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EFECTO DE PRODUCTOS BIORRACIONALES EN EL COMPLEJO Bemisia tabaci-Begomovirus Y LA ABUNDANCIA DE ABEJAS EN EL CULTIVO DE TOMATE TESIS Que presenta: Erik Eduardo Montejo Canul Como requisito parcial para obtener el grado de: Maestro en Ciencias en Horticultura Tropical Director de tesis: Dr. Esaú Ruíz Sánchez Conkal, Yucatán, México Noviembre, 2019 iv AGRADECIMIENTOS Al Instituto Tecnológico de Conkal, por haberme otorgado la oportunidad de realizar mis estudios de Posgrado y conducirme al éxito. Al CONACYT, por la beca otorgada. Al Laboratorio GeMBio del Centro de Investigación Científica de Yucatán A.C. (CICY), por el apoyo en realización de mis estudios de posgrado. Al Dr. Esaú Ruíz Sánchez, por su valiosa dirección, enseñanza, amistad, apoyo y confianza brindada, en el desarrollo del presente trabajo de investigación. A la Dra. Alejandra González Moreno, por su valiosa asesoría, enseñanza, confianza y apoyo brindado, en el desarrollo del presente trabajo de investigación. Al Dr. Horacio Ballina Gómez, por ser parte de mi comité tutorial, por sus sugerencias, observaciones, enseñanzas y el tiempo dedicado al presente trabajo de investigación. Al M.C. Rodolfo Martín Mex, por su asesoría, compromiso, consejos, apoyo ético y moral, amistad, confianza, y valiosas contribuciones para la culminación del presente trabajo de investigación. Al M.C. Ángel Nexticapan Garcéz, por sus sugerencias, consejos, apoyo y amistad en el proyecto. Al Ing. Sergio López Vázquez, por el apoyo y facilidades brindadas en herramientas y equipo de campo para el desarrollo de este proyecto. Al Ing. Arturo Aguiñaga Bravo, hermano y amigo en las batallas, por su apoyo, compromiso, confianza y lealtad en nuestro trabajo de investigación. A mis compañeros, estudiantes y amigos académicos del laboratorio de plagas hortícolas y del área de parcelas experimentales, que siempre me ayudaron durante el transcurso de este trabajo. A mi familia, por creer en mí y por ser la motivación para cada día llegar más lejos en mi vida social y académica ante las adversidades económicas y de salud. v DEDICATORIA Yo soy de los que piensan que la ciencia tiene una gran belleza. Un científico en su laboratorio no es sólo un técnico: también es un niño colocado ante fenómenos naturales que lo impresionan como un cuento de hadas. -Marie Curie (1867-1934). “La vida es una unión simbiótica y cooperativa que permite triunfar a los que se asocian”. Lynn Margulis (1938-2011). Para mi familia y estudiantes en general. vi ÍNDICE DE CONTENIDO AGRADECIMIENTOS ............................................................................................................. iv DEDICATORIA ......................................................................................................................... v ÍNDICE DE CONTENIDO ........................................................................................................ vi ÍNDICE DE FIGURAS ............................................................................................................. vii ÍNDICE DE CUADROS .......................................................................................................... viii RESUMEN ......................................................................................................................... ix ABSTRACT ........................................................................................................................ x CAPÍTULO I. INTRODUCCIÓN GENERAL ................................................................... 11 1.1 Introducción ........................................................................................................................ 11 1.2 Antecedentes ....................................................................................................................... 13 1.2.1 Cultivo de tomate ............................................................................................................. 13 1.2.2 Importancia B. tabaci Genn. ............................................................................................. 13 1.2.3 Importancia de Begomovirus ............................................................................................ 14 1.2.4 Insecticidas químicos para el manejo de B. tabaci (Genn.)................................................ 15 1.2.5 Insecticidas botánicos como alternativa biorracional ......................................................... 17 1.2.6 Impacto de insecticidas convencionales y biorracionales en abejas ................................... 18 1.3 Hipótesis ............................................................................................................................. 20 1.4 Objetivos ............................................................................................................................. 21 1.4.1 Objetivo general ............................................................................................................... 21 1.4.2 Objetivos específicos ........................................................................................................ 21 1.5 PROCEDIMIENTO EXPERIMENTAL ....................................................................... 22 1.6 LITERATURA CITADA .................................................................................................... 23 CAPÍTULO II. EFFECTS OF THE INCORPORATION OF BIORATIONAL INSECTICIDES FOR PEST MANAGEMENT TREATMENTS ON THE WHITEFLY POPULATION, FRUIT YIELD, AND BEE ABUNDANCE IN TOMATO .......................................................................................................................... 35 2.1 Abstract............................................................................................................................... 35 2.1 Introduction......................................................................................................................... 36 2.2 Materials y Methods ............................................................................................................ 37 2.3 Results ................................................................................................................................ 41 2.4 Discussion ........................................................................................................................... 