Manual de anestesia regional en pequeños animales y técnicas de analgesia

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Phillip Lerche
Turi K. AarnesGwen 
Covey-Crump
Fernando Martínez Taboada 
Wl LEY Blackwell 
 
Manual de 
anestesia Regional en Pequeños
Animales y Técnicas
de Analgesia
 
Manual de la anestesia regional de
Pequeños Animales y Técnicas analgesia 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Manual de la anestesia 
regional de Pequeños 
Animales y Técnicas 
analgesia
Phillip Lerche BVSc DipACVAA PhD
Profesor Asociado - Clínica
Anestesiología y Manejo del Dolor
Departamento de Ciencias Clínicas Veterinarias
La Universidad Estatal de Ohio
Facultad de Medicina Veterinaria
Columbus, Ohio, EE.UU.
Turi K. Aarnes DVM DÍPACVAA MS
Profesor Asociado - Clínica
Anestesiología y Manejo del Dolor
Departamento de Ciencias Clínicas Veterinarias
La Universidad Estatal de Ohio
Facultad de Medicina Veterinaria
Columbus, Ohio, EE.UU.
Gwen Covey-Crump BVetMed CertVA DipECVAA MRCVS
Especialista en Anestesia y Analgesia Veterinaria
Profesor clínico
Servicios Veterinarios Langford
Universidad de Bristol
Bristol, Reino Unido
Fernando Martínez Taboada LV CertVA DÍPECVAA 
MRCVS
Especialista en Anestesia y Analgesia Veterinaria
El Hospital de Enseñanza Veterinaria
Facultad de Ciencias Veterinarias
La Universidad de Sydney
Sydney, Australia
 
WILEY Blackwell
 
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1 2016
http://www.wiley.com/wiley-blackwell
 
Contenido
1 Introducción, 1 
Razones para proporcionar anestesia regional, 2 
Historia de la anestesia / analgesia regional, 3 
Principios de las técnicas principales, 3 
fármacos anestésicos locales, 4 
Aditivos a los anestésicos locales, 6 
Equipo, 7 
Jeringas, 7 
Agujas, 7 
kits catéter epidural, 8 
localizadores nerviosas, 8 
transductor de presión diferencial, 9 
Dispositivo acústico, 9 
Complicaciones y contraindicaciones, 9 
Local, 10 
Sistémica, 10 
Las diferencias entre especies y consideraciones, 10 
una práctica segura, 11 
Ganando confianza, 11 
Hacer un plan, 11 
Referencias, 11 
Para leer más, 12 
2 Inervación cutánea Índice, 13 
índice de inervación cutánea, 14 
dermatomas caninos 
Cuerpo, 14 
Cabeza, 15 
extremidad Torácica, 16 
miembro pélvico, 18 
v
 vi Contenido
3 Los bloques de infiltración, 21 
La infiltración para la eliminación de masa, 22 
Línea y anillo bloques, 22 
Invertida bloque de “L", 24 
Bloque de la incisión quirúrgica, 26 
Una sola inyección de la incisión quirúrgica, 26 
catéter Difusión / catéter "madurador" / "dolor más ocupado", 
28 
bloques intercostales, 30 
bloque interpleural (también conocido como intrapleural o 
pleural), 32 
bloque intraperitoneal, 34 
Referencias, 35 
4 Bloques de la Cabeza, 37 
Retrobulbar, 38 
Maxilar, 40 
Infraorbital, 42 
Mandibular (o alveolar inferior), 44 
Mentales (o medio mental), 46 
Auriculotemporal y un gran auricular, 48 
Referencias, 52 
5 Regionales anestésicas Bloques de las extremidades, 53 
miembro torácico bloqueos anestésicos regionales, 54 
plexo braquial, 56 
Paravertebral: C6-T1, 58 
RUMM (radial / cubital / mediana / musculocutáneo), 60 
bloqueo de Bier (anestesia regional intravenosa), 62 
miembro pélvico, 64 
Femoral / bloqueo del nervio safeno, 66 
El bloqueo del nervio ciático, 70 
Referencias, 74 
6 Las epidurales y espinales, 75 
epidural y la médula lumbosacra en los perros, 76 
epidural lumbosacro en los gatos, 78 
epidural caudal en los perros y gatos, 80 
Referencias, 82 
7 Procedimientos de emergencia, 83 
Las complicaciones asociadas con las técnicas anestésicas 
locales, 84 
Sangrado, 84 
 Contenido vii
Las complicaciones asociadas con fármacos anestésicos locales, 
84 
Las reacciones alérgicas a los fármacos anestésicos locales, 84
La metahemoglobinemia, 85 
La toxicidad sistémica de los anestésicos locales, 85 La 
toxicidad cardiovascular, 85 Referencias, 88 Otraslecturas, 88 
Índice, 89 
 
CAPÍTULO 1 
Introducción 
Phillip Lerche 
Handbook of Small Animal Anestesia Regional y las técnicas de analgesia, Primera edición. 
Phillip Lerche, Turi K. Aarnes, Gwen Covey-Crump y Fernando Martínez Taboada. © 2016 John 
Wiley & Sons, Ltd. Ha publicado 2016 por John Wiley & Sons, Ltd. 
1
 2 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia
Razones para proporcionar anestesia regional 
El uso de la anestesia regional como componente del manejo del dolor 
perioperatorio ha ganado aceptación y popularidad en clínica de pequeños 
animales en los últimos decenios. Las razones para esto incluyen el hecho 
de que muchos de los bloques regionales son sencillos de realizar, que 
requiere habilidad moderada familiaridad técnica dada con la anatomía del 
paciente; que pueden llevarse a cabo de manera relativamente segura dado 
entendimiento de la farmacología fármaco anestésico local, 
complicaciones y efectos secundarios; y contribuyen a los dos principios 
más importantes de tratamiento del dolor: analgesia preventiva y 
multimodal. 
Proporcionar analgesia preventiva mediante la realización de la 
anestesia regional antes de la cirugía conduce a una reducción drástica en 
la estimulación nociceptiva intraoperatoria (dolor). Esto se traduce en una 
disminución de medicamento de mantenimiento anestésico, así como la 
necesidad de analgésicos intra y postoperatorias, disminuyendo así la 
incidencia de los efectos secundarios de los medicamentos durante la 
cirugía, y la mejora de la comodidad del paciente postoperatorio así como 
la duración del alivio del dolor. Algunas técnicas se pueden continuar 
postop- eratively para ayudar en el manejo del dolor después de cirugías 
particularmente dolorosos una vez que el paciente se ha recuperado de la 
anestesia, por ejemplo, infundiendo anestésico local en un tubo de pecho 
después de toracotomía, o la inyección de anestésico local en una epidural 
o un catéter espinal después de miembro pélvico o cirugía abdominal. 
La experiencia del dolor, un proceso que interviene la vía sensorial 
nociceptivo, es complejo, e implica varios pasos. Los estímulos nocivos 
que implican lesión térmica al tejido mecánicos, químicos o se transducen 
primero en estímulos eléctricos por nociceptores periféricos (receptores 
del dolor). Estos impulsos eléctricos se transmiten a la médula espinal, 
donde son moduladas por las neuronas en el asta dorsal de la sustancia gris 
de la médula espinal. Aquí, la intensidad de impulso se puede aumentar 
(amplificado) o disminuye (suprimida). Finalmente, las señales 
nociceptivas se proyectan a través de las fibras nerviosas laterales al 
cerebro donde se percibe. 
Considerando que la mayoría de los fármacos analgésicos o bien 
disminuir la cantidad de neurotransmisores excitadores, o aumentar el 
nivel de neurotransmisores inhibidores liberados en la vía nociceptivo, 
fármacos utilizados para proporcionar canales bloque anestesia sodio 
regionales en las neuronas. Esto evita completamente las neuronas 
sensoriales de la transmisión de estímulos nocivos desde la periferia hasta 
el cerebro y la médula espinal o de la médula espinal al cerebro en el caso 
de analgesia epidural o espinal, proporcionando así alivio eficaz del dolor 
durante la duración del bloque. El uso de técnicas anestésicas regionales en 
conjunción con otros fármacos analgésicos que actúan de diferentes 
maneras en las fibras nociceptivas (por ejemplo, con los opioides, 
 Introducción 3
la vía del dolor durante y después de la cirugía. Este enfoque permite la 
dosis eficaz más baja de cada medicamento para ser utilizado, lo que 
disminuye los efectos secundarios y mejora la seguridad del paciente. 
Historia de la anestesia / analgesia regional 
El uso de un medicamento anestésico local se demostró por primera vez en 
1884 cuando se utilizó la cocaína para desensibilizar el ojo antes de la 
cirugía. Debido a la formación de cocaína ser hábito y que tiene un margen 
de seguridad bajo, así como la aparición de técnicas que permiten la 
síntesis artificial de los compuestos químicos en la década de 1900, se 
buscaron no tóxicas, anestésicos locales no adictivos, descubrieron, y 
fabricados. Inicialmente, se produjeron compuestos de tipo éster de 
aminoácidos, hasta que en 1943 lidocaína, un fármaco amino amida, fue 
desarrollado. De tipo amida fármacos anestésicos locales se prefieren para 
su mayor duración de acción, y varios compuestos de este grupo fueron 
descubiertos en la última mitad del siglo 20, incluyendo mepivacaína, 
bupivacaína, y ropivacaína. 
Principios de las técnicas principales 
Aplicación tópica 
gotas anestésicas locales, por ejemplo proparacaına, se pueden aplicar 
directamente en el ojo para el alivio inmediato del dolor 
queratoconjuntival, aunque no se recomienda el uso de retrasos 
prolongados cicatrización corneal y. El anestésico local también se puede 
aplicar directamente al tejido expuesto. Drogas es depositado directamente 
en el campo quirúrgico por goteo de una jeringuilla, o sumergirse esponjas 
quirúrgicas en anestésico local y su aplicación al tejido. El anestésico local 
también se puede instilar en el pecho a través de un tubo de toracostomía 
para desensibilizar la pleura después de la cirugía en el pecho, y en la 
cavidad abdominal para tratar el dolor después de la incisión del peritoneo. 
crema anestésica local está disponible como una mezcla de lidocaína y 
prilocaína, que se utiliza para desensibilizar la piel para la colocación del 
catéter intravenoso. La lidocaína también está disponible como un parche 
transdérmico. 
infiltración regional 
analgesia regional continua se logra colocando fenestrados catéteres 
"remojo" en las zonas que no son susceptibles a las técnicas de analgésicos 
periféricos o regionales. El catéter se une después a una bomba de infusión 
o un balón de elastómero que proporciona una tasa de conjunto de 
anestésico local durante un período de tiempo especificado. 
intravenosa analgesia regional 
Analgesia se puede proporcionar a una extremidad distal mediante la 
colocación de un vendaje Esmarch y la inyección de anestésico local 
 4 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia
La inyección intraarticular 
Los anestésicos locales se inyectan en las articulaciones tienen una larga 
duración de la acción debido a la lenta absorción sistémica. Hay pruebas in 
vitro que los anestésicos locales pueden ser perjudiciales para la salud de 
los condrocitos, siendo preferidos formulaciones sin conservantes. Sin 
embargo, in vivo, esto no se ha demostrado que es definitivamente el caso 
(Chu et al, 2008). 
bloqueo de nervios periféricos 
Individuales o grupos de nervios sensoriales que suministran una región 
específica se encuentran por palpación, la electrofisiología, ultrasonido o 
diferentes combinaciones de dos o tres de estas técnicas. La anestesia local 
se deposita a continuación adyacente a, pero no en, los nervios. Los 
nervios están normalmente bloqueadas en los sitios proximal y distantes al 
sitio de la cirugía. 
la inyección epidural y espinal 
Usando epidurales / agujas espinales específicos, anestésico local se 
deposita ya sea en el espacio extradural (inyección epidural) o en el 
espacio subaracnoideo (inyección espinal o intratecal). Esto proporciona 
mayor duración, más intensa analgesia y relajación muscular, mientras que 
se minimizan los efectos secundarios sistémicos. Se recomiendan 
formulaciones conservantes de fármaco para inyección epidural o espinal 
siempre que sea posible. 
fármacos anestésicos locales 
Mecanismo de acción 
Los anestésicos locales actúan principalmente mediante el bloqueo de 
sodio (Na +) canales, lo que impide la despolarización de la membrana 
celular neuronal, y por lo tanto la generación de un impulso eléctrico no se 
produce en respuesta a los estímulos nocivos. Hay evidencia parasugerir 
que los anestésicos locales también pueden ejercer su actividad mediante 
el bloqueo de los canales de calcio y la inhibición de la recaptación de la 
GABA neurotransmisor inhibidor, mejorando así su efecto. 
Propiedades fisicoquímicas 
fármacos anestésicos locales tienen un anillo aromático y un grupo amina 
separados por una cadena hidrocarbonada. El grupo amina puede ser un 
éster o una amida enlazada. Los ésteres son de acción típicamente más 
corto que amidas ya que pueden ser hidrolizados por las colinesterasas 
plasmáticas. Ésteres, por tanto, no son dependientes de hígado para el 
despacho, mientras que las amidas se someten a metabolismo hepático. 
Velocidad de aparición es inversamente proporcional a la solubilidad en 
lípidos de la droga y pKa, es decir, el pH al que el fármaco existe en 
cantidades iguales de moléculas cargadas y no cargadas. La duración del 
 Introducción 5
Tabla 1.1 Farmacología clínica de los agentes anestésicos locales en los gatos y perros
 
