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Cátedra de Cirugía y Anestesiología Facultad de Ciencias Veterinarias Universidad Nacional del Nordeste INYECCIONES. 2020 INYECCIONES Definición: Maniobras mediante las cuales administramos drogas o medicamentos por vía parenteral, valiéndonos de diferentes materiales, como ser jeringas y agujas; así como también para extracciones de líquidos del organismo. (sangre, liquido sinovial). Instrumental: 1. Jeringas: pueden ser de distintos materiales: vidrio, plástico, metal o mixtas. De los dos primeros elementos, existen jeringas descartables. La capacidad varía de 1 a 100 centímetros cúbicos (cc) o mililitros (ml). Por lo general, las descartables se esterilizan por rayos gamma u óxido de etileno. Las jeringas están constituidas por las siguientes partes: a) Cilindro o cuerpo de bomba: Puede estar graduado generalmente en cc y en décimas de cc. Las jeringas de insulina están graduadas en UI (unidades internacionales). En la parte posterior hay un resalto, aletas o anillas para fijar los dedos índice y mayor con la finalidad de facilitar la presión realizada por el dedo pulgar sobre el émbolo. b) Émbolo, vástago y pistón: pueden estar conformados por un solo material, como vidrio o plástico, para mejorar el efecto de bomba, debe tener el extremo anterior de goma, o metal y goma, siendo el vástago de plástico o metal. c) Pico: es el lugar donde se acopla la aguja, puede ser de dos diámetros: fino o record y grueso o americano. El último es el más utilizado por su resistencia. Puede tener un dispositivo de engarce denominado “bayoneta” que evita el desacople accidental de la aguja. El pico, a su vez, puede ser concéntrico o excéntrico, facilitando este último la aplicación de inyecciones EV. Existen jeringas de materiales combinados o mixtos, utilizadas para inyecciones en serie en el medio rural. Entre estas destacaremos las “Roux” y “Champion”. Poseen une camisa metálica, dentro de la cual hay un cilindro de vidrio o plástico formando el cuerpo de la bomba. El pico es metálico, generalmente intercambiable. Por el interior de la jeringa corre un vástago graduado. Un disco metálico se desplaza sobre el mismo, limitando la cantidad de líquido a inyectar. Otro instrumento de similar aplicación es la jeringa o pistola automática, que tiene la ventaja de poseer un selector de dosificación que nos permite realizar inyecciones repetidas sin modificar la regulación para cada aplicación. Jeringas plásticas descartables Jeringa o pistola automática 2. Agujas: está conformada por una punta, un cuerpo o tallo y un pabellón o cono. a) La punta es biselada, corta o larga. El bisel corto es apto para inyecciones endovenosas, en tanto que el bisel largo es para inyecciones intramusculares principalmente. b) El tallo tiene grosor y largo variable, y existen distintos sistemas de medida. El que utilizaremos consta de dos números: el primero indica la longitud en milímetros y el segundo indica el diámetro interno en décimas de milímetros. Concéntrico Excéntrico Ej:50/10 significa 50 mm (5 cm) de longitud y 10 décimas de mm (1 mm) de diámetro. Otra escala en medida para el diámetro es en gauge: “G” DIÁMETRO CODIGO 0.5 mm 24 G 0.6 mm 23 G 0.7 mm 22 G 0.8 mm 21 G 0.9 mm 20 G 1.1 mm 19 G 1.2 mm 18 G Agujas con diferentes tipos de puntas c) El pabellón o cono sirve para acoplar la aguja al pico de la jeringa por lo tanto los hay finos y gruesos. Pueden tener grabada la medida de la aguja. Existen pabellones metálicos y de plástico de cono americano (descartables) protegidas por un capuchón. Otro elemento anexo que poseen las agujas metálicas es el mandril, un alambre con o sin mango, utilizado para guiar, impedir la obstrucción de la aguja y proteger el bisel. Elección de la aguja: Depende de varios factores: la longitud estará dada por la profundidad o extensión de los tejidos a atravesar; y el diámetro depende de la viscosidad de los líquidos a inyectar o extraer, del volumen de líquido a inyectar, de la resistencia