44 2.5 Conclusion .......................................................................................................................... 45 2.6 Acknowledgments ............................................................................................................... 45 2.6 References .......................................................................................................................... 46 CAPÍTULO III CONCLUSIONES GENERALES ............................................................. 51 vii ÍNDICE DE FIGURAS CAPITULO II Figura Página 1 Abundance of flowers visiting bees in tomato. Among the abundant bees include cleptoparasite bees (Lasioglossum spp. And Exomalopsis spp) neotropical bees and eusocial mellifera bees (A. mellifera). The graph shows the percent of total individuals captured by sweping-net and mouth aspirator. 43 viii ÍNDICE DE CUADROS CAPITULO I Cuadro Página 1 Clasificación IRAC de MoA insecticidas usados en el control convencional de mosca blanca. 16 CAPITULO II 1 Environmental conditions during the growing season of tomato in Conkal, Yucatan. 37 2 Rate of mineral fertilization by growth stage for tomato (S. lycopersicum). 38 3 Description of treatments for the management of Bemisia tabaci in tomato (S. lycopersicum). 39 4 Mean number (± SE) of adults, nymphs and eggs of Bemisia tabacion plants of tomato (S. lycopersicum) under different pest management treatments. 42 5 Incidence and severity of viral symptoms and fruit yield in tomato (S. lycopersicum) under different pest management treatments. 43 6 Abundance of flower visiting bees in tomato (Solanum lycopersicum) under different pest management treatments. 44 ix RESUMEN El cultivo de tomate (Solanum lycopersicum L.) se ve afectado por una gran diversidad de plagas. Entre ellos, los insectos chupadores como la mosca blanca (Bemisia tabaci) son ampliamente dañinos por la trasmisión de Begomovirus. En el presente estudio se evaluó la eficacia de la incorporación de insecticidas biorracionales y convencionales para integrar tratamientos de manejo de plagas. Se evaluó el efecto de los tratamientos en la supresión de la densidad poblacional de B. tabaci y Begomovirus asociados. Además, se evaluó la abundancia de abejas en las parcelas tratadas. En general, la población de B. tabaci, la incidencia final y la severidad de los síntomas virales no mostraron diferencias (P > 0.05) entre los tratamientos. El rendimiento de frutos no fue significativamente diferente (P > 0.05) entre los tratamientos de manejo de plagas. La abundancia de abejas visitantes de flores no mostró diferencias (P> 0.05) entre los tratamientos. La incorporación de insecticidas biorracionales en los tratamientos de manejo de plagas en tomate permite suprimir el complejo B. tabaci – Begomovirus. x ABSTRACT Field production of tomato (Solanum lycopersicum L.) is affected by a wide variety of pests. Phloem sucking insects, like the whitefly (Bemisia tabaci), is a highly damaging pests as they transmit Begomovirus. In this study, we evaluated the incorporation of biorational insecticides and conventional chemical products into treatments for pest management. The effects of the treatments were evaluated into the suppression of population density of B. tabaci and associated Begomovirus. In addition, the abundance of flower visiting bees was also evaluated. Overall, the population of B. tabaci, the final incidence and the severity of viral symptoms were not significantly different (P > 0.05) among treatments. The fruit yield was not significantly different (P > 0.05) among treatments of pest management. No difference among treatments in the abundance of flower visiting bees was observed. The incorporation of biorational insecticides into treatments for pest management on tomato may supress the population of B. tabaci and the severity of Begomovirus to the same extent as the conventional treatment including only chemical insecticides. 11 CAPÍTULO I. INTRODUCCIÓN GENERAL 1.1 Introducción La mosca blanca B. tabaci Genn. (Hemiptera: Aleyrodidae) es una de las plagas ampliamente distribuidas en el mundo priorizando en regiones tropicales y subtropicales, cuenta con un extenso margen de plantas hospederas cultivadas y silvestres, en particular con alta incidencia en solanáceas, cucurbitáceas, malváceas y fabáceas cultivadas resultado ser usuales (Papayiannis et al., 2011; Peréz & Montes, 2017; Saeed et al., 2017; Pantoja et al., 2018). Los daños ocasionados son de tipo directo e indirecto. Efecto de la alimentación, al succionar la savia de las plantas y provocar la muerte de éstas, indirectamente por la transmisión de begomovirus y otros virus de ADN y ARN originando enfermedades, por efecto de secreción de azucares (mielecilla) en el follaje, favoreciendo el establecimiento y desarrollo de hongos del género Capnodium causantes de fumaginas (INIFAP, 2014; Inoue- Nagata et al., 2016; Wang et al., 2018). Esta problemática genera la implementación de estrategias alternativas o complementarias de control en mosca blanca (B. tabaci), como el uso de insecticidas biorracionales benignos con el medio ambiente. Por lo que la investigación relativa de métodos alternativos de control de plagas ha incrementado en las últimas décadas, debido a que el agricultor asiste a productos químicos como estrategia de control, produciendo efectos colaterales en las poblaciones de entomofauna benefactora, del cual el orden Hymenoptera se ve más afectado (Simmonds, et al., 2002; Choi et al., 2003; Balayiannis & Balayiannis, 2008; Sánchez & Wyckhuys, 2019) sin mencionar los efectos ecotóxicos a lo largo del tiempo. Por lo que se ha impulsado la generación e implementación de estas estrategias alternativas o complementarias biorracionales en el control de B. tabaci, ya que conforman una opción por ser agentes derivados de microorganismos, plantas, minerales, moléculas sintéticas y análogas a las naturales, las cuales se caracterizan por tener efecto favorable en la agricultura, ya que presentan un efecto desfavorable en insectos plaga y patógenos que 12 causan enfermedades (insecticida, repelente, disuasivo, inhibición y remisión en el desarrollo) (Eiras & Resende, 2009), además de no crear resistencia, debido a la presencia de diferentes compuestos con actividad insecticida, actuando por contacto e ingestión (Sutherland et al., 2002; Rodríguez, 2008; Valle-Pinheiro, 2009; Sarwar, 2013; 2014; Villaverde et al., 2014). Con relación a la productividad y