La lidocaína mepivacaína bupivacaína ropivacaína 
Comienzo 
(minutos) 
5-10 5-10 20-30 20-30 
Duración 
(horas) 
1-3 1.5-3 3-8 3-8 
dosis clínica 
(Mg / kg) 
0,5-2,0 perro 
0,5-1,5 gato 
Hasta 3,0 perro 
Hasta 1,5 gato 
1,0-1,5 perro 
1.0 gato 
Hasta 3,0 perro * 
dosis tóxica 
(Mg / kg) 
6,0 perro 
3.0 gato 
6,0 perro 
3.0 gato 
3.0 perro 
2.0 gato 
5.0 perro * 
* Dosis tóxica no establecido en los gatos. Recomiendan dosis no superior a 2 mg / kg total.
medicamentos específicos 
De tipo amida fármacos anestésicos locales se prefieren en la práctica 
veterinaria actual de su duración de acción más larga en comparación con 
los fármacos de tipo éster. Véase la Tabla 1.1 para la información de 
resumen. 
La lidocaína 
La lidocaína tiene una breve aparición debido a su bajo pKa de 7,9. 
Duración de la acción es corta, con una duración de hasta 2 h. Esto es 
debido a su nivel relativamente bajo de unión a proteínas (70%), y el hecho 
de que es un potente vasodilatador. La lidocaína formulado con epinefrina 
tiene una mayor duración de acción debido a las causas vasoconstricción 
epinefrina. La lidocaína es menos tóxico que otras drogas de tipo amida si 
se administra por vía intravenosa (IV), y se pueden administrar IV para 
tratar el dolor sistémicamente, así como para el tratamiento de arritmias 
ventriculares. 
mepivacaína 
Mepivacaine tiene un bajo pKa de 7,6, y por lo tanto un rápido inicio de 
acción. Es altamente unido a proteínas (95%), resultando en una duración 
de acción de 6-8 h. 
bupivacaína 
La bupivacaína tiene un pKa de 8,1 y se une intensamente a proteínas 
(95%), resultando en una mayor duración de acción (6-8 h). El margen de 
seguridad es la más baja en comparación con la lidocaína, mepivacaína, y 
acaine ropiv-. 
ropivacaína 
La ropivacaína tiene propiedades fisicoquímicas similares a la 
bupivacaína, y por lo tanto tiene un inicio y duración de acción similar. 
Otros anestésicos locales se sintetizan como mezclas racémicas, mientras 
 6 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia
Combinación de fármacos 
La lidocaína y la bupivacaína se pueden mezclar en una proporción 1: 1 
para tomar ventaja de inicio más corto de la lidocaína y la mayor duración 
de la bupivacaína de acción. 
Aditivos a los anestésicos locales 
Otros fármacos se pueden añadir a los anestésicos locales para mejorar o 
extender bloqueo, o para disminuir el dolor experimentado durante la 
inyección. 
Los opioides 
Los opiáceos, especialmente la morfina libre de conservantes, se 
administran comúnmente con anestésicos locales para analgesia epidural o 
espinal. Esto produce efectos analgésicos multimodales aditivos o 
sinérgicos, con analgesia duración de hasta 24 h, mucho más tiempo que 
con el tratamiento farmacológico individual. Las complicaciones de la 
adición de los opioides incluyen depresión respiratoria, especialmente si se 
usan dosis altas o volúmenes, retención urinaria, vómito (en perros 
conscientes), y el prurito. Mioclono, paresia de las extremidades 
posteriores, la propiocepción alterado, hiperestesia y son complicaciones 
raras. 
Agonistas alfa-2 adrenoceptor 
El agonismo de receptores alfa-2 pre y postsinápticos en los resultados vía 
del dolor en analgesia. Xilazina (0,25 mg / kg) y medetomidina (15 pg / kg) 
se han usado por vía epidural en perros, con medetomidina proporcionar 
analgesia durante un máximo de 8 h. Los efectos secundarios incluyen 
bradicardia e hipertensión. La dexmedetomidina produce analgesia de una 
manera dependiente de la dosis cuando se administra por vía intratecal y 
epidural en perros. 
La ketamina 
La ketamina más probable produce sus efectos analgésicos cuando se 
administran por vía epidural mediante el bloqueo de los canales de NMDA. 
Ketamina también bloquea algunos canales de sodio y de potasio, 
disminuyendo así la propagación de las señales nociceptivas. Las dosis 
eficaces están 1-3 mg / kg. Los efectos secundarios incluyen aumento del 
ritmo cardíaco, la presión arterial, y el trabajo del miocardio. 
La epinefrina (adrenalina) 
La epinefrina se puede añadir al anestésico local a una concentración de 5 
pg / ml. La deposición de la combinación resulta en la vasoconstricción 
local, que conduce a la disminución de absorción sistémica y la 
prolongación de bloqueo. Esto retrasa la absorción también se traduce en 
un menor número de efectos secundarios sistémicos debido a la 
 Introducción 7
Bicarbonato de sodio 
La adición de bicarbonato de sodio a 1 mEq por 10 ml de anestesia local 
aumenta la cantidad de activo (no ionizada) fármaco presente, el aumento 
de la difusión a través de las membranas celulares de las neuronas. Esto 
puede conducir a una duración más corta aparición y ya de bloqueo. El 
dolor experimentado durante la inyección de anestésico local en el 
paciente consciente también se disminuye mediante la adición de 
bicarbonato de sodio. El bicarbonato de sodio no se debe añadir a la 
bupivacaína o ropivacaína como ocurrirá precipitación. 
hialuronidasa 
Hialuronidasa mejora la permeabilidad del tejido por despolimerización de 
ácido hialurónico, resultando en una mejor propagación del anestésico 
local. Se puede añadir a 3,75 UI por ml de anestésico local para mejorar la 
calidad de bloqueo. Debido a la permeabilidad mejorada, duración puede 
ser disminuido y toxicidad aumenta debido al aumento de la absorción 
sistémica. La adición de hialuronidasa a la ropivacaína no mejora la 
propagación. 
Equipo 
jeringas 
Debido a la variedad de tamaños de perros, una variedad de tamaños de 
jeringas que van desde 1 ml a 20 ml debe estar disponible. jeringas de 
vidrio, o hechos especialmente jeringas de baja resistencia de plástico, son 
útiles cuando se realizan técnicas epidurales para comprobar la pérdida de 
resistencia. Un tipo específico de jeringa, llamado una jeringa de Episure 
™, se ha evaluado en personas como una alternativa a jeringas de vidrio 
cuando se realiza la anestesia epidural. Esta jeringa presenta un muelle de 
compresión, que suministra una presión constante cuando está unido a una 
aguja. El operador puede avanzar la aguja con las dos manos, en lugar de 
una mano, lo que permite más constante avance de la aguja y una señal 
visual de que se ha entrado en el espacio epidural (Riley y Carvalho, 2007).
agujas 
Las agujas hipodérmicas que van desde 25 Ga a 20 Ga y 2-5 cm se utilizan 
para realizar muchos bloqueos de nervios locales. 
agujas epidurales / espinal se utilizan al realizar epidural o analgesia 
espinal. Estas agujas tienen un bisel afilado y incorporan un estilete para 
evitar el depósito de núcleos de tejido dentro del espacio epidural o 
espinal. Estas agujas están disponibles en una gama de medidores (18, 20, 
y 22 Ga) y longitudes (3.8, 6.3, y 9.0 cm). 
Una aguja espinal modificado, o una aguja Tuohy, está ligeramente 
curvada en la punta, lo que facilita el avance delcatéter cuando la coloque 
 8 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia
el espacio epidural. Este tipo de aguja suele estar marcada en incrementos 
de 1 cm a lo largo de su longitud para ayudar a determinar qué tan lejos 
para insertar el catéter. agujas Tuohy son típicamente de mayor calibre (16 
y 18 Ga) que las agujas epidurales estándar con el fin de colocar el catéter 
más fácilmente, aunque esto puede dificultar la colocación en pacientes 
pequeños. 
kits catéter epidural 
kits esterilizados para la colocación de catéteres epidurales están 
disponibles comercialmente. Ellos incluyen típicamente una aguja Tuohy, 
una pérdida de jeringa de resistencia, un catéter radiopaco con alambre de 
guía, un conector, y un filtro antibacteriano. Algunos kits también incluyen 
una pluma estéril, que se utiliza para marcar en el catéter de la distancia que 
se debe avanzar a través de la aguja de Tuohy. 
localizadores nerviosas 
localizadores nerviosas se utilizan para mejorar la precisión de la 
deposición de anestésico local, disminuir la dosis de anestésico local es 
necesario, y limitar los efectos secundarios. 
estimuladores nerviosos periféricos 
estimuladores nerviosos periférico (SNP) se utilizan en conjunción con las 
agujas recubiertos de teflón, que tienen una pequeña zona conductora en la 
punta, para localizar los nervios utilizando una corriente eléctrica (Figura 
1.1). El recubrimiento de teflón asegura que sólo la punta de la aguja 
transmite la corriente eléctrica de modo que se consigue una alta densidad 
de corriente. Se aconseja al lector a referirse a la hoja de instrucciones 
adjunta con el estimulador de nervios periféricos. 
Brevemente, el conductor positivo (ánodo) está unido a la piel por 
medio de un electrodo pegajosa (pad ECG) y el cable negativo (cátodo) se 
conecta a la aguja. puntos de referencia anatómicos se palpan y la aguja se 
inserta a través de la piel. La aguja se hace avanzar hasta que está en 
estrecha proximidad al nervio. Entonces, el operador gira el estimulador 
 