de los tejidos a su penetración, y en el caso de la EV interesa la luz de los vasos a punzar. Escala gauge, código de color y diámetro en mm La apertura de los elementos conservando su esterilidad se realiza de la siguiente manera: Se toma tanto las agujas como las jeringas ambas se abren de la misma manera ya que poseen un envoltorio, con ambas manos se realizan la apertura de la mismas se toman con los dedos índices y pulgares de ambas manos los bordes indicados en cada envoltorio y se hace la separación de los mismos sin tocar el material estéril (picos en jeringas o conos en agujas) realizando el acople de los dos elementos en forma aséptica. Figuras 1,2 y 3. Fig 1 Fig 2 Fig 3 Técnica de ejecución de inyecciones: a) Toma: las jeringas se sujetan por el cuerpo con los dedos índice, medio y pulgar. Las jeringas grandes también con el dedo anular. Este último dedo y el meñique frenan el émbolo. b) Acople de la aguja: la misma se toma del pabellón insertándose en ella el pico de la jeringa. La esterilidad de estos elementos debe ser conservada en todo momento. c) Carga: se efectúa de distintas maneras según se trate de un frasco ampolla o una ampolla. En el primer caso se desinfecta el tapón, se invierte el frasco y se sujeta con una mano. Se inserta la aguja acoplada a la jeringa, tomándola de la forma ya explicada con la otra mano. Luego se succiona traccionando el embolo mediante los dedos índice y anular, frenando el cuerpo de la jeringa con el pulgar, si se trata de una jeringa pequeña, o tomando la jeringa y el frasco con una mano y traccionando el embolo con la otra. En el caso de la ampolla se aspira desde el interior de la misma con la aguja montada, guardando la asepsia debida. d) Purgado: se dirige la jeringa con la aguja acoplada hacia arriba, se aplican suaves golpes al cuerpo con la finalidad de desplazar las burbujas hacia el pico y se comprime el embolo hasta desalojar la totalidad del aire. e) Preparación del lugar de inyección: debe efectuarse la tricotomía, previo a la ejecución de ciertas inyecciones como EV en pequeños animales, y epidurales, etc. Se realiza la antisepsia de la piel con algún antiséptico como alcohol, iodo o clorhexidina. f) Punción: puede efectuarse con la aguja acoplada o no. El bisel de la aguja debe dirigirse hacia arriba para que no actúe como sacabocados. Las agujas muy largas se insertan desacopladas. Pudiendo guiarla mediante manos enguantadas estériles. Luego se adapta el pabellón al pico de la jeringa. En caso de realizar la inyección con jeringa y aguja acopladas se toma la jeringa de la manera antes explicada y se practica la punción. g) Inyección: se toma el cuerpo de la jeringa entre los dedos índices y medio, presionando el émbolo con el dedo pulgar. La otra mano puede colaborar en la sujeción del cuerpo de la jeringa. VÍAS DE APLICACIÓN: Las más frecuentes son, de acuerdo a la velocidad de absorción en orden creciente: intradérmica, subcutánea, intramuscular, intraperitoneal, intraósea y endovenosa. Vías de aplicación de inyecciones INTRADÉRMICA Se utiliza en general para revelar estados de alergia o sensibilidad, por ejemplo, tuberculización, pruebas de hipersensibilidad alérgica. Se inyectan pequeñas cantidades de líquido (0.1-0.5 cc). Puede ser necesaria la tricotomía de la región. Se hace un pliegue de piel fina, introduciendo la aguja acoplada con el bisel hacia arriba, casi paralela a la piel con un ángulo de 10° a 15°, y a lo largo del pliegue. Se nota resistencia a la inyección, formándose una pápula que no debe ser masajeada posteriormente. Caninos y felinos: cara interna del muslo, pliegue de la babilla, parrilla costal. Agujas: 25G x 5/8” (16/5). Equinos: tabla del cuello en su tercio posterior. Agujas: 25G, x 5/8” (16/5).Bovinos: pliegue ano caudal, tabla del cuello. Agujas: 25G x 5/8” (16/5). Ovino: cara interna del muslo. Agujas: 25Gx5/8” (16/5). Porcino: cara externa del pabellón auricular, cara interna del muslo. Agujas: 25G x 5/8” (16/5). Aves barbillones. Agujas: 27G x ½” (13/4) Vía intradérmica SUBCUTÁNEA Son fáciles de efectuar, aún sin experiencia o en sujetos indóciles. Se eligen zonas donde la piel es más móvil por el abundante tejido conjuntivo subcutáneo, alejada de elementos anatómicos importantes como vasos sanguíneos de gran calibre. Solo debe inyectarse sustancias no irritantes e isotónicas. No aplicar sustancias hipertónicas. Se hace un pliegue de piel, insertando la aguja perpendicular al mismo y próximo a la base. La aguja debe quedar libre y el líquido inyectarse con facilidad. Puede quedar una prominencia difusa según el volumen inyectado. No masajear la zona después de la aplicación de la inyección. La absorción se efectúa especialmente por vía linfática y, en parte, por vía sanguínea. Caninos y felinos: dorso o parrilla costal (1°eleccion). Agujas: 21G x 1” (25/8); 25G x 5/8” (25/7). Equinos: tabla del cuello. Agujas: 21G x 1” (25/8); (40/8) Bovino: tabla del cuello, o por delante o por detrás de la escápula. 21G x 1” (25/8), (40/8). Ovinos: si están esquilados se realiza como en bovinos, en caso contrario, en la cara interna del muslo o en el pliegue inguinal. Agujas: 21G x 1” (25/8). Aves: en la nuca, bajo el ala y en el pecho. Agujas: 21G x 1” (25/8); 22G x 1 ¼”, (32/7); 25G x 5/8” (25/7). Vía subcutánea o hipodérmica INTRAMUSCULAR Se aplican en grandes masas musculares alejadas de vasos y nervios importantes. Se pueden usar medicamentos del tipo de los mencionados en las inyecciones subcutáneas inclusive algo irritante y oleoso. En grandes animales se efectúa con aguja desacoplada. Siempre se debe realizar la prueba de aspiración para comprobar si accidentalmente no se produjo una punción vascular. Caninos y felinos: cara posterior del muslo, en el tercio medio o superior. Debe efectuarse en los músculos semimembranoso o semitendinoso, (ilustración 1,2) y no entre éstos ya que, al penetrar la aponeurosis de estos músculos, sería similar a una inyección subcutánea. En caninos de musculatura prominente como Pitbulls o razas gigantes se puede elegir la región lumbar (músculo dorsal largo) también se puede realizar en el miembro anterior en el bíceps braquial o triceps. (ilustración 3,4). En el miembro posterior también se pude hacer en el cuadriceps femoral (bastos) Agujas: 21G x 1” (25/8) para gatos y perros pequeños, 21G x 1 ½” (40/8) perros grandes. Equinos: tabla del cuello, en el centro del triángulo conformado por el ligamento nucal, borde anterior de la escapula y el musculo braquiocefálico (ilustración 1); en la región del pecho en equinos deportivos (ilustración 2); región de la grupa en su parte más alta (límites formados por un triángulo por las siguientes estructuras anatómicas: sacro, tubérculo coxal e isquiático) (ilustración 3). Agujas: 18G x 1 ½” (40/12). Bovinos: tabla del cuello, centro de la grupa, nalga. (Tratar de evitar las masas musculares de mayor valor comercial). (Ilustración 1) Agujas: 18G x 1 ½” (40/12) Ovinos: cara interna del muslo. Agujas: 21G x 1” (25/8). Porcinos: en la masa muscular comprendida entre oreja y hombro, cara posterior del muslo. Agujas: 18G x 1” o 11/2” (25 o 40/12). Semimembranoso o Semitendinoso o o cuadriceps Tríceps Braquial 1 2 3 4 cuádriceps femoral o o cuadriceps Aves: en la pechuga. Agujas: 21G x 1” (25/8) INTRAPERITONEAL Esta vía, si bien técnicamente es apta para cualquier especie, solamente es de práctica en caninos y felinos neonatos y animales de laboratorio. La vía de elección en estas especies es por el flanco, un área delimitada en craneal por el bazo, en caudal por la vejiga y en dorsal por la zona renal. Por ventral (recomendada para principiantes) debemos tomar como punto de referencia el ombligo, 2 a 4 cm a su alrededor, dependiendo del tamaño del paciente. El área está limitada hacia craneal por el bazo y hacia caudal por la vejiga. Ilustración 1. Vía de administración Intramuscular Tabla del cuello. Señalado con la flecha. Ilustración 2. Vía de administración Intramuscular. Músculos Pectorales señalados. Ilustración 3. Vía de