rendimiento de los cultivos agrícolas, las abejas melíferas son importantes y eficientes polinizadores (Sutter et al., 2017). En contraste están sujetos a una intensa investigación sobre los efectos de plaguicidas químicos (convencionales) y biorracionales, otros polinizadores como las abejas nativas ecológicamente importantes han recibido poca atención en ecotoxicología, abundancia y evaluación de riesgos respecto a plaguicidas en general. (Dubey et al., 2011; Breeze et al., 2014; Tomé et al., 2015a, b; Barbosa et al., 2015; Lawrence et al., 2016; Umpiérrez et al., 2017). La implementación de agentes biorracionales, demuestran un potencial no perjudicial en organismos no objetivo como las abejas europeas y nativas, debido a su plasticidad molecular y degradación por una gran variedad de microorganismos generalistas en la mayoría de los suelos; conservando la diversidad antagonista de los enemigos naturales que a menudo son sesgados por plaguicidas químicos. En las últimas décadas, nuevos extractos de plantas tropicales han demostrado tener un repertorio de agentes antibacterianos, insecticidas, efectos repelentes, ninficidas y ovicidas. Sin embargo, Tomé et al., (2015b), reporta efectos controversiales de azadiractina en abejas obreras, comprometiendo la actividad de alimentación, lo que puede conducir a una reducción de la supervivencia de las colonias a dosis continuas o altas. Estos hallazgos desafían la percepción común de la inocuidad de los insecticidas sintéticos y bioinsecticidas de bajo riesgo, con respecto a las especies polinizadoras neotropicales nativas. Debido a lo anteriormente mencionado y a la insuficiente información sobre el manejo de mosca blanca con agentes biorracionales con aplicaciones directas en campo abierto, al igual que los efectos que puedan tener en abejas nativas, surge el presente trabajo de investigación, con el objetivo de contribuir al conocimiento de efectividad de productos y agentes biorracionales para el control directo en campo de mosca blanca. 13 1.2 Antecedentes 1.2.1 Cultivo de tomate El tomate (Solanum lycopersicum L.) es el principal producto hortícola exportable, desde su domesticación por las antiguas civilizaciones precolombinas, debido a su empleo en la diversidad gastronómica mundial, importancia nutricional, medica entre otros usos. Este hecho, lo han consolidado como el mayor producto nacional e internacional comerciable, es cultivado en 28 estados de la República Mexicana destacando Sinaloa (67%) del total: 625 mil toneladas (SIAP,2018, 2019). Canadá y Estados Unidos destacan como los principales importadores en América, incrementando el valor per cápita de la industria mexicana periódicamente (USDA, 2018). La producción acumulada del año agrícola 2018 es de 3,434,778 toneladas, lo que representa el 7.8% más respecto al 2017; sin embargo, es posible observar que los rendimientos de tomate varían en función de un amplio rango de tecnologías empleadas actualmente (FIRA, 2017; SIAP, 2019). 1.2.2 Importancia B. tabaci Genn. La mosca blanca B. tabaci pertenece a un complejo de especies cripticas del orden (Hemiptera: Aleyrodidae) conformado por 24 biotipos indistinguibles morfológicamente, los cuales se han reconocido con base a pruebas PCR (Alemandri et al., 2015). Conforma una de las plagas cosmopolitas, se reporta atacando diversas especies vegetales de amplios géneros a nivel mundial, por lo general en la literatura se destaca su importancia en la transmisión de virus de la familia Geminiviridae, causantes de una amplia variedad de síntomas (bronceado, mosaico, rizado, amarillamiento, variegados amarillos en hojas, aclaración en venas en hojas y enanismo) en tomate, que son capaces de devastar por completo una área determinada de cultivo, donde las etapas más críticas son las primeras semanas después de la germinación (Jarquin, 2004; Brown et al., 2015). El insecto presenta un ciclo de vida variable, el cual depende en gran medida del hospedero, zona geográfica y temperatura (Salguero, 1992). Sus poblaciones inmoderadas tienden a ser muy altas en regiones neotropicales alrededor del mundo durante las estaciones secas; por lo que particularmente en el caribe sus fluctuaciones poblacionales tienden a incrementar entre marzo y noviembre, su gran movilidad facilitada por el viento le permite emigrar de un cultivo a otro; por su amplio rango de hospederos, siendo altamente polífaga. (Hilje, 2001; 14 Brown, 2010; Hasanuzzaman, et al., 2016; Domingos et al., 2018). El biotipo B tiene una relativa importancia desde el punto de vista económico debido a su alta tasa reproductiva, diseminación, amplio rango de adaptación a fuentes de alimento, alta voracidad y resistencia a insecticidas piretroides y neonicotinoides; en contraste el biotipo B desplazó a poblaciones endémicas, estableciéndose con gran facilidad (Bedforf et al., 1994; Ramos et al., 2018). 1.2.3 Importancia de Begomovirus Brown, en (2001) propuso la hipótesis que Centro América y el Sur de México en particular el caribe podrían ser importantes centros de diversidad de begomovirus, por lo que en Guatemala un estudio realizado soporta esta hipótesis, ya que se han detectado más de veinte nuevas especies (provisionales), además de un gran número de especies reportadas en la región de Centro América, sur de México y probablemente Yucatán sea un centro de diversificación (Brown et al., 2001; Díaz-plaza et al., 2004). Por lo que Díaz, 2003, enfatiza la deficiente información disponible sobre la diversidad de begomovirus en plantas nativas, malezas y otras familias hospederas (Asteraceae, Cleomaceae, Euphorbiaceae, Hypericaceae, Fabaceae, Malvaceae, Rubiaceae, Sterculicaceae, Valerianaceae, Verbenaceae), de la Península de Yucatán trasmitidas por mosca blanca (Oliveira et al., 2001; Ortega et al., 2018). Sin embargo, en diversas partes del mundo se reportan afectando el rendimiento con altas pérdidas de hasta el 100% en cultivos hortícolas como: (algodón, calabaza, chile, tomate, fríjol, berenjena, coliflor, jatrofa, sorgo, yuca, entre otros (Inoue-Nagata, et al., 2016; Saeed & Samad, 2016; Peréz & Montes, 2017; Saeed et al., 2017; Ortega et al., 2018). Los begomovirus se clasifican en nueve géneros, principalmente dependiendo de su organización genómica y vector especie, por lo que se agrupan como monopartitos o bipartito dependiendo del número de componentes del genoma que poseen (Navas et al., 2011; Kyallo et al., 2017; Das et al., 2018). https://www.frontiersin.org/articles/10.3389/fpls.2017.01172/full#B37 15 1.2.4 Insecticidas químicos para el manejo de B. tabaci (Genn.) La mosca blanca generalmente en cultivos al aire libre se maneja con aplicaciones de insecticidas químicos sintéticos, el Comité de Acción contra la Resistencia a Insecticidas (IRAC), reporta el uso de 10 grupos químicos y 28 ingredientes activos para el control de B. tabaci, esta práctica por ser costosa, se vuelve poco accesible a los pequeños agricultores, lo cual limita el control oportuno, traduciéndose en pérdidas de rendimiento y de igual forma representa un impacto negativo en organismos no objetivo que conllevan a una serie de efectos y anomalías en los ecosistemas y medio ambiente. En la actualidad nuevos grupos de insecticidas químicos sintéticos han surgido por efecto de la resistencia en los modos de acción contra las plagas, por lo que en la actualidad se manejan los siguientes grupos (Tabla 1). 