Figura 1.1 A, estimulador 
Peripheralnerve. B, la aguja 
revestida de Teflón. C, 
Positivelead (ánodo) y 
stickyelectrode (pad ECG). D, 
cable negativo (cátodo) .E, 
Jeringa, puerto de inyección, y 
el tubo. withpermission 
reproducido de la Universidad 
OhioState. 
 
 Introducción 9
duración de 0,1-0,3 ms. Esto genera un campo eléctrico adyacente al 
nervio, que resulta en la despolarización y la contracción muscular, o 
contracciones nerviosas. La corriente requerida para provocar una 
contracción aumenta exponencialmente a medida que la distancia entre el 
nervio y los aumentos de aguja. La corriente se reduce al nivel más bajo 
posible requerida para provocar una contracción, y esto se hace tiempo que 
reorientan cuidadosamente la aguja de modo que se encuentra muy cerca 
del nervio. La corriente útil no es un estímulo doloroso, y se puede utilizar 
en un paciente sedado. Una vez que la corriente más bajo posible requerido 
para provocar una contracción ha sido determinada, anestésico local se 
inyecta a través de la aguja a través de la tubería. La inyección de anestesia 
local empuja la aguja un poco más lejos del nervio, así contracciones 
nerviosas son por lo general disminuyen o se pierden inmediatamente 
después de la inyección. 
Ultrasonido 
sondas de ultrasonidos se pueden usar para visualizar los nervios 
directamente tanto antes y durante la colocación de la aguja y la deposición 
del fármaco anestésico, lo que permite mejorar la precisión de bloqueo. 
Esta técnica se combina a menudo con un estimulador nervioso para 
confirmar la ubicación del nervio, lo que permite la deposición del fármaco 
cerca de, pero no en, el nervio. 
transductor de presión diferencial 
La probabilidad de daño a los nervios durante la inyección de anestésico 
local se incrementa cuando las inyecciones se llevan a cabo bajo alta 
presión. El uso de un transductor de presión en línea permite que la fuerza 
constante que se aplica durante la inyección. 
dispositivo acústico 
Identificación de entrada de la aguja en, o punción de, el espacio epidural 
puede ser difícil usando la pérdida convencional de la técnica de 
resistencia. la amplificación acústica se ha utilizado para detectar la 
punción con más precisión. Un transductor de presión de línea en está 
unido a un amplificador de presión, que a su vez está unido a un altavoz. El 
sonido del paso de la aguja de baja resistencia a los tejidos circundantes a 
la alta resistencia del ligamento amarillo se puede apreciar de forma 
audible (Lechner et al, 2002). 
Las complicaciones y contraindicaciones 
En la práctica segura en general, saber cuándo está contraindicada una 
técnica de anestesia local es esencial, como es la comprensión de las 
complicaciones de la administración de anestesia local y cómo tratarlos. 
Las complicaciones pueden ser ampliamente clasificados como 
 10 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia
Local 
Piel 
técnicas analgésicas locales no deben intentarse donde se inflama la piel 
que recubre el sitio de inyección, infectado, o claramente neoplásicas ya 
que esto puede promover la transmisión y propagación de organismos 
infecciosos o células neoplásicas en el tejido adyacente. 
Nervio 
trauma directo a los nervios por la aguja o de inyección de alta presión
puede resultar en la pérdida de sensibilidad, dolor, malestar y / o debilidad 
motora que puede ser temporal, que dura días o años, o permanente. El 
daño a los vasos sanguíneos cerca de los nervios, particularmente aquellos 
con pobre suministro de sangre, puede conducir a la isquemia. Por último, 
los fármacos anestésicos locales o aditivos pueden ser directamente 
tóxicos para el tejido nervioso. 
sistémico 
Sistema nervioso central 
El exceso de la absorción sistémica de anestésico local puede causar 
convulsiones. Esto ocurre porque las neuronas inhibidoras son más 
sensibles al bloqueo del canal de Na +, y si están bloqueados entonces los 
resultados de excitación. 
Cardiovascular 
técnicas anestésicas locales deben realizarse con precaución o evitarse en 
pacientes que son hipotensos o en estado de shock, como la administración 
del fármaco inadvertida en una vena o inesperado rápida absorción 
sistémica de fármacos puede conducir a un colapso cardiovascular. 
coagulopatía 
Técnicas en las que la hemorragia es una complicación posible, por 
ejemplo, el bloqueo epidural, no deben llevarse a cabo en pacientes en los 
que la coagulopatía se ha demostrado o se sospeche. Laceración de un vaso 
sanguíneo puede llevar a un sangrado que será difícil de controlar. Si se 
produce hemorragia no controlada en un espacio cerrado, que puede 
conducir a necrosis por presión de los tejidos adyacentes. 
Las diferencias entre especies y consideraciones
Como especie, los gatos son generalmente menos susceptibles de ser 
inmovilizado para los procedimientos a menos que estén fuertemente 
sedados o anestesiados, en comparación con los perros en los que algunas 
técnicas pueden realizarse con sedación ligera. También puede ser más 
 Introducción 11
la dosificación exacta dará lugar a un menor número de complicaciones. 
anestesia inhalante con isoflurano o sevoflurano disminuye el metabolismo 
de la lidocaína después de 2 mg / kg de la administración intravenosa en 
gatos, incluso a dosis inhalantes relativamente bajas, mientras que este no 
es el caso en los perros (Thomasy et al, 2005). La inyección rápida 
inadvertida intravenosa de lidocaína, mientras que no es ideal en cualquier 
especie, puede ser más problemático en los gatos. 
práctica segura 
ganando confianza 
técnicas anestésicas locales varían en su nivel de dificultad para llevar a 
cabo, la eficacia del bloqueo, y la complejidad de los equipos necesarios. 
Comenzando por el uso de técnicas sencillas que requieren poco en el 
camino de equipo adicional, y se hainformado que tienen altas tasas de 
éxito, se recomienda. Una vez cómodo con técnicas sencillas, el 
practicante puede ampliar su repertorio. Asistir a seminarios de educación 
continua y cursos sobre técnicas de anestesia local, particularmente cuando 
un laboratorio húmedo es un componente de la formación, se recomienda. 
También creemos que el uso de este libro será de gran valor cuando se trata 
de técnicas escénicas donde el practicante tiene poca o ninguna 
experiencia. 
Hacer un plan 
Independientemente de la técnica, la realización con éxito bloqueos 
anestésicos locales requiere preparación del equipo adecuado, y un 
conocimiento profundo de la anatomía del paciente y la farmacología 
fármaco anestésico local. Es también importante que el médico que realiza 
el bloqueo anestésico local tiene una apreciación de las posibles 
complicaciones que podrían ocurrir y es capaz de desarrollar un plan para 
su tratamiento (véase el capítulo 7). La persona que realiza el bloque 
también debe tener en cuenta un plan alternativo para proporcionar 
analgesia caso de que el bloque de resultar imposible de realizar, o en los 
casos en que continúan con el bloque está contraindicado (por ejemplo, 
caída severa en la presión arterial durante la administración epidural, 
infección de la piel sobre el sitio de inyección se hace evidente después de 
recorte). 
referencias 
Chu, CR, Izzo, NJ, Coyle, CH, et al. (2008) Los efectos in vitro de acaine bupiv- en 
condrocitos articulares. J Bone Joint Surg 90: 814-820. 
Lechner, TJM, van Wijk, MGF y Maas, JJ (2002) Los resultados clínicos con un 
 12 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia
Riley, ET y Carvalho, B. (2007) La jeringa Episure: a novel pérdida de jeringa 
resistencia para localizar el espacio epidural. Analg 105: 1164-1166. 
Thomasy, SM, Pypendop, BH, Ilkiw, JE y Stanley, SD (2005) Farmacocinética de 
lidocaína y su metabolito activo, monoetilglicinaxilidida, después de la 
administración intravenosa de lidocaína a despierto y isoflurane- gatos 
anestesiados. Am J Vet Res 66: 1162-1166. 
Otras lecturas 
Campoy, L. & Read, MR (2013) Anestesia Regional de Pequeños Animales y 
analgesia. Ames, IA: Wiley-Blackwell. 
Shelby, AM & McKune, CM (2014) Técnicas de anestesia Pequeño animal. Ames, 
IA: Wiley-Blackwell. 
Tranquilli, WJ, Thurmon, JC & Grimm, KA (2007) Lumb y Jones Anestesia 
Veterinaria, 4ª ed. Ames, IA: Wiley-Blackwell. 
 
