tincion de Gram Imagen 4. Crecimiento de colonias en los agares Imagen 5. agar sangre 1 la primera colonia es beta hemolítica, con forma circular, borde entero, con elevación plana y con superficie brillante de color gris. la segunda colonia es irregular sin presencia de hemolisis con bordes ondulados, elevación elevada y superficie rugosa color amarillo. la tercera colonia presenta forma circular de borde entero sin presencia de hemolisis, color blanco, con elevación plana y con superficie cremosa. Imagen 6. agar sangre 2 se presenta con colonias con forma puntiforme beta hemolítica, con borde ondulado, de elevación plana y superficie cremosa la colonia grande que se presenta en el agar se presenta de color blanco con forma circular de borde ondulado, con gamma hemolisis, elevación plana y superficie lisa. Imagen 7. agar sal y manitol El agar sal y manitol se divido en muestra de exudado faríngeo y nasofaríngeo En la muestra del exudado faríngeo se observaron colonias circulares, con borde entero, elevación convexa, superficie cremosa, presencia de fermentación de manitol debido al color amarillento del medio. En cambio, en la muestra con el exudado nasofaríngeo se pudo observar la presencia de colonias puntiforme, con bordes enteros y ondulados, elevación plana, superficie lisa y mate, sin presencia de fermentación de lactosa Imagen 8, agar dextrosa s, sin crecimiento bacteriano Imagen 9. observación en microscopio 100x para resultado de tinción de Gram agar sal y manitol imagen 10. observación en microscopio 40x para resultado de tinción de Gram, agar sangre 2, colonia 2. imagen 11. observación en microscopio 100x de tinción de Gram, agar sangre 1 imagen 12. observación en microscopio 40x de tinción de Gram, agar sangre 2, colonia 1 Imagen 13. Antibiograma Imagen 14. Prueba de catalasa ANALISIS DE RESULTADOS Tras llevar la acabo la tinción de Gram con muestras recogidas de los cultivos de exudados faríngeos se pudo observar en el agara sal y manitol (imagen 9) la presencia de estafilococos y diplococos Gram positivos. En la tinción de Gram del agar sangre 1 (imagen 10) se pudo observar la presencia de estafilococos, estreptococos y diplococos Gram positivos De igual forma en la tinción de Gram del agar sangre 2 en la colonia 1 (imagen 12) se observó la presencia de estafilococos, estreptococos, sarcina, tétradas y diplococos Gram positivo En cambio, en la colonia 2 (imagen 11) se pudo observar la presencia se observó la presencia de estreptococos Gram positivos CONCLUSION Con los resultados obtenidos se llegó a la conclusión que el paciente presenta principalmente estreptococos y estafilococos aureus, sin embargo, este último no tiene repercusiones en el paciente ya que estas bacterias son habituales en la boca. Si el paciente hubiera presentado una infección se le suministrarían antibióticos como la Tetraciclinas, Trimetoxibenzilpirimidina y Ciprofloxacino puesto que en el antibiograma presento susceptibilidad. También podemos concluir que el exudado faríngeo es unos de los métodos más factible a la hora de examinar una infección en el tracto respiratorio, puesto a la facilidad de la toma de muestra y siembra de esta. BIBLIOGRAFIAS Rossi, A. (2012). Manitol Salado Agar. Consultado: marzo 11, 2023, de Laboratorios Britania Sitio web: https://www.britanialab.com/back/ publ ic/upload/productos/upl_607073c 954f a9.pdf Rossi, A. (2013). Nutritivo Agar. Consultado: marzo 11, 2023, de Laboratorios Britania Sitio web: https://www.britanialab.com/back/ publ ic/upload/productos/upl_6070764 1dee 11.pdf UNAM. (2017). Pruebas bioquímicas. Recuperado de http://depa.fquim.unam.mx/amyd/ archivero/U3b_PruebasBioqui micas_174 58.Pdf Rossi, A. (2018). Sangre Agar Base. Consultado: marzo 11, 2023, de Laboratorios Britania Sitio web: https://www.britanialab.com/back/ publ ic/upload/productos/upl_6070906 bed8 9d.pdf Vargas, T. Kuno, A. (2014). Morfología bacteriana. Revista de Actualización Clínica. Vol 49, No (2): 2594-2598. https://www.britanialab.com/back/publ%20ic/upload/productos/upl_607073c954f%20a9.pdf https://www.britanialab.com/back/publ%20ic/upload/productos/upl_607073c954f%20a9.pdfhttps://www.britanialab.com/back/publ%20ic/upload/productos/upl_607073c954f%20a9.pdf https://www.britanialab.com/back/publ%20ic/upload/productos/upl_607073c954f%20a9.pdf https://www.britanialab.com/back/publ%20ic/upload/productos/upl_60707641dee%2011.pdf https://www.britanialab.com/back/publ%20ic/upload/productos/upl_60707641dee%2011.pdf https://www.britanialab.com/back/publ%20ic/upload/productos/upl_60707641dee%2011.pdf https://www.britanialab.com/back/publ%20ic/upload/productos/upl_60707641dee%2011.pdf http://depa.fquim.unam.mx/amyd/archivero/U3b_PruebasBioqui%20micas_174%2058.Pdf http://depa.fquim.unam.mx/amyd/archivero/U3b_PruebasBioqui%20micas_174%2058.Pdf http://depa.fquim.unam.mx/amyd/archivero/U3b_PruebasBioqui%20micas_174%2058.Pdf https://www.britanialab.com/back/publ%20ic/upload/productos/upl_6070906bed8%209d.pdf https://www.britanialab.com/back/publ%20ic/upload/productos/upl_6070906bed8%209d.pdf https://www.britanialab.com/back/publ%20ic/upload/productos/upl_6070906bed8%209d.pdf https://www.britanialab.com/back/publ%20ic/upload/productos/upl_6070906bed8%209d.pdf
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