16 ∆ Sistémicos * Contacto. Clasificación IRAC MoA versión 8.3, 07/18. Tabla 1. Clasificación IRAC de MoA insecticidas usados en el control convencional de mosca blanca. Grupo principal y Sitio primario de Acción Subgrupo Químico Ingrediente Activo Ingrediente Activo 3- Moduladores del canal de sodio 3A Piretroides, Piretrinas * Bifentrin, fenpropatrin, λ-cyhalotrin, gamma-cyhalotrina, Piretrinas naturales 4- Moduladores competitivos del receptor nicotínico de acetilcolina (nAChR) 4ª Neonicotinoides ∆Acetamiprid, Clothianidin, Dinotefuran, Imidacloprid, Tiacloprid, Tiametoxam, 4C Sulfoximinas ∆Sulfoxaflor 4D Butenolides ∆Flupyradifurone 4E Mesoionicos ∆Triflumezopyrim 7- Hormona juvenil 7C Piriproxifen *Piriproxifen 9- Moduladores de Órganos Cordotonales 9B Derivados de la piridina azometina *Pimetrozina 15- Inhibidores de la biosíntesis de la quitina, tipo 0 Benzoylureas *Novalurón 16- Inhibidores de la biosíntesis de la quitina, tipo 1 Buprofezin *Buprofezin 23- Inhibidores del acetil CoA carboxilaza Derivados de ácidos tetrónicos y tetrámicos *Spiromesifen, ∆Spirotetramat 28- Moduladores del receptor de la rianodina Diamidas ∆Chlorantraniliprole, Cyantraniliprole 29- Moduladores de los órganos cordotonales Flonicamida ∆Flonicamida Un- Compuestos de modo de acción desconocido o incierto Azadiractin ∆Azadiractina 17 Debido a esta alta presión de insecticida, esta plaga ha desarrollado resistencia moderada a extremadamente alta a insecticidas de la mayoría de las clases químicas, incluidos los piretroides, neonicotinoides y reguladores crecimiento (Zhang et al., 2011; Basit et al., 2013; Smith & Giurcanu, 2013; Smith & Nagle, 2014; Wang et al., 2016; Meng et al., 2016; Smith et al., 2016; Dempsey et al., 2017; Guo et al., 2017; Moreno et al., 2018). 1.2.5 Insecticidas botánicos como alternativa biorracional En la naturaleza las plantas promueven metabolitos secundarios tóxicos en el cual su repertorio bioquímico es único, esto les permite actuar como antagonistas de patógenos bióticos y plagas, se promueven como mezclas de productos muy relacionados químicamente entre sí, habitualmente; los metabolitos secundarios son muy variados, entre los más estudiados se pueden mencionar a las sesquiterpenlactonas, flavonoides, glicósidos, taninos, alcaloides, terpenoides, saponinas, esteroides, oxalatos de calcio y aceites esenciales, conformando insecticidas biorracionales potenciales (Kumar et al., 2011; Hammuel et al., 2011; Dietrich et al., 2011; Gomes et al., 2014; Ashfaq et al., 2019; Feder et al., 2019). África es sin duda el continente que tiene más que ganar con el desarrollo de insecticidas botánicos. Cientos de especies autóctonas y exóticas con propiedades pesticidas han sido reportadas para la industria del piretro, que se ve dominada por laproducción de África oriental a través de pequeños agricultores (Stevenson & Belmain, 2016; Stevenson et al., 2017). Actualmente las preocupaciones sobre los efectos y factores nocivos de los insecticidas químicos son continúas provocando diversos desbalances como: la alteración del ciclo del nitrógeno (Campos et al., 2018), cambios en la actividad enzimática del suelo e interrupción de la simbiosis los cuales repercuten en la fertilidad del suelo y en consecuencia la pérdida de antagonistas (Malik et al., 2017). Motivo por el cual los agentes biorracionales han estimulado el interés de estudios de investigación para fomentar alternativas de manejo integrado de plagas (MIP) como B. tabaci, con diversos ensayos, los cuales comprenden el uso de extractos con efecto repelente, ninficida, ovicida e insecticida, 18 que permitan manejar la plaga, obtención de productos inocuos e incremento en la producción (Isman, 2006; El-Wakeil, 2013; Martín et al., 2015). En la literatura se reporta diferentes mecanismos de acción en insectos que pueden presentar los plaguicidas botánicos, actuando especialmente en el sistema nervioso, afectando al ácido γ- aminobutírico (GABA), canales de cloruro cerrados, acetilcolinesterasa, acetilcolina nicotínica receptores (nAChR), receptores de octopamina y tiramina, y canales de sodio, entre otros mecanismos posibles (García et al., 2006; Pavela & Benelli, 2016; Campos et al., 2018); Por otra parte se ha promovido el manejo de agentes biorracionales como una alternativa en la reducción de efectos ecotoxicologicos en los 5 últimos años. Sin embargo, la aplicación a gran escala de estas sustancias para el control de plagas es limitada por su poca estabilidad molecular y problemas tecnológicos (Reddy & Miller, 2014; Kedia et al., 2015; Ghodake et al., 2018). 