CAPITULO 2 
Cutáneo 
Índice de inervación 
Gwen Covey-Crump 
Handbook of Small Animal Anestesia Regional y las técnicas de analgesia, Primera edición. 
Phillip Lerche, Turi K. Aarnes, Gwen Covey-Crump y Fernando Martínez Taboada. © 2016 John 
Wiley & Sons, Ltd. Ha publicado 2016 por John Wiley & Sons, Ltd. 
13
 14 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia 
Índice inervación cutánea 
Utilice este capítulo como una ayuda para la elección de una técnica de 
anestesia regional adecuada para el procedimiento previsto. 
dermatomas caninos - Cuerpo 
Figura 2.1 Mapa dermatoma canina. inervación cutánea de acuerdo con segmento 
espinal. Esto está pensado como una guía sólo como mucho solapamiento entre los 
segmentos y la variación entre los animales existen. Reproducida de Oliver, JE y 
Lorenz, MD (eds) (1983) Veterinaria Diagnóstico neurológico. Filadelfia: WBSaunders 
Co Reproducido con el permiso de la Universidad Estatal de Ohio. 
 
Índice Inervación cutánea 15
Cabeza
 
Figura 2.2 Inervación cutánea de la cabeza canina. se muestran las regiones 
sensoriales autónomas. Existen algunos superposición y la variación entre las 
zonas y los animales. Reproducido con permiso de la Universidad Estatal de Ohio.
 
dieciséis Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia
miembro torácico
 
Figura 2.3 inervación cutánea de la extremidad torácica canina. se muestran las 
regiones sensoriales autónomas. Existen algunos superposición y la variación entre las 
zonas y los animales. LCB-T2, lateral braquial cutánea del nervio torácico 2. 
Reproducido con permiso de la Universidad Estatal de Ohio. 
 
Índice Inervación cutánea 17
Tabla 2.1 inervación sensorial de la extremidad torácica canino 
Región Nervio técnicas 
C6-7 hombro lateral y la articulación supraescapular CP 
 
subescapular CP 
C7-8 antebrachium Craniomedial musculocutáneo CP, BP, RUMM 
C8 articulación del hombro 
Caudal, brachium lateral 
Axilar CP, BP 
C7-T1 Lateral articulación del codo, 
antebrachium craneolateral, 
carpo y los dígitos 
Radial CP, BP, RUMM 
C8-T1 articulación del codo medial Mediana CP, BP, RUMM 
C8-T2 Caudal articulación del codo, 
antebrachium caudolateral, 
carpo y los dígitos 
cubital CP, BP, RUMM 
BP, el plexo braquial; CP, paravertebral cervical; RUMM, radial, cubital, la mediana, musculocutáneo.
 
18 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia
miembro pélvico
Figura 2.4 inervación cutánea de la extremidad pélvica canina. se muestran las 
regiones sensoriales autónomas. Existen algunos superposición y la variación 
entre las zonas y los animales. Reproducido con permiso de la Universidad Estatal 
de Ohio. 
 
Índice Inervación cutánea 19
Tabla 2.2 inervación sensorial de la extremidad pélvica canino
 
Región técnicas 
L4 Hemipelvis (excl. La piel Femoral Safena Inguinal 
L5 articulación de la cadera 
suprayacente), medial 
 Preiliac 
 Psoas 
L6 
muslo, reprimir, pierna, del 
 compartimiento 
L7 miembro entero dorsolateral Ciático Peroneo Lateral 
 distal a extremidad 
distal 
 parasacral 
S1, S2 sofocar (excl. Laterocaudal tibial transglúteo 
 tira medial) extremidad 
distal 
 
 
CAPÍTULO 3 
Los bloques de 
infiltración 
Handbook of Small Animal Anestesia Regional y las técnicas de analgesia, Primera edición. 
Phillip Lerche, Turi K. Aarnes, Gwen Covey-Crump y Fernando Martínez Taboada. © 2016 John 
Wiley & Sons, Ltd. Ha publicado 2016 por John Wiley & Sons, Ltd. 
21
 
22 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia
La infiltración de remoción en masa 
bloques de línea y anillo 
indicaciones 
La resección quirúrgica de masas cutáneas o superficiales, el cierre 
quirúrgico de laceraciones, los procedimientos que implican un apéndice 
(por ejemplo, dedo del pie, cola, pabellón de la oreja, etc.) 
nervios de destino 
nervios cutáneos de la zona afectada 
región anestesiado 
distal apéndice de bloque, área inmediatamente debajo del bloque y, en el 
caso de la realización de un bloque de anillo, el área circunscrita por lo 
hitos 
Tejido circundante alrededor de la zona de interés. Es fundamental que el 
tejido subcutáneo se identifica claramente 
Aguja 
Aguja hipodermica. Se recomienda el uso de una longitud más larga, pero 
pequeña en tamaño de aguja (por ejemplo, 23 Ga 02.05 a 03.08 cm) 
Profundidad 
La inyección subcutánea de anestésico local 
Técnica 
1 Identificar el área de interés. Si se resecó una masa, el contorno total de 
la misma y de los márgenes debe tenerse en cuenta 
2 Los bloques de línea y anillo son los componentes más fáciles de 
realizar, ya que no se requieren conocimientos específicos de la 
neuroanatomía 
3 Introducir una aguja hipodérmica larga a toda su longitud en el tejido 
subcutáneo 
4 Aspirar para evitar la administración intravenosa accidental y depositar 
algo de anestésico local (por ejemplo, 0,2 ml de bupivacaína) 
5 Retire la aguja aproximadamente 5 mm (la distancia puede variar en 
función del volumen inyectado en cada punto. Cuanto más grande sea 
el volumen, mayor será la distancia puede ser), aspirado de nuevo e 
inyectar anestésico un poco más local 
6 Repetir la secuencia hasta que se circunscribe el área de interés 
7 Cuando se realiza de anillo o de la curva de bloques de línea, se 
recomienda retirar la aguja casi totalmente antes de redirigirla en una 
dirección diferente para prevenir el daño tisular y la flexión de la 
aguja 
precaucionesinyección intravenosa accidental de anestésico local. Este tipo de bloque 
sustituye a la precisión mediante el uso de un gran volumen de anestésico 
local. Sobredosis de anestésico local es un peligro grave si la dosis total no 
 
Los bloques de infiltración 23
 
Figura 3.1 bloque de línea. Reproducido con permiso de la Universidad Estatal de Ohio.
 
Figura 3.2 bloque de anillo. Realizado como una combinación de bloques de línea para 
evitar la flexión de la aguja. Reproducido con permiso de la Universidad Estatal de 
Ohio. 
 
24 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia
Invertida bloque de "L" 
indicaciones 
La resección quirúrgica de masas cutáneas o superficiales, el cierre 
quirúrgico de laceraciones 
nervios de destino 
nervios cutáneos originarios de los nervios espinales dorsales 
región anestesiado 
El área de interés general se encuentra dentro del tronco del animal. 
Clásicamente, esta técnica se ha utilizado para desensibilizar el flanco 
hitos 
Tejido circundante alrededor de la zona de interés. Es fundamental 
identificar el tejido subcutáneo y las capas musculares, si hay una 
implicación de estas estructuras 
Aguja 
Aguja hipodermica. Se recomienda el uso de una longitud más larga, pero 
pequeña en tamaño de aguja (por ejemplo, 23 Ga 02.05 a 03.08 cm) 
Profundidad 
La inyección subcutánea de anestésico local 
Técnica 
1 Identificar el área de interés. Si se resecó una masa, el contorno total de 
la misma y de los márgenes debe tenerse en cuenta 
2 Siguiendo los pasos descritos en el bloque anterior, dos bloques de línea 
deben ser realizadas (la formación de la “L” invertida) 
3 Realizar un bloque de línea entre la masa (o área de interés) y la 
columna vertebral del paciente 
4 Añadir otro bloque de línea craneal al área de interés 
5 Si hay participación de capas musculares, es necesario bloquear el 
tejido subcutáneo (para el bloqueo de las ramas cutáneas de los 
nervios), sino también para llevar a cabo un bloque de profundidad 
para bloquear las ramas musculares. La inyección de anestésico local 
en el músculo es muy estimulante, por lo que el bloque subcutánea es 
aconsejable antes de intentar el bloque más profunda 
precauciones 
inyección intravenosa accidental de anestésico local. Sobredosis de 
anestésico local es un peligro serio como un gran volumen de anestésico 
local puede ser necesario para desensibilizar a un área grande del cuerpo. 
La dilución de la anestesia local con solución salina estéril puede ser una 
opción para alcanzar el volumen deseado 
 Los bloques de infiltración 25
 