administración Intramuscular Músculos Glúteos. Señalado con la flecha. Vía intramuscular Instrumental: agujas 21 G x 1” (25/8), pero varía según la densidad del líquido a inyectar. Técnica de aplicación: 1) atravesar la piel. 2) desplazarla para no crear vías de continuidad (tunelización) y atravesar los tejidos hasta llegar a la cavidad peritoneal. Esto se verifica al cesar la resistencia al paso de la aguja. Velocidad de absorción: más rápida que las vías subcutánea e intramuscular, pero más lenta que la EV. Absorción: vasos linfáticos y sanguíneos. Líquidos a administrar: soluciones electrolíticas acuosas, isotónicas; medicamentos: barbitúricos, antibióticos, anestésicos. Esta vía es recomendada cuando no es factible utilizar las venas, ya sea por su tamaño o por su estado debido a reiteradas inyecciones EV. Accidentes y complicaciones: inyección intramuscular, dejar una vía de continuidad que favorecerá la salida de líquidos, punción de los órganos (hígado, vejiga, útero grávido, etc.), peritonitis. ENDOVENOSAS La técnica es más delicada, necesitándose una buena inmovilización del animal. Por esta vía, pueden inyectarse sustancias emulsionadas, irritantes o hipertónicas. Puede realizarse con la aguja acoplada o desacoplada. Se debe realizar la tricotomía y preparar la zona con algún antiséptico. Se presiona en proximal para ingurgitar la vena mediante la mano, dedo, lazo, banda de goma, etc. Se verifica la punción venosa por la salida franca de sangre a través de la aguja, o su entrada en la jeringa al succionar. Antes de inyectar se afloja la compresión y se realiza la descarga. Previo al retiro de la aguja, es necesario comprimir con algodón sobre la misma y seguir manteniendo la presión ya quitada la aguja, el tiempo necesario para evitar que la sangre extravasada forme hematomas. La administración en general debe ser lenta. Caninos: Safena externa, yugular, marginal de la oreja y sublingual (esta última bajo anestesia). Agujas: 21G x 1” (25/8), 25G x 5/8” (16/5) Cefálica Antibraquial Safena Lateral Yugular Externa Vena Anti braquial en canino Vena Safena Externa en canino Vena Yugular en canino Felinos: cefálica antibraquial , safena interna y yugular. Agujas: 21G x 1” (25/8), 22G x 1 ¼”, (32/7), 23G x ¼” (25/6). Equinos: yugular en su tercio medio y craneal (porque a ese nivel el musculo omohiodes separa yugular de la carótida), cefálica antibraquial y safena externa. Agujas: 20G x 11/2” (38/9); 19G x 11/2” (38/11); 18G x 1 ½” (38/12) Vena yugular en equino Vena marginal de la oreja en cerdo Vena Safena Interna en felino Vena sublingual en canino Vena cava craneal en cerdo Bovinos: yugular en el tercio medio y craneal, mamaria y safena externa. Agujas: 20G x 11/2” (38/9); 19G x 11/2” (38/11); 18G x 1 ½” (38/12) Para extracción de sangre puede emplearse el sangrador americano. Con el mismo objetivo puede realizarse la punción de la vena coccígea media mediante jeringa y aguja 21G x 1” (25/8.) Ovinos: yugular externa, cefálica antibraquial y safena externa. Agujas: 21G x 1” (25/8) Porcino: vena marginal de la oreja. Agujas21G x 1” (25/8), vena cava craneal. Agujas: 21G x 2” (50/8), seno venoso oftálmico. Agujas (40/8). Aves: vena axilar. Agujas: 21G x 1” (25/8), 22G x 1 ¼”, (32/7) INTRACARDÍACA Consiste en introducirun fármaco, soluciones isotónicas o sangre en las cavidades auriculares o ventriculares del corazón, por medio de una aguja. Indicaciones: paro cardíaco casi exclusivamente. Complicaciones: lesión de la arteria coronaria y hemorragia dentro del pericardio, o taponamiento. La probabilidad de complicaciones puede reducirse mediante el uso de una aguja de calibre estrecho. La inyección intracardiaca de drogas a ciegas no está recomendada durante la RCP o tórax cerrado, porque puede producir lesiones. Una inyección intracardíaca de adrenalina (epinefrina) sólo debe considerarse en el caso excepcional en que la vena sea inaccesible y si el paciente no fue intubado previamente.
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