1.2.6 Impacto de insecticidas convencionales y biorracionales en abejas En las últimas décadas se reportan efectos negativos de pesticidas químicos (convencionales), causando una variedad de efectos subletales como: residuos en miel y polen, alteración del desarrollo, deformación en la probóscide, abundancia, la reproducción y el comportamiento; sesgando con estos efectos dañinos la supervivencia de colonias y poblaciones de abejas melíferas y nativas (Lundin et al., 2015; Pisa et al., 2017; Tosi et al., 2018; De Oliveira et al., 2018; Sánchez-Bayo & Wyckhuys, 2019). Las abejas constantemente están expuestas a una amplia gama de presiones vitales y no vitales, como los factores y efectos de los insecticidas u otros pesticidas en la industria agrícola, los cuales interactúan afectando la salud, abundancia y la supervivencia de sus poblaciones. Gonzáles et al., (2016), estudiaron el efecto del agente biorracional botánico Azadirachta indica en colmenas de Apis mellifera (L.) y el control de plagas, en el cual a ninguna de las concentraciones disminuyó la población de abejas, la cría operculada de obreras o las reservas de miel y polen. En 2017 dos especies del género Asteraceae (Artemisia absinthium y Eupatorium buniifolium) fueron evaluadas por su posible toxicidad para los insectos polinizadores , por lo que los resultados demostraron que para la toxicidad de la abeja: el uso de estos aceites esenciales en las cantidades necesarias de E. buniifolium 19 (0.04–0.13 mg/cm2) y A. absinthium (0.16–0.22 mg/cm2) para controlar mosca blanca (T. vaporariorum) no fueron tóxicos (Umpiérrez et al., 2017). Sin embargo, la preocupación alarmante en la reducción de pesticidas, efectos colaterales en abejas y un control de plagas se siguen evaluando otros agentes y productos en otros grupos de insectos benéficos y polinizadores los cuales pueden presentar una baja o nulo efecto con aplicaciones de agentes biorracionales (Monsreal, et al., 2017; Arthur et al., 2018). Algunos de los beneficios adicionales de los insecticidas biorracionales aparte de su acción contra las plagas objetivo, flexibilidad y nula toxicidad en insectos polinizadores y no objetivo; es el manejo eficiente de la resistencia para prolongar la vida útil de los plaguicidas químicos convencionales (Haramboure et al., 2017). Por la problemática planteada anteriormente, considerando la importancia que tiene B. tabaci, por los daños que ocasiona como vector en tomate rojo, efectos de resistencia, residuales y efectos subletales de los agroinsecticidas en la abundancia en abejas melíferas y nativas, se plantea el presente estudio con el objetivo de comparar la eficiencia de modos de manejo con inclusiones de insecticidas biorracionales y convencionales incorporados en el manejo de B. tabaci en condiciones de cielo abierto, sobre la densidad poblacional de adultos, ninfas y huevos, la incidencia/severidad viral de Begomovirus y el efecto en la abundancia de polinizadores (Hymenoptera) representativos en el cultivo de tomate rojo en la Península de Yucatán, México. 20 1.3 Hipótesis La incorporación de insecticidas biorracionales en los tratamientos de manejo de plagas tienen el mismo efecto que los tratamientos a base de insecticidas químicos en la supresión de la densidad poblacional de mosca blanca (B. tabaci Genn.) y virosis asociada. La incorporación de insecticidas biorracionales en los tratamientos de manejo de plagas no posee efectos negativos en la abundancia de abejas en comparación con el tratamiento a base de insecticidas químicos. 21 1.4 Objetivos 1.4.1 Objetivo general Evaluar el efecto de los tratamientos con inclusiones de insecticidas químicos y biorracionales en la supresión poblacional de mosca blanca (B. tabaci Genn.) en tomate y su impacto en abejas. 1.4.2 Objetivos específicos Evaluar el efecto de los tratamientos insecticidas en la densidad poblacional de adultos, ninfas y huevos de mosca blanca (B. tabaci Genn). Evaluar el efecto de los tratamientos insecticidas en la incidencia y severidad viral de begomovirus y rendimiento de frutos del cultivo de tomate. Determinar el impacto de los tratamientos insecticidas en la abundancia de abejas melíferas y nativas. 22 1.5 PROCEDIMIENTO EXPERIMENTAL Abundancia de abejas Muestreos matutinos 8:00-11:00 h Captura por medio de aspiradores bucales y Red de golpeo Identificación taxonómica de abejas (Hymenópteros: Claves dicotómicas, Michener et al., 1994; Goulet and Huber, 1993) Preservación en etanol al 70% y conformación de colección en departamento de Entomología y plagas de posgrado de Instituto Tecnológico de Conkal Manejo del complejo Bemisia tabaci-Begomovirus Evaluación de poblaciones de B. tabaci (Adultos/Hoja-1); ninfas y huevos (cm-2) Extracción de DNA por (PCR) (Presencia /Ausencia Begomovirus) Incidencia/Severidad Rendimiento (Kg/Planta-1) Evaluación de tratamientos en cultivo de tomate (Diseño de bloques completos al azar) Análisis estadístico Infostat, 2018 “EFECTO DE PRODUCTOS BIORRACIONALES EN EL COMPLEJO Bemisia tabaci- Begomovirus Y LA ABUNDANCIA DE ABEJAS EN EL CULTIVO DE TOMATE” 23 1.6 LITERATURA CITADA Alemandri, V., C. 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Instituto Tecnológico de Conkal. Conkal, Yucatán, México. 2Laboratorio GeMBio, Centro de Investigación Científica de Yucatán A.C. Mérida, Yucatán, México. 3CONACYT-Instituto Tecnológico de Conkal. Conkal, Yucatán, México. Corresponding autor: Esaú Ruiz-Sánchez, esau.ruiz@itconkal.edu.mx. Tecnológico Nacional de México, Instituto Tecnológico de Conkal. Avenida Tecnológico s/n, Conkal, Yucatán, C.P. 97345, México. Tel. 52 (999) 912 4135 Ext. 121. 2.1 Abstract This study was conducted to evaluate the effects of incorporation of biorational insecticides into pest management treatments in tomato. The abundance of flower visiting bees was also evaluated. Overall the population of Bemisia tabaci, the final incidence and severity of viral symptoms showed no difference (P > 0.05) among treatments. Marketable fruit yield was not significantly different (P > 0.05) among pest management treatments. The abundance of flower visiting bees showed no difference (P > 0.05) among treatments. Keywords: Biorational insecticides; pest management; bee abundance; solanaceous crops mailto:esau.ruiz@itconkal.edu.mx 36 2.1 Introduction Tomato (Solanum lycopersicum L.) is one of the important solanaceous crops in tropical America. The fruits of these horticultural vegetable crops are well appreciated for consumption and for agroindustrial purposes (Knapp and Peralta 2016; Valdivia et al. 2016). One of the limiting factors in tomato production under field conditions is the incidence of phytophagous insects (Diatte et al. 2018; Ramírez et al. 2018; Ramasamy and Ravishankar 2018). In tropical areas, tomato is mainly damaged by other pests has been also recorded, including the leafminer Liriomyza sativae, the fruitworm Heliothis zea and the two-spotted mite Tetranychus urticae (Reddy and Miller 2014; Diatte et al. 2018). A wide range of chemical insecticides has been used to control pest insects in Solanaceae crops. In conventional production systems, the number of insecticide sprays per growth cycle ranges from 10 to 20, depending on the degree of technification (Reddy and Miller 2014; Smith and Nagle 2014). The constant use of chemical