Figura 3.3 "L" invertida bloque (flechas azules) para la resección de tumor de 
mastocitos (flecha roja). 
 26 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia 
Bloque de la incisión quirúrgica 
Este bloque se puede conseguir mediante una única inyección en el 
momento de cierre o a través de un catéter de difusión colocado en las 
capas profundas de la incisión quirúrgica que permite la administración 
continua de anestésicos locales. 
Una sola inyección de la incisión quirúrgica 
indicaciones 
Analgesia de heridas o incisiones quirúrgicas 
nervios de destino 
nervios cutáneos de la zona afectada 
región anestesiado 
bordes incisión quirúrgica 
hitos 
El tejido subcutáneo alrededor de la incisión 
Aguja 
23-25 Ga 1.6 a 1.9 cm de aguja hipodérmica 
Profundidad 
Piel al tejido subcutáneo 
Técnica 
1 Probablemente el bloqueo nervioso más antiguo y más fácil de realizar
2 La inyección de anestésico local en el tejido subcutáneo expuesto en la 
herida quirúrgica es más eficaz que un simple toque de la droga en la 
incisión 
3 La inyección de anestésico local debe hacerse de la misma manera que 
el bloque de línea (véase la descripción anterior de este capítulo) 
Savvas et al (2008) informó mejores resultados cuando el bloque se 
llevó a cabo antes de la primera incisión, que cuando se realizó antes de la 
sutura. 
precauciones 
Sobredosis de anestésico local es un peligro serio como un gran volumen 
de anestésico local puede ser necesario para desensibilizar a un área grande 
del cuerpo. La dilución de la anestesia local con solución salina estéril 
puede ser una opción para alcanzar el volumen deseado 
 
Los bloques de infiltración 27
 
Figura 3.4 inyección solo bloque incisional. Reproducido con permiso de la 
Universidad Estatal de Ohio. 
 28 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia 
catéter Difusión / "madurador" catéter / "destructor de 
dolor” 
indicaciones 
Analgesia de heridas o incisiones quirúrgicas 
nervios de destino 
nervios cutáneos de la zona afectada 
región anestesiado 
incisión quirúrgica de capas profundas a bordes de la piel 
hitos 
Incisión quirúrgica 
Aguja 
Ninguna. El catéter es un tubo de poliuretano flexible de diámetro pequeño 
con múltiples poros para una distribución uniforme del anestésico local. El 
catéter se coloca durante el cierre quirúrgico de la incisión 
Profundidad 
Piel a las capas más profundas de la herida quirúrgica 
Técnica 
1 Con un par de pinzas arteriales y un bisturí, introducir el catéter de unos 
pocos centímetros desde el borde de la incisión (por lo que no interfiere 
con la recuperación) 
2 Colocar el catéter en las capas más profundas de la incisión 
3 Asegúrese de que la longitud del tubo con poros está completamente en 
la incisión y que es lo suficientemente largo para el tamaño de la 
incisión 
4 Cierre el tejido blando por encima del catéter 
5 Asegurar el catéter externamente a la piel para evitar su movimiento 
6 La analgesia se puede conseguir mediante la administración 
intermitente de bupivacaína 2 mg / kg cada 6 h (cierta superposición 
entre las administraciones se requiere como anestésicos locales pueden 
picar durante la administración). Una infusión constante evita una 
analgesia "brecha" entre las dosis. dosis constante infusión de 
lidocaína: perros 2-3 mg / kg / h, gatos 1-1,5 mg / kg / h 
Hansen et al (2013) demostraron que no había diferencia entre los 
catéteres comerciales y los hechos a mano. También encontraron que las 
tasas de infusión muy lentas producen una distribución irregular de la 
droga. 
precauciones 
El volumen total que se utilizará depende de la longitud de la incisión y no 
 Los bloques de infiltración 29
 
Figura 3.5 La colocación de un catéter de remojo en las capas profundas de la 
incisión antes del cierre. Reproducido con permiso de la Universidad Estatal de 
Ohio. 
Figura 3.6 Remojo catéter utilizado en un gato para el tratamiento del dolor después de 
un sarcoma sitio de la inyección. 
 30 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia 
bloques intercostales 
indicaciones 
toracotomía lateral, la analgesia para fracturas de costillas, la analgesia 
para la colocación de un drenaje torácico 
nervios de destino 
nervios intercostales 
región anestesiado 
Intercostal espacio distal a la inyección 
hitos 
borde caudal de la nervadura como proximal a la columna vertebral como 
es posible palpar 
Aguja 
23 Ga 1,9-2,5 cm 
Profundidad 
borde caudal de la costilla. Precaución: la introducción de la aguja 
adicional puede penetrar en la pleura. Dirigir la punta de la aguja debajo de 
la nervadura puede dañar la vena y / o arteria intercostal 
Técnica 
1 Se palpa el extremo caudal de la costilla y seguirlo hacia la columna 
vertebral 
2 Introducir la aguja perpendicular a la piel y dirigir su punta hacia el 
extremo caudal de la costilla 
3 Se aspira a evitar la inyección intravascular 
4 Administrar 0,3-1 ml de bupivacaína 
5 Repetir los pasos anteriores en al menos dos espacios intercostales 
craneal y caudal a la zona de interés (Thompson & Johnson, 1991). 
Aunque la desensibilización de tres espacios, los resultados son 
mejores 
Esta técnica se ha demostrado ser superior a los opioides sistémicos 
cuando la función respiratoria se evaluó en pacientesdespués de una 
toracotomía lateral (Berg & Orton, 1986). 
 Los bloques de infiltración 31
Figura 3.7 El bloqueo del nervio intercostal. Se palpa la nervadura y luego deslice la 
aguja sobre el borde caudal. Reproducido con permiso de la Universidad Estatal de 
Ohio. 
 
Figura 3.8 Un bloque de intercostal eficaz requiere tres espacios intercostales a cada 
lado de la zona de interés. Reproducido con permiso de la Universidad Estatal de 
Ohio. 
 32 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia 
bloque interpleural (también conocido como 
intrapleural o pleural) 
indicaciones 
Clásicamente, este bloque está indicado para el tratamiento postoperatorio 
de una toracotomía lateral o una esternotomía, ya que produce menos 
depresión respiratoria que los opiáceos solos (Berj y Orton, 1986; 
Conzemius et al, 1994). En la medicina humana, se indica para otras 
condiciones, por ejemplo, tumor del plexo braquial (Dionne, 1992), la 
colecistectomía (VadeBoncouer et al, 1989), pero la medicina veterinaria 
carece de experiencia en estos usos. 
nervios de destino 
El mecanismo de acción es desconocido. Se especula que la técnica puede 
funcionar en tres niveles: nervios intercostales (debido a una difusión 
retrógrada aunque la pleura parietal), el bloqueo de la cadena simpática y 
los nervios esplácnicos, y / o bloqueo del plexo braquial ipsilateral. 
región anestesiado 
cavidad torácica, la cavidad abdominal craneal 
hitos 
cavidad interpleural en un espacio intercostal 
Aguja 
catéter sobre la aguja (14-18 Ga 4.8 a 3.2 cm). Es aconsejable el uso de 
catéteres con punta de bayoneta para evitar la perforación del pulmón 
Profundidad 
Skin a la cavidad interpleural 
Técnica 
Para el bloque repetible, es recomendable colocar un catéter de drenaje o 
difusión torácica permanente aunque la técnica puede ser realizada por una 
sola inyección. 
1 Introducir el catéter a través de la piel sobre un espacio intercostal y 
avanzar la punta de la aguja, haciendo un túnel en el tejido subcutáneo 
a la siguiente espacio intercostal 
2 Penetran en la pared torácica en el espacio intercostal, evitando el 
extremo caudal de la costilla donde se encuentran el nervio, la arteria y 
vena 
3 Introducir el catéter en un ángulo poco profundo para disminuir la 
posibilidad de dañar el pulmón 
4 Analgesia puede estar provisto de bupivacaína 2 mg / kg cada 5-6 h 
precauciones 
Neumotórax, hemotórax, sobredosis de anestésico local. Las 
complicaciones son raras si la fuga de catéter / pecho se manipula con 
cuidado. Los efectos cardiopulmonares de los anestésicos locales en el 
espacio interpleural son muy transitoria y no es clínicamente significativa, 
 Los bloques de infiltración 33
 
Figura 3.9 interpleural bloque. La aguja se introduce más cerca del borde craneal de la 
costilla para evitar los vasos intercostales. Reproducido con permiso de la Universidad 
Estatal de Ohio. 
 
Figura 3.10 catéter sobre la aguja con punta de bayoneta para evitar daños en los pulmones.
 34 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia 
bloque intraperitoneal 
indicaciones 
Analgesia de la cavidad abdominal. Este bloque se ha convertido en una 
técnica analgésico postoperatorio común para laparotomías y 
laparoscopias en la medicina humana 
nervios de destino 
nervios esplácnicos responsables de la componente visceral del dolor 
abdominal 
región anestesiado 
cavidad abdominal (exclusivamente el componente visceral) 
hitos 
cavidad abdominal (específicamente el área de interés, por ejemplo, 
ovario, riñón, vesícula biliar ..) 
Aguja 
No se requiere ninguna aguja, se aplica en el abdomen antes de cerrar la 
línea alba 
Profundidad 
Cavidad abdominal 
Técnica 
1 Usar 1-2 mg / kg de bupivacaína 
2 Diluir con solución salina estéril si el área de interés es demasiado 
grande para el volumen calculado 
3 Splash el anestésico local sobre el área de interés, por ejemplo el 
pedículo ovárico 
4 Alternativamente, salpicar el volumen en la cavidad, tratando de lograr 
una distribución uniforme 
5 Cerca línea alba 
Algunos autores recomiendan la infiltración de la incisión quirúrgica 
para minimizar el dolor somático o parietal (Carpenter et al, 2004). 
precauciones 
El volumen total que se utilizará depende de la cavidad abdominal o el 
tamaño de la zona de interés y no tanto de la longitud y el tamaño del 
paciente. Siempre verifique la dosis total a inyectar y diluir con solución 
salina estéril, si el volumen no es suficiente. 
 Los bloques de infiltración 35
referencias 
Berg, RJ y Orton, CE (1986) de la función pulmonar en perros después de 
intercostal toracotomía: comparación de morfina, oximorfona, y bloqueo del 
nervio intercostal selectiva. Am J Vet Res 47: 471-474. 
Bernard, F., Kudnig, ST & Monnet, E. (2006) Efectos hemodinámicos de la 
lidocaína interpleural y la combinación de bupivacaína en perros anestesiados 
con y sin pericardio y abierta. Vet Surg 35: 252-258. 
Carpenter, RE, Wilson, DV & Evans, AT (2004) Evaluación de la intraperitoneal y 
lidocaína o bupivacaína incisional para la analgesia después de
ovariohisterectomía en el perro. Vet Anaesth Analg 31: 46-52. 
Conzemius, MG, Brockman, DJ, Rey, LG, et al. (1994) Analgesia en perros 
después de intercostales toracotomía: ensayo clínico que compara la 
buprenorfina intravenosa y bupivacaína interpleural. Vet Surg 23: 291-298. 
Dionne, C. (1992) invasión del tumor del plexo braquial: la gestión del dolor con 
analgesia Interplural. Puede JAnaesth 39: 520-521. 
Hansen, B., Lascelles, BD, Thomson, A., et al. (2013) Variabilidad de rendimiento 
de los catéteres de infusión de la herida. Vet Anaesth Analg 40 (3): 308-315. 
Savvas, I., Papazoglou, LG, Kazakos, G., et al. (2008) de bloque incisional con 
bupivacaína para la analgesia después de la laparotomía en los perros. J Am 
Anim Hosp Assoc 44 (2): 60-66. 
Thompson, SE & Johnson, JM (1991) Analgesia en perros después de toracotomía 
intercostal. Una comparación de la morfina, bloque intercostales nervio 
selectiva, y analgesia regional interpleural con bupivacaína. Vet Surg 20: 
73-77. 
VadeBoncouer, TR, Riegler, FX, Gautt, RS, et al. (1989) Una comparación 
aleatorizado, doble ciego de los efectos de bupivacaína interpleural y solución 
salina en las necesidades de morfina y la función pulmonar después de la 
colecistectomía. Anesthesiology 71: 339-343. 
 
CAPÍTULO 4 
Bloques de la Cabeza 
Fernando Martínez Taboada 
Handbook of Small Animal Anestesia Regional y las técnicas de analgesia, Primera edición. 
Phillip Lerche, Turi K. Aarnes, Gwen Covey-Crump y Fernando Martínez Taboada. © 2016 John 
Wiley & Sons, Ltd. Ha publicado 2016 por John Wiley & Sons, Ltd. 
37 
 38 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia 
retrobulbar 
indicaciones 
Los procedimientos quirúrgicos que implican los acinesia ojo y / o 
procedimientos que requieren del ojo 
nervios de destino 
división oftálmica del nervio trigémino (V) (percepción sensorial), 
también dentro del cono ocular, nervios craneales óptica (II), oculomotor 
(III) y motor ocular externo (VI) (la función motora de los músculos 
extraoculares). El nervio troclear (IV) se encuentra fuera del cono ocular, 
pero con frecuencia se bloquea por la difusión de los fármacos anestésicos 
y contribuye a la acinesia del ojo 
región anestesiado 
Eye incluyendo conjuntiva, la córnea, y úvea 
hitos 
globo ocular, la órbita del ojo, arco cigomático, rama vertical de la 
mandíbula 
Aguja 
22 Ga 2,5 cm (hasta 3,8 cm, dependiendo del tamaño del animal) 
Profundidad 
Piel de cono ocular 
Técnica 
1 Localizar la depresión limitada por la cara caudal del maxilar superior, 
el borde ventral del arco cigomático y la rama vertical de la mandíbula
2 Introducir la aguja perpendicular al eje largo de la cabeza 
3 Tan pronto como la punta de la aguja está en el tejido subcutáneo, 
dirigir la mediodorsal aguja(detrás del arco cigomático) hacia el cono 
ocular 
4 ubicación precisa de la punta de la aguja puede ser confirmada como la 
presión de la aguja contra los músculos extraoculares producir un 
movimiento ventrodorsal del globo 
5 Se aspira a evitar la inyección intravascular 
6 Inyectar 1-2 ml de solución anestésica o su combinación (por ejemplo 
0.250.5% de bupivacaína) 
precauciones 
Hematoma, inyección intravascular, daño en los nervios. daño intraocular 
es rara, aunque hematomas intraconales pueden causar ceguera. El enfoque 
tradicional para este bloque, curvando una aguja espinal (20 Ga 7,5 cm), se 
ha asociado con fracaso de la técnica y el riesgo de inyección 
subaracnoidea directa. Por esta razón, este enfoque alternativo se presenta 
aquí, aunque se necesitan más investigaciones que comparan las 
 Bloques de la Cabeza 39 
(una)
(do)
Figura 4.1 (A) inserción de la aguja en el cono ocular produce ventrodorsal 
movimiento del globo. (Bc) bloque retrobulbar (enfoque subzygomatic). Partes (a) y 
(c) Reproducido con permiso de la Universidad Estatal de Ohio. 
 40 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia 
Maxilar 
indicaciones 
Los procedimientos quirúrgicos que implican el maxilar superior, el labio 
superior y / o paladar, extracciones dentales (Aguiar et al, 2015) y de 
rinoscopía (si se realiza bilateralmente) (Cremer et al, 2013) 
nervios de destino 
nervio maxilar (idealmente con sus ramas: la nasal y los nervios 
principales palatinas) 
región anestesiado 
Dorsal de la cabeza y el hocico aproximadamente hasta la línea media. El 
maxilar superior y maxilar dientes, paladar duro y blando (si importante 
nervio palatino se bloquea con la técnica), nares, labium superior y la parte 
rostral de la cavidad nasal 
hitos 
arco cigomático, parte caudal del maxilar superior, y la rama vertical de la 
mandíbula 
Aguja 
22 Ga 2,5 cm aguja no aislado 
Profundidad 
La piel a la fosa pterygoid 
Técnica 
1 Identificar la depresión formada por la cara caudal del maxilar superior, 
el borde ventral del arco cigomático, y la rama vertical de la 
mandíbula. Esta depresión se encuentra ventral al canto lateral del ojo 
2 Introducir la aguja perpendicular al maxilar 
3 Dirigir la punta de la aguja perpendicular al plano sagital del cráneo 
4 Si la punta de la aguja realiza hueso, retirar aproximadamente 1-2 mm 
antes de realizar la inyección 
5 Se aspira a evitar la inyección intravascular 
6 Inyectar 0,3-1 ml de solución anestésica o su combinación (por ejemplo 
0.250.5% de bupivacaína o ropivacaína) 
precauciones 
Hematoma, inyección intravascular, daño en los nervios 
 Bloques de la Cabeza 41
(una)
Figura 4.2 (A) Bloqueo del nervio maxilar. Aguja se dirige perpendicular a la 
pterygoid fosa para bloquear también la nasal y palatal ramas del nervio. (B) Bloqueo 
del nervio maxilar. La parte (a) reproducido con el permiso de la Universidad Estatal de 
Ohio. 
 42 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia 
infraorbital 
indicaciones 
Los procedimientos quirúrgicos que implican la parte rostral de la boca del 
cañón (algunos procedimientos pueden requerir bloque bilateral) 
nervios de destino 
nervio infraorbitario 
región anestesiado 
parte rostral de la boca del cañón, incluyendo la piel, maxilar, dientes 
superiores y el paladar. labio superior rostral y de la cavidad nasal 
hitos 
agujero infraorbitario, P3 premolar diente 
Aguja 
25 Ga 1,5 o 2,5 cm aguja hipodérmica 
Profundidad 
Piel para el interior del foramen infraorbitario 
Técnica 
1 Por vía percutánea o levantar el labio superior, localizar el agujero 
infraorbitario (dorsal a la P3 diente) 
2 Introducir la aguja en un ángulo poco profundo hacia la entrada del 
foramen 
3 Avance la aguja en el agujero tanto como sea posible (dentro de un 
margen de seguridad, de unos pocos milímetros es suficiente) 
4 Aspirar Para evitar la inyección intravascular 
5 Inyectar 0,3-0,5 ml de solución anestésica o su combinación (por 
ejemplo 0.250.5% de bupivacaína) 
6 La eficacia del bloque y el tamaño del área de desensibilizado 
dependen de si la inyección se realiza dentro del foramen (anestesiar 
hasta el primer molar; Gross et al, 1997) o sólo en la entrada (bloqueo 
sólo el rostral área a la canino dientes) 
precauciones 
Hematoma, inyección intravascular, daño en los nervios 
 Bloques de la Cabeza 43 
(una)
(segundo) 
(do) 
Figura 4.3 (A) ramas del nervio que sale del foramen infraorbital, (b) infraorbitario 
bloque (nota de la inserción de la punta de la aguja dentro del canal). (C) infraorbitario 
bloque. Partes (a) y (b) Reproducido con permiso de la Universidad Estatal de Ohio. 
 44 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia 
Mandibular (o alveolar inferior) 
indicaciones 
Los procedimientos quirúrgicos que implican la mandíbula, el labio 
inferior, y extracciones dentales (Aguiar et al, 2015) 
nervios de destino 
nervio dentario inferior (en el foramen mandibular) 
región anestesiado 
Hemimandíbula hasta la barbilla. Los tejidos entre las mandíbulas no 
deben ser anestesiados si la técnica se lleva a cabo correctamente. En 
algunas ocasiones, la parte más rostral de la barbilla no se insensibiliza (en 
algunos animales es la inervación por el nervio milohioideo) 
hitos 
Mandíbula, proceso angular, foramen mandibular 
Aguja 
22 Ga 1,6 o 2,5 cm 
Profundidad 
rostral de la piel para el proceso angular de la mandíbula al foramen 
mandibular 
Técnica 
1 Se palpa el proceso angular de la mandíbula, a continuación, abrir la 
boca y palpar el agujero mandibular. Este agujero se encuentra 
aproximadamente a medio camino entre el último molar y el proceso 
condilar 
2 Introducir la aguja percutánea inmediatamente rostral al proceso 
angular y dirigido dorsalmente a lo largo del aspecto medial de la 
mandíbula 
3 Dirigir la punta de la aguja hacia el agujero. Es muy difícil avanzar la 
aguja en el agujero, pero el bloque puede ser eficaz, siempre y cuando 
se entrega la solución anestésica en la entrada del foramen 
4 Se aspira a evitar la inyección intravascular 
5 Inyectar 0,2-1 ml de solución anestésica o su combinación (por ejemplo 
0.250.5% de bupivacaína) 
precauciones 
Hematoma, inyección intravascular, daño en los nervios. La 
desensibilización de la lengua puede ocurrir si un bloque bilateral se 
realiza con grandes volúmenes y / o una mala técnica (dificultad para 
localizar e inyectando dentro de los foramen o lo más cerca posible a él). 
Esta desensibilización puede conducir a la automutilación de la lengua 
 Bloques de la Cabeza 45 
(una)
(segundo) 
(do) 
Figura 4.4 (A) Inervación de la mandíbula y la lengua, (b) percutánea enfoque en el 
nervio mandibular (tenga en cuenta la punta de la aguja cerca de las foramen). 
(C) aproximación percutánea para el bloqueo del nervio mandibular. Partes (a) y (b) 
Reproducido con permiso de la Universidad Estatal de Ohio. 
 46 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia 
Mentales (o medio mental) 
indicaciones 
Los procedimientos quirúrgicos que implican la mandíbula rostral, los 
dientes asociados con la zona, y el labio inferior rostral 
nervios de destino 
alveolar inferior (en el foramen mental, también conocido como el nervio 
mental) 
región anestesiado 
Chin cuando se realiza bilateralmente, hasta P4 diente premolar si la 
inyección se realiza dentro del foramen (Gross et al, 2000) 
hitos 
foramen mental, el labio inferior premolares P2 diente 
Aguja 
25 Ga 1,6 mm 
Profundidad 
mucosa GUM a foramen 
Técnica 
1 Palpar el foramen ventral a la P2 diente desde el interior del labio 
inferior 
2 Introducir la aguja justo rostral a ese punto, con un ángulo pequeño, 
hacia el foramen 
3 Avance la aguja en el agujero tanto como sea posible (sin forzarlo en) 
4 Se aspira a evitar la inyección intravascular 
5 Inyectar 0,2-0,6 ml de solución anestésica o sucombinación (por 
ejemplo 0.250.5% de bupivacaína) 
precauciones 
Hematoma, inyección intravascular, daño en los nervios. En algunos casos, 
la parte más rostral de la barbilla no se insensibiliza (en algunos animales 
la inervación es por el nervio milohioideo) 
 Bloques de la Cabeza 47
(una) 
Figura 4.5 (A) bloqueo mental (tenga en cuenta la inserción de la punta de la 
aguja dentro del canal del nervio). (B) bloqueo mental para hemimandibulectomía 
rostral. La parte (a) reproducido con el permiso de la Universidad Estatal de Ohio.
 