insecticides has been linked to the insect resistance (Hawkins et al. 2018; Basit 2019), soil and water polution (Rodriguez et al. 2018), residues in fruits (Jallow et al. 2017) and decrease in beneficial insects (Jacob et al. 2019; Sánchez and Wyckhuys 2019). Various attempts have been made to use integrated pest management in horticultural crops (Kuhar et al. 2006; Reddy et al. 2018). In tomato, positive results have been observed when incorporating biorational agents into treatments against major pests like the red mite (Tetranychus marianae) and the tomato worm (Helicoverpa armigera) (Reddy and Miller 2014). The inclusion of microbial and botanical insecticides has been highly effective to reduce population density of the whitefly (B. tabaci), the aphid (Aphis gossypii) and fruit damage by the African bollworm (Helicoverpa armigera) (Reddy and Tangtrakulwanich 2014; El Shafie and Abdelraheem 2012; Soliman and Tarasco 2008). In tomatillo, however, no studies have been undertaken on the use of biorational products for pest management. The present work was carriedout to evaluate the incorporation of biorational insecticides into treatments for pest management on the density of the population of whitefly and damage of associated Begomovirus. In addition, the impact of the application of biorational insecticides was also evaluated on the abundance of flower visiting bees. 37 2.2 Materials y Methods 2.2.1 Site description The experiment was conducted at the horticultural production and research unit at the Technological Institute of Conkal (21 ° 4'N and 89 ° 31'W) in Yucatan, Mexico. The experiment was established in a Leptosol soil, with the following characteristics: pH: 8.0, electric conductivity: 1.4 ms cm-1, organic matter: 14.2%, total N: 63.9%, P: 82 mg / kg, Na: 850 mg / kg, K: 9000 mg / kg, Ca: 1180 mg / kg, Mg: 420 mg / kg. The environmental conditions during the growth cycle for tomato (February-July 2018) are shown in Table 1. Table 1. Environmental conditions during the growing season of tomato in Conkal, Yucatan. Month Minimum temp (°C) Medium temp (°C) Maximum temp (°C) Precipitation (mm3) January 16.1 21.7 27.3 55.2 February 18.7 25.5 32.3 5.8 March 18.9 26.3 33.6 15.1 April 20.4 27.7 35.1 57.1 May 21.6 28.1 34.6 118.8 June 22.5 28.2 33.9 170.0 July 22.5 28.8 35.1 97.3 August 22.2 28.3 34.4 159.2 September 22.5 28.2 33.8 137.3 October 21.9 27.3 32.8 87.0 November 19.8 25.4 31.1 67.4 December 17.7 23.7 29.7 28.5 *CONAGUA (2018). Annual report of temperature and precipitation during the year of 2018 for the area corresponding to Conkal, Yucatan. 2.2.2 Plot design and crop establishment The plot treatments were arranged in a randomized complete block design with five replicates (blocks). Plots were separated from other plots in buffer zones of 1.2 m to prevent contamination for insecticides drift. For tomato, plants of 30 days of age were transplanted with a space of 1.2 m between rows and 40 cm between plants within rows. Each plot consisted of 3 rows of 20 tomato plants, for a total of 60 plants per plot. Fertilizers were applied through a drip irrigation system based on the crop growth stage 38 (Table 2). 2.2.3 Treatment procedure Biorational pest management treatments included botanical insecticides and insect growth regulators. Conventional treatments (the growers practice) included only chemical insecticides. The insecticides were applied individually or in combinations (Tables 3). In all treatments for pest management in tomato included the application of neonicotinoid insecticides. Neonicotinoids are required in the production of tomato as they are effective in supressing the population density of B. tabaci. These insecticides secure the B. tabaci control in the field. The applications were made at the established time intervals normally practiced by farmers. The rates of insecticides were calculated based on the following amount of spray solutions: 250 L/ha for small plants (up to 45 DAT), 350 L/ha for medium- sized plants (45 to 80 DAT) and 600 L/ha for large plants (80 to 120 DAT). Insecticide applications were carried out by a motorized backpack sprinkler (STIHL SR-430), calibrated to deliver the desired amount of spray per hectare. Table 2. Rate of mineral fertilization by growth stage for tomato (S. lycopersicum) Mineral fertiizer rate (% of total) Crop growth stage Period (DAT) N P K Tomato Establisment 0-15 50 25 25 Vegetative growth 16-25 75 38 25 Flowering / fruit development 26-90 40 25 75 Maturity 91-140 35 12 25 39 2.2.4 Pest insects sampling in tomato To determine the presence of phytophagous insects, the whole growth cycle was scouting. From transplanting to harvesting, B. tabaci was the only pest that colonized the plants. Whitefly population levels were sampled at 32, 64, 88, 104 and 120 DAT. Fifteen plants were randomly selected per plot. For each plant, three leaflets were sampled: one from the top, one from the middle, and one from the bottom. Adults were counted by Table 3. Description of treatments for the management of Bemisia tabaci in tomato (S. lycopersicum). Treatment Active ingredient (Trade name and doses) Manufacturer Timing of treatment application (days after transplanting, DAT) Bio- 1 Flupyradifurone (Sivanto ® 2.5 ml/L first application as a soil drench, 2.0 ml/L subsequent applications as foliar spray) Bayer S.A. de C.V. 1, 7, 28, 77 Flonicamid (Beleaf ® 1 g/L) ISK Biosciences S.A. de C. V. 14 *Pyriproxifen (Knack ® 1.25 ml/L) Valent Mexico S.A. de C.V. 58 *Novaluron (Rimon ® 1.75 ml/L) Adama S. A. de C.V. 70 *Argemonine (Omega ® 5 ml/L) Ultraquimia S. A. de C.V. 42 *Potassium salts of fatty acids (Ultralux ® 10 ml/L) Ultraquimia S. A. de C.V. 7, 21, 35,49, 63, 77, 91, 105 *Argemonine + berberine + ricinine (BioDie ® 5 ml/L) Ultraquimia S. A. de C.V. 14, 28, 42, 56,70, 84, 98, 112 Bio-2 Dinotefuran (Venom® 2.5 g/L first application as a soil drench, 2.0 g/L subsequent applications as foliar spray) Valent Mexico S.A. de C.V. 1, 7, 28, 77 Pymetrozine (Plenum ® 1.5 g/L) Syngenta Agro. S.A. de C.V. 14 *Azadirachtin (Nimicide ® 10 ml/L) Ultraquimia S. A. de C.V. 56 *Novaluron (Rimon ® 1.75 ml/L) Adama S. A. de C.V. 42, 70 *Potassium salts of fatty acids (Ultralux ® 10 ml/L) Ultraquimia S. A. de C.V. 7, 21, 35, 49, 63, 77, 91, 105 *Soybean oil (Epa ® 5 ml/L) Biokrone S.A. de C.V. 14, 28, 42, 56, 70, 84, 98, 112 Bio-3 Flupyradifurone (Sivanto ® 2.5 ml/L first application as a soil drench, 2.0 ml/L subsequent applications as foliar spray) Bayer S.A. de C.V. 1, 7 *Azadirachtin (Nimicide ® 10 ml/L) Ultraquimia S. A. de C.V. 7, 35, 63, 91 *Argemonine (Omega ® 4 ml/L) Ultraquimia S. A. de C.V. 14, 42, 70, 98 *Soybean oil (Epa ® 5 ml/L) Biokrone S.A. de C.V. 21, 49, 77, 105 *Extract of garlic and pepper (Gamma ® 5 ml/L) Ultraquimia S. A. de C.V. 28, 56, 84, 112 *Novaluron (Rimon ® 1.75 ml/L) Adama S. A. de C.V. 42, 70 Conventional (The growers practice) Imidacloprid (Confidor ® 3 ml/L first application as a soil drench, 2.0 ml/L subsequent applications as foliar spray) Bayer S.A. de C.V. 1, 7, 28 Fenpropatrin (Herald ® 1.75 ml/L) Valent México S.A. de C.V. 14, 35, 49, 63, 84, 98, 112 Lambda-cyhalothrin (Karate ® 1.25 ml/L) Syngenta Agro.S.A. de C.V. 21, 42, 56, 70, 91, 105 *Buprofezin (Balanka ® 2 g/L) Gowan Mexicana S.A. de C.V. 56 Acetamiprid (Rescate ® 2 g/L) SummitAgro S.A. de C.V. 77 (*) The asterisk represents the biorational insecticides. 40 carefully turning the leaf and observing the abaxial side of a leaflet. Observed leaflets were detached, labeled, put in plastic bag and carried to the laboratory, where the numbers of eggs and nymphs were counted under a stereoscope. The incidence and severity of viral symptoms in the plots were also evaluated at 15 days intervals, beginning at 27 DAT. For viral incidence, percent of plants with symptoms was determined based on the total number of plants in each plot. For viral severity, a scale of six levels was modified from Caballero et al. (2015); level 0, asymptomatic; level 1, slight yellowing on leaves; level 2, moderate to severe leaf yellowing but no presence of leaf crumpling; level 3, severe leaf yellowing and slight leaf crumpling; level 4, Severe leaf yellowing and severe leaf crumpling; level 5, severe leaf yellowing, severe leaf crumpling and plant malformation. To confirm the presence of Begomovirus in symptomatic plants, samples of leaves with different levels of severity were taken from the field, DNA was obtained, and genes were amplified for Begomovirus detection as described by Tapia et al. (2005). For Begomovirus detection in leaf samples, the universal primers pAV324 (5´- GCCYATRTAYAGRAAGCCMAG-3´) and Ac1154 (5´- CTSAAYTTCMAAGTYTGGACG -3´) were used (Idris and Brown 1998). 2.2.5Abundance of flowers visiting bees Native stingless bees and honeybees visiting flowers were collected at flowering period in both crop species. Bee collecting period for tomato was from 60 to 80 DAT and for tomatillo was from 40 to 65 DAT. Bee sampling was carried out at week intervals for tomato and twice a week for tomatillo. Bees were directly collected using cone-type sweeping nets and suction mouth aspirators. Collectors remained for 25 minutes in each plot to observe 20 plants of the central area where all visiting bees were collected. Bees were sampled from 8:00 to 11:00 h. Collected bees were kept in 70% alcohol and taken to the laboratory for identification with taxonomic keys (Michener et al. 1994; Goulet and Huber 1993). 41 2.2.6 Fruit yield Fruits were harvested and yield was recorded with only undamaged (marketable) fruits. Fruits were graded and the total fruit yield was divided by the number of plants in each plot. Fruit yield was reported as kg/plant-1. 2.2.7 Data analysis Analysis of variance and Tukey mean comparison were performed for density of B. tabaci populations, fruit yield, abundance of flower visiting bees, and final incidence of viral symptoms. Prior to run, data in percent were transformed to y = arcsin (√(x/100)). Data were checked for homogeneity of variance (Levene test) and normality (Shapiro-Wilk test). Kruskal-Wallis non-parametric test was performed for the severity of viral symptoms. All data were analyzed in the statistical software InfoStat (Di Rienzo et al. 2018). Difference were considered significant if P < 0.05. 2.3 Results 2.3.1 Fluctuation of B. tabaci population, viral symptoms and fruit yield in tomato The population density of adults, nymphs and eggs were recorded at five sample times, 32, 64, 88, 104 and 120 days after transplant (DAT). The population density of adults and eggs on tomato plants showed no differences among treatments (P > 0.05), except at 120 DAT, where plants treated with Bio-3 showed significantly higher (P < 0.05) number of adults and eggs on leaves. The population density of nymphs showed no difference among treatments, except at 64 DAT. Higher population of nymphs was observed on plants treated with Bio-3 relative to those with conventional treatment (chemical insecticides) (Table 4). Virus incidence and severity in tomato plants was also evaluated at 15 days intervals. Final incidence of virus was not significantly different among treatments (P > 42 0.05). Virus incidence ranged from 59.5 to 66.5 % in plots with biorational treatments, whereas in plots with conventional treatment (chemical insecticides) the virus incidence was in average 70.5 %. Final severity of viral symptoms ranged from 2.1 to 2.6 in plots with biorational treatments, and 2.8 in plots with conventional treatment (Table 5). Final severity of viral symptoms was not significantly different among treatments (P > 0.05). For marketable fruit yield, plants with biorational treatments produced 1.4 to 1.7 kg/plant, whereas plants with conventional treatment (chemical insecticides) produced 1.6 kg/plant (Table 5). No significant differences among treatments was observed for fruit yield (P > 0.05). * Means within the same column followed by the same letter are not significantly different (P < 0.05, Tukey). Table 4. Mean number (± SE) of adults, nymphs and eggs of Bemisia tabaci on plants of tomato (S. lycopersicum) under different pest management treatments. Treatment Sample dates (days after transplanting, DAT) 32 64 88 104 120 Adults/leaf Bio-1 0.12 ± 0.03 a 0.44 ± 0.08 a 0.55 ± 0.12 a 0.59 ± 0.08 a 0.40 ± 0.06 a Bio-2 0.30 ± 0.06 a 0.47 ± 0.07 a 0.51 ± 0.08 a 0.46 ± 0.03 a 0.41 ± 0.02 a Bio-3 0.29 ± 0.05 a 0.68 ± 0.11 a 0.61 ± 0.08 a 0.57 ± 0.02 a 0.86 ± 0.08 b Conventional 0.23 ± 0.04 a 0.41 ± 0.03 a 0.73 ± 0.09 a 0.48 ± 0.03 a 0.37 ± 0.02 a Nymphs/cm2 Bio-1 0.01 ± 0.01 a 0.49 ± 0.03 ab 1.04 ± 0.21 a 0.60 ± 0.02 a 0.59 ± 0.07 a Bio-2 0.11 ± 0.05 a 0.48 ± 0.06 ab 0.85 ± 0.18 a 0.56 ± 0.03 a 0.72 ± 0.13 a Bio-3 0.03 ± 0.01 a 0.68 ± 0.07 b 1.05 ± 0.18 a 0.66 ± 0.07 a 1.01 ± 0.13 a Conventional 0.07 ± 0.04 a 0.43 ± 0.04 a 1.30 ± 0.11 a 0.62 ± 0.05 a 0.61 ± 0.19 a Eggs/cm2 Bio- 1 0.10 ± 0.05 a 0.75 ± 0.14 a 0.96 ± 0.17 a 0.49 ± 0.07 a 0.65 ± 0.07 a Bio-2 0.45 ± 0.16 a 0.66 ± 0.10 a 0.69 ± 0.16 a 0.51 ± 0.03 a 0.67 ± 0.17 a Bio-3 0.31 ± 0.12 a 1.11 ± 0.19 a 0.95 ± 0.16 a 0.60 ± 0.04 a 1.39 ± 0.14 b Conventional 0.18 ± 0.10 a 0.85 ± 0.10 a 0.86 ± 0.26 a 0.62 ± 0.03 a 0.61 ± 0.09 a 43 Table 5. Incidence and severity of viral symptoms and fruit yield in tomato (S. lycopersicum) under different pest management treatments. Treatment Final incidence (%) Final severity Fruit yield (kg/plant-1) Bio-1 66.50 ± 24.24 a 2.53 ± 0.96 a 1.47 ± 0.16 a Bio-2 59.50 ± 3. 41 a 2.09 ± 0.18 a 1.70 ± 0.11 a Bio-3 65.50 ± 13.60 a 2.62 ± 0.67 a 1.40 ± 0.23 a Conventional 70.50 ± 18.35 a 2.82 ± 0.87 a 1.61 ± 0.14 a * Means within the same column followed by the same letter are not significantly different (P < 0.05, Tukey). Final severity was analyzed by non-parametric Kruskal-Wallis test. 2.3.1. Abundance of flower visiting bees in tomato Abundance of flower visiting bees was evaluated at flowering stage in both crop species. For such purposes, only the three most abundant group of bees were analysed and reported. In tomato, the most abundant groups were Apis mellifera, Exomalopsis spp. and Lasioglossum spp. (Figure 1). In tomato plants, the abundance of flower visiting bees (A. mellifera, Exomalopsis spp., and Lasioglossum spp.) was not significantly different among treatments (P > 0.05) (Table 6). Figure 1. Abundance of flowers visiting bees in tomato. Among the abundant bees include cleptoparasite bees (Lasioglossum spp. and Exomalopsis spp) neotropical bees and eusocial mellifera bees (A. mellifera). The graph shows the percent of total individuals captured by sweping-net and mouth aspirator. 44 Table 6. Abundance of flower visiting bees in tomato (S. lycopersicum) under different pest management treatments. Treatment A. mellifera Exomalopsis spp. Lasioglossum spp. Bio-1 3.40 ± 1.20 a 4.80 ± 1.68 a 2.00 ± 0.94 a Bio-2 4.80 ± 1.98 a 5.60 ± 2.06 a 1.80 ± 0.58 a Bio-3 9.00 ± 3.64 a 5.40 ± 1.86 a 0.40 ± 0.40 a Conventional 1.40 ± 0.24 a 3.60 ± 1.86 a 0.60 ± 0.40 a Means within the same column followed by the same letter are not significantly different (P < 0.05, Tukey). 2.4 Discussion The use of biorational insecticides for pest management has recently gained great importance in horticultural production owing to their low toxicity to non-target organisms and high effectiveness against economically important pest insects (Horowitz and Ishaaya, 2004). Various studies have documented the feasibility of biorational treatments for pest management in vegetable production under greenhouses and field conditions (Reddy and Miller 2014; Umpiérrez et al. 2017; Jallow et al. 2018). In the present study, the incorporation of biorational insecticides into treatments to manage B. tabaci and associated viral disease on tomato was as effective as the treatment that included only chemical insecticides. In field experiments, various studies have found significant effects of biorational treatments on pest control. Reddy and Miller (2014) found that petroleum spray oil, Beauveria bassiana, azadirachtin, Bacillus thuringiensis are effective insecticides to manage the tomato fruitworm (Helicoverpa armigera), and the red spider mite (Tetranychus marianae). Ewunkem et al. (2014) found that suppression of phytophagous insects, like Pentatomidae, Cicadellidae and Thripidae were similar in plots treated with plant-derived products and those treated with chemical insecticides (neonicotinoids). Patil et al. (2018) found slightlylower effects of botanical/microbial insecticides relative to those of chemical insecticides against tomato fruit borer (Helicoverpa armigera). 45 Fruit yield in both crop species showed no significant differences among treatments. Overall, fruit yield was relatively low compared to the average yield reported for these crops in other studies. Fruit yield in tomato reported by other studies ranges from 2.75 kg/plant to 3.36 kg/plant (Díaz et al. 2017; Maboko and Du Plooym 2018), whereas in our study we reported 1.4 to 1.7 kg/plant. The low fruit yield obtained in our study was likely due to the por soil conditions in the Yucatan Peninsula, characterized by soil with high concentration of calcium bicarbonate and low availability of mineral elements, like P and K, typical of skarst soils with limestone on the ground (Beach 1998; Estrada et al. 2013). The use of biorational insecticides for pest management treatments has been associated with slight or null effects on beneficial insects, including various species of bees. Our results show that in tomato, bee abundance (Apis mellifera, Exomalopsis spp. and Lasioglossum spp.) was not significantly different in plots with biorational treatments and those with conventional treatment. 2.5 Conclusion In conclusion, biorational treatments, similarly to conventional treatment that included only the use of chemical insecticides, supressed the population density of B. tabaci and virus incicdence and severity in tomato. Fruit yield showed no difference among treatments. The abundance of flower visiting bees (A. mellifera, Exomalopsis spp. and Lasioglossum spp.) in tomato plants was not different among pest management treatments. 2.6 Acknowledgments Authors thank Karely Valencia-Polanco, Joaquin Cano-Pech and Perla Navarrete- Uc for their assistance in crop maintaining and data collecting. This study was supported by Tecnológico Nacional de México, Grant number 5137.19-P. 46 2.6 References Basit, M. 2019. Status of insecticide resistance in Bemisia tabaci: resistance, cross- resistance, stability of resistance, genetics and fitness costs. Phyto. 1-19. Beach T. 1998. Soil constraints on northwest Yucatán, México: pedoarchaeology and Maya subsistence at Chunchucmil. Geoarchaeol. 13(8): 759–791. Caballero RD, Schuster NA, Peres J, Mangandi T, Hasing, F, Trexler S, Kalb HE, Portillo PC, Marc ON, Annan I. B. 2015. Effectiveness of cyantraniliprole for managing Bemisia tabaci (Hempitera: Aleyrodidae) and interfering with transmission of tomato yellow leaf curl virus on tomato. J Econ Entomol. 108(1): 894–903. Di Rienzo JA, Casanoves F, Gonzalez LA, Tablada EM, Díaz MP, Robledo CW, Balzarini MG. 2018. InfoStat versión 2018. Grupo InfoStat, FCA, Universidad Nacional de Córdoba, Argentina. Díaz HS, Gallo LL, Domínguez CP, Rodríguez A. 2017. 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