 48 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia
Auriculotemporal y un gran auricular 
indicaciones 
Analgesia en casos graves de otitis externa, analgesia perioperatoria para 
intervenciones quirúrgicas que afectan el canal auditivo externo y el 
pabellón auditivo auricular (analgesia postoperatoria también se puede 
lograr por la infiltración local en el momento del cierre, pero el uso de este 
bloque proporcionaría analgesia intraoperatoria, así ) 
nervios de destino 
Auriculotemporal (rama del nervio mandibular) y gran auricular (formado 
por la unión de las raíces ventrales de C1 y C2) 
región anestesiado 
canal auditivo externo y pabellón auricular 
hitos 
arco cigomático, canal del oído externo, proceso transversal atlas vertebral 
(también conocido como alas) 
Aguja 
22 Ga 2,5 cm (o más en perros grandes) 
Profundidad 
Skin a media distancia entre la piel y la articulación temporomandibular
(nervio auriculotemporal) y la piel al tejido subcutáneo (nervio auricular) 
 Bloques de la Cabeza 49 
(una)
 
Figura 4.6 (A) Inervación de la oreja y pabellón auricular. (B) Identificación de los 
puntos de referencia anatómicos para la desensibilización del nervio 
auriculotemporal. 
 50 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia
Técnica 
Bloqueo del nervio auriculotemporal 
1 Palpar el canal del oído externo (que es de forma cónica y muy duro 
cuando inflamado) 
2 Localizar la cara caudal del arco cigomático 
3 Introducir la aguja perpendicular a la piel en la depresión palpable entre 
el arco cigomático y el canal auditivo externo 
4 Avanzar la aguja en la medida de lo posible hasta que la punta es tocar
el hueso (la articulación temporomandibular) 
5 Conociendo la profundidad total de los tejidos, retire la aguja 
aproximadamente a medio camino 
6 Se aspira a evitar la inyección intravascular 
7 Inyectar 0,5-1,5 ml de solución anestésica o su combinación (por 
ejemplo 0.250.5% de bupivacaína) 
Nervio auricular 
1 Se palpa el conducto auditivo externo 
2 Localizar el punto de la apófisis transversa de la vértebra atlas más 
craneal 
3 Introducir la aguja paralela a la apófisis transversa 
4 Dirigir la punta de la aguja ventral a la parte más craneal del proceso 
5 El nervio es muy superficial y es mejor para mantener la aguja en un 
ángulo muy poco profunda en la piel 
6 Se aspira a evitar la inyección intravascular 
7 Inyectar 0,5-1,5 ml de solución anestésica o su combinación (por 
ejemplo 0.250.5% de bupivacaína) 
precauciones 
Hematoma, inyección intravascular, daño en los nervios. parálisis 
temporal de los nervios faciales y / o temporopalpebral impiden al animal 
de parpadear (recomendado para lubricar el ojo cada 2-4 h) 
 Bloques de la Cabeza 51 
 
Figura 4.6 (continuado) 
(C) Inervación en relación a puntos de referencia anatómicos. (D) Great bloqueo del 
nervio auricular. Partes (a) y (c) Reproducido con permiso de la Universidad Estatal 
de Ohio. 
 52 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia 
referencias 
Aguiar, J., Chebroux, A., Martínez-Taboada, F., et al. (2015) Los efectos 
analgésicos de bloqueo de los nervios alveolares del maxilar superior e inferior 
en los gatos sometidos a extracciones dentales. J Feline Med Surg 17: 110-116. 
Cremer, J., Sum, SO, Braun, C., et al. (2013) Evaluación de los maxilares y bloqueo 
del nervio infraorbitario para rinoscopia en perros anestesiados con 
sevoflurano. Vet Anaesth Analg 40: 432-439. 
Gross, ME, Papa, ER, O'Brien, D., et al. (1997) La anestesia regional de los nervios 
alveolares infraorbital e inferior durante la estimulación pulpa del diente no 
invasiva en perros anestesiados con halotano. J Am Vet Med Assoc 211: 
1403-1405. 
Gross, ME, Papa, ER, Jarboe, JM, et al. (2000) La anestesia regional de los nervios 
alveolares infraorbital e inferior durante la estimulación pulpa del diente no 
invasiva en gatos anestesiados con halotano. Am J Vet Res 61: 1245-1247. 
 
CAPÍTULO 5 
anestesia regional 
Bloques de las 
extremidades 
Handbook of Small Animal Anestesia Regional y las técnicas de analgesia, Primera edición. 
Phillip Lerche, Turi K. Aarnes, Gwen Covey-Crump y Fernando Martínez Taboada. © 2016 John 
Wiley & Sons, Ltd. Ha publicado 2016 por John Wiley & Sons, Ltd. 
53
 54 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia
bloqueos anestésicos regionales miembro torácico
 
Tabla 5.1 respuestas motoras provocados a la estimulación del nervio - miembro torácico
Técnica respuesta motora Músculo nervios Aceptar Comentario
paravertebral cervical Hipo 
Aducto, rotar 
escápula / 
hombro 
Diafragma 
Supraespinoso, 
infraespinoso 
plexo braquial Girar el hombro en, 
codo flexión 
hombro Flex, extender 
codo / carpo 
Extender el codo / carpo
bíceps braquial 
Redondo mayor / 
menor, deltoides 
Tríceps, extensores 
del carpo / digitales 
Frénico 
supraescapular 
subescapular 
musculocutáneo 
X Demasiado ventral / 
caudal 
X/ Craneal 
/ Cara craneal de la técnica 
RUMM 
Pronación antebrachium, 
carpiano / flexión palmar 
flexión palmar 
extensión palmar 
flexión palmar 
Tríceps / bíceps 
contracción 
Carpo / flexores 
digitales 
Carpo / flexores 
digitales 
Carpo / extensores de 
Axilar/ 
Radial// 
Mediana/ 
cubital / 
aspecto medio de la técnica de
anestésico local aquí debe 
difundirse en la mayor parte 
del plexo braquial 
Inyección muy caudal puede 
no llegar a los nervios 
craneales más 
Radial/ 
Mediano, ulnar / 
X estimulación muscular 
directa 
R
eg
io
n
ales an
estésicas B
lo
q
u
es d
e las ex
trem
idM
ui 
 
 56 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia 
Plexo braquial 
indicaciones 
procedimientos quirúrgicos unilaterales de húmero distal, el codo, chium 
antebra-, carpo 
nervios de destino 
Musculocutáneo, axilar, radial, mediano y cubital 
región anestesiado 
Torácica extremidad distal a mediados húmero 
hitos 
Acromion, la tráquea, la vena yugular, primera costilla 
Aguja 
21 Ga 5,0-10,0 cm aguja aislada 
Profundidad 
Acromion a primera costilla 
Technique (Campoy et al, 2008; Mahler y Adogwa, 2008) 
1 Identificar primera costilla por palpación axilar. profundidad de la 
aguja premedición a un punto en una línea que se extiende el curso de 
la vena yugular cruza la primera costilla. El plexo braquial es sólo 
craneal a este punto 
2 Inserte craniomedial aguja al acromion en una dirección caudoventral 
paralelo a la vena yugular y en un plano estrictamente sagital 
3 Con estimulador del nervio a 2 mA y reduciendo gradualmente, 
observar las respuestas a la estimulación nerviosa (Tabla 5.1) 
(reducción a 0,2 mA para evitar la inyección intrafascicular antes de la 
inyección) 
4 En el punto de la estimulación del nervio radial (y no más allá de la 
profundidad medida previamente), aspirado para evitar intravascular 
(sangre) o inyección interpleural (aire) 
5 Inyectar 0,1 ml / kg 0,5% de bupivacaína o ropivacaína a 0,75% 
6 Retire la aguja de 0.5-1 cm, aspirado, a continuación, inyectar más 0,1 
ml / kg 
7 Repita el paso 6, la inyección de una final de 0,1 ml / kg por debajo de 
la punta del hombro 
 Regionales anestésicas Bloques de las extremidades 57
(una) 
n cervical. 8
n torácica. 1 
n Median ''. 
1'Ulnar n. 
Musculocutáneo n < 
Axilar n <
n cervical. 6 
n cervical. 7 
v yugular.
Radialn 
<axilar a.- 
 
Figura 5.1 El bloqueo del plexo braquial. (A) Anatomía, enfoque (b). La parte (a) 
reproducido con el permiso de la Universidad Estatal de Ohio. 
 58 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia 
Paravertebral: C6-T1 
indicaciones 
procedimientos unilaterales quirúrgicos de la escápula, hombro y 
brachium, incluyendo amputación cuarto delantero 
nervios de destino 
Los nervios espinales de C6, C7, C8, T1 
región anestesiado 
miembro torácico completo, excepto la piel sobre la región superior del 
hombro 
hitos 
Proceso transversal C6, cabeza de la nervadura 1 
Aguja 
21 Ga 5,0 cm aislada (perros muy pequeños) a 15,0 cm (perros muy 
grandes) 
Técnica (Campoy & Read, 2013i Lemke y Creighton, 2008) técnica 
avanzada que se lleva a cabo con la debida precaución sólo en pacientes en 
los que es posible la palpación de la costilla C6 y primera. Sólo bloqueo 
unilateral 
1 Con el paciente en decúbito lateral y la integridad física a ser bloqueado 
más superior, retraer escápula caudalmente 
2 Se palpa apófisis transversa de C6, mantener la presión digital en 
aspecto lateral 
3 De enfoque dorsolateral, la aguja avance en dirección caudal para 
satisfacer proceso transversal. Caminar aguja del borde craneal 
4 Con estimulador del nervio a 2 mA y reduciendo gradualmente, 
observar las respuestas a la estimulación nerviosa de las ramas 
ventrales de los nervios espinales C6 y C7, supraescapular, 
subescapular, musculocutáneo (Tabla 5.1) (reducción a 0,2 mA para 
evitar la inyección intrafascicular antes de la inyección) 
5 Aspirar para evitar intravascular (sangre) o inyección espinal (líquido 
claro) 
6 Inyectar 0,1 ml / kg 0,5% de bupivacaína o ropivacaína a 0,75% 
7 Repetir los pasos 3-6, caminando aguja de borde caudal del proceso 
transverso 
8 Se palpa la arteria axilar en primera unión costilla costocondral y 
entrada torácica. Avanzar aguja para satisfacer aspecto craneal primera 
costilla 1-2 cm dorsal a costocondral unión 
9 Observar la extensión del codo / carpo / dígitos (C8) y carpo / flexión 
dígitos (T1) 
10 Aspirar para evitar intravascular (sangre) o inyección interpleural 
(aire) 
11 Inyectar 0,1 ml / kg 0,5% de bupivacaína o ropivacaína a 0,75% 
 Regionales anestésicas Bloques de las extremidades 59
 
(una) 
n cervical. 8
n torácica. 1 
Yugular v:
Musculocutáneo n < 
Axilar n <
n Radial 
<axilar un < 
n cervical. 6 
n cervical. 7 
n Median. 
Ulnar n. 
Figura 5.2 bloqueo paravertebral. (A) Anatomía, enfoque (b). La parte (a) 
reproducido con el permiso de la Universidad Estatal de Ohio. 
 60 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia
RUMM (radial / cubital / mediana / musculocutáneo) 
indicaciones 
Anestesia para procedimientos quirúrgicos de la distal miembro torácico e 
incluyendo el carpo 
nervios de destino 
Radial (R), cubital (U), la mediana (Me), musculocutáneo (MUS) nervios 
región anestesiado 
Carpo, metacarpo, y los dígitos 
hitos 
epicóndilos medial y lateral, tubérculo mayor del húmero. la cabeza lateral 
y medial del tríceps, bíceps y tríceps braquial músculos. Arteria braquial 
Aguja 
21 Ga 5,0 cm aislados / 20-22 Ga 2,0-4,0 cm sin aislamiento 
Profundidad 
10-20 mm 
Technique (Lamont y Lemke, 2008i Trumpatori et al, 2009) 
1 Comienza con el paciente en decúbito lateral, de una extremidad a tratar 
más superior, codo flexionado 90 ° 
2 Agarre húmero de aspecto craneal, lugar pulgar en caudal húmero dos 
tercios de distancia del tubérculo mayor a epicóndilo lateral. Retraer el 
músculo braquial craneal. Insertar la aguja de aspecto caudal, 
perpendicular al eje largo del húmero en ángulo de 45 °. Perfore largas 
cabezas de tríceps para ponerse en contacto con el húmero, retirar 
ligeramente 
3 Si se utiliza estimulador del nervio, con estimulador de nervio en 2 mA 
y poco a poco reductor, observar las respuestas a la estimulación del 
nervio radial (Tabla 5.1) (reducción a 0,2 mA para evitar la inyección 
intrafascicular antes de la inyección) 
4 Aspirar Para evitar la inyección intra-arterial 
5 Inyectar 0,1 ml / kg 0,5% de bupivacaína o ropivacaína a 0,75% 
6 Girar paciente en decúbito lateral opuesto, tener asistente de retracción 
superior caudalmente extremidad (extremidad de tratar es más bajo y 
flexionó 90 °) 
7 Se palpa la arteria braquial en el punto mediados húmero. Con la 
presión digital en húmero, retraer bíceps braquial músculo y la arteria 
braquial nially cra-. Insertar la aguja de cara caudal perpendicular al eje 
largo del húmero y en ángulo de 45 ° en contacto con húmero, retirar 
ligeramente 
8 Observe respuestas a la estimulación mediana / nervio cubital si se 
utiliza (Tabla 5.1) 
9 Aspirar Para evitar la inyección intra-arterial 
10 Inyectar media de 0,15 ml kg 0,5% de bupivacaína o ropivacaína a 
0,75% / profundamente y mitad restante como se retira la aguja 
precauciones 
 Regionales anestésicas Bloques de las extremidades 61 
Tríceps. 
v cefálica. 
Braquial 
M.-Collateral radial 
una 
- 
Nervio radial: 
ramusSup profunda. 
rama, medSup. 
n musculocutáneo. 
Bíceps 
braquial 
Medio 
Braquial a. 
n Median. 
Caud. n 
cutaneousantebr
achial. 
 
Ulnar n. 
(una)
Figura 5.3 Radius, cubital, la mediana, musculocutáneo (RUMM) bloque. 
(A) Anatomía, enfoque (b). La parte (a) reproducido con el permiso de la 
Universidad Estatal de Ohio. 
 62 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia
bloqueo de Bier (anestesia regional intravenosa) (Staffieri, 
2013) 
indicaciones 
Los procedimientos quirúrgicos de <90 min de duración de la extremidad 
distal, sobre todo cuando un campo quirúrgico sin sangre es ventajoso 
nervios de destino 
efecto anestésico local por la propagación de las terminaciones nerviosas 
periféricas 
región anestesiado 
distal extremidad torácica hasta el codo y la extremidad distal pélvico para 
tarso 
anatomía importante 
• vena distal Adecuado 
• arteria periférica palpable 
Equipo 
• Tourniquet - preferiblemente neumático con manómetro 
• Esmarch o una venda elástica 
• sonda Doppler (opcional) 
• Catéter 22-25 Ga 25-33 mm 
Technique (Webb et al, 1999) 
1 Clip sitios de colocación quirúrgica y el catéter (más sitio torniquete si 
fuertemente recubierto) 
2 Coloque catéter intravenoso como distalmente como sea posible 
3 Encuentra una arteria palpable y marcar con lápiz 
4 Aplicar torniquete e identificar inferior presión de oclusión (LOP) 
(presión a la que pulso palpable está ausente) 
5 torniquete de liberación, se aplica Esmarch o una venda elástica 
fuertemente 
6 Aplicar torniquete para 50-100 mmHg por encima de LOP, un tiempo 
récord 
7 vendaje Esmarch liberación 
8 Confirmar la ausencia de pulso periférico 
9 Infundir lidocaína 0,5% 0,6 ml / kg durante 2-3 min, observar paciente 
para la toxicidad 
10 Retire el catéter 
11 Durante la cirugía, controlar y mantener la presión del manguito 
50-100 mmHg encima de la presión arterial sistólica 
12 Al final de la cirugía, retire torniquete lentamente, observando para 
detectar signos de toxicidad y para asegurar la hemostasia 
precauciones 
 Regionales anestésicas Bloques de las extremidades 63
 
Figura 5.4 bloqueo de Bier. (A) Encuentra más baja presión de oclusión (LOP), (b) 
aplicar Esmarch vendaje, (c) aplicar torniquete 50-100 mmHg por encima de LOP y 
quitar Esmarch, (d) de impulsos de verificación ausente, infundir lidocaína. 
 
64 Manual de Anestesia Regional de Pequeños Animales y Analgesia 
miembro 
pélvico 
 
Tabla 5.2 respuestas motoras provocados a la estimulación del nervio - miembro pélvico
TechniqueMotor responseMuscle 
Femoral - twitchQuadriceps approachPatellar inguinales 
anterior thighSartorius 
Femoral - lateral estimulación preiliacHip flexionPsoas 
enfoque (plexo lumbar caudal) 
adductionGracilis cadera, pectíneo, 
femoral, aductores 
obturador externo 
nervios Acepta